规模养猪场猪蓝耳病的诊断与治疗案例

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猪蓝耳病的诊治与防控

猪蓝耳病的诊治与防控
2 4 、3 6 、4 8 h后 ,未 发 现 伪 狂 犬 病 特 征
症状。 4 . 3 血 清 学检 验
全方 可进 入 . 同时 隔 离 1 5 d进 行 观 察 。 ( 6 )定 期 开 展 免 疫 抗 体 检 测 , 根
据 免 疫 抗 体 消 长 规 律 和 免 疫 程 序 及 时
4 . 1 细茵分 离
仔 猪 补 给 葡 萄糖 ,在 饲 料 中 添 加 氟 苯
尼 考 、 阿 莫 西 林 、金 霉 素 、 土 霉 素 等 抗 菌 药 物 。 发 病 猪 用 安 乃 近 和 相 应 的 抗菌 药 物 治 疗 。 ( 4 )严ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ禁 到 猪 蓝 耳 病 疫 区 购 买 种 猪 或 商 品 猪 .本 次 疫 情 就 是 由该 村 猪
免疫。
本地 养猪户 4 — 5月 之 间 ,相 继 出
( 1 )猪 瘟 检 测 , 用 抗 原 酶 联 免 疫
吸 附试 验法 ,结 果 为 阳性 。
( 7 )每 年 举 办 1 ~ 2次 不 同 层 次 兽
现 仔 猪 发 病 现 象 ,前 往 西 吉 县 畜 牧 兽
医 站 门 诊 就 诊 .由 于病 猪 已 全 部 接 种 猪 瘟 、 猪 丹 毒 、 猪 肺 疫 三 联 苗 和 W
麻 痹 ,运 动 失 调 ,病 程 一 般 3 ~ 6 d ,最
后 因衰 竭 而 死 。
处 理 规 程 》 作 销 毁 处 理 。 病 死 猪 的 垫
料 及 粪 便 等 污 染 物 作 堆 积 、 焚 烧 、深 埋处理 。


3 病理 剖析
淋 巴 结 明 显 肿 大 。颌 下 淋 巴 结 、 肠 系膜淋 巴结 、腹股 沟淋 巴结 、肺 门

一例猪场暴发蓝耳病的临床诊治

一例猪场暴发蓝耳病的临床诊治

猪场兽医VETERINARY 一例猪场暴发蓝耳病的临床诊治陶明华,李 江,欧伟业(上海海利生物技术股份有限公司,上海 201403)猪蓝耳病(又称猪繁殖与呼吸综合征,PRRS)是由猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)引起的一种以感染猪发热、厌食,妊娠母猪晚期流产、早产、产死胎、弱胎和木乃伊胎,各种年龄猪(特别是仔猪)呼吸障碍为特征的高度传染性疾病。

荷兰人Wensvoot等(1991年)首次从发病母猪和仔猪体内分离到了该病毒,当时称为Lelystad病毒[1]。

1996年郭宝清等首次从猪流产胎儿中分离出PRRSV经典毒株CH-1R株,证实了猪蓝耳病在我国的存在[2]。

从2006的5月底开始,某些地区的许多猪场,生长育成猪和部分母猪、保育猪暴发“猪无名高热病”,后来证实猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)在该病的流行过程中发挥了主要作用。

随着养殖场饲养管理水平的不断提升,以及蓝耳病疫苗的不断普及,猪蓝耳病整体趋于稳定,但是一旦猪群受到某些因素(疫苗免疫不规范、引种不合理、霉菌毒素过高等)的影响,猪场内的蓝耳病病毒就开始活跃起来,临床上表现为猪蓝耳病的场内流行,母猪流产、早产,保育猪消瘦、呼吸道疾病严重,死亡率高达30%以上。

这样发病过程及其病例笔者在临床上见了多起,猪场损失惨重,现将其中一起的诊治体会分享给大家,供同行们生产中参考。

1 发病情况介绍2015年1月底,上饶市某规模化猪场,基础母猪存栏360头。

该场于2014年7月29日和9月12日分别对全场母猪进行了蓝耳病疫苗的2次基础免疫(建场以来首次免疫蓝耳病疫苗),所用蓝耳病疫苗是某厂家天津株高致病性蓝耳病疫苗。

2015年1月中旬开始,产房临产母猪不吃料,体温升高,严重时有母猪全身发红及末梢发绀(见图1);同时出现了母猪流产、早产。

产后,有的母猪开始吃料,也有的母猪继续不吃料。

断奶后10 d左右的保育猪开始厌食,消瘦,被毛粗乱,发病严重的猪死后耳朵及腹股沟发绀(见图2)。

猪蓝耳病及防控措施

猪蓝耳病及防控措施

免疫 力 在预 防高热病 的暴 发方 面起着 重 要 的作 用 。 6 . 3当暴发 该疫情 时 ,不要 期望 高热综 合征 有
特效 药 治疗 。 营养是 猪 抵抗 力 的基础 .在 发病 的 最初关 键 时期 ,饲料 或饮水 中额 外 添加 电解 多维 .
病。 笔者认 为霉 变饲料 在该 病暴 发 和流行过 程起 重 要 的作用 ,霉 菌毒 素是猪 高热 综合 征 的主要诱 因 ,
E。 t 对初 生仔猪 补 给 电解 质 、 葡萄糖 , 对仔 猪断奶 前
病 猪 主 要 表 现 为乳 猪 体 温 高 达 4q l C、眼睑 水
肿、 皮肤 有 出血 斑 点 、 四肢 外 展 呈 “ ” 、 质 衰 八 字 体
弱 、 水 、 吸 困难 , 亡率 较 高 。育 肥猪 体 温升 高 脱 呼 死
至 4 ℃左 右 、 欲 明显减少 ( 别猪食 欲废 绝 , 身 1 食 个 全
发 红 ) 呼 吸 困难 、 喘 、 睑 水 肿 、 眼 屎 或 脓 性 分 、 气 眼 有
后、 转群 等 情 况 , 预 防 量适 当在 饲 料 中 添加 氟 苯 按 尼考 、 阿莫 西林 、 金霉 素 、 霉 素等 抗 菌 药物 , 猪 土 母
6 . 繁殖 与呼 吸综合 征 和猪 圆环病 毒病 等均 2猪
为 免疫抑 制性疾 病 , 染后 使猪 体免 疫力 和抵 抗 力 感
今 R畜牧兽医o 0 21 0年第 7期
进 行 隔 离 治疗 。采 取 黄 芪 多糖 注 射 液 05毫 升/ . 千
克, 1次/ , 用 2天 ; 效 阿 莫 仙 ( 剂 , 要 成 日 连 强 粉 主 分 : 莫西 林 ) 阿 1支(. ) 0千 克 , 次/ , 用 2 05克 / 5 1 日 连 天 ;0 1 %氟苯 尼考 注射液 01 01 升/ 克 , 次/ . . ~ 5毫 千 1 2

猪蓝耳病防控与净化两例分析报告

猪蓝耳病防控与净化两例分析报告

猪蓝耳病防控与净化两例分析报告。

解剖发现产房仔猪有中度的间质性肺炎。

PCR检测为蓝耳阳性。

测序结果间质性肺炎对该场生物安全检查发现,卡车清洗消毒不严格。

执行防控措施后40天,母猪群PRRS抗原阴性,母猪群横向传播停止。

母猪大部分PRRS抗体阳性。

产房各个日龄仔猪均维持PRRS抗原阴性,说明母猪向仔猪的垂直传播停止。

母猪体内抗体水平和其哺乳的仔猪体内的抗体水平差异不显著,提示仔猪体内抗体来自于母乳。

在蓝耳净化措施开始执行后的40天内,母猪群和断奶仔猪变为PRRS 抗原阴性,并在接下来的3次月度检测或者半月检测中依然保持阴性。

然后,所有的保育猪和育肥猪被转移走,并彻底清洗和消毒保育舍和育肥舍。

在M农场,保育舍空置14天后,断奶仔猪重新被转移到保育舍饲养。

案例2从蓝耳暴发前1个月到爆发后5个月,共7个月的部分生产指标分析。

结果蓝耳发病前后,窝均总仔从13.38降到12.04,窝均健仔从12.61降到11.06,窝断奶合格仔从10.82降到10.13。

产房部分仔猪呼吸窘迫,咳嗽,打喷嚏,有结膜炎,发烧,体温高达41.5度。

解剖发现产房仔猪有中度间质性肺炎。

PCR检测为蓝耳阳性。

测序结果间质性肺炎场内生物安全检查发现,卡车清洗消毒不严格。

执行防控措施后40天后,母猪群PRRS抗原阴性,母猪群横向传播停止。

产房各个日龄仔猪均维持PRRS抗原阴性,母猪向仔猪的垂直传播停止。

保育阶段仔猪为PRRS抗原阳性,表明PRRS病毒在保育阶段存在横向传播。

在T农场,断奶猪被转移到租赁来的设备设施十分简陋的农场。

这些感染蓝耳的断奶猪出现了很高的死亡率,部分清群计划被迫中止。

从蓝耳暴发前1个月到爆发后4个月共6个月的部分生产指标分析。

一例蓝耳活跃猪群的治疗与防控

一例蓝耳活跃猪群的治疗与防控

190一例蓝耳活跃猪群的治疗与防控杨志成(湖南农业大学动物医学院,湖南长沙 410128)摘 要:蓝耳病是严重危害养猪业发展的重要疾病之一,该病病毒具有极其复杂的免疫抑制和免疫逃避机制,以至于该病的临床防治和净化一直是困扰我国养猪业的一大难题。

本文主要通过添加黄芪多糖、银黄可溶性粉以及板蓝根颗粒的组合在预防呼吸道感染、清除病毒、提高免疫力等方面发挥了良好的效果,有效的抑制了蓝耳病毒在猪群的扩散。

对比用药前后猪群的蓝耳抗体水平变化和生产数据发现,蓝耳逐渐由活跃过度至稳定并逐渐清除,生产上流产、死胎情况也明显减少。

用药后对猪群持续跟踪两个月,并未出现蓝耳复发的情况。

结果显示,中药对于蓝耳活跃猪群具有良好的抑制病毒的作用,且对蓝耳的清除有上佳的表现。

关键词:蓝耳病;猪群;治疗;防控1 前言在本文讨论的病例中,我们选取几味中药提取物来针对蓝耳病引起的呼吸道和繁殖系统功能障碍疾病,拟通过中药的扶正祛邪作用来缓解蓝耳引起的发热、病毒血症和免疫抑制。

由于蓝耳病的高度传染性,我们在设计蓝耳清除试验时施行全群给药,避免出现空白对照组猪只持续散毒的可能。

2 材料与方法2.1 试验材料药品:芪黄素(黄芪多糖粉)、天然康(银黄可溶性粉)、生泰蓝(板蓝根颗粒),以上产品均为北京生泰尔科技股份有限公司的国家三类新兽药;试剂:IDEXX蓝耳病抗体检测试剂盒。

2.2 试验猪群某5000头母猪规模的商品场,两点式饲养模式,不免疫蓝耳疫苗。

于2018年1月初发现个别母猪感染蓝耳野毒,经测序为变异毒株,之后对猪群进行氟苯尼考保健,未发现有呼吸道疾病增多的现象。

但到3月份后猪群流产、死胎、弱仔比例明显增加,抗体检测显示蓝耳抗体水平显著升高,异于正常水平,定量PCR 检测显示蓝耳病毒持续存在。

2.3 试验方法2.3.1 给药方式在确保饲养环境、饲养方式、生产管理一致的前提下,针对该场内的所有母猪群体进行全群拌料给药,连续饲喂15d。

哺乳料每1t添加芪黄素120g、天然康120g、生泰蓝400g;妊娠料每吨添加添加芪黄素400g、天然康400g、生泰蓝1000g。

规模化养猪场猪蓝耳病治疗措施

规模化养猪场猪蓝耳病治疗措施

规模化养猪场猪蓝耳病的治疗措施猪蓝耳病,即猪繁殖与呼吸综合征(PRRS),是由病毒引起的猪的一种高度接触性传染病,具有传播速度快、发病面广等特点,已给世界养猪业造成巨大的经济损失。

1临床症状猪蓝耳病主要是侵染繁殖系统和呼吸系统,主要表现为母猪繁殖障碍、断奶仔猪高死亡率、育成猪高呼吸道疾病三大特点。

1.1经产和初产母猪多表现为高热(40℃ ~41℃)、精神沉郁、厌食、呼吸困难,少数母猪(1%~5%)耳朵、乳头、腹部、尾部发绀,以耳尖最为常见。

出现这些症状后,大量怀孕母猪流产或早产,产下木乃伊胎、死胎和病弱仔猪,死产率可达80%一 100%。

早产母猪分娩不顺,少奶或无奶。

1.2仔猪特别是吃奶猪,死亡率很高,可达80%以上。

临床症状与日龄有关,早产的仔猪出生时或数天内死亡。

大多数新生仔猪出现呼吸困难(腹式呼吸)、肌肉震颤、后躯麻痹、共济失调、打喷嚏、嗜睡、精神沉郁、食欲不振等症状。

断奶仔猪感染后大多数出现呼吸困难、咳嗽、肺炎症状,有些病猪出现下痢、关节炎、皮肤有斑点等症状。

1.3育肥猪体温可升高至41℃左右,食欲明显减少或废绝,多数全身发红,呼吸加快,咳嗽加剧,个别病猪流少量黏鼻液。

无继发感染的病猪死亡率较低。

1.4种公猪发病时症状轻微,持续时间短,但精液品质下降,死精多,是母猪受胎率下降、返情率增高的原因之一。

2流行病学本病的传染源是病猪、康复猪及健康带毒猪。

病毒在康复猪体内至少可存留6个月(可不断地向体外排毒)。

病毒可从鼻分泌物、粪尿等途径排出体外,经空气、接触、胎盘和交配等多种途径传播,气候恶劣、高温、卫生条件不良、饲养密度过高时,都会增加本病发生率。

近年来,本病流行特点主要表现为以下5个特点:一是临床表现趋于复杂,发病程度日渐加重:二是仔猪死亡率呈上升趋势;三是亚临床感染日趋普遍,猪群的持续性感染、隐性感染十分常见,,猪群的带毒时间很长;四是免疫抑制,常继发其它疾病(如附红细胞体病、链球菌病、沙门氏菌病等),也会影响其它疫苗 (如猪疫苗)的接种免疫效果;五是混合感染呈上升趋势。

猪蓝耳病的综合诊断与防治措施

猪蓝耳病的综合诊断与防治措施

2020年第03期高致病性猪蓝耳病又称“猪流行性流产和呼吸综合症”、“猪繁殖与呼吸综合症”,该病主要导致妊娠母猪出现繁殖障碍,临床表现流产、产死胎和木乃伊胎等不良后果,其他猪感染之后发生呼吸道疾病。

感染蓝耳病的仔猪群发病率高达100%,死亡率可超过50%,母猪流产率超过30%。

该病在猪群中的传播很快,多发于饲养条件较差的散养户和规模较小的猪场,严重影响饲养场户的经济收益。

1流行情况蓝耳病是猪的一种高度接触性传染病,具有地方流行性。

猪是易感动物,其中以妊娠母猪和1月龄内仔猪的易感性最强。

重要传染源是病猪和带毒猪,可通过接触、空气和精液传播,也可通过胎盘垂直传播。

易感猪直接接触带毒猪,或接触运输病猪的工具或器材可感染。

因此要重视对感染猪流动性的控制,否则也会造成该病的扩散。

该病最突出特点是持续性感染。

2患病表现此型感染母猪精神状态极差,采食能力降低或丧失,机体呈发热状态,表现出程度不同的呼吸障碍。

妊娠后期的母猪有流产、早产现象,通常会产出死胎、木乃伊胎和弱仔。

而其中有部分新生仔猪表现呼吸非常困难,运动功能受到严重的影响,部分患猪出现轻度瘫痪等症状。

生长期和育肥期的猪感染蓝耳病后的临床症状比较轻微,但都表现呼吸困难,个别病猪有咳嗽症状,可见其双耳背面、边缘、腹部及尾部的皮肤呈现深紫色。

种公猪感染非常少见,即使感染也只表现精液品质差,产出畸形的精子,而且精液中可携带病毒。

我国规模化猪场中的蓝耳病主要为慢性型。

病猪的生产性能明显变差,生长状态缓慢,母猪感染后繁殖能力被严重削弱,猪群整体免疫力有不同程度的降低,很容易继发感染其他细菌病和病毒病。

伴随上升的还有呼吸道疾病的发病率。

此型的病猪通常不会发病,仅仅表现为蓝耳病的持续性感染状态,对猪群进行血清学抗体检查结果呈阳性,阳性率维持在10%~88%的水平。

3综合防治措施暴发蓝耳病的饲养区域应该及时对病死猪进行无害化处理,即深埋、焚烧等,重视对病猪流动性的控制,以避免疫情的进一步扩散和蔓延。

猪场蓝耳病控制现场案例分析(勃林格)

猪场蓝耳病控制现场案例分析(勃林格)

• HP是导致哺乳保育猪及中小猪(30公斤前)残次淘汰及死亡 的直接病原!!!
当前猪场疾病复杂化的主要病因是什么?
• PRRSV和PCV2是猪场疾病复杂化的主要病因
• 免疫抑制性疾病
• 自家组织苗免疫干扰 • 混合感染 • 环境恶化
我们一直在努力?
当前影响猪场生产的主要病原种类:
病毒:兰耳病、猪瘟、圆环、伪狂犬、流感 细菌:链球菌、副猪嗜血杆菌、
猪场蓝耳病控制现场案例分析
勃林格殷
格翰动物保健 方树河
回顾
---2000年前
现在猪到底怎么啦?
---2000年到现在 --PRDC、PMWS
现在该怎么办才能养好猪?
当前猪场疾病复杂化的主要病因是什么?
• 当前猪场流行疾病的特点:

• PRDC小龄化,危害大 繁殖障碍不规律,表现多样化

消化道疾病慢性化(生长阶段),药物效果差
• • • • • • • •
2.药物保健: (1)、哺乳仔猪: 阉猪时,每头肌注水针剂头孢噻呋钠0.3-0.5ml/头; 断奶转栏时,每头肌注水针剂头孢噻呋钠0.5ml/头; (2)、断奶后仔猪饮水加药5-7天:专业电解质+阿莫西林 保育猪饲料加药 加药时间:断奶后7-17天加药,停药10天后再加药7天 药物选择:氟苯尼考50-60PPM+强力霉素300PPM
• •
从发病过程、临床诊断及实验室检测病因分析: 目前猪群发病的主要病原是:蓝耳病,圆环 病毒2型及副猪嗜血杆菌;猪伪狂犬及猪瘟不是主 要病因。
• • •


改善猪群健康状况的建议: 1.免疫 蓝耳病:使用勃林格蓝耳弱毒疫苗,母猪群体及1周至 10周龄仔猪普免1头份/头;免疫一个月后母猪群加强免 疫一次,以后每4个月免疫一次,未免疫及以后出生仔 猪在2周龄免疫蓝耳苗1头份/头。 猪副嗜血杆菌:使用勃林格HP-1疫苗,母猪群体免疫, 一个月后母猪产前4周免疫2ml/头,仔猪在2周龄免疫 (与蓝耳苗分两侧肌注)2ml/头; 仔猪3天内伪狂犬滴鼻1ml/鼻孔(2ml/头),以预防早期 感染。
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一、猪蓝耳病的概述猪蓝耳病又称猪繁殖与呼吸综合征(PRRS),是由猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)引起的一种免疫抑制性病,以成年猪生殖障碍、早产、流产和死胎,以及仔猪呼吸异常为特征的传染病。

高致病性蓝耳病是由猪繁殖与呼吸综合征病毒变异株引起的一种急性高致病性传染病。

仔猪发病率可达100%,死亡率可达 50%,母猪流产率可达30%,育肥猪也可发病死亡。

二、规模猪场猪蓝耳病的流行特点本病呈地方性流行,传播迅速。

不同年龄、性别、品种猪均感染。

易感性有一定差异,种猪、生长猪和育肥猪症状较温和。

母猪、仔猪症状较严重,仔猪致死率可达 80%~100%。

病猪和带毒猪是本病主要传染源,感染猪能大量排毒,如鼻分泌物、粪便、尿液中均含有病毒;耐过猪可长期带毒且长期向体外排毒。

传播途径主要是呼吸道与消化道传播——水平传播。

垂直传播发现的病例较少。

当健康猪与病猪接触时,如果饲养密度过大、圈舍潮湿、空气不流通、寒冷、阳光不足、频繁调运、天气突变等都容易导致本病的发生与流行;特别是大型养猪场该病发生较多,传播快,舍外散养传播速度慢。

母猪产前一周发生早产、流产或生产成绩下降,环境越差,感染越快,1~3个月后重复发生,呈持续感染,流行期一般70~100天,最长4~6个月。

病初呈大流行性传播,有明显“跳跃式”传播,无明显季节性,春季多发,仔猪冬季严重,母猪常年发病。

继发细菌及支原体等感染使症状加剧,死亡率增高。

三、规模猪场猪蓝耳病的传染源与传播途径猪繁殖与呼吸综合症病毒病原体多经接触传播,感染猪和康复猪是主要的传染源。

病毒可以通过鼻、眼分泌物、胎儿及子宫甚至公猪的精液排出,感染健康猪。

本病主要通过呼吸道或公猪的精液经生殖道在同猪群间进行水平传播,也可以进行母子间的垂直传播。

风媒传播在本病流行中具有重要的意义,通过气源性感染可以使本病在3公里以内传播。

新疫区常呈地方性流行,而老疫区则多为散发性。

口、鼻的感染可能是自然感染的途径。

康复猪通常不能再发生感染。

四、规模猪场猪蓝耳病的临床症状人工感染潜伏期为4~7 d,自然感染一般为14 d左右。

母猪发病首先表现为精神倦怠、厌食和发热。

妊娠后期易发生早产、流产、死胎、木乃伊胎及弱仔,持续一段时间后出现重新发情现象,往往引起母猪不育和产奶量下降;少数猪耳部发紫,皮下出现一过性血斑。

有些发病母猪后期出现后躯无力、不能站立或共济失调等神经症状,母猪流产率可达30%以上。

2~28 日龄仔猪最易感,症状明显,发病率可达l0%。

死亡率高达80%,早产仔猪在出生时或几天内死亡。

大多数仔猪表现为呼吸困难、肌肉震颤、后肢麻痹、共济失调、打喷嚏、嗜睡,有些病仔猪耳发紫,躯体末端皮肤发绀。

育肥猪主要表现为眼睑肿胀、结膜炎、腹泻和肺炎症状,成年猪也可发病死亡。

公猪感染发病主要表现为咳嗽、打喷嚏、精神不振、呼吸急促、运动障碍、性欲降低、精液品质下降、射精量减少。

五、规模猪场猪蓝耳病的病理变化猪蓝耳病可见其耳尖、四肢末端、尾巴、乳头和阴户等部的皮肤呈蓝紫色;病程稍长者,可见整个耳朵、颌下、四肢及胸腹下均呈现紫色,耳壳等部的表皮有水泡、破溃或结痂,头部水肿,胸腔颌腹腔有积水。

本病的特征性病变发生于肺脏,主要以间质性肺炎为特点。

眼观,肺脏膨满,表面有大小不等的点状出血,尖叶和心叶部有灶状肺泡性肺气肿并见淤斑,肋膈面间质增宽、水肿,有红褐色淤斑和实变区。

肺切面上见血管断端有凝固不全的血液,支气管断端有少量含泡沫的液体。

镜检,肺组织以多中心性间质肺炎为特点。

病初,炎灶内浸润多量巨噬细胞和小淋巴细胞,肺泡上皮和受累的支气管上皮脱落,肺泡膈的增生变化较轻,形成卡他性肺炎的变化;很快,肺泡隔中的结缔组织明显增生,淋巴细胞浸润,肺泡隔增厚,肺泡腔变小或消失,被增生的结缔组织所取代,形成典型的间质性肺炎变化。

所产死胎或弱仔猪胸腔内有大量清亮液体。

其他器官的病变,除了一些非特异性变化外,还有两个特点:一是小血管通透性增大或发生纤维素性坏死而引起的水肿;另一是于继发性感染的有关病变,如继发霍乱沙门氏菌感染时,可见有纤维素性坏死性肠炎;继发多杀性巴氏杆菌时,则肺脏病变加重,常伴发有纤维性肺炎病变;继发链球菌或伪狂犬病时,则还出现化脓性脑脊髓膜炎或非化脓性脑炎等变化。

六、规模猪场猪蓝耳病的诊断(一)病理表现剖检2头病死猪:死猪的颌下、肺门、肠系膜、腹股沟等部位的淋巴结明显水肿出血,切面呈大理石样外观;膀胱积尿,黏膜出血;肾脏质脆、被膜易剥离,表面散布针尖样出血点,切面出血;胃底部黏膜出血;肝脏瘀血、肿大,脾脏肿大;胸腔积液,心包积液,心外膜、心肌严重出血,心内膜出血;肺充血、水肿,肺小叶间质明显增宽,手感肺脏有捻发音,切面流出许多泡沫样液体,部分区域发生实变;脑膜充血。

(二)实验室诊断 1、病理组织学检查取病猪心脏、肝脏、淋巴结、脾脏、肺脏、肾脏、大脑等组织器官,10%中性福尔马林固定,常规石蜡切片,HE染色,光镜进行病理组织学检查。

心脏心肌纤维间见严重充血、出血,并有少量的淋巴细胞、巨噬细胞浸润,部分心肌细胞发生颗粒变性,表现为急性出血性心肌炎。

肝脏明显充血、出血,肝细胞肿胀、颗粒变性,间质有散在的炎性细胞浸润。

淋巴结充血、出血,淋巴窦和淋巴组织周围有大量的红细胞,表现为急性出血性淋巴结炎。

脾脏广泛性充血、出血,淋巴组织灶状坏死,白髓区尤为明显,表现为急性坏死性脾炎。

肺脏严重充血、出血,支气管及动脉周围间质显著增宽,结缔组织增生,其中有大量的炎性细胞浸润。

肺泡壁明显增厚,炎性细胞浸润,成纤维细胞增生,肺泡腔变窄或消失,有的肺泡腔中有淡红的浆液渗出,其中混有少量淋巴细胞和脱落的肺泡上皮细胞,表现为弥散性急性间质性肺炎。

肾脏显著充血、出血,肾小管上皮细胞肿胀,发生颗粒变性,肾小管腔变得不明显,肾小管之间见少量炎性细胞浸润,成纤维细胞大量增生,表现为急性出血性间质性肾炎。

脑血管高度充血、水肿,血管周围有多量淋巴细胞及巨噬细胞浸润,形成“袖套现象”,有的神经元发生变性、坏死,周围有胶质细胞聚集形成“卫星现象”。

胶质细胞大量增生,表现为典型的病毒性脑炎病变。

2、细菌分离培养从病猪肝脏中分离细菌,以普通琼脂培养基、巧克力琼脂培养基进行培养,于37℃恒温箱中培养12~24小时后,结果未见细菌生长。

(三)病原学检测蓝耳病在我国各省市普遍流行,临床症状与猪瘟、伪狂犬、猪细小病毒病、猪乙脑、猪弓形体病等症状相似,仅从临床症状及大体剖检病变很难进行确诊,必须依赖实验室检测。

用于病原学检测的方法主要有病毒分离鉴定、核酸探针技术、RT-PCR检测和免疫组化方法。

目前RT-PCR已有商品化试剂盒可供操作,在大型养殖企业的实验室中正逐步发挥敏感、特异及时确诊的作用,在该病突发时,能够做到快速诊断及时采取措施,从而最大限度的降低损失。

随着病毒核酸提取技术的不断改进,RT-PCR试剂盒操作的快捷性能也在不断提升,目前商品化试剂盒已经由异硫氰酸胍法提取病毒RNA、 Tripoli方法提取病毒RNA逐步转变为利用心柱内硅基质膜提取,省去了繁杂的步骤和对离心机等设备的较高要求,越来越为基层实验室提供了应用的便利。

另外,对于进行大量监测和深入研究工作的实验室,为了提高工作效率、最大程度的降低污染的可能性、对病毒核酸含量进行量化,实时荧光RT-PCR 试剂盒是首要的选择。

北京世纪元亨动物防疫技术有限公司,正是基于以上原因,积极研制开发了猪繁殖与呼吸综合征病毒(通用型、变异型)柱式提取改良的普通RT-PCR试剂盒和猪繁殖与呼吸综合征病毒(通用型、变异型)柱式提取荧光RT-PCR试剂盒。

使用者应结合自己的实际工作需要和实验室基础设施配备情况进行选择使用普通RT-PCR方法或实时荧光RT-PCR方法;根据以下介绍选择选择不用类型的检测试剂盒:1、猪繁殖与呼吸综合征病毒RT-PCR诊断试剂盒(通用型)。

猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)反转录聚合酶链反应(RT-PCR),用于检测猪血清、精液和组织中的PRRSV,适用于PRRSV的检测、诊断和流行病学调查。

2、猪繁殖与呼吸综合征病毒RT-PCR诊断试剂盒(变异株)。

本试剂采用RT-PCR方法检测猪肺、脑等脏器组织和血清中的PRRSV(Nsp2 1594-1680变异株)的RNA,适用于PRRSV(Nsp2 1594-1680变异株)的诊断、检测和流行病学调查。

3、血清学检测对送检的5份血清,以猪蓝耳病乳胶凝集诊断试剂盒进行血清学检测。

取猪蓝耳病抗原50微升滴于洁净载被片上,再滴上待检血清50微升,充分混匀,涂成直径为1.5~2厘米的圆面,1~3分钟后观察结果。

如出现肉眼可见的凝集现象(白色小点),可判断为阳性,无凝集反应、浑浊,判断为阴性。

结果血清抗体阳性率为80%。

4、荧光抗体检查取病猪的肾脏、脾脏,以恒冷箱冰冻切片机进行冰冻切片,丙酮固定5~10分钟,然后进行猪瘟荧光抗体染色,荧光显微镜观察,可见特异性亮绿色荧光。

七、规模猪场猪蓝耳病的预防(一)隔离发病初期,及时将患病猪、疑似患病猪、健康猪按群分别圈养于符合防疫要求且相对独立的不同圈舍,将病猪隔离于不易散布病原体而又便于诊疗和消毒的地方,以防疫病的传播和扩散。

(二)加强饲养管理精心饲养养殖户要努力改善饲养管理条件。

确保合理的饲养密度,做好驱虫、消毒、圈舍通风、防暑降温和保暖工作,为猪只提供舒适的生活空间;实行封闭管理和实施全进全出的饲养制度,谢绝参观;坚持自繁自养,全进全出的饲养方式;提供全价配合饲料,保证饲料质量,以提高猪体的抗病能力。

避免各种应激,减少引种次数,确需引种,要从非疫区非疫场引进,引进后至少隔离观察14d,确认无病后方可合群饲养。

(三)净化饲养环境猪舍的环境要严格执行消毒制度,建立无毒清洁猪场,加强饲养管理,及时调整猪群,改善猪舍通风采光,减少猪群饲养密度。

及时清除猪舍内的粪、尿及污物,保持猪舍内适宜的温度、湿度、通风环境,加强猪场环境及猪舍和猪群的消毒工作,猪舍内可用季铵盐、络合碘等消毒液采用疫病期问的用药剂量带猪喷雾消毒 l~2 次,包括猪舍内的用具每天彻底消毒1次。

(四)科学免疫制定科学的免疫程序并严格遵守根据当地猪病流行情况和其他实际状况,科学制定免疫程序,切实做好口蹄疫、猪瘟、高致病性猪蓝耳病、猪伪狂犬病等常规疫病的预防,尽量杜绝疫病的发生。

受PRRS威胁地区和存在PRRS病毒侵染的猪场建议免疫程序:基础免疫首免用PRRS灭活疫苗肌肉注射,剂量为每头4 ML,3周后同剂量复免,以后每隔5~6个月免疫1次。

对3~18周龄猪最好用弱毒疫苗免疫,推荐免疫程序:3—5周龄肌肉注射弱毒疫苗,剂量为每头1 ML;6-18周龄肌肉注射弱毒疫苗,剂量为每头2mL。

(五)疫苗使用注意事项1、蓝耳病疫苗只用于接种健康猪。

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