实验八 食品蛋白质含量测定
[精品]食品中蛋白质的测定实验报告
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实验原理：
蛋白质是组成细胞的主要成分之一，也是组成食物的重要营养成分之一。
蛋白质在酸性条件下，能与双氨基苯酚（Folin-Ciocalteu试剂）反应，在蓝色复合物的形成下吸光度增加。
利用这一现象可以测定蛋白质的含量。
实验步骤：
1. 食品的预处理
取适量的食品，如鸡蛋、瘦肉、豆腐等，先将食品在研钵中打碎，然后加入适量的蒸馏水，混合均匀，并将混合液倒入过滤纸筒中，收集澄清液并备用。
2. 制备标准曲线
取不同浓度的牛血清蛋白标准溶液（0.1ug/mL、0.2ug/mL、0.4ug/mL、0.6ug/mL、0.8ug/mL），各加入1mL NaOH（0.1mol/L）及2.5mL双氨基苯酚溶液，室温下混合放置，15min后加入 2mLNa2CO3溶液（0.2mol/L），混合均匀，最后用蒸馏水定容至25mL。
利用分光光度计测定吸光度值，制备标准曲线。
3. 测定样品
4. 计算样品中蛋白质的含量
根据标准曲线求出样品中蛋白质的含量。
实验结果：
样品 | 吸光度值 | 蛋白质含量（g/100g）
---|---|---
鸡蛋 | 0.21 | 12.56
瘦肉 | 0.55 | 20.00
豆腐 | 0.45 | 8.90
通过该实验，我们成功地测定了食品中蛋白质的含量，结果表明瘦肉的蛋白质含量最高，豆腐的蛋白质含量最低。
这有助于我们选择更健康的食物。
同时，我们还注意到样品的吸光度值与蛋白质含量呈正相关，这也说明了利用双氨基苯酚对蛋白质进行测定的可行性。
食品中蛋白质含量测定(凯氏定氮法)
实验:食品中蛋白质含量测定（凯氏定氮法）一、目的与要求1、学习凯氏定氮法测定蛋白质的原理。
2、掌握凯氏定氮法的操作技术，包括样品的消化处理、蒸馏、滴定及蛋白质含量计算等。
二、实验原理蛋白质是含氮的化合物。
食品与浓硫酸和催化剂共同加热消化，使蛋白质分解，产生的氨与硫酸结合生成硫酸铵，留在消化液中，然后加碱蒸馏使氨游离，用硼酸吸收后，再用盐酸标准溶液滴定，根据酸的消耗量来乘以蛋白质换算系数，即得蛋白质含量。
三、仪器与试剂（一）试剂（所有试剂均用不含氨的蒸馏水配制）1、硫酸铜（CuSO4·5H20）2、硫酸钾3、浓硫酸（密度为1.8419g/L）4、2%硼酸溶液（20g/L）5、40%氢氧化钠溶液（400g/L）6、0.01mol/L盐酸标准滴定溶液。
7、混合指示试剂：0.1%甲基红乙醇溶液1份，与0.1%溴甲酚绿乙醇溶液5份临用时混合。
（二）仪器微量定氮蒸馏装置：如图3-所示。
图3-微量凯氏定氮装置1、电炉；2、水蒸气发生器（2L平底烧瓶）；3、螺旋夹a；4、小漏斗及棒状玻璃塞（样品入口处）；5、反应室；6、反应室外层；7、橡皮管及螺旋夹b；8、冷凝管；9、蒸馏液接收瓶。
四、实验步骤1、样品消化称取样品约0.3g（±0.001g），移入干燥的100mL凯氏定氮烧瓶中，加入0.2g硫酸铜和6g硫酸钾，稍摇匀后瓶口放一小漏斗，加入20mL浓硫酸，将瓶以450角斜支于有小孔的石棉网上，使用万用电炉，在通风橱中加热消化，开始时用低温加热，待内容物全部炭化，泡沫停止后，再升高温度保持微沸，消化至液体呈蓝绿色澄清透明后，继续加热0.5h，取下放冷，小心加20mL水，放冷后，无损地转移到100mL容量瓶中，并用少量水洗定氮瓶，洗液并入容量瓶中，加水定容至刻度，混匀备用，即为消化液。
一般消解温度都设在240度及240度以上，如果想快速消解可以适当提高温度甚至可以用最大温度进行消解试剂空白实验：取与样品消化相同的硫酸铜、硫酸钾、浓硫酸，按以上同样方法进行消化，冷却，加水定容至100mL，得试剂空白消化液。
8-蛋白质测定标准操作规程
1目的规范食品中蛋白质的标准操作规程。
2范围本标准规定了食品中蛋白质的测定方法。
本标准第一法和第二法适用于各种食品中蛋白质的测定，第三法适用于蛋白质含量在10 g/100 g 以上的粮食、豆类、奶粉、米粉、蛋白质粉等固体试样的筛选测定。
本标准不适用于添加无机含氮物质、有机非蛋白质含氮物质的食品测定。
3责任质量部组织制订、化验室负责实施。
4内容4.1 凯氏定氮法4.1.1规范性引用性文件本标准中引用的文件对于本标准的应用是必不可少的。
凡是注日期的引用文件，仅所注日期的版本适用于本标准。
凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本标准。
4.1.2 原理食品中的蛋白质在催化加热条件下被分解，产生的氨与硫酸结合生成硫酸铵。
碱化蒸馏使氨游离，用硼酸吸收后以硫酸或盐酸标准滴定溶液滴定，根据酸的消耗量乘以换算系数，即为蛋白质的含量。
4.1.3 试剂和材料除非另有规定，本方法中所用试剂均为分析纯，水为GB/T 6682 规定的三级水。
4.1.3.1 硫酸铜（CuSO4²5H2O）。
4.1.3.2 硫酸钾（K2SO4）。
4.1.3.3 硫酸（H2SO4 密度为1.84g/L）。
4.1.3.4 硼酸（H3BO3）。
4.1.3.5 甲基红指示剂（C15H15N3O2）。
4.1.3.6 溴甲酚绿指示剂（C21H14Br4O5S）。
4.1.3.7 亚甲基蓝指示剂（C16H18ClN3S²3H2O）。
4.1.3.8 氢氧化钠（NaOH）。
4.1.3.9 95%乙醇（C2H5OH）。
4.1.3.10 硼酸溶液（20 g/L）：称取20 g 硼酸，加水溶解后并稀释至1000 mL。
4.1.3.11 氢氧化钠溶液（400 g/L）：称取40 g 氢氧化钠加水溶解后，放冷，并稀释至100 mL。
4.1.3.12 硫酸标准滴定溶液（0.0500 mol/L）或盐酸标准滴定溶液（0.0500 mol/L）。
蛋白质含量测定实验报告
蛋白质含量测定实验报告一、实验目的。
本实验旨在通过测定食物中蛋白质含量的方法，掌握蛋白质的测定原理和操作技能，加深对蛋白质的认识，为日常饮食提供科学依据。
二、实验原理。
本实验采用了比色法测定蛋白质含量。
比色法是根据蛋白质与双酚类物质在碱性条件下生成紫色化合物的原理，利用紫外可见光谱法测定其吸光度，从而计算出蛋白质的含量。
三、实验步骤。
1. 样品制备，将食物样品研磨成粉末状。
2. 蛋白质提取，取适量样品加入提取液，振荡离心，收集上清液。
3. 比色反应，将提取液与试剂混合，待反应完成后进行测定。
4. 吸光度测定，用紫外可见光谱仪测定吸光度。
5. 计算蛋白质含量，根据吸光度值计算出样品中蛋白质的含量。
四、实验结果。
经过实验测定，得出食物样品中蛋白质含量为Xg/100g。
五、实验分析。
通过本次实验，我们了解了蛋白质含量测定的原理和方法，掌握了比色法测定蛋白质含量的操作技能。
同时，也发现不同食物样品中蛋白质含量的差异，为我们科学合理地进行日常饮食提供了参考。
六、实验总结。
蛋白质是人体生命活动的重要组成部分，合理摄入足够的蛋白质对维持身体健康至关重要。
通过本次实验，我们不仅学会了测定蛋白质含量的方法，也增加了对蛋白质的认识，为我们的健康饮食提供了科学依据。
七、实验感想。
本次实验让我深刻认识到蛋白质在日常饮食中的重要性，也让我对科学实验有了更深的理解和体会。
希望通过今后的学习和实践，能够更好地运用所学知识，为自己和他人的健康提供帮助。
八、参考文献。
1. 《食品分析实验指导》，XXX，XXX出版社，XXXX年。
2. 《食品化学与分析》，XXX，XXX出版社，XXXX年。
以上就是本次蛋白质含量测定实验的报告内容，希望对大家有所帮助。
蛋白质含量的测定实验报告
蛋白质含量的测定实验报告一、实验目的。
本实验旨在通过测定食品中蛋白质含量的方法，掌握蛋白质含量的测定原理和操作技能，为食品质量的检验提供科学依据。
二、实验原理。
蛋白质含量的测定方法有多种，本实验采用的是经典的凯氏试剂法。
该方法是利用碱性铜溶液与蛋白质中的蛋白质结合成紫色沉淀，通过比色计算出蛋白质含量。
三、实验仪器和试剂。
1. 仪器，量筒、烧杯、比色皿、分析天平等。
2. 试剂，凯氏试剂、蛋白质标准品、硫酸铜溶液、碱液等。
四、实验步骤。
1. 样品制备，将待测样品称取适量，加入适量的硫酸铜溶液，摇匀后放置一段时间。
2. 沉淀分离，将沉淀转移到预先称量的滤纸上，用水洗涤至无碱性铜试剂残留。
3. 沉淀溶解，将沉淀与少量硫酸铜溶液混合，加入碱液溶解。
4. 比色计算，用比色皿盛放试液，通过比色计算出蛋白质含量。
五、实验结果。
通过实验测得样品的蛋白质含量为XXg/100g。
六、实验分析。
根据实验结果，可以初步判断样品的蛋白质含量符合标准要求。
但需要注意的是，蛋白质含量的测定结果受到多种因素的影响，如样品制备不均匀、操作不规范等，因此在实际应用中还需要结合其他分析方法进行综合判断。
七、实验结论。
本实验通过凯氏试剂法测定了样品的蛋白质含量，结果表明样品的蛋白质含量符合标准要求。
但仍需注意实验操作的规范性，以确保结果的准确性和可靠性。
八、实验总结。
通过本次实验，我们掌握了蛋白质含量的测定方法和操作技能，提高了对食品质量检验的能力，为今后的实验和工作积累了经验。
以上就是本次蛋白质含量的测定实验报告，希望对大家有所帮助。
食品中蛋白质的测定实验报告
食品中蛋白质的测定实验报告食品中蛋白质的测定实验报告引言：蛋白质是构成生物体的基本营养成分之一，对人体的生长发育和维持正常功能起着重要作用。
因此，准确测定食品中蛋白质含量对于评估食品的营养价值具有重要意义。
本实验旨在通过测定食品中蛋白质的含量，探究不同食品样品中蛋白质的差异。
材料与方法：1. 实验仪器：显微镜、离心机、分光光度计、电子天平等。
2. 实验试剂：硫酸铜溶液、碱式碘化钾溶液、稀硫酸溶液、双氯苯酚溶液等。
3. 样品准备：选取不同食品样品，如鸡蛋、牛奶、豆腐等。
4. 实验步骤：a. 样品预处理：将样品进行研磨或切碎，以增加样品与试剂的接触面积。
b. 蛋白质提取：将样品加入适量的稀硫酸溶液中，使用离心机进行离心分离。
c. 硫酸铜法测定：取一定量的蛋白质提取液，加入硫酸铜溶液和碱式碘化钾溶液，观察溶液颜色变化。
d. 分光光度计测定：将上述溶液转移到分光光度计中，测定其吸光度。
e. 通过标准曲线计算：制备不同浓度的蛋白质标准溶液，测定吸光度，并绘制标准曲线。
结果与讨论：通过以上实验步骤，我们成功测定了不同食品样品中蛋白质的含量，并绘制了标准曲线。
根据实验结果，我们发现不同食品样品中蛋白质含量存在显著差异。
首先，我们发现鸡蛋中蛋白质含量最高，这与其作为高蛋白食物的常识相符。
鸡蛋是一种优质蛋白质的来源，含有人体所需的多种氨基酸。
因此，适量食用鸡蛋可以提供人体所需的蛋白质，并满足身体的生理需求。
其次，牛奶中蛋白质含量也较高。
牛奶是一种常见的蛋白质来源，富含乳清蛋白和酪蛋白，具有较高的生物活性。
牛奶中的蛋白质对于人体的骨骼生长和免疫系统的健康起着重要作用。
因此，适量饮用牛奶可以提供必要的蛋白质和营养物质。
另外，豆腐中蛋白质含量也相对较高。
豆腐是一种常见的植物蛋白食品，富含大豆异黄酮和植物雌激素。
豆腐中的蛋白质对于人体的心血管健康和预防乳腺癌具有一定的保护作用。
因此，适量食用豆腐可以提供植物蛋白和其他营养物质。
食品中蛋白质的测定实验报告
食品中蛋白质的测定实验报告一、实验目的准确测定食品中蛋白质的含量，掌握常见的蛋白质测定方法及原理，评估食品的营养价值和质量。
二、实验原理蛋白质是含氮的有机化合物。
食品与浓硫酸和催化剂一同加热消化，使蛋白质分解，其中碳和氢被氧化为二氧化碳和水逸出，而样品中的有机氮转化为氨与硫酸结合成硫酸铵。
然后加碱蒸馏，使氨蒸出，用硼酸吸收后再以标准盐酸或硫酸溶液滴定。
根据标准酸消耗量可计算出蛋白质的含量。
三、实验材料与仪器（一）材料1、牛乳、鸡蛋、大豆等食品样品。
2、浓硫酸（比重 184）。
3、硫酸铜、硫酸钾。
4、 40%氢氧化钠溶液。
5、 2%硼酸溶液。
6、混合指示液：1 份 01%甲基红乙醇溶液与 5 份 01%溴甲酚绿乙醇溶液临用时混合。
7、 005mol/L 盐酸标准溶液。
（二）仪器1、消化炉。
2、定氮蒸馏装置。
3、凯氏烧瓶（500ml）。
4、容量瓶（100ml、500ml）。
5、移液管（10ml、20ml）。
6、酸式滴定管（50ml）。
四、实验步骤（一）样品消化1、准确称取 02 20g 固体样品或 2 5g 半固体样品或吸取 10 20ml 液体样品（约相当氮 30 40mg），移入干燥的 500ml 凯氏烧瓶中，加入 02g 硫酸铜、3g 硫酸钾及 20ml 浓硫酸，摇匀。
2、将凯氏烧瓶以 45°角斜支于有小孔的石棉网上。
用电炉小心加热，待内容物全部炭化，泡沫完全停止后，加强火力，并保持瓶内液体微沸，至液体呈蓝绿色澄清透明后，再继续加热 05h。
取下放冷，小心加 20ml 水，放冷后，移入 100ml 容量瓶中，并用少量水洗定氮瓶，洗液并入容量瓶中，再加水至刻度，混匀备用。
（二）蒸馏与吸收1、按图装好定氮蒸馏装置。
在水蒸气发生瓶内装水至约三分之二处，加甲基红指示液数滴及数毫升硫酸，以保持水呈酸性，加入数粒玻璃珠以防暴沸，加热煮沸水蒸气发生瓶内的水。
2、向接收瓶内加入 10ml 2%硼酸溶液及混合指示液 1 滴，并使冷凝管的下端插入液面下。
重庆大学生物化学实验_实验八 蛋白质含量测定
度，D为溶液的稀释倍数。
可行性分析
• 优点：紫外吸收法测蛋白质含量迅速、简便、
不消耗样品，低浓度盐类不干扰测定。因此， 已在蛋白质和酶的生化制备中广泛采用，尤其 在柱层析分离纯化中，常用280nm进行紫外检测， 来判断蛋白质吸附或洗脱情况
匀，按上述方法测定280nm的光密度，并从标准工作曲 线上查出待测蛋白质溶液的浓度。
• 3计算
1．在测定工作中，可以利用280nm及260 nm的光密度值 求出蛋白质的浓度：
蛋白质浓度（mg/mL）=1.45OD280nm―0.74OD260nm
• 上式中的OD280nm是蛋白质溶液在280nm下测得的光密
可行性分析
• 缺点：（1）对于测定那些与标准蛋白质中酪氨酸和色氨酸
含量差异较大的蛋白质，有一定的误差。故该法适于测定与 标准蛋白质氨基酸组成相似的蛋白质。（2）若样品中含有 嘌呤、嘧啶等吸收紫外光的物质，会出现较大干扰。例如， 在制备酶的过程中，层析柱的流出液中有时混杂有核酸，应 予以校正
• 2．当样品中含有核酸类杂质，可以根据核酸在260nm波长
四、操作步骤
1．标准曲线制作
• 按下表分别向每支试管内加入各
种试剂，混匀。以光程为1cm的石 英比色杯，在280nm波长处测定 各管溶液的光密度值OD280nm。
• 以蛋白质浓度为横坐标，光密度
值为纵坐标，绘出标准曲线。
附表
• 2．样品测定
• 取待测蛋白质溶液（蛋清）1mL，加入蒸馏水3mL，混
处有最强的紫外光吸收，而蛋白质在280nm处有最大的紫外 光吸收的性质，通过计算可以适当校正核酸对于测定蛋白质 浓度的干扰作用。但是，因为不同的蛋白质和核酸的紫外吸 收是不相同的，虽然经过校正，测定结果还存在着一定的误 差
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实验八食品中蛋白质含量测定
1.实验目的
（1）学习凯氏定氮法测定蛋白质的原理。
（2）掌握凯氏定氮法的操作技术，包括样品的消化处理、蒸馏、滴定及蛋白质含量计算等。
2.实验原理
2.1消解
蛋白质是含氮的化合物。
食品与浓硫酸在催化剂作用下共同加热消化，使蛋白质分解，产生的氨与硫酸结合生成硫酸铵而留在消化液中，然后加碱蒸馏使氨游离，用硼酸吸收后，再用盐酸标准溶液滴定，根据酸的消耗量来乘以蛋白质换算系数，即得蛋白质含量。
因为食品中除蛋白质外，还含有其它含氮物质，所以此蛋白质称为粗蛋白。
NH2(CH2)2COOH+13H2SO4=(NH4)2SO4+6CO2+12SO2+16H2O
浓硫酸将有机物炭化后为碳、氢与氮，将形成的碳氧化：
2H2SO4+C（Δ）=CO2+2H2O+2SO2↑
生成的二氧化硫将氧化态的氮还原为氨而自身被氧化为三氧化硫，氨随之与硫酸反应生成硫酸铵，
H2SO4+2NH3=(NH4)2SO4
在消解试验中，为了加速蛋白质的分解，缩短消解时间，常常加入下列物质：
（1）硫酸钾：一般浓硫酸的沸点为340℃，但加入硫酸钾后，硫酸不断分解，水不断溢出引起硫酸钾浓度不断增加，沸点因此而增加。
K2SO4+H2SO4=KHSO4
KHSO4（Δ）=K2SO4+H2O↑+SO3
但硫酸钾浓度不能太大，否则消化温度过高会引起铵盐的热分解而释放出氨，（NH4）2SO4（Δ）=（NH4）2SO4+NH3↑
2KSO4（Δ）=2H2O+2NH3↑+2SO3↑
除了可以添加硫酸钾之外，也可以加入硫酸钠、氯化钾等以提高溶液温度，但效果要差于硫酸钾。
（2）硫酸铜：硫酸铜可以催化反应。
可以采用的催化剂除了硫酸铜外，还可以加入氧化汞、汞、硒粉以及二氧化钛等，但考虑效果、价格以及污染等原因外，最常用的还是硫酸铜，同时可以加入少量的过氧化氢、次氯酸钾等作为氧化剂以加速有机物的氧化，反应机理为：
2CuSO4（Δ）= Cu2SO4+O2↑+SO2↑
C+CuSO4（Δ）= Cu2SO4+CO2↑+SO2↑
H2SO4+Cu2SO4（Δ）= 2CuSO4+2H2O↑+SO2↑
此反应不断进行，如溶液没有褐色生成（Cu2SO4颜色）而呈现清澈的蓝绿色，说明有机物已经全部被消解完毕。
因此，在试验过程中，硫酸铜不但能够催化反应，而且能够指示反应的进行程度。
2.2碱化蒸馏
在消解完全的样品溶液中加入过量的浓的氢氧化钠溶液使溶液呈现碱性，加热蒸馏而放出氨气：
2NaOH+（NH4）2SO4（Δ）= Na2SO4+2H2O+2NH3↑
2.3吸收与滴定
将加热蒸馏释放出来的氨利用硼酸溶液进行吸收，因硼酸属于弱酸，其后再用盐酸进行滴定：
2NH3+4H3BO3=(NH4)2B4O7+5H2O
(NH4)2B4O7+5H2O+2HCl=2NH4Cl+4H3BO3
除此之外，也可以用过量的盐酸或者硫酸吸收整流而出的氨气，然后再用氢氧化钠进行回滴。
3. 仪器及材料
3.1仪器
FOSS KjelitecTM 2100 自动定氮仪（含digestor2006消化炉、消化管），酸式滴定管，三角瓶
3.2试剂
硫酸铜（CuSO4·5H20），
硫酸钾，浓硫酸（密度为1.84g/ml ），
硼酸溶液（20g/L ），
氢氧化钠溶液（400g/L ），
0.01mol/L 盐酸标准滴定溶液，
混合指示试剂：0.1%甲基红乙醇溶液液：0.1%溴甲酚绿乙醇溶液=1:5
3.3 材料
脱脂奶粉
3.4注意事项
（1）样品的取用量应适中，以免影响后续反应。
（2）加入的催化剂硫酸钾和硫酸铜的配比适宜。
（3）催化剂的添加量一定要准确，否则催化速度不一致，导致反应程度和挥发的氨不
一样，误差大。
（4）消化过程中消化的时间应该充分，确保消化完全，消化至溶液呈现透明的浅蓝色。
（5）消化后要将液体充分冷却，定容到容量瓶中备用。
（6）消化之前检查凯氏定氮仪气密性良好，后用蒸馏水清洗凯氏定氮仪，要充分清洗。
（7）消化过程中，加碱液后要迅速关闭进样口，防止反应放出的氨气逸出。
（8）消化过程中，火焰的温度要适当，太小加热过慢，太大容易导致溶液暴沸甚至从
进气口溢出。
4. 实验步骤
5. 结果与分析
5.1计算公式
1000140.0)(21⨯⨯⨯⨯-=F m
V V C X 式中：X ——样品蛋白质含量（g/100g ）；
V1——样品滴定消耗盐酸标准溶液体积（mL ）；
V2——空白滴定消耗盐酸标准溶液体积（mL ）；
c ——盐酸标准滴定溶液浓度（mol/L ）；
0.0140——1.0mL 盐酸[c(HCL)=1.000mol/L]标准滴定溶液相当的氮的质量（g ）；
m ——样品的质量（g ）；
F ——氮换算为蛋白质的系数，一般食物为6.25；乳制品为6.38；面粉为5.70；
高梁为6.24；花生为5.46；米为5.95；大豆及其制品为5.71；肉与肉制品为6.25；大麦、小米、燕麦、裸麦为5.83；芝麻、向日葵5.30。
计算结果保留三位有效数字。
5.2实验数据
实验样品质量/g 滴定用盐酸体积/ml 蛋白质含量%空白(-) (-) 1.55 (-)
样品1 0.1930 8.30 31.2
2 0.416
3 15.15 29.2
2.
30
X (SD=1)
由计算结果可得：样品蛋白质含量为30.2g/100g。
6.讨论与心得
6.1思考题
6.1.1实验操作过程中，影响测定准确性的因素有哪些？
答：凯氏定氮仪测定蛋白质含量的误差来源可能是样品、催化剂种类和用量、消化的时间、加碱液后的操作、蒸馏加热、清洗凯氏定氮仪的过程、凯氏定氮仪的气密性、氨气是否完全蒸馏出来；硼酸是否封住蒸馏管口、试剂的准确性、滴定终点的判断、滴定盐酸的浓度准确性等。
6.1.2浓硫酸、硫酸钾、硫酸铜的作用是什么？
答：（1）浓硫酸：氧化剂，分解蛋白质成氨气和其他成分。
（2）粉末硫酸钾-硫酸铜混合物（K2SO4: CuSO4·5H2O=3 : 1）：充当催化剂，硫酸钾可以提高消化液的沸点，硫酸铜作为催化反应的主要成分。
6.1.3在盐酸滴定过程中，能否使用酚酞作为指示剂？为什么？
答：质量分数比5:1的溴甲酚绿—甲基红指示剂的变色范围为：pH5.2以上时，蓝绿色；pH5.0时，淡紫灰到淡蓝色；pH4.8时，带淡蓝色的淡粉红色；pH4.6时，淡粉红。
以溴甲酚绿—甲基红作指示剂滴定水样碱度时，终点为淡蓝色变为淡粉红色时，报告的终点pH可记为4.6。
酚酞的变色范围是 8.2 ～ 10.0，所以酚酞只能检验碱而不能检验酸。
实验需保证滴定终点时碱被完全中和，故不使用酚酞试液，而是用溴甲酚绿—甲基红混合指示剂。
这样可以使滴定终点更为准确。
6.2实验心得
这是第八次进行食品分析与检验实验课程。
实验内容是掌握凯氏定氮法测定蛋白质含量。
其中我主要学会了用FOSS KjelitecTM 2100 自动定氮仪以及凯氏定氮法测食品的蛋白质含量的基本操作技术，掌握了相关实验测定条件的选择，这在以后的食品分析与检验试验中是很有用的。
在实验过程中我组成员各有分工，尤其注意了精确观察读数记录、滴定过程的细致操作等一系列基本操作。
实验全程我们严格按照规范操作，取得了较好的实验结果。
这门课程作为专业课程的配套实验，这是提高我们实验技术，掌握基本的试验方法的基本。
我们会更加认真完成课程。
同时感谢老师和助教的讲解，使得我对实验的各项要求目的都有明确的掌握。
同时还要感谢同组组员的合作配合，使得我们在短时间内就按照要求完成了所有实验要求。
我相信我们的配合会更加娴熟，相信实验课会越来越顺利。
由于水平有限，实验报告中定有纰漏错误之处，请老师不吝赐教！。