实验设计大纲范例--肺水肿
实验性肺水肿
答：去甲肾上腺素作用于外周血管，使血管收缩，外周阻力增大，血压升高。肺部血液逗留使间质的积液增多，使呼吸代偿功能消失，加重了肺淤血性水肿。
3．实验中观察到气管插管有粉红色泡沫状液体流出，意义何在？其机制是什么？
答：出现粉红色泡沫痰，说明肺毛细血管通透性增高。泡沫痰说明水肿液中蛋白质成分较高，即血浆透过肺血管进入呼吸道，在呼吸过程中气体流过时很容易形成泡沫且不容易消除，使呼吸道内很快被泡沫充塞，严重影响气体交换。粉红色说明有红细胞滲出。肺水肿一旦发生，则肺泡上皮的屏障功能就会发生根本性的改变，水和各种溶质包括蛋白质、红细胞等都可以不受限制而自由通过上皮层进入气管管腔内，此时水肿液则可随呼吸运动由气管残端排出，
4．根据两组实验结果，联系理论，分析实验性肺水肿发生的机制
答：肺水肿是指肺血管内液体渗入肺间质和肺泡，使肺血管外液量增多的病理状态。发生机制为：⑴肺毛细血管静水压升高；⑵血浆蛋白渗透压降低；⑶肺毛细血管通透性增加:⑷肺淋巴回流受阻；⑸间质负压增加；⑹其他：如神经源性肺水肿(两侧迷走神经的切断)
成绩 教师签名
2.正常呼吸-→全速输液50%-→切双侧迷走神经(副交感神经作用消失，交感神经占优势)-→继续输液-→观察(呼吸曲线、粉红色泡沫样液体)-→若无现象加去甲肾上腺素15ml
3.动物死亡或处死；结扎气管、心脏血管-→分离肺脏-→测肺系数=
五、[实验结果]
切断家兔双侧迷走神经后，家兔呼吸吸气延长，呼吸加深变慢。取出的肺有大量出血点，有明显的肺水肿，经过结扎分离后称量肺，质量为21.50g。
实验报告专用纸
课程
病理生理学
学院
药科学院.
专业
(班级)
药学(创新班)14
肺水肿实验报告
一、实验目的1. 复制实验性肺水肿，观察其临床表现。
2. 分析肺水肿的发病机制。
3. 探讨不同治疗方法对肺水肿的影响。
二、实验原理肺水肿是指肺部组织间隙内液体积聚过多，导致肺功能受损。
其发病机制主要包括以下几种：1. 毛细血管压力升高：如心力衰竭、高血压等。
2. 胶体渗透压降低：如营养不良、肝功能不全等。
3. 淋巴循环障碍：如淋巴管阻塞、肿瘤压迫等。
4. 毛细血管和肺泡上皮通透性增加：如感染、药物毒性等。
三、实验材料1. 实验动物：家兔，体重2～3kg。
2. 实验器材：兔手术台、实验动物常用手术器械一套、气管插管、橡皮管、细塑料管、纱布、棉线、注射器（1ml、5ml）及针头各一具、小橡皮块、听诊器、滤纸、婴儿秤、托盘天平、动脉夹、动脉导管、静脉导管、输液装置、血压计。
3. 实验试剂：25%乌拉坦、0.9%生理盐水、1%肝素生理盐水、1%肾上腺素溶液。
四、实验方法1. 麻醉动物：取家兔一只，称体重，用25%乌拉坦4ml/kg体重进行腹腔注射麻醉。
2. 建立实验模型：将家兔仰卧固定于兔手术台上，剪去颈前部手术视野被毛，切开颈部前部皮肤，分离气管及一侧颈外静脉和二侧颈总动脉并穿线备用。
切开气管，插入气管插管，用丝线结扎固定后将呼吸描记装置和之相连，以描记呼吸。
结扎颈外静脉远心端，在近心端靠近结扎处剪一小口，插入静脉导管，结扎固定后将输液装置和之相接并试行滴注，通畅后暂停输液。
由颈总动脉插入动脉插管以描记血压，由颈外静脉插入静脉插管并连接输液装置缓慢滴入0.9%生理盐水以保持管道通畅。
3. 观察指标：记录正常呼吸、血压、心率、呼吸频率等指标。
观察肺水肿的临床表现，如呼吸困难、肺部啰音等。
4. 治疗方法：实验组给予1%肾上腺素溶液0.5ml/kg体重静脉注射，对照组给予等量生理盐水。
5. 实验结束：观察动物存活情况，记录死亡时间。
五、实验结果1. 实验组动物表现为呼吸困难、肺部啰音，呼吸频率和心率均明显升高。
肺水肿实验报告
肺水肿实验报告
在肺水肿的研究中，实验操作是不可或缺的一部分。
在本次实
验中，我们使用小鼠模型来研究肺水肿的发病机理以及防治方法。
实验设计：将小鼠随机分为四组，分别为正常对照组、葡萄糖组、高盐组以及葡萄糖高盐组。
各组小鼠接受不同浓度的液体饮
食喂养4天，然后检测肺水肿的程度。
实验结果：经过实验，我们发现葡萄糖组和高盐组的小鼠均出
现明显的肺水肿症状，而葡萄糖高盐组的小鼠肺水肿症状更为严重。
同时，正常对照组的小鼠没有出现肺水肿症状。
结论：通过实验，我们得出结论：高盐和高糖的饮食可以导致
小鼠肺水肿的发生。
因此在预防肺水肿方面，应该控制葡萄糖和
盐的摄入。
同时，我们还尝试了利用呼吸道补液技术治疗肺水肿的方法。
我们在葡萄糖高盐组小鼠中，选取了部分小鼠进行呼吸道补液治疗。
结果发现，经过治疗后，小鼠的肺水肿症状得到了缓解。
因此，呼吸道补液技术可以作为一种治疗肺水肿的新方法。
总结：肺水肿是一种严重的疾病，它的发生和进展与饮食、环境、疾病等多个因素有关。
通过本次实验，我们不仅对肺水肿的发生机理有了更深刻的认识，还探索出了新方法治疗肺水肿，这对预防和治疗肺水肿具有重要意义。
【最新2018】肺水肿实验报告-实用word文档 (7页)
本文部分内容来自网络整理，本司不为其真实性负责，如有异议或侵权请及时联系，本司将立即删除！== 本文为word格式，下载后可方便编辑和修改！ ==肺水肿实验报告篇一：肺水肿实验报告实验性肺血容量增高性肺水肿一、实验目的1.复制家兔实验性肺水肿2.观察肺水肿的表现，并探讨其有关的发病机理。
二、实验药品与器材生理盐水、乌拉坦、气管插管和与之配套的呼吸描记装置（二道生理记录仪）或生物信号采集系统、血气分析仪。
静脉导管和静脉输液装置，颈部小手术器械，婴儿秤，天平，听诊器，兔固定台，1ml、2ml注射器各2具，丝线，纱布，滤纸，烧杯等。
三、实验步骤本实验分为实验组和对照组。
1、将实验组家兔准确称重后，麻醉、仰卧固定于兔台上，剪去颈前部手术视野被毛，切开颈部前部皮肤，然后分离气管及一侧颈外静脉和二侧颈总动脉并穿线备用。
切开气管，插入气管插管，用丝线结扎固定后将呼吸描记装置与之相连，以描记呼吸。
结扎颈外静脉远心端，在近心端靠近结扎处剪一小口，插入静脉导管，结扎固定后将输液装置与之相接并试行滴注，通畅后暂停输液。
2、由颈总动脉插入动脉插管以描记血压，由颈外静脉插入静脉插管并连接输液装置缓慢滴人0．9％的生理盐水以保持管道通畅3、描记一段正常呼吸，用听诊器听肺的呼吸音。
4、用lml肝素化注射器从耳朵动脉抽血0．5m1，立即将针头插入橡皮塞中以防空气进入。
经血气分析仪测定血液的pH、PaC02、Pa02、K+、Na+、Cl-等，作为实验前对照。
5、然后输入37℃(摄氏度)生理盐水，输入量按100ml/㎏（体重）计算，输液速度180-200滴/min。
6、输药液过程中密切观察机体的变化：①呼吸曲线有否变化，有否呼吸急促，困难。
②肺部是否出现罗音。
③气管插管口是否有粉红色泡沫液体溢出。
如果上述情况变化不明显可重复使用肾上腺素，用法及剂量同上，直至出现明显的肺水肿表现。
并迅速从耳朵动脉抽血0．5m1，方法同上，测定血气指标的变化。
实验性肺水肿(简化)
治疗组给予654-2 （10mg/Kg）/速尿（5mg/Kg）/西地兰（20μg/Kg） 动物死亡/5min后处死，剖开胸腔，观察有无胸水、肺 外观（颜色、体积、剪断肺叶看有无水肿液等）
四、实验结果
对照组
实验前 推NS后
模型组
实验前 推Adr后
治疗组
实验前 推Adr后 治疗后
RR
呼 吸 音
存活时间 肺外观
五、分析讨论
六、结论
肾上腺素过量可导致急性肺水肿 。
模型组：滴注NS（同上）+ iv 肾上腺素（同上） 治疗组：滴注NS（同上）+ iv肾上腺素+ iv 654-2
（同上） （10mg/Kg）
速尿
（ 5mg/Kg）
西地兰
（ 20μg/Kg）
三、实验步骤：
称重 பைடு நூலகம்管 全麻 备皮 气管插管 插管
记录（RR、听呼吸音）
颈部手术
分离
右颈外V
输液（60滴/min），25ml/Kg 颈外静脉缓慢(2分钟)推注0.01%肾上腺素，5ml/Kg（计时）
实验性肺水肿
一、实验目的
1
1
采用静脉注射肾上腺素，复制急性 实验性肺水肿的动物模型，探讨肺 水肿的发生机制。
2
观察654-2、速尿和西地兰等药物 对急性肺水肿的治疗作用。
二、实验原理
肺循环
肺动脉 腔静脉
肺静脉
体循环
三、实验步骤
实验分组
对照组：滴注NS （25ml/Kg） + iv NS （5ml/Kg）
病理实验报告肺水肿
病理实验报告肺水肿概述肺水肿是一种常见的病理情况，主要指肺组织中非正常积聚的液体导致呼吸功能受损的一种疾病。
肺水肿可分为心源性和非心源性两种类型，其中心源性肺水肿是最常见的类型，常见于心脏疾病导致心脏泵血能力下降而引起的肺循环淤血。
本次实验将通过病理分析的方式对肺水肿进行详细的描述和讨论。
材料与方法本次实验使用的标本为来自已经死亡的患者的肺组织切片，通过显微镜对肺组织进行观察和分析。
结果与讨论外观观察通过观察切片下的肺组织，可以明显看到肺泡腔内积聚了大量黄色液体，肺泡壁也呈现水肿状态。
肺泡壁的水肿使得气体交换受到严重影响，导致患者呼吸困难。
组织学特征肺泡壁由一层薄的上皮细胞和基底膜组成。
在正常情况下，肺泡腔内只有少量液体和气体。
而在肺水肿的情况下，肺泡腔内积聚了大量液体，从而导致肺泡腔扩大。
进一步观察肺组织切片，发现肺泡壁上皮细胞的核被推到了细胞边缘，这是水肿现象的典型表现。
此外，肺泡壁上皮细胞间有明显的间隙扩大，这是由于组织液体的滞留和渗出所致。
病因分析根据临床病史和病理表现，可以初步判断本例肺水肿病因为心源性。
心源性肺水肿是由于心脏疾病引起心血管系统回流障碍，导致肺循环淤血而发生。
正常情况下，心脏负责泵血供应全身组织，但心脏疾病如心脏衰竭、心肌缺血等会导致心脏泵血能力下降。
当心脏泵血能力下降时，肺循环血流受阻，静脉回流受阻，导致肺毛细血管压力升高。
随着压力的增加，液体和红细胞开始渗出到肺泡腔内，形成肺水肿。
结论通过本次病理实验，我们对肺水肿的病理特征进行了观察和分析。
肺水肿是一种常见的疾病，主要表现为肺组织中的液体积聚和肺泡壁的水肿。
心源性肺水肿是最常见的类型，由心脏疾病导致心脏泵血能力下降而引起。
进一步的研究和临床实践需要对肺水肿的病因和治疗进行深入探索和研究，以提高对患者的诊断和治疗水平。
参考文献1. Francis DM, Veale D, Mako S, et al. The pathogenesis of diuretic therapy[J]. N Engl J Med, 1972, 287(13):626-631.2. Edematous lung[J]. Respiratory Care Notes, 2013,4(12).。
肺水肿的实验报告
肺水肿的实验报告1. 研究背景肺水肿是一种严重的呼吸系统疾病，主要表现为肺组织间质和肺泡腔内液体积聚。
肺水肿可由多种原因引起，如心脏病、急性呼吸窘迫综合征等。
本实验旨在通过建立肺水肿模型，探究不同因素对肺水肿的影响，从而加深对肺水肿发病机制的理解。
2. 材料和方法2.1 动物模型本实验使用小鼠作为实验对象，共选取30只雄性小鼠。
将小鼠随机分为三组，每组10只。
2.2模型建立2.2.1 组1：心脏负荷增加组将组1小鼠置于高盐饮食环境，增加心脏负荷。
2.2.2 组2：急性呼吸窘迫组给组2小鼠注射抗胶原抗体，导致肺组织损伤和炎症反应，进一步引起肺水肿。
2.2.3 对照组对照组小鼠不进行任何处理。
2.3 实验数据采集在不同时间点，例如实验开始前、24小时后和48小时后，对所有小鼠进行体重测量和心率测量，并采集动脉血样本和肺组织样本。
2.4 数据分析使用适当的统计学方法分析实验数据，包括体重变化、心率变化、动脉血氧饱和度和肺组织湿重等指标。
3. 结果与讨论3.1 实验数据分析结果3.1.1 组1：心脏负荷增加组在实验开始后的24小时内，组1小鼠的体重和心率均显著增加，体重增加表明心脏负荷增加，而心率增加表明心脏功能受到影响。
此外，动脉血样本分析显示氧饱和度下降，提示心脏负荷增加导致组织缺氧。
3.1.2 组2：急性呼吸窘迫组实验开始后的24小时内，组2小鼠的体重和心率均无显著变化。
然而，动脉血样本显示氧饱和度显著下降，表明急性呼吸窘迫导致组织缺氧。
3.1.3 对照组对照组小鼠在实验期间体重、心率和血氧饱和度均无明显变化。
3.2 结果讨论通过对实验数据的分析，发现了不同因素对肺水肿形成的影响。
心脏负荷增加组小鼠表现出明显的心脏负荷增加和组织缺氧，这与心脏病导致的肺水肿相关。
而急性呼吸窘迫组小鼠虽然没有出现明显的体重和心率变化，但动脉血样本的氧饱和度下降显示了组织缺氧的存在，提示急性呼吸窘迫对肺水肿的形成也有重要作用。
实验性肺水肿实验报告
实验性肺水肿实验报告实验性肺水肿实验报告引言：实验性肺水肿是一种严重的疾病，其主要特征是肺泡内液体积聚，导致肺功能受损。
本实验旨在探究实验性肺水肿的发病机制和潜在治疗方法，以期为临床治疗提供参考。
实验设计：本实验采用小鼠作为实验对象，将其随机分为实验组和对照组。
实验组小鼠注射某特定药物，以诱发肺水肿，对照组则注射生理盐水。
通过多种方法观察和分析实验组小鼠的肺功能和病理变化。
实验结果：1. 肺功能测定：实验组小鼠的肺活量和呼气流速明显下降，呼吸频率增加，提示肺功能受损。
2. 组织病理学观察：实验组小鼠的肺组织出现肺泡壁增厚、间质水肿和炎症细胞浸润等病理变化，与对照组相比明显不同。
3. 肺泡液分析：实验组小鼠的肺泡液中白细胞计数明显增加，炎症因子水平升高，提示炎症反应的激活。
讨论：1. 实验结果表明，注射特定药物可以成功诱发实验性肺水肿，模拟了临床实际情况。
2. 肺功能测定和组织病理学观察结果一致显示，实验组小鼠的肺功能受损，肺泡结构发生明显改变，与实验性肺水肿的临床表现相符。
3. 肺泡液分析结果提示，实验组小鼠的肺泡内炎症反应被激活，炎症因子的释放可能是实验性肺水肿的重要因素之一。
结论：本实验成功建立了实验性肺水肿模型，并通过多种方法证实了实验组小鼠的肺功能损伤和病理变化。
实验结果为进一步研究实验性肺水肿的发病机制和寻找治疗方法提供了基础。
展望：在今后的研究中，可以进一步探究实验性肺水肿的发病机制，如炎症反应的调控机制、肺泡壁通透性的变化等。
同时，可以尝试不同的治疗方法，如抗炎药物、利尿剂等，以期找到更有效的治疗策略。
结语：实验性肺水肿是一种严重的疾病，对患者的生命健康造成严重威胁。
通过本实验的研究，我们对实验性肺水肿的发病机制和治疗方法有了初步的认识，为临床治疗提供了一定的参考价值。
希望今后的研究能够进一步深入，为解决实验性肺水肿这一难题做出更多贡献。
实验急性肺水肿
急性肺水肿(acute pulmonary edema)实验目的：（1）复制家兔实验性水肿（2）了解急性肺水肿表现及其发生机理。
（3）探讨急性肺水肿的治疗方案。
实验原理：肺水肿是由于液体从毛细血管渗透至肺间质或肺泡所造成的。
临床上常见的肺水肿是心源性肺水肿和肾性肺水肿。
病理上可分间质性和肺泡性两类，可同时并存或以某一类为主。
间质性肺水肿大都为慢性，肺泡性可为急性或慢性肺水肿。
本实验主要是通过静脉大量滴注生理盐水并注射肾上腺素导致急性心源性肺泡性肺水肿。
中毒剂量的肾上腺素使心动速度加快，左心室不能把注入的血液充分排出，左心室舒张期末压力递增，可引起左心房的压力增高，从而使肺静脉发生淤血，肺毛细血管液体静压随而升高，一旦超过血浆胶体渗透压，使组织液形成增多，不能为淋巴充分回流，即可形成肺水肿。
实验动物：家兔，雌雄不限。
实验器材：动脉插管，气管插管，静脉导管及静脉输液装置，注射器，兔急性手术器械，烧杯，纱布，线，胶布，兔手术台，血气分析仪，四道生理记录仪，婴儿秤。
实验药物：生理盐水，乌拉坦（20%），肾上腺素（0.1%），肝素（3g/L），盐酸(10g/L)。
速尿（0.1%），盐酸消旋山莨菪碱注射液（1%）实验步骤：（1）每实习分4个小组，各取家兔1只，分为[1]实验组，[2] 速尿治疗组，[3] 山莨菪碱治疗组，[4]对照组。
（2）称重，用20%乌拉坦5ml/kg耳缘静脉注射麻醉，固定于兔台上。
（3）进行颈部手术，分离气管和一侧颈总动脉，一侧颈外静脉。
作气管插管。
（4）肝素化后，作动脉插管和静脉插管，静脉管连于输液装置。
进行腹股沟手术进行股动脉插管。
（5）各组动物分别描记正常呼吸和血压曲线，股动脉取血，进行血气分析。
（6）输入生理盐水（输入总量按100ml/kg,输速150~200滴/分），待滴注接近完毕时立即向输液瓶中加入肾上腺素(0.5ml/kg)继续输液（对照组不加肾上腺素）。
（7）输液完毕，立即股动脉取血，进行血气分析。
肺水肿切片实验报告
一、实验目的1. 观察肺水肿的病理变化。
2. 分析肺水肿的发病机制。
3. 掌握肺水肿切片的制作和观察方法。
二、实验原理肺水肿是指肺部组织间隙内液体积聚过多，导致肺泡、肺间质和肺血管充盈，从而引起呼吸困难等症状。
肺水肿的发病机制复杂，包括毛细血管通透性增加、肺泡毛细血管压力升高、液体渗出增多等因素。
三、实验材料1. 实验动物：家兔，体重2～3kg。
2. 实验器材：显微镜、切片机、石蜡切片机、切片盒、载玻片、切片刀、铅笔、切片刀柄、酒精灯、酒精、甲醛、二甲苯、中性树胶、刀片磨石、剪刀、镊子、滴管等。
3. 实验试剂：10%甲醛溶液、乙醇、盐酸、蒸馏水、中性树胶等。
四、实验步骤1. 处理实验动物：将家兔麻醉后，打开胸腔，迅速取出肺脏，放入10%甲醛溶液中固定。
2. 制作肺水肿切片：a. 取固定后的肺脏，用刀片沿肺叶长轴切取肺组织。
b. 将肺组织置于切片机上，用切片刀将肺组织切成5～10μm厚的切片。
c. 将切片放入切片盒中，用酒精漂洗切片，去除多余的组织碎片。
3. 苏木精-伊红染色：a. 将切片放入盛有盐酸的容器中，进行脱钙处理。
b. 将脱钙后的切片放入盛有酒精的容器中，进行酒精梯度脱水。
c. 将脱水后的切片放入盛有苏木精染液的容器中，进行染色。
d. 将染色后的切片放入盛有伊红染液的容器中，进行复染。
e. 将染色后的切片用蒸馏水漂洗，去除多余的染液。
4. 观察切片：a. 将染色后的切片用中性树胶封片。
b. 在显微镜下观察切片，记录肺水肿的病理变化。
五、实验结果1. 肺泡间隔增宽，肺泡腔内充满红细胞和少量白细胞。
2. 肺血管扩张，血管内充满红细胞。
3. 肺间质水肿，肺泡壁细胞肿胀。
六、实验讨论1. 肺水肿的病理变化主要包括肺泡间隔增宽、肺泡腔内充满红细胞和白细胞、肺血管扩张、肺间质水肿等。
2. 肺水肿的发病机制复杂，可能与毛细血管通透性增加、肺泡毛细血管压力升高、液体渗出增多等因素有关。
3. 通过观察肺水肿切片，可以了解肺水肿的病理变化，为临床诊断和治疗提供依据。
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机能学实验设计大纲
实验名称：外源性PS和内源性PS在肺水肿疗效中的比较课题来源：自选
设计班级：2004级临床本科甲班
设计人员：林静余英罗萍叶娟胡明娟
设计日期：2006年10月8日
指导老师：张晓梁楠
成都医学院实验技术教研室
2006年制
二、实验设计方案（实验设计目标,拟解决的主要问题, 实验动物设计,实验专业设计，实验统计设计,实验方法设计，可行性分析,预期结果，实验设计工作时间安排）。
（一）实验设计目标，拟解决的关键问题
设计目标：探讨外源性肺表面活性物质和内源性肺表面活性物质对实验性肺
水肿治疗作用上所存在的区别，从而探讨外源性PS能否在肺水肿的防治中作为一
种较为理想的内源性PS不足的替代药物。
拟解决的关键问题：实验模型的制备。
对试验性肺水肿的模型进行分组与实验结果分析。
（二）实验设计
1、实验动物设计
我们选用家兔作为实验动物，有以下几点理由：
1）、家兔易得到，容易饲养，在科研工作中被广泛利用。
2）、家兔肺相对较大，易于得到样品，能在称重过程中减少实验误差。
2、实验专业设计
选用家兔作为实验动物，给予外源性肺表面活性物质和内源性肺表面活性物质，观察对实验性肺水肿治疗作用，观察兔子死亡时间（min），肺系数（g／kg），肺湿／干重比（g／g），血管外肺水（g）等实验指标。
3、实验统计设计
实验统计设计中应始终贯彻随机、对照、重复三大原则。
（1）随机：选正常成年健康重相近的家兔80只，将80只家兔按体重由小变大编号后，从随机数字表中查取随机数字，依次抄录于家兔编号下。
具体方法：动物编号为1—80号，随机数字从11行第一个数字开始接着抄写80个，按照能被4除的规律：不余到A组，余1到B1组，余2到B2组，余3到B3组，每组20只。
（2）对照：本组实验做了空白对照和实验对照，在前面的专业设计里已经提及。
（3）重复：本实验采用的是每实验小组有20只家兔，具有一定的重复性。
（4）统计数据收集：本实验搜集计量资料，初步确定对各组实验数据的比较分为实验值和基础值比较。
表1 实验数据收集记录表
编号肺系数（g／kg）
肺湿／干重比（g／
g）
血管外肺水（g）
兔子死亡时间
（min）
A B1B2B3A B1B2B3A B1B2B3A B1B2B3
四组动物体重及模型形成时间比较（
比较（
教研室评审意见。