DPPH和ABTS、PTIO自由基清除实验-操作图解-李熙灿-Xican-Li
DPPH自由基清除法
100
DPPH Inhibition %
Trolox BHT Maቤተ መጻሕፍቲ ባይዱnolol
80 60 40 20 0 0.000 0.004 0.008 0.012 0.016 Concentration mg/mL 0.020
A
NO2
方法大致与 1.4 相同，只不过，每测一个用量需要测三个平行数据。而且在每测一个用量的三个平行 数据后，都要重测一次 A0. [实验结果] 清除率（抑制率）的计算公式：
A A Inhibition % = 0 A0
100%
[实例]厚朴酚magnolol的DPPH清除率曲线：(图中Trolox和BHT为阳性对照组)
O2N N N O2N
当 DPPH 自由基被清除，其最大吸收波长 519nm 处的吸光度 A 值随之减小。DPPH 这种稳定的自由基 为清除自由基活性的检测提供了一个理想而又简单的药理模型。 [实验步骤] 1.1 DPPH 测试液的配制 取 DPPH 1mg 溶于约 20mL 溶剂（乙醇、95 乙醇或甲醇）中，超声 5min，充分振摇，务使上下各部分 均匀。取 1mL 该 DPPH 溶液，在 519nm 处测 A 值，使 A＝1.2-1.3 之间最佳。该 DPPH 溶液最好避光保存， 3.5 小时内用完。 1.2 样品液的配制 样品用合适的溶剂溶解，为便于计算，可配成 1mg/mL 浓度。溶剂根据样品的极性进行选择，首选 95 乙醇或无水乙醇，如不溶可用 DMSO。 1.3 预试 取 DPPH 溶液 2mL，往其中加少量样品液，加样时，先少后多渐加，边加边混合，并观察溶液的褪色 情况，当溶液颜色基本褪去时，记下样品的加样量。 此加样量即为样品的最大用量，在此最大用量的基础上，往前设置 5 个用量，使之成等差数列。 【如】在预试过程中，发现加样到 200μL 时，DPPH 溶液颜色基本褪去，则 100μL 为该样品液的最 大用量。其用量梯度宜设为 40、80、 120 、160、200μL。 1.4 测量 A0 值的测量：取 DPPH 溶液 2 mL 加入到小试管（或玻璃瓶）中，加 95 乙醇（或无水乙醇）1mL，充 分混合，测 A 值（519nm），此 A 值为 A0（A0 多在 0.7-0.9 之间）。 A 值的测量：取 DPPH 溶液 2mL 加入到小试管（或玻璃瓶）中，加样品液 xμL （x 是根据 1.3 预试 结果确定样品液的用量），再加（1000 -x）μL 95 乙醇（或无水乙醇），混合，静置 30 分钟后，测 A 值 （519nm）。如：某样品的用量梯度为 40、80、 120 、160、200μL，则加样表如下： 表1 样品液 40μL 80μL 1200μL 160μL 200μL 1.5 正式测量 95乙醇（或无水乙醇） 960μL 920μL 880μL 840μL 800μL 加样表 DPPH测试液 2 mL 2 mL 2 mL 2 mL 2 mL 总体积 3mL 3mL 3mL 3mL 3mL
DPPH自由基清除法实验以香草酸为例
DPPH自由基清除法实验—以香草酸为例【仪器与试剂】1.仪器可见分光光度计；SB3200D超声波清洗机；电子天平（BS110S）；BIOHIT单道手动可调移液器（10-100μL、100-1000μL、1000-5000μL）；微量比色皿。
2.试剂香草酸（AR）、DPPH（AR）、无水乙醇（AR）；【原理】根据文献[1]可知，DPPH（1,1-Diphenyl-2-picrylhydrazyl radical）即1,1-二苯基-2-三硝基苯肼，别名1,1-二苯基-2-苦肼基自由基，它的分子中，由于存在多个吸电子的硝基-NO2和苯环的大π键，所以能稳定存在。
所以DPPH作为体外的一种非常稳定的自由基，常被用于检测物质清除自由基能力。
其原理是它在波长519nm处有最大吸收，显紫色，当自由基被清除后，其溶液吸收会减少，紫色会变浅。
通过计算其吸收度减少幅度，可得到自由基清除率，用以判断物质的自由基清除能力。
图1.DPPH结构式图 2.DPPH分子模型【实验对象】香草酸（Vanillic acid），学名“4-羟基-3-甲氧基苯甲酸”，分子式为C8H8O4，是酪氨酸、儿茶酚胺的代谢产物，主要以硫酸酯结合型存在于尿中。
香草酸为白蒿的抗菌主要有效成分，广泛存在于胡黄连、高丽参等中药材中，具有抗细菌和抗真菌的作用。
香草酸具有较强的抗氧化活性，是良好的混合型酪氨酸酶抑制剂。
香草酸在结构上咖啡酸、阿魏酸极其相似，它们三者之间又可以作为彼此的代谢物而存在于体内，具有较高的研究意义。
图3.香草酸结构式图4.香草酸分子模型【实验操作】清除DPPH能力检测本实验采用文献[1]的方法，并视情况改动。
大致过程如下：1. DPPH测试液的配置取DPPH 0.5mg溶于约20mL溶剂（无水乙醇、95乙醇或甲醇）中，超声5min，充分振摇，务使上下各部分均匀。
取1mL 该DPPH溶液，在519nm处测A值，使A 在0.9左右。
该DPPH溶液最好避光保存，3.5小时内用完。
A清除自由基实验方法
1、DPPH 自由基清除实验取0.2 mL 样品，加入4 mL 醋酸缓冲溶液、3.8 mL 乙醇和2 mLDPPH，混合均匀后室温避光放置30 min，测定在517 nm 处的吸光度A。
同理，取0.2 mL 样品、4mL 醋酸缓冲溶液和3.8 mL 乙醇，测定在517nm处的吸光度A b。
4 mL 醋酸缓冲溶液、4 mL 乙醇和2 mL DPPH，测定在517 nm 处的吸光度A0。
自由基的清除率=[A0-(A－Ab)]/A0。
2、ABTS 自由基清除实验20 mL 的7 mmol/L ABTS 和352 μL 的140 nmol/L 过硫酸钾混合，在室温、避光条件下静置过夜，形成ABTS＋自由基储备液。
该储备液在室温、避光的条件下稳定，使用前用无水乙醇稀释成工作液，要求其在30 ℃、734 nm 波长下的吸光度为0.7±0.02。
加入的提取液0.1 mL、ABTS 工作液5 mL，混合均匀后在室温下避光反应10 min 后，在734 nm 处测定吸光度At。
ABTS 溶液作空白吸光度为Ar，样品0.1 mL、乙醇5 mL 混合均匀吸光度为A0。
ABTS＋自由基清除率(%)＝[1-(At-A0)/Ar]×100式中：At 为样品的吸光值；Ar 为空白的吸光值。
3、超氧阴离子清除实验采用邻苯三酚自氧化法，取4 mL 0.1 mol/L pH8.2 Tris-HCl 缓冲溶液和蒸馏水2 mL，混匀后在25 ℃水浴中保温20min，然后加入样品溶液2 mL，取出后立即加入在25 ℃预热过的5 mmol/L 邻苯三酚0.5 mL(以10 mmol/L HCL 配制，空白管用10 mmol/L HCL 代替邻苯三酚的HCL 溶液)，摇匀后倒入比色皿，325 nm下每隔30 s 测定吸光度，连续测定4 min，计算线性范围内每分钟吸光度的增加。
在加入一定体积样品溶液时，减少蒸馏水的体积。
DPPH和ABTS法测定核桃仁的体外抗氧化活性
DPPH和ABTS法测定核桃仁的体外抗氧化活性邱金东;汤昆【期刊名称】《中成药》【年(卷),期】2008(030)008【摘要】核桃（Juglans regial）是胡桃科核桃属多年生落叶乔木，学名胡桃，在我国栽培历史悠久，分布很广，资源十分丰富。
核桃仁药用价值很高，具有补肾固精，敛肺定喘、镇咳、补脑、延缓衰老等作用。
本试验用DPPH自由基清除法和ABTS自由基清除法来研究核桃仁的体外抗氧化活性。
这两种方法都是基于分光光度法来测定样品的抗氧化活性，与其他抗氧化方法相比，操作简单、快速，在国内外有着广泛的应用。
国内对核桃的研究虽然多，但对核桃仁的抗氧化活性研究不多。
孟洁等人用DPPH方法测定了核桃仁的抗氧化活性，但并未明确各提取物的半数抑制率。
【总页数】2页(P1215-1216)【作者】邱金东;汤昆【作者单位】河南大学药学院,河南,开封,475004;河南大学医学院,河南,开封,475004【正文语种】中文【中图分类】R285.6【相关文献】1.DPPH法测定金丝梅体外抗氧化活性 [J], 段静雨;李岩;王健慧;杨佳;陆文虎;余纯旺;纪传宝2.Antitumor and Antioxidant Activities of the New Anthraquinone Derivatives: Synthesis,DPPH, ABTS, Biological and DFT Investigations [J], SIYAMAK Shahab; MASOOME Sheikhi; RADWAN Alnajjar; LIUDMILA Filippovich; EVGENIJ Dikusar3.ABTS法和DPPH法测定类胡萝卜素清除自由基能力的适用性 [J], 羌宇; 张耀宗; 余勃; 陆豫4.基于DPPH、ABTS法的竹叶花椒抗氧化谱效关系研究 [J], 赵容; 张萌萌; 陈茜; 王丹; 袁星5.DPPH、ABTS和FRAP微量法测定山奈酚的抗氧化能力 [J], 王荣;罗倩;冯怡因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
dpph自由基清除实验-实验流程图-操作图解-李熙灿-Xican Li
dpph自由基清除实验-实验流程图-操作图解-李熙灿-
Xican Li
dpph自由基清除实验:实验流程图2017.10
【前言】DPPH自由基的甲醇或乙醇溶液呈深紫红色，并在519 nm范围有最大吸收峰。
其结构中含有3个苯环，1个N原子上有一个成单电子。
NO2
NOON22
NH
.N
DPPH自由基结构式 DPPH自由基模型图
当向DPPH自由基溶液中加入自由基清除剂(抗氧化剂)时，成单被配对，深紫色的DPPH自由基被还原成黄色DPPH-H分子，其褪色程度与所接受的电子数量成定量关系，因而可以通过吸光度的变化进行定量分析。
清除DPPH自由基是DPPH法的根据，当DPPH自由基与抗氧化剂反应后，519nm波长处的吸收值降低，其降低的程度与接收的电子(抗氧化剂清除自由基活性)呈定量关系，反应进程很容易通过分光光度计测定。
【文献】Jing Lin, Xican Li, Li Chen, Weizhao Lu, Xianwen Chen, Lu Han, Dongfeng Chen. Protective effect against hydroxyl radical-induced DNA damage and antioxidant mechanism of
[6]-gingerol: A Chemical Study. Bulletin of the Korean Chemical Society, 2014, 35(6), 1633-1638.
【实验流程图】
1
2。
DPPH自由基清除实验教学(详细版)
DPPH实验步骤一、原理：DPPH是一种很稳定的氮中心的自由基，它的稳定性主要来自3个苯环的共振稳定作用及空间障碍，使夹在中间的氮原子上不成对的电子不能发挥其应有的电子成对作用。
作为一种稳定的自由基，DPPH可以捕获("清除")其他的自由基。
因此通过加入DPPH后观察某一化学反应的速率是否减慢，来作为这一反应是否具有自由基反应本质的指标。
由于DPPH自由基在以520nm为中心处具有强烈的吸收，因此在溶液中呈现深紫色，并且在被中和之后会变为无色或浅黄色。
DPPH在有机溶剂中是一种稳定的自由基，其醇溶液呈紫色，且需低温避光储藏，具有单一电子，故能接受一个电子或氢离子，在波长为517nm下具有最大吸收。
有自由基清除剂存在时，DPPH的单电子被捕捉而使其颜色变浅，在最大光吸收波长处的吸光值下降，且下降程度呈线性关系，吸光度水平的降低表明抗氧化性的增加，从而以评价试验样品的抗氧化能力。
此抗氧化能力用抑制率来表示，抑制率越大，抗氧化性越强。
二、实验步骤：1.配制0.1mM的DPPH溶液：配两次，每次取0.002gDPPH溶于50mL乙醇，避光保存。
2.配制0.5mg/mL的Vc溶液，至少2mL（设为阳性对照，选择性做）3.配制一定浓度的样品溶液，至少2mL母液（也可以配制不同溶度梯度样品，计算IC50）4.上板（避光操作，上完板后，室温避光30分钟，测吸光度）96孔板，三组，每组设3个复孔，每孔加入量及96孔板分布如下：sample（样品组）：样品溶液100uL+ DPPH醇溶液100uL (每个浓度3个孔)blank（空白组）：样品溶液100uL+无水乙醇100uL （每个浓度3个孔）control（对照组）：DPPH 醇溶液100uL+水100uL （一块板可共用一个对照组,3个孔）样品VC浓度 1 2 3 4 5 6 1 2 3 4 5 6 sampleblankcontrol5.检测并计算清除率测517nm处的吸光度，取平均値，计算每个浓度的DPPH清除率，做出折线图。
硒杂环化合物SPO清除DPPH和ABTS自由基的光谱学研究
２ 结果 与讨论
ｂ ｎ ｏ ｈａｏ ｉ－一 ｕｆｎ ｃａ ｉ ，Ｔｒ ｌｘ（ － ｙ ｒｘ － ５ ７ ８ ｅ ｚ ｔ ｉｚ ｌ ６ ｓ ｌｏ ｉ ｃｄ） ｎ ｏｏ ６ ｈ ｄ ｏ ｙ２， ， ， 一
＼ ／．
２Ｉ Ｄ Ｐ 和 Ａ Ｔ ． Ｐ Ｈ Ｂ Ｓ反 应 体 系 的 吸 收 光 谱 及 测 定 波 长 的确
１４ Ａ Ｔ ． Ｂ Ｓ自由 基 清 除 实 验
４０ ０
５ ０ ０
６０ ０
７０ ０
８０ ０
Ｗ ａ ｅｈ ｅ ｇ ｈ ｎ ｖ ｔ Ｉｎ ｌ ／ ｍ
Ｆｉ． Ａｂ ｏ ｐ ｉ ｎ ｓ ｅ ｔａ ｏｆＤＰＰＨ ，ＡＢＴＳ ａ ＰＯ ｇ２ ｓ ｒ ｔｏ ｐ ｃ ｒ ｎｄ Ｓ
５ Ｌ不 同浓 度 的样 品 或 参 比溶 液 （ ＭＳ ， 加 入 ３ｎ ６ Ｏ“ Ｄ Ｏ） 再 也 Ｏ ｍ０ ． 的 Ｄ Ｐ 甲 醇 溶 液 ，振 荡 摇 匀 ，于 室 温 下 避 光 静 １Ｌ ＰＨ
０
置 ３ ｎ ０ｍｉ，然 后 测定 溶 液在 ５ ５ｎｎ处 的吸 光 值 ，并 扫 描 １ ｒ Ｕｖ＿ ｓ ｖｉ光谱 。 Ｄ Ｐ 自由基清除率 （Ｘ） １ ＰＨ Ｉ 一（ 一ＡｓＡｏ ×１０ ， 中 ／ ） ０ 其 Ａ ｓ为样 品管的吸光值 ； 为对照管 的吸光值 。 Ａｏ
ａ：ＡＢＴＳ；ｂ：ＤＰＰＨ ；ｆ ＰＯ ：Ｓ
参照文献［ ６ 方 法 。用 ｐ ． １］ Ｈ ７ ４的 Ｐ Ｓ配制 ５ｒｍｏ ・ Ｂ ｎ ｌ
Ｌ１ Ａ Ｔ ＿ 的 Ｂ Ｓ储 液 ，与 Ｍｎ ２反 应 后 用 ０ ２ ｍ 的 Ｐ ＤＦ膜 Ｏ ． Ｖ 过 滤 ， 用 Ｐ Ｓ ｐ ． ） 释 到 ７ ４Ｄ ｔ 吸 光 度 为 ０ ７ － 再 Ｂ （Ｈ ７４稀 ３ Ａ 处 ｆ ． ０４ ＿ －
PTIO和ABTS自由基清除实验操作指南-李熙灿 曾婧媛
PTIO和ABTS自由基的清除实验操作指南（以槲皮素为例）【前言】PTIO和ABTS自由基简介PTIO是与人体内自由基较为相似的氧自由基;而ABTS是氮自由基，虽然主要元素不同，但它们都较为稳定且随着被清除都会造成在特定波长下吸光度减小，所以常被用于检测物质体外抗氧化能力强弱。
本文详细介绍了这两种自由基清除实验的操作方法，并附有实例。
其中，PTIO自由基可以用于检测活性氧的清除能力；而ABTS自由基则适于检测活性氮的的清除能力。
（A）（B）（C）（D）图1.（A）PTIO•自由基结构式（B）ABTS•自由基结构式（C）PTIO分子模型（不同角度）（D）ABTS分子模型（不同角度）（采用Chem3D Pro 14.0软件绘制）【实验方法】1. PTIO自由基清除[1]1.1 溶液的配置PTIO试液：3mg PTIO固体+20mL 甲醇超声，混匀PTIO测试液取80μL PTIO测试液和20μL甲醇（与PTIO测试液中溶剂一致）混匀，在557nm 处测定吸光度，使吸光度保持在0.35±0.01之间。
吸光度偏大或偏小，就调节原PTIO测试液的浓度，使吸光度保持为0.35±0.01。
此吸光度为A0。
样品液：用合适溶剂溶解（一般为95乙醇或水），先配置成10mg/mL的溶液，可适当超声使之完全溶解，混合均匀。
1.2 预实验取80μL的PTIO试液，往其中加少量样品液，加样时，缓慢少量加入，边加边混合，并观察溶液褪色情况，当溶液刚刚好褪色完全，记下此时样品的加样量。
此加样量即为样品最大加样量，在此最大用量基础上，往前设置5个用量使之成为等差数列。
（如，如果最大加样量为20μL，那么对于该样品而言，其用量梯度宜设为0μL、4μL、8μL、12μL、16μL、20μL）注意事项：预实验中可能会遇到样品最大加样量很小（低于10μL），此时应该降低原样品液的浓度，再做预实验。
如果最大加样量低于10μL，可能不会得到很好的量效关系曲线。
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DPPH•和ABTS+•自由基清除实验（含PTIO•自由基清除实验)：详细说明与疑难解答李熙灿（广州中医药大学中药学院, 2019.7）（以下内容系来源于实验经验及三个参考文献[1]Li, X., Comparative Study of 1,1-Diphenyl-2-picryl-hydrazyl Radical (DPPH•) Scavenging Capacity of the Antioxidant Xanthones Family. Chemistryselect, 2018. 3,13081-13086. [2]Li, X.; Ouyang, X.; Cai, R.; Chen, D. 3’,8”-Dimerization Enhances the Antioxidant Capacity of Flavonoids: Evid ence from Acacetin and Isoginkgetin. 2019, Molecules. 24, 2039. [3]Li, X.C., 2-Phenyl-4,4,5,5-tetramethylimidazoline-1-oxyl3-Oxid e (PTIO•) Radical Scavenging: A New and Simpl e Antioxidant Assay In Vitro. J. Agric. Food Chem., 2017. 65,6288-6297【概述】DPPH•、ABTS+•、PTIO•自由基三者，都是常用的自由基。
概述如下表：12工作液外观紫色墨绿色蓝紫色工作液紫外光谱与最大吸收2004006008000.00.51.01.52.02.53.0吸光度波长/nm519nm(50 μg/mL)2003004005006007008009000.00.51.01.52.0734nm吸光度波长/nm415nm（0.07mM (NH 4)2ABTS+0.03mM K 2S 2O 8）200400600800012吸光度波长/nm557nm(50 μg/mL)检测波长 519 nm 734nm557nm （水溶液）检测原理当A 519 nm 值减少，表明DPPH·被清除。
其清除机制主要是氢转移HAT (hydrogen atom transfer) 当A 734nm 值减少，表明ABTS·+被清除。
其清除机制主要是电子转移ET (el ectron transfer)当A 557减少，表明ABTS·+被清除。
其清除机制主要是电子移ET (electron transfer)加质子转移PT (proton transfer)用途主要用于测试一个纯的化合物或者提取物，是否具有抗氧化活性或者活性的强弱。
主要用于测试一个纯的化合物或者提取物，是否具有抗氧化活性或者活性的强弱。
主要用于测试一个纯的化合物或者提取物，是否具有抗氧化活性或者活性的强弱。
通过调节缓冲液的pH 值，可以检测其抗氧化机制。
优势清除速度较快，约30分钟（室温下）。
清除速度较快，约6分钟（室温下）。
（1）水溶性好，与生物相关性强；（2）是氧自由基，能更好地表往ROS 清除水平；（3）抗氧化机制明确：pH 值小于5.0时，为电子转移ET 机制。
当调节pH 值（如pH=5.0，6.0，7.4）时，其清除能力也随之改变，表明与pH 值有关，也就是说与氢离子（质子）浓3【实验讲解】1.DPPH•自由基清除实验[1]1.1 DPPH测试液的配置取DPPH固体1mg溶于24mL 95乙醇（或无水乙醇、甲醇）中，超声5min，充分振摇，务使上下各部分均匀。
最好避光保存，5小时内用完。
取1mL上述步骤配置好的DPPH溶液，加0.5mL 95乙醇（或无水乙醇、甲醇）稀释后，使其吸光度为0.6-1.0之间。
若吸光度过大，则继续加溶剂；若吸光度过小，则补加DPPH固体或者原始溶液。
1.2 样品液的配置样品用合适的溶剂溶解，为便于计算，可配成1mg/mL浓度。
溶剂根据样品的极性进行选择，首选甲醇、95乙醇或无水乙醇（尽量与DPPH溶液所用溶剂相同），如不溶可用DMSO。
1.3 预试取DPPH溶液1.0 mL，加0.5mL相应有机溶剂后，往其中加少量样品液。
加样时，先少后多渐加，边加边混合，并观察溶液的褪色情况，当溶液颜色基本褪去时，记下样品的加样量。
如果反应缓慢可在37℃烘箱中放置半个小时。
此加样量即为样品的最大用量，在此最大用量的基础上，往前设置5个用量，使之成等差数列。
【如】在预试过程中，发现加样到500 μL时，DPPH溶液颜色基本褪去，则500 μL为该样品液的最大用量。
则对于该样品而言，其用量梯度宜设为100 μL、200 μL、300 μL、400 μL、500 μL。
A0值：取DPPH溶液1.0 mL到比色皿中，加对应有机溶剂0.5 mL，稀释混合，测A值，此A值为A0（A0须在0.8-1.0之间）。
A值：取（500-x）μL 有机溶剂到比色皿中，加样品液x μL （x是根据1.3预试结果确定样品液的用量），再加DPPH溶液1.0 mL，混合使反应液总体积为1.5 mL。
测A值。
【如】某样品的用量梯度为100 μL、200 μL、300 μL 、400 μL、500 μL，则加样如下：样品液95乙醇（或无水乙醇）DPPH测试液总体积0μL 100μL 500 μL400 μL1.0 mL1.0 mL1.5 mL1.5 mL200μL300 μL 1.0 mL 1.5 mL 300μL200 μL 1.0 mL 1.5 mL 400μL100 μL 1.0 mL 1.5 mL 500μL0 μL 1.0 mL 1.5 mL 1.4 最终测量每测一个用量需要测三个平行数据。
1.5 DPPH•清除率（抑制率）的计算4500=100A AA -⨯清除率%(A 0为不加样品时的值；A 为加入样品后的值。
)1.6 使用注意事项 1.6.1 测量前，要先用空白溶剂调零。
1.6.2 将溶液注入比色皿后应当充分摇匀，使颜色均匀分布。
1.6.3 每次使用前后要注意比色皿的清洁。
1.6.4 如果在实验过程中出现A 值大于A 0的情况，则可能是由于样品本身产生的本底吸收所致，此时，应该减去本底吸收的A 值(A 本)。
这个A 本值可以通过，加样品但不加DPPH 的方法测得。
此时的计算公式为：00()=100A A A A --⨯本清除率%1.7 疑难解答问：DPPH 实验测量抗氧化性的原理是什么？答：DPPH 法于1958年被提出，广泛用于定量测定生物试样、分类药物和食品的抗氧化能力。
此法是根据DPPH 自由基有单电子，在519nm 处有一强吸收，其醇溶液呈紫色的特性。
当有抗氧化剂存在时，DPPH 自由基被清除，溶液颜色减淡，其褪色程度与其被清除程度（即吸光度的改变）成定量关系，因而可用分光光度计或酶标仪进行快速的定量分析。
问：DPPH 自由基被清除的机制是什么？答：DPPH 自由基的清除过程主要涉及到氢转移（HAT ），简要过程如下（以1,3,5,8-四羟基氧杂蒽酮为例）：问：实验中的溶剂应该怎么确定？答：优先选用甲醇、95乙醇或无水乙醇溶解DPPH固体和样品，若样品难溶于水和醇，再考虑DMSO等溶剂。
值得注意的是，实验中应该尽量保证样品溶液和DPPH溶液使用相同的溶剂。
另两个实验（ABTS+•清除和PTIO•清除）同理。
问：样品的浓度一定要设置成1mg/mL吗？答：不同样品清除DPPH自由基的活性可能相差很大，为了保证结果的准确，应该尽量使样品的五个浓度点对DPPH•清除率均匀分布在0-100%之间，因此1mg/mL只是一个大概数值，实验中要根据预试结果进行调整。
由于1 mg/mL这个数字方便稀释和计算，因此在这里统一写作1mg/mL。
另两个实验（ABTS+•清除和PTIO•清除）同理。
问：测量完成后怎么计算IC50答：IC50值是指清除50%的自由基，所需要的样品的最终浓度。
有两种计算方法。
第一，以实验所得的抗氧化剂浓度为横坐标，清除率为纵坐标，然后计算线性回归方程。
将清除率50%代入方程中求得对应的横坐标值即为IC50值，注意最终结果将三次或三次以上的平行试验取平均值。
第二，通过浓度曲线的图直接读出。
在50%处画一横线，此横线与曲线的模拟线的交点的对应的横坐标，即IC50.另两个实验（ABTS+•清除和PTIO•清除）同理。
问：为什么要用Trolox作为阳性对照？答：维生素E（生育酚）是常见的抗氧化剂。
不过，维生素E难溶于水，而且易变质。
为此，化学家将其结构进行修饰，即得Trolox（化学名称：6-羟基-2,5,7,8-四甲基色烷-2-羧酸）。
Trolox不仅溶于水，而且易溶于有机溶剂，所以，广泛地用作抗氧化剂的阳性对照物。
亦称水溶性维生素E。
为了方便对比评价所测物质的抗氧化能力，通常采用Trolox作为DPPH自由基清除实验的阳性对照品。
另两个实验（ABTS+•清除和PTIO•清除）同理。
问：为什么会出现清除率为负值的情况？答：样品的活性太弱，所以，加入的样品的量较多；如果这个样本身在519nm处有吸收的话，就会产生一个可观的A值，导致A>A0,清除率为负。
问：DPPH•清除率会大于100%吗？答：不可能。
1.8实例茶黄素清除DPPH•67量效曲线图(Microcal Origin 绘制)：D P P H 清除率 %最终浓度 μg/mL82. ABTS·+自由基清除实验[2] 2.1 溶液配制 2.1.1 ABTS 二铵盐储备液(7.4 mmol/L)：取ABTS 二铵盐 3 mg ，加蒸馏水0.735mL 。
（MW ＝548.7） 2.1.2 过二硫酸钾（K 2S 2O 8）储备液(2.6 mmol/L)：取K 2S 2O 8 1mg ，加蒸馏水1.43 mL 。
（MW ＝270.32） 2.1.3 取0.2mL ABTS 二铵盐储备液和0.2mL K 2S 2O 8储备液混合，黑暗环境下室温放置12小时，用pH7.4磷酸盐缓冲液将混合液稀释10-20倍直至吸 光度为0.70±0.02，此溶液即为ABTS •+自由基工作液。
（注：也可以用95乙醇或无水乙醇，但必须是原装分析纯试剂，回收或重蒸者均不可用。
） 2.2 样品液的配置 样品用合适的溶剂溶解，为便于计算，可配成1 mg/mL 浓度。
溶剂根据样品的极性进行选择，首选95乙醇或无水乙醇，如不溶可用DMSO 。
2.3 预试 取ABTS•+自由基工作液0.8 mL ，往其中加少量样品液，加样时，先少后多渐加，边加边混合，并观察溶液的褪色情况，当溶液颜色基本褪去时，记下样品的加样量。