生物素标记抗体的免疫荧光方法
几种常见的抗体标记方法-酶标记、荧光素标记、同位素标记、生物素标记

几种常见的抗体标记方法-酶标记、荧光素标记、同位素标记、生物素标记抗体标记主要有酶标记、荧光素标记、同位素标记、生物素标记等,还有一些其他的标记方法例如金标记,本文主要讲述了这些抗体标记的基本原理、操作步骤。
一、酶标记1、辣根过氧化物酶(HRP)标记辣根过氧化物酶(HRP)标记单抗和多克隆抗体的常用方法是过碘酸钠法。
其原理是HRP的糖基用过碘酸钠氧化成醛基,加入抗体IgG 后该醛基与IgG氨基结合,形成Schiff氏碱。
为了防止HRP 中糖的醛基与其自身蛋白氨基发生偶合,在用过碘酸钠氧化前先用二硝基氟苯阻断氨基。
氧化反应末了,用硼氢化钠稳定Schiff氏碱。
这里介绍两种程序。
程序一:(1)将5mg HRP溶于0.5ml 0.1mol/L NaHCO3溶液中;加0.5ml 10mmol/LNaIO4溶液,混匀,盖紧瓶塞,室温避光作用2小时。
(2)加0.75ml 0.1mol/L Na2CO3混匀。
(3)加入0.75ml小鼠已处理的腹水,或纯化单抗等(15mg/ml),混匀。
(4)称取SephadexG25干粉0.3g,加入一支下口垫玻璃棉的5ml注射器外筒内;随后将上述交联物移入注射器外套;盖紧,室温作用(避光)3小时或4℃过夜。
(5)用少许PBS将交联物全部洗出,收集洗出液,加1/20V体积新鲜配制的5mg/mlNaBH4溶液,混匀,室温作用30分钟;再加入3/20V NaBH4溶液,混匀,室温作用1小时(或4℃过夜)。
(6)将交联物过Sephadex g200或Sepharose6B(2.6×50cm)层析纯化,分管收集第一峰。
(7)酶结合物质量鉴定:克分子比值测定酶量(mg/ml)=OD403×0.4IgG量(mg/ml)=(OD280-OD403×0.3)×0.62克分子比值(E/P)=酶量×4/IgG量,一般在1-2之间。
酶结合率=酶量×体积/抗体,标记率一般为0.3-0.6,即1-2个HRP分子结合在一个抗体分子上,标记率可大于0.6,0.8,0.9;OD403/OD280等于0.4时,E/P约为1。
免疫荧光技术实验步骤及方法

免疫荧光技术实验步骤及方法免疫荧光是标记免疫技术发展最早的一种,它是在免疫学、生物化学和显微镜技术的基础上建立起来的一项技术,通过将抗体与一些示踪物质结合,利用抗原抗体反应进行组织或细胞内抗原物质的定位。
10个关键点免疫荧光步骤包括,细胞固定和通透,封闭,孵育一抗,二抗等。
除了这些基本步骤,以下建议可以帮助您获得更好的实验结果。
1、选择合适的细胞种板密度细胞数过多时,生长过密,细胞结构不清,易导致染色背景深,细胞数过少时,会使贴壁贴壁不佳,状态不好,一般以六孔板为例,(1-5)×100000比较适宜。
2、细胞固定和通透为达到最佳的检测效果,细胞需要经过固定和通透。
这些步骤非常关键,细胞和抗原需要保证最佳的结构,并利于抗体与抗原结合。
现在固定液选择比较多,有4%多聚甲醛、甲醇、乙醇、丙酮以及丙酮和甲醇混合液(1:1),但效果最好的应用最多的还是推荐4%多聚甲醛。
之后用0.1%皂角苷或0.02%的Triton X-100进行通透。
前者是比较温柔的处理,但是对于核内抗原可能无效,需要用到Triton。
使用皂角苷进行通透时,要注意它会引起细胞膜的可逆性通透,也就是除了在通透初期,在每个抗体孵育环节都需要进行通透。
另外,细胞可以用冰甲醇进行同时固定和通透,可以避免去垢剂的使用。
3、抗体特异性免疫荧光需要用到特异性非常强的抗体,可以避免高背景和不理想的蛋白定位结果。
在大多数情况下,纯化抗体的效果很好,但是正确的对照可以帮助精准定位抗原。
使用只有二抗染色的片子作为阴性对照,有利于减少降低背景干扰。
4、合适的抗体稀释比例通过优化抗体稀释比例来优化染色,通常情况下1ug/ml的纯化抗体或者1:100-1:1000的抗血清足够达到特异性染色的结果。
但在能保证低背景染色的前提下,可以通过增加浓度来提高信号强度。
如果是第一次使用该抗体或测定某抗原,强烈建议浓度梯度实验。
5、优化缓冲液和封闭剂尽管很多抗原在常见的Buffer如PBS中可以很好的被染色,但是对于某些目的抗原,更换一下含有不同离子的缓冲液,比如钙、镁、钾等,可以带来很大程度上的改善。
笔记:免疫荧光

笔记:免疫荧光
本篇文章由专业生化试剂供应商上海岚兴生物为您提供.
免疫荧光又称免疫荧光抗体。
免疫荧光实验原理是将荧光素标记在相应的抗体上,直接与相应抗原反应。
其优点是方法简便、特异性高,非特异性荧光染色少,相对使用标记抗体用量偏大。
利用抗原抗体反应进行组织或细胞内抗原物质的定位。
下面详细介绍免疫荧光染色步骤:
1. 滴加 0.01mol/L,pH7.4 的PBS于待检标本片上,10min后弃去,使标本保持一定湿度。
2. 滴加适当稀释的荧光标记的抗体溶液,使其完全覆盖标本,置于有盖搪瓷盒内,保温一定时间(参考:30min)。
3. 取出玻片,置玻片架上,先用 0.01mol/L,pH7.4 的 PBS 冲洗后,再按顺序过 0.01mol/L,pH7.4 的 PBS 三缸浸泡,每缸 3-5 min,不时振荡。
4. 取出玻片,用滤纸吸去多余水分,但不使标本干燥,加一滴缓冲甘油,以盖玻片覆盖。
5. 立即用荧光显微镜观察。
观察标本的特异性荧光强度,一般可用“+”表示:(-)无荧光;(±)极弱的可疑荧光;(+)荧光较弱,但清楚可见;(++)荧光明亮;(+++--++++)荧光闪亮。
待检标本特异性荧光染色强度达“++”以上,而各种对照显示为(±)或(-),即可判定为
阳性。
免疫荧光操作步骤及注意事项

免疫荧光操作步骤及注意事项免疫荧光技术是一种常用的免疫学研究方法,可以用于检测和定位抗原或抗体在细胞或组织中的表达和定位。
免疫荧光操作步骤及注意事项如下:步骤1:样品制备1.收集需要检测的细胞或组织样品。
2.如有需要,固定细胞或组织样品以保持其形态和抗原性。
3.如有需要,对组织样品进行切片以便于检测。
步骤2:抗体选择和标记1.根据需要选择合适的一抗和二抗,一抗用于识别目标抗原,二抗用于与一抗结合并携带荧光标记。
2. 选择合适的荧光染料或荧光标记,常用的有荧光素色素(FITC)、罗丹明(Rhodamine)等。
3.根据供应商指南或经典实验文献中的方法,进行抗体标记。
步骤3:荧光标记试剂的制备1.根据推荐的配方或说明书,在标记试剂的缓冲液中加入合适的荧光染料或荧光标记,并进行充分混匀。
2.如有需要,可以在标记试剂中加入其他辅助试剂以增强染色强度或减少非特异性结合。
步骤4:样品孵育1.将样品均匀分布在载玻片或孵育板上,并使其附着。
2.加入一抗和二抗的混合物,并在暗处孵育一段时间,通常在室温下孵育1-2小时或在4°C下孵育过夜。
3.如果需要,可以在抗体孵育结束后进行染色或共孵育其他标记试剂。
步骤5:洗涤1.在孵育结束后,用洗涤缓冲液洗涤样品,以去除未结合的抗体和其他杂质。
2.洗涤次数根据需要,通常进行3-5次洗涤,每次洗涤时间约5分钟。
步骤6:显微镜观察和成像1.将标本置于显微镜上,并使用荧光显微镜或倒置显微镜观察荧光信号。
2.使用合适的荧光滤光片或滤片盒,选择适当的波长来显现荧光染色。
3.根据需要,使用数字相机或图像分析软件进行图像采集和分析。
注意事项:1.仪器和试剂的准备与操作一定要在无菌和干净的条件下进行,以避免外源性污染或感染的发生。
2.使用抗体和试剂前请仔细阅读供应商提供的说明书,遵守推荐的使用和储存条件。
3.一抗和二抗的选取要慎重,确保其与目标抗原或抗体具有高度特异性。
4.荧光标记试剂的制备要注意在无菌和干净的条件下进行,避免污染或降低荧光标记效果。
免疫荧光技术试验流程

免疫荧光技术试验流程免疫荧光技术(Immunofluorescence technique )又称荧光抗体技术,是标记免疫技术中发展最早的一种。
它是在免疫学、生物化学和显微镜技术的基础上建立起来的一项技术。
很早以来就有一些学者试图将抗体分子与一些示踪物质结合,利用抗原抗体反应进行组织或细胞内抗原物质的定位。
以荧光抗体方法较常用。
用免疫荧光技术显示和检查细胞或组织内抗原或半抗原物质等方法称为免疫荧光细胞(或组织)化学技术。
免疫细胞荧光试验流程:1、细胞爬片制备1)、将盖玻片放入培养瓶或多孔板中2)、细胞生长实现60%后取出盖玻片3)、用PBS清洗盖玻片3次4)、将盖玻片(细胞面朝上)浸入冷丙酮或4%多聚甲醛或中性福尔马林中10至20分钟(盖上盖子以防止蒸发)5)、用PBS清洗盖玻片3次6)、将盖玻片放在滤纸上(细胞朝上)7)、干燥8—10小时,放入—20°C保管8)、试验前解冻爬片,在室温下用中性PBS浸泡10—15分钟注意:使用多聚甲醛和福尔马林固定可能会导致绿色光谱中的自发荧光。
在这种情况下,可以试验红色或红外的荧光素。
2、破膜1)、0.1%Triton孵育10min2)、PBS洗涤3次,每次3分钟3、抗原修复1)、用滤纸擦干细胞爬片2)、在爬片上加入如胰蛋白酶或其它酶抗原修复液3)、在室温下孵育10分钟4)、用PBS洗涤3次,每次10分钟4、封闭1)、在爬片上加入5%BSA封闭液(种属与二抗来源相同)2)、37°C孵育30分钟3)、甩掉多余的液体并用滤纸擦干(不需要洗涤)5、一抗孵育1)、用抗体稀释液稀释一抗,实现抗体制造商介绍的浓度2)、将稀释的抗体(介绍浓度:0.4μg至2μg)加到爬片上,4°C孵育过夜3)、用PBS洗涤3次,每次15分钟6、二抗孵育1)、用抗体稀释液稀释生物素化的二抗2)、将稀释的抗体加到爬片上,37°C孵育30分钟3)、用PBS洗涤3次,每次8分钟7、染色1)、爬片上滴加稀释好的SABC—FITC或SABC—Cy3试剂2)、37°C孵育30分钟(避光)3)、用PBS洗涤2次4)、滴加DAPI染液,避光孵育10min5)、用PBS洗涤3次6)、用抗荧光衰减封片剂封片,荧光显微镜下察看结果。
免疫荧光的原理与操作方法

免疫荧光的原理与操作方法
免疫荧光是一种常用的生物学实验技术,其原理是利用特异性抗体与被检测目标结合,并通过荧光标记的二抗或标记的荧光染料来标记抗原或抗体,从而实现对目标物的定量或定位分析。
免疫荧光的操作方法如下:
1. 样品制备:根据需要检测的目标物选择相应的样品,如细胞、组织或酶解物等,然后进行固定和包埋处理,以保持目标物的完整性和稳定性。
2. 抗体处理:将特异性的抗体加入到样品中与目标物结合,通常先经过一定的预处理步骤,如洗涤样品等。
3. 溶液处理:将样品置于含有稀释的荧光标记物(如荧光染料或荧光素等)的缓冲液中,使标记物与样品中的抗原或抗体结合。
4. 洗涤:为去除非特异性结合的无标记物质,需要进行多次洗涤步骤。
洗涤步骤有助于提高免疫荧光实验的特异性和背景噪声的消除。
5. 扫描与图像分析:用荧光显微镜观察标记物质的荧光信号,并通过相应的图像采集与分析软件进行图像记录和荧光信号的定量分析。
需要注意以下几点:
- 对于不透明的组织,需要进行切片和脱水处理,以便抗体和标记物能够渗透到组织中。
- 抗体的选择应根据被检测目标物的性质和特异性来决定。
- 操作过程需注意无菌条件,避免污染样品。
- 实验中的洗涤步骤要彻底,以避免非特异性结合和背景噪声。
免疫荧光法(免疫细胞化学)

免疫荧光法(免疫细胞化学)免疫荧光法(免疫细胞化学)免疫荧光法,也称为免疫细胞化学,是一种用于检测和定位特定分子在细胞或组织中的分布的技术。
该方法利用荧光标记的抗体与目标分子结合,通过显微镜观察荧光信号的发射来确定其位置。
本文将介绍免疫荧光法的基本原理,实验步骤和应用领域。
一、基本原理免疫荧光法依赖于抗原与抗体的特异性结合。
在免疫细胞化学中,荧光标记的抗体与靶分子结合后,可以通过激发荧光,从而使得靶分子在细胞或组织中可见。
这种荧光标记可以通过直接结合或间接结合实现。
直接结合法是将荧光染料直接与抗体结合,制备成荧光标记的抗体。
这种方法操作简单,适合用于单一标记物的检测,但可能导致染色反应无法控制甚至给靶分子造成损伤。
间接结合法则是利用第二抗体与一抗体结合,然后再将第二抗体与荧光标记结合。
这种方法可以使用多个不同的抗体,并能将多个目标同时检测,具有高度特异性和灵敏度。
但是,操作过程相对繁琐,需要较长时间。
二、实验步骤1. 样本制备:取得所需检测的细胞或组织样本,处理好固定和预处理的步骤。
例如,细胞需经过固定、渗透、洗涤等操作,组织则需进行切片和脱水等步骤。
预处理的目的是为了提高抗体的结合效率和信号强度。
2. 抗体染色:将标记了荧光的一抗体或一抗体与标记物结合的复合物加到预处理好的样本上,充分孵育,以实现抗原和抗体结合。
3. 清洗:将标本进行适当的冲洗,使未结合的抗体、标记物等被去除。
4. 结果观察:将标本放置在荧光显微镜下观察,通过不同波长的光源激发和发射荧光信号。
5. 形态学观察:根据样本的特点、形态学特征及标记染色的荧光信号,判断目标分子的定位和表达情况。
三、应用领域免疫荧光法在生物医学和生命科学领域中得到了广泛应用。
以下是其主要应用领域的一些例子:1. 免疫细胞凝集试验:用于检测抗原与抗体间的反应,如血型鉴定等。
2. 免疫组织化学:通过检测和定位特定分子在组织中的分布,来研究疾病的发生和发展机制,如肿瘤标记物的检测等。
免疫荧光标记技术原理

免疫荧光标记技术原理
免疫荧光标记技术是一种常用的分子生物学技术,它基于抗体与特定抗原的特异性结合,并利用荧光染料标记抗体来实现对特定分子的检测和定位。
该技术具有高灵敏度、高特异性、高空间分辨率等特点,被广泛应用于细胞学、病理学、免疫学等领域。
该技术的实现分为两个步骤:首先是抗体的制备,包括抗原的筛选、抗体的克隆和纯化等;其次是荧光标记抗体的制备,包括荧光染料的选择、标记反应的条件优化等。
在使用免疫荧光标记技术进行实验时,通常需要先对样品进行特定的处理,例如细胞固定、抗原检测和荧光染色等。
然后,将标记好的荧光抗体加入样品中,让其与目标分子结合,形成荧光标记的复合物。
最后,通过荧光显微镜等设备观察标记复合物的位置、数量和形态等信息。
总的来说,免疫荧光标记技术是一种高效、准确的分子生物学技术,为研究细胞结构、功能和疾病发生机制等提供了有力的工具。
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生物素标记抗体的免疫荧光方法
*重要提示:在开始实验前请查阅所用抗体的说明书中第一页应用(APPLICATIONS)部分,确认这支抗体已经验证过可用于你计划采用的本实验方法中的特定方案。
A.所需溶液和试剂
注意:用Milli-Q超纯水或是相当级别的水配制溶液。
1.10 X磷酸盐缓冲液(PBS): 1升水中加入80 g 氯化钠(NaCl), 2 g 氯化钾(KCl), 14.4 g 磷
酸氢二钠(Na2HPO4) and 2.4 g 磷酸二氢钾(KH2PO4)。
调整pH到7.4。
2.甲醛溶液,16%,无甲醇的类型,Polysciences, Inc. (cat# 18814) ,现配现用。
开封
以后放在4°C避光保存。
使用时用PBS稀释。
3.二甲苯
4.无水乙醇,组织学级,100%和95%。
5.蒸馏水(dH2O)
6.封闭缓冲液:配制25ml时,2.5 ml 10X PBS和1.25ml正常血清(来源与二抗相同,
例如正常山羊血清,正常驴血清)兑到21.25ml的蒸馏水中,混匀。
边搅拌边加入75µL Triton X-100(100%)
7.抗体稀释缓冲液配置40ml时,取4 ml 10X PBS兑入36 ml蒸馏水,混匀。
加入0.4
BSA,使溶解。
边搅拌边加入120µL Triton X-100(100%)。
8.10 mM 柠檬酸钠缓冲液配置1L时,称取2.94g二水合柠檬酸三钠(C6H5Na3O7•2H2O)
溶解在1L蒸馏水中。
调整pH为6.0。
9.荧光素标记的抗生物素蛋白Avidin/Streptavidin
注意:第一次使用不论是一抗还是荧光素标记的抗生物素蛋白Avidin/Streptavidin时,都需要做滴定分析以判断何种稀释比例能在你的样品上得到最强的特异信号同时背景保持最低
11.Prolong® Gold 抗淬灭试剂(Invitrogen, Eugene, OR, Cat# P36930)
B.样品制备
I.细胞系培养物来源(IF-IC)
重要提示:查阅说明书中APPLICATIONS部分,确认所用抗体可用于IF-IC。
注意:细胞应直接在多孔板,腔室玻片或是盖玻片上直接培养,处理,固定和染色。
1.用PBS稍加润洗。
2.吸去PBS,将细胞泡在2-3 mm厚的2-4%甲醛溶液(PBS配制)中。
注意:甲醛有毒,需要在通风橱中操作。
3.室温下固定细胞15分钟。
4.吸去固定剂,用PBS润洗三次,每次五分钟。
5.甲醇打孔步骤(是否需要参考抗体说明首页)在甲醛固定后,将细胞浸泡在冰纯甲
醇中(加入足量甲醇完全盖住细胞,液层厚度在3-5mm,千万别让细胞干掉),–20°C 孵育10分钟。
用PBS润洗5分钟。
6.继续C部分的免疫染色。
II.石蜡切片(IF-P)
重要提示:查阅说明书中APPLICATIONS部分,确认所用抗体可用于IF-P。
脱蜡处理/再水化
1.用二甲苯浸洗切片3次,每次5分钟。
2.用无水乙醇浸洗切片2次,每次10分钟。
3.用95%乙醇浸洗切片2次,每次10分钟
4.在蒸馏水中润湿2次,每次5分钟。
抗原暴露:
1.室温下,将切片泡在10 mM柠檬酸盐缓冲液中(pH 6.0.)。
2.用水浴锅或是微波炉加热泡在柠檬酸盐缓冲液中的玻片使之接近沸腾,保持95-99°C
约10分钟。
3.取出玻片,放在实验台上自然冷却30分钟。
4.在蒸馏水中润洗3次,每次5分钟。
5.在PBS中润洗5分钟。
6.继续C部分的免疫染色。
III. 冰冻切片(IF-F)
重要提示:查阅说明书中APPLICATIONS部分,确认所用抗体可用于IF-F。
1.用PBS配置的2-4%甲醛溶液浸泡切片。
注意:甲醛有毒,这一步需要在通风橱中进行。
2.室温下,固定15分钟。
3.用PBS润洗3次,每次5分钟。
C. 免疫染色
注意:以下所有的孵育过程,除特殊说明外,需要在室温下的避光湿盒中进行,以免切片变干和荧光淬灭。
注意:本身高表达生物素的细胞或是组织需要用生物素封闭试剂盒在开始第一步前预先处理(比如Endogenous Biotin-Blocking Kit, Invitrogen Cat. #E21390)。
1.将样品在封闭液中封闭60分钟。
2.封闭结束前,按说明书的指示用抗体稀释缓冲液稀释一抗。
3.吸去封闭液,加入稀释的一抗。
注意:在做双染时,将两种抗体按各自合适的比例加入到抗体稀释缓冲液中配成混合液。
4.在4°C孵育过夜。
5.用PBS润洗3次,每次5分钟。
6.把荧光素标记的抗生物素蛋白Avidin/Streptavidin稀释在抗体稀释液中,将样品与稀
释抗体在室温下避光孵育1-2小时。
7.用PBS润洗3次,每次5分钟。
8.涂上Prolong® Gold抗淬灭试剂后盖上玻片。
处理多孔板时,抗淬灭试剂盖住细胞细
胞即可。
9.在盖玻片的周围涂上指甲油密封。
10.立即在显微镜下用相应波长激发光观察样品可以得到最佳的效果。
如果要长期保存,
将玻片放在4°C避光保存。