影响尿生成的因素实验
RM-6240多道生理记录仪、压力换能器、兔手术器械1套、刺 激电极、膀胱插管、尿液记滴器、生理盐水、20%葡萄糖、1： 10000肾上腺素、抗利尿激素、呋塞米、0.5%肝素、25%乌 拉坦、尿糖试纸
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步骤
（一）麻醉、固定（25％乌拉坦4ml/kg）
（二）颈部手术
1．做颈部切口，逐层分离皮肤、皮下组织、肌肉 （钝性分离），暴露气管。 2．气管插管。 3．分离右侧迷走神经，穿线备用。 4．分离左侧颈总动脉并行动脉插管，描记动脉血 压。
先充满生理盐水的细塑料管向肾脏方向插入输尿管
（1cm左右），用线结扎固定。
手术完毕后用温生理盐水纱布将切口盖住。
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尿液收集方法：
膀胱插管
腹部剪毛，耻骨联合上方正中剪口3-5cm，沿 腹白线剪开腹壁，将膀胱向尾侧移至体外，辨 认膀胱和输尿管的解剖部位，用针筒抽取尿液 6ml，装入两只试管。在膀胱顶部剪一丛行小 口，插入膀胱插管，穿线结扎固定，（注意： 结扎线不要堵住插管的两个入口，插管最好正 对着输尿管在膀胱的入口处，不要紧贴膀胱后 壁，以免堵塞输尿管。）用浸有38℃生理盐水 的纱布覆盖创面。
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原 理：
终尿生成＝滤过液（原尿）－重吸收量＋ 分泌（比较少，可不考虑）
有效滤过压＝毛细血管压－胶体渗透压＋囊内压
凡能影响上述过程的因素都可影响尿的生成，从 而引起尿量的改变
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本实验用两道同步记录 1道记录血压 2道记录尿量
有效滤过压＝毛细血管压－胶体渗透压＋囊内压
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实验对象：家兔
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（四） 连接换能器和记滴器
动脉插管已连在血压力换能器，1道记录血压变化
膀胱插管与记滴器相连，使膀胱内引流出的尿液 滴 在记滴器的两个电极之间，构成一个完整的电通路，2道 记录通道会记录下来一次尿滴。
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观察项目
手术和实验装置安装完毕后，记录正常血 压和尿量曲线，然后依次进行下列实验，观 察血压和尿量的变化。
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实验结果
观察项目 10ml/Kg生理盐水 抗利尿激素2U 20Байду номын сангаас葡萄糖（4ml/Kg） 1：10000肾上腺素0.2~0.3ml 呋塞米5mg/Kg 刺激右侧迷走神经
血压
尿量
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结果分析
一次快速注射10ml/Kg生理盐水，使血容量增加，会引 起下列情况：
（1）血液被稀释，血浆胶体渗透压下降，肾小球有效 滤过压增加，肾小球有效滤过率增加，尿量增加。
来源：下丘脑视上核和室旁核神经元分泌，神经垂体 贮存、释放
作用：①提高远曲小管和集合管对水的通透性； ②增加髓质组织间液的溶质浓度
机制：ADH →V2 →GS →AC →cAMP → PKA →使 AQP-2镶嵌在管腔膜上形成水通道，增加水的重吸收
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结果分析
20%葡萄糖4ml/Kg注入后，可见尿量立即大量增加
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1. 记录正常血压、尿量。 2. 取尿液做尿糖定性实验。从记滴器下方接一滴尿于尿糖试纸 上，放置20~30秒，对比试纸颜色和标准颜色。 3. 按10ml/Kg静脉快速输入生理盐水，观察血压和尿量变化。 4. 静脉注射抗利尿激素2U，观察血压和尿量变化。 5. 静脉注射20%葡萄糖（4ml/Kg），5min内注完，观察血压 和尿量变化。在尿量明显增多时，取尿做尿糖定性实验。 6. 静脉注射1：10000肾上腺素0.2~0.3ml，观察血压和尿量变化。 7. 静脉注射呋塞米5mg/Kg，观察血压和尿量变化。 8. 切断右侧迷走神经，用阈上刺激连续刺激其外周断，使血压 降至50mmHg左右，观察血压和尿量变化。
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结果分析
髓袢升支粗段: 对水不通透
机制：肾小球毛细血管血压高低既受全身动脉血压的影响，又受肾小
球入球小动脉和出球小动脉的口径比例（也就是血管平滑肌舒缩程度） 的影响，而后一种因素比前一种因素更为重要。可使肾小球入球小动脉 收缩，，使肾小球毛细血管中血流量降低，滤过率减少，尿量减少。
因此在临床上抢救休克病人，使用大剂量的肾上腺 素时一定要注意患者尿量的变化。
尿生成的调节包括肾内自身调节、神经调节、 体液调节。本实验分别对实验动物施加不同因 素，观察尿量及其成分的变化。
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尿生成的生理基础
肾单位
肾小体 肾小管
肾小球 肾小囊
近端小管 髓袢细段
远端小管
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近曲小管 近端小管直段 髓袢降支细段 髓袢升支细段 髓袢升支粗段 远曲小管
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尿生成的影响因素 及药物对尿生成的影响
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实验目的
1. 掌握输尿管插管技术，学习尿量的记 录和测量方法；
2. 观察神经体液因素及药物对尿生成的 影响，并分析其作用机制。
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实验原理
尿生成的过程包括：肾小球的滤过、肾小管 和集合管的重吸收和分泌。凡是影响尿生成过 程的因素均可引起尿量的改变。
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（三）尿液收集方法：
输尿管插管
在耻骨联合上缘作4～6cm正中切口，用湿生理 盐水的纱布衬垫后，将膀胱翻至体外（勿使肠断外
露，以免血压下降）。在膀胱底部找出两侧输尿管，
细心分离（莫损伤伴行血管），各穿两条线备用，
分别将输尿管近膀胱端结扎，在结扎线的远离膀胱
端剪开一个斜口（可先用玻璃分针探一下），把预
因为加入后肾中滤过的葡萄糖超过了肾的肾糖阈， 经肾小球滤出的大量葡萄糖不能被肾小管上皮细胞全部 重吸收，致使小管液中出现较多的葡萄糖，使肾小管液 中的渗透压增加，防碍水的重吸收，于是水随葡萄糖一 起排出，尿量增加。此称为渗透性利尿。
此时尿液作生化实验，可检测出尿糖。
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结果分析
静注大剂量肾上腺素后，血压上升（使与外周小动脉平滑肌 中的α受体相结合，使之收缩）尿量减少
（2）血容量增加，肾小球血浆流量增加，使尿液滤过 增多，也促使尿液增加。
（3）血容量增加，刺激左心房及胸腔大静脉容量感受 器，冲动沿迷走神经上传到下丘脑的视上核和室旁核， 使抗利尿激素（ADH）的分泌与释放减少，远曲小管， 集合管对水的重吸收减少，尿液增多。
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结果分析
抗利尿激素 antidiuretic hormone， ADH
影响尿生成的因素实验报告
影响尿生成的因素实验报告影响尿生成的因素实验报告概述：尿液是人体代谢产物的主要排泄物之一，它的生成和排泄对维持人体内环境的稳定起着重要作用。
本实验旨在探究影响尿生成的因素，并通过实验结果分析其机制。
实验一：饮水量对尿量的影响实验目的：通过控制饮水量，观察尿液产量的变化，以验证饮水量对尿量的影响。
实验步骤：1. 将实验对象分为两组，每组10人。
2. 实验组每人饮水量为2000ml/天，对照组每人饮水量为1000ml/天。
3. 每组实验对象在实验开始前3天不进行任何特殊饮食或运动。
4. 分别记录两组实验对象的尿液产量。
实验结果与分析：实验组的尿液产量明显高于对照组。
这是因为饮水量的增加导致体内水分增加，进而刺激肾脏排尿。
实验结果表明，饮水量是影响尿液产量的重要因素之一。
实验二：饮食成分对尿液成分的影响实验目的：通过调整饮食成分，观察尿液中各种成分的变化，以验证饮食成分对尿液成分的影响。
实验步骤：1. 将实验对象分为两组，每组10人。
2. 实验组饮食中添加高蛋白食物，对照组饮食保持常规。
3. 每组实验对象在实验开始前3天不进行任何特殊饮水或运动。
4. 分别收集两组实验对象的尿液样本，并进行尿液分析。
实验结果与分析：实验组的尿液中尿素氮、尿酸等成分的浓度明显高于对照组。
这是因为高蛋白饮食会增加氮负荷，肾脏需要更多的工作来排泄代谢产物。
实验结果表明，饮食成分的改变会影响尿液中各种成分的浓度。
实验三：运动对尿液成分的影响实验目的：通过控制运动量，观察尿液成分的变化，以验证运动对尿液成分的影响。
实验步骤：1. 将实验对象分为两组，每组10人。
2. 实验组进行每天30分钟的中等强度有氧运动，对照组保持常规生活方式。
3. 每组实验对象在实验开始前3天不进行任何特殊饮食或饮水。
4. 分别收集两组实验对象的尿液样本，并进行尿液分析。
实验结果与分析：实验组的尿液中乳酸和尿酸浓度明显高于对照组。
这是因为运动时，肌肉代谢产生的乳酸和尿酸会通过尿液排出体外。
尿生成影响因素实验报告
一、实验目的本研究旨在探讨影响尿生成的各种因素，包括神经体液因素、药物因素和环境因素等，并通过实验验证这些因素对尿生成的影响。
通过对尿生成的影响因素进行深入研究，有助于我们更好地理解尿生成机制，为临床治疗相关疾病提供理论依据。
二、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔（体重2-3kg）2. 实验试剂：生理盐水、葡萄糖、去甲肾上腺素、呋塞米、垂体后叶素、肝素、氨基甲酸乙酯等3. 实验仪器：手术器械、生理信号采集系统、压力传感器、注射器、膀胱插管、输尿管插管等三、实验方法1. 实验分组：将实验动物随机分为对照组、神经体液因素组、药物因素组和环境因素组。
2. 实验操作：（1）对照组：给予生理盐水灌胃，观察尿生成情况。
（2）神经体液因素组：给予生理盐水灌胃，并注射神经体液因素（如去甲肾上腺素、呋塞米、垂体后叶素等），观察尿生成情况。
（3）药物因素组：给予生理盐水灌胃，并注射药物（如呋塞米、甘露醇等），观察尿生成情况。
（4）环境因素组：将动物置于不同温度、湿度等环境条件下，观察尿生成情况。
3. 数据收集：通过膀胱插管或输尿管插管收集尿液，并记录尿量、尿比重、尿pH值等指标。
四、实验结果1. 对照组：尿量为100-150ml/24h，尿比重为1.015-1.020，尿pH值为5.5-6.5。
2. 神经体液因素组：- 去甲肾上腺素组：尿量显著增加，尿比重降低，尿pH值降低。
- 呋塞米组：尿量显著增加，尿比重降低，尿pH值降低。
- 垂体后叶素组：尿量显著增加，尿比重降低，尿pH值降低。
3. 药物因素组：- 呋塞米组：尿量显著增加，尿比重降低，尿pH值降低。
- 甘露醇组：尿量显著增加，尿比重降低，尿pH值降低。
4. 环境因素组：- 高温组：尿量增加，尿比重降低，尿pH值降低。
- 低湿度组：尿量增加，尿比重降低，尿pH值降低。
五、讨论与分析1. 神经体液因素对尿生成的影响：去甲肾上腺素、呋塞米、垂体后叶素等神经体液因素均可通过调节肾小球滤过率、肾小管重吸收和分泌等过程，影响尿生成。
尿液生成的影响因素实验报告
尿液生成的影响因素实验报告实验目的：了解和探究尿液生成的影响因素，了解尿液生成的生理机制。
实验原理：尿液的生成受到多种因素的影响，主要包括身体的水分摄取量、饮食、药物、并发症等。
在正常情况下，尿液生成的过程主要由肾脏、输尿管、膀胱和尿道共同协调完成。
实验材料：1. 实验动物：小鼠/家兔2. 实验设备：尿液采集器、尿液分析仪、天平3. 实验试剂：水、口服葡萄糖水、口服盐水、利尿剂实验步骤：1. 将实验动物随机分为四组，每组分别采取不同的处理方法，第一组只提供水，第二组提供口服葡萄糖水，第三组提供口服盐水，第四组给予口服利尿剂。
2. 每组动物被固定在尿液采集器上，并定时检测和收集其尿液，每次收集和称重1ml的尿液，记录下尿液的数量和质量，以及尿液的密度和pH值。
3. 实验时间持续24小时，在此期间，动物的饮食和饮水需通过人工控制，禁止食用任何除固定食物以外的其他食物和饮料。
4. 实验结束后，将尿液收集器和尿液分析仪清洗干净，记录实验数据。
实验结果：通过实验观察和数据分析，得到以下结果：1. 给小鼠口服葡萄糖水后，尿液生成量明显增加，而口服盐水后尿量相对减少。
2. 给小鼠口服利尿剂后，尿液密度和pH值均有不同程度的改变。
3. 不同组别的动物尿液生成量、密度和pH值均不同，但总体上一般符合尿液生成的生理规律。
实验结论：本实验结果表明，尿液生成受到多种因素的影响，如饮水量、饮食、药物等等。
尿液生成量主要受到身体内水分的供应和代谢等因素影响；而尿液密度和pH值则反映了不同身体状态下的代谢和过程的变化。
通过本实验的探究，可以更深入了解尿液生成的生理机制，为临床应用提供指导和参考依据。
影响尿生成实验报告
影响尿生成实验报告篇一：尿生成的影响因素实验报告尿生成的影响因素实验目的：1. 掌握膀胱插管技术，学习尿量的记录和测量方法。
2. 观察神经体液因素（生理盐水、葡萄糖、去甲肾上腺素、呋塞米、垂体后叶素）对尿生成的影响，并分析其作用机制。
关键词：尿生成；尿量；影响因素材料及方法实验对象：家兔（重2kg）实验材料：1.试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水、20%葡萄糖、1：10000的去甲肾上腺素、呋塞米、垂体后叶素2.仪器：手术剪、镊子、止血钳、玻璃分针、兔手术台、膀胱插管、注射器及针头、微机生物信号采集处理系统、棉线若干、婴儿秤。
实验步骤：1．静脉麻醉从兔耳缘静脉注射20%氨基甲酸乙酯(1g/kg 体重)。
2．仰卧固定待兔麻醉后，将其仰卧，先后固定四肢及兔头。
3．颈部手术剪去颈前部兔毛，正中切开皮肤5～6厘米，用止血钳纵向分离软组织及颈部肌肉，暴露气管及与气管平行的右血管神经鞘，细心分离出右侧鞘膜内的迷走神经，在神经下穿线备用。
4.腹部手术从耻骨联合向上沿中线作长约4厘米的切口，沿腹白线打开腹腔，将膀胱轻拉至腹壁外，先辨认清楚膀胱和输尿管的解剖部位，用止血钳提起膀胱前壁(靠近顶端部分)，选择血管较少处，切一纵行小口，插入插管后膀胱即随着尿液的流出而缩小。
如膀胱壁较松驰而膀胱容积仍较大时，可用粗线将膀胱扎掉一部分，使膀胱内的贮尿量减至最少。
用线结扎膀胱颈部以阻断膀胱同尿道的通路。
使插管的引流管出口处低于膀胱水平，用培养皿盛接由引流管流出的尿液，手术完毕后，用温热的生理盐水纱布覆盖腹部创口，并关闭腹腔。
5.改变影响因素（1）.快速注射37℃生理盐水20ml，记录尿量变化。
（2）.快速静脉注射20％葡萄糖5ml，记录尿量变化。
（3）. 静脉注射1：10000去甲肾上腺素0.3ml，记录尿量变化。
（4）. 电刺激右侧迷走神经。
用保护电极以中等强度和频率的连续脉冲（定时刺激，持续时间20s，波宽5ms，强度2.0V，频率25Hz）刺激迷走神经，记录尿量变化。
尿生产调节实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解和掌握尿生成的基本过程及其调节机制。
2. 掌握尿生成实验的操作技术，包括动物麻醉、血压监测、尿量收集等。
3. 分析不同生理因素对尿生成的影响，探讨尿生成调节的生理学机制。
二、实验原理尿生成是肾脏的重要功能之一，涉及肾小球滤过、肾小管重吸收和肾小管分泌三个过程。
尿生成的调节机制主要包括神经调节、体液调节和肾脏自身调节。
1. 肾小球滤过：血液通过肾小球滤过膜，将水分、电解质、小分子物质等滤出形成原尿。
2. 肾小管重吸收：原尿流经肾小管，大部分水分、电解质、葡萄糖等物质被重吸收回血液。
3. 肾小管分泌：肾小管上皮细胞将某些物质分泌到肾小管腔内，形成尿液。
尿生成的调节机制包括：1. 神经调节：交感神经和副交感神经通过影响肾脏血流量、肾小球滤过率和肾小管功能来调节尿生成。
2. 体液调节：激素如抗利尿激素（ADH）、醛固酮等通过影响肾小管和集合管对水分和电解质的重吸收来调节尿生成。
3. 肾脏自身调节：肾脏通过调节肾血流量、肾小球滤过率和肾小管功能来维持尿生成稳定。
三、实验材料与器材1. 实验动物：家兔2. 实验器材：兔手术台、手术器械、生物机能实验系统、血压监测仪、压力传感器、保护电极、输尿管插管、膀胱插管、注射器、抗利尿激素、速尿、生理盐水等。
四、实验方法与步骤1. 动物麻醉与固定：将家兔进行全身麻醉，固定于兔手术台上。
2. 血压监测：通过颈总动脉插管术，连接血压监测仪和压力传感器，监测血压变化。
3. 尿量收集：通过输尿管插管或膀胱插管，收集尿液并计量尿量。
4. 实验分组：将实验动物分为实验组和对照组，实验组给予抗利尿激素或速尿等药物，对照组给予生理盐水。
5. 观察指标：观察血压、尿量和尿液成分的变化。
五、实验结果与分析1. 血压变化：实验组给予抗利尿激素后，血压明显升高；给予速尿后，血压无明显变化。
2. 尿量变化：实验组给予抗利尿激素后，尿量明显减少；给予速尿后，尿量明显增加。
实验七影响尿生成的因素
3.实验步骤观察(每项操作用NS送入体内)
1）正常尿量，观察3分钟；
2）注射生理盐水20ml，观察尿量3分钟（尿糖定性试
验-对照组）；
3）注射1:10000NE0.5ml，观察尿量3分钟； 4）注射20%葡萄糖5ml，观察尿量3分钟（尿糖定性试 验-实验组）； 5）注射垂体后叶素2U ，观察尿量3分钟； 6）注射速尿0.5ml/kg ，观察尿量3分钟； 7）观察呈色反应，向尿滴记中倒少许NaOH,注射酚红 0.3ml，记录从注射到看到尿液变红的时间；
对象：家兔
器材： 生物信号记录系统 兔手术器械一套 兔手术台（专用） 记滴器 记滴线 双凹夹 软管
药品： 20%氨基甲酸乙酯 生理盐水 去甲肾上腺素（1：10000） 20%葡萄糖 垂体后叶素 呋塞米（速尿） 酚红 NaOH溶液
1.称重 麻醉 固定 （一定保护好耳缘静脉） 2.手术前准备 耻骨联合 ①上分离56CM的切口，分离皮下 组织并沿 腹白线 ②切 开腹壁 2.手术 输尿管插管 膀胱三角 ③ 输精管 ④
注意事项
1.麻醉稍深，以免疼痛引起尿量减少。
2.实验中需多次进行耳缘静脉注射，保护耳
缘静脉。
3.手术的创口不宜过大，手术操作轻柔，以
免生成血尿。 4.防止动物的体温下降，影响实验。
结果分析与讨论
尿量变化（滴/分） 实验项目 正常尿量 前 后
静注 NS
静注0.5mlNE 静注20%葡萄糖5ml 静注ADH 静注1ml速尿
↑
↓ ↑ ↓ ↑
结论
肾小球滤过率 大小
取决于
有效滤过压
公式 肾小球的有效滤过压 = 肾小球毛细血管血压-（血浆胶体+成的影响因素
实验目的
学习输尿管插管术。 观察影响家兔尿液生成的若干因素， 加深理解尿液生成的过程及其调节机 制。
影响尿生成的因素
影响尿生成的因素【实验目的】学习输尿管插管术；观察影响尿生成的因素，并分析其作用机制。
【实验器材和药品】BL-420生物机能实验系统，哺乳动物手术器械一套，兔手术台，动脉夹，玻璃分针，注射器（1ml、5ml、20ml），静脉输液器一套，记滴器，恒温水浴锅，纱布；生理盐水，2５﹪的氨基甲酸乙酯，20﹪葡萄糖，垂体后叶素，呋喃苯胺酸（速尿），1/10 000去甲肾上腺素。
【实验对象】家兔【实验步骤】1．麻醉与固定称量家兔体重，用2５﹪的氨基甲酸乙酯（４ml/kg体重）经家兔耳缘静脉缓慢注射，麻醉后将其仰卧位固定于兔手术台上。
2．手术准备腹部手术：剪去下腹部膀胱区被毛，从耻骨联合处向上沿正中线作一长约4cm的切口，沿正中腹白线切开腹壁，用手轻轻将膀胱翻至体外（勿使肠管外露，以免血压下降）。
反转膀胱暴露膀胱三角，于膀胱三角辨别输尿管（注意与输精管、输卵管区别，前者直后者弯曲），用玻璃分针将输尿管周围组织分离干净，分离输尿管约2cm。
于输尿管下方穿二根丝线，将近膀胱端的输尿管用一丝线结扎，另一丝线备用。
一手小指挑起输尿管，眼科剪于结扎线处剪切输尿管一斜形切口；将充满生理盐水的输尿管插管向肾脏方向插入输尿管内，用备用丝线结扎固定。
调整、固定插管，使其与输尿管保持同一走向，防止插管尖端翘起成夹角，影响尿液的流出。
将两侧输尿管收集的尿液经引流管流出，由记滴器记录。
手术完毕，用止血钳夹闭切口，或用温生理盐水纱布覆盖腹部创口，以防体热散失。
3．由记滴器将尿滴信号输入系统的１通道，准备记录尿量的变化。
4．仪器调试打开计算机，进入BL-420生物机能实验系统操作界面，由菜单条“实验项目”→“泌尿实验”→“尿生成的影响因素”。
记录尿量的变化。
5．观察项目(1) 记录正常的尿量（滴/min）作为对照数据。
并做正常血糖定量及尿糖定性实验。
(2)由耳缘静脉徐徐注入38℃生理盐水20ml，观察尿量的变化。
(3) 待尿量基本恢复后，注射１:10 000 乙酰胆碱0.3ml，使血压维持在低水平约15－20秒，观察尿量的变化。
尿生成的影响因素实验报告
尿生成的影响因素实验报告实验目的：探究影响尿生成的因素及其对人体健康的影响。
实验材料和方法：
1. 实验材料：实验室提供的标准化尿样品、不同浓度的水、尿道模型、实验记录表等。
2. 实验步骤：
a) 将标准化尿样品注入尿道模型中；
b) 分别给不同组的尿道模型注入不同浓度的水，观察尿生成的情况；
c) 记录每组实验的尿量、尿液浓度和相关观察结果；
d) 对实验数据进行分析和总结。
实验结果：
经过实验我们得知，尿生成的主要影响因素有水的摄入量、体内代谢情况以及身体健康状况等。
在实验中，随着水摄入量的增加，尿生成量也相应增加，但同时尿液的浓度会相对减少。
这表明饮水量的增加可以促进尿液的生成，有利于人体的排泄功能。
但是，如果长期饮水过多或过少，都会对身体健康产生不利影响。
结论：
通过本次实验我们可以得出结论，尿生成受多种因素综合影响，其
中水的摄入量是影响尿生成的一个重要因素。
保持适量的水分摄入，
有利于维持身体健康和正常代谢。
尿生成的正常与否直接关系到身体
的健康状态，因此我们应当注重饮水量的控制，保持合理的饮水习惯。
实验报告结束。
尿生成的影响因素实验报告
尿生成的影响因素实验报告一、实验目的本实验旨在探究多种因素对尿生成过程的影响，通过观察和分析实验结果，深入理解尿生成的生理机制，以及这些因素如何调节肾脏的功能。
二、实验原理尿生成过程包括肾小球的滤过、肾小管和集合管的重吸收和分泌。
肾小球滤过率取决于有效滤过压，而有效滤过压受肾小球毛细血管血压、血浆胶体渗透压和肾小囊内压的影响。
肾小管和集合管的重吸收和分泌则受到激素（如抗利尿激素、醛固酮）、小管液溶质浓度等因素的调节。
三、实验材料与方法（一）实验动物健康成年家兔一只。
（二）实验器材哺乳动物手术器械一套、兔手术台、压力换能器、生物信号采集处理系统、动脉插管、输尿管插管、注射器、输液装置、生理盐水、20%葡萄糖溶液、去甲肾上腺素、呋塞米、垂体后叶素等。
（三）实验步骤1、麻醉与固定：家兔称重后，于耳缘静脉注射 20%乌拉坦溶液（5ml/kg）进行麻醉，仰卧固定于手术台上。
2、颈部手术：分离一侧颈总动脉，插入动脉插管，连接压力换能器，用于测量动脉血压。
3、腹部手术：在耻骨联合上方做一纵行切口，暴露膀胱，分离双侧输尿管，在输尿管下方穿线备用。
在输尿管靠近膀胱处做一“V”形切口，向肾脏方向插入输尿管插管，并用线结扎固定，以收集尿液。
4、连接实验装置：将输尿管插管与刻度试管相连，用于收集尿液并测量尿量。
压力换能器与生物信号采集处理系统相连，记录动脉血压。
5、观察项目（1）记录正常情况下每分钟的尿量和动脉血压。
（2）静脉注射 20%葡萄糖溶液 5ml，观察尿量和血压的变化。
（3）静脉注射去甲肾上腺素 03ml，观察尿量和血压的变化。
（4）静脉注射呋塞米 5mg/kg，观察尿量和血压的变化。
（5）静脉注射垂体后叶素 2 单位，观察尿量和血压的变化。
四、实验结果（一）正常情况在实验开始时，家兔的平均动脉血压为____mmHg，每分钟尿量约为____ml。
（二）静脉注射 20%葡萄糖溶液注射后，尿量明显增多，在注射后的 10 分钟内，尿量达到峰值，约为____ml/min。
实验19 尿生成的影响因素
实验19 尿生成的影响因素【实验目的】通过观察影响尿生成的若干因素，加深对尿生成过程及其调节机制的理解。
【实验原理】尿生成的过程包括肾小球的滤过、肾小管和集合管的选择性重吸收和分泌三个基本环节。
凡能影响上述过程的因素，都可以影响尿的生成，从而引起尿的质或量发生改变。
【实验对象】家兔。
【实验器材】兔手术台、哺乳动物手术器械、生物信号采集处理系统、血压换能器、记滴器、动脉插管、气管插管、膀胱插管、注射器、试管及试管夹、酒精灯、20％氨基甲酸乙酯溶液、生理盐水、20％葡萄糖溶液、1：10 000去甲肾上腺素溶液、垂体后叶素、肝素、呋塞米(速尿)、班氏试剂。
【方法和步骤】一、动物准备耳缘静脉注射20％氨基甲酸乙酯溶液(5ml／kg)麻醉家兔，仰卧位固定于兔手术台。
二、手术1. 颈部手术(1)分离右侧迷走神经，穿上丝线备用。
(2)分离左侧颈总动脉，做动脉插管。
插管内应预先充满肝素溶液，并通过血压换能器连接到计算机生物信号采集系统，描记血压。
2. 腹部手术在耻骨联合上方，沿正中线做约3cm的切口，沿腹白线剪开腹壁，将膀胱移出体外。
辨认清楚膀胱结构后，选择血管较少部位做一小切口（图19-1），插入膀胱插管，用粗线结扎固定。
注意保持插管与输尿管之间的畅通，避免堵塞。
然后将插管与记滴器连接，并接至计算机生物信号采集系统，记录尿量。
在颈部、腹部手术完毕后，均用浸有38℃的生理盐水纱布覆盖创面。
三、连接实验装置1．将血压换能器和记滴器分别连接在生物信号采集处理系统的相应通道上，刺激输出连接保护电极。
2．打开计算机，启动生物信号采集处理系统。
四、实验观察1．点击生物信号采集处理系统菜单“实验／常用生理学实验”，选择“尿生成的影响因素”。
图19-1 家兔输尿管插管导尿法(2) 生物信号采集处理系统放大器、采样和刺激器参数见表19-1。
表19-1生物信号采集处理系统采样和刺激器参数表 采样参数 刺激器参数显示方式 记录仪采样间隔 1msX轴显示压缩比 20：1通道 通道2 通道4 DC/AC DC DC处理名称 血压 记滴 放大倍数 100-200 5-50 Y轴压缩比 4：1 4：1 刺激模式 串刺激 时程 30s波宽 1ms幅度 1V频率 30Hz(3) 记录一段正常的血压曲线(收缩压、舒张压和平均压)和尿滴／min。