百合组织培养实验报告
百合组培实验报告
竭诚为您提供优质文档/双击可除百合组培实验报告篇一：植物组织培养实验报告实验一植物组织培养实验报告一实验目的让植物组织经过脱分化作用，形成愈伤组织，经过再分化作用，愈伤组织又能重新分化为有结构的组织和器官，最终形成完整的植株。
二实验原理植物组织培养是把植物的器官，组织以至单个细胞，应用无菌操作使其在人工条件下，能够继续生长，甚至分化发育成一完整植株的过程。
植物的组织在培养条件下，原来已经分化停止生长的细胞，又能重新分裂，形成没有组织结构的细胞团，即愈伤组织。
这一过程称为“脱分化作用”，已经“脱分化”的愈伤组织，在一定条件下，又能重新分化形成输导系统以及根和芽等组织和器官，这一过程称“再分化作用”。
植物激素在此过程中起着重要的作用，吲哚乙酸（IAA）和6–苄基氨基腺嘌呤（6–bA）的比例，决定了根和芽的分化。
三实验器材（一）试剂乙醇、IAA或2，4–D、hgcl2（或次氯酸钠）、6-苄基氨基腺嘌呤（6-bA）ms培养基（二）仪器设备培养室，高压灭菌锅，水浴锅，解剖刀，三角烧瓶（100mL），烧杯，量筒，培养皿，超净工作台，分析天平，长镊子，剪刀，橡皮筋等三实验步骤1.配制培养基（1）愈伤组织诱导培养基：ms培养基（蔗糖含量为10g/L，2,4–D含量为2mg/L，琼脂10g/L）。
（2）试验培养基：在ms培养基中按表33–1加入IAA和6–bA。
吲哚乙酸先用少量0.1mol/Lnaoh溶解，6-苄基氨基腺嘌呤先用少量0.1mol/Lhcl溶解，然后用蒸馏水稀释，再加入培养基中。
2.培养基灭菌将配好的培养基加入琼脂加热溶解，调至ph5.8，趁热分装于100mL三角烧瓶中，每瓶约20mL。
待培养基冷却凝固后，用两层称量纸包扎瓶口，并用橡皮筋扎牢，然后在高压灭菌锅中121℃（1kg/cm2）下灭菌20min。
取出三角烧瓶放在台子上，冷却后备用。
接种操作所需的一切用具（如长镊子、解剖刀、剪刀等）及灭菌水，需同时灭菌。
百合的栽培技术实训报告
一、实训目的本次实训旨在通过实地操作和理论学习，掌握百合的栽培技术，了解百合的生长习性、繁殖方法、病虫害防治等知识，提高对百合种植的实践操作能力，为今后从事百合种植及相关工作打下坚实基础。
二、实训时间与地点实训时间：2023年10月15日至2023年11月15日实训地点：XX农业科技示范园百合种植基地三、实训内容1. 百合的生物学特性百合属百合科百合属植物，多年生草本球根植物，原产于亚洲东部温暖地带，我国是百合的原产地之一。
百合具有以下生物学特性：（1）生长习性：百合喜温暖、湿润、半阴环境，不耐寒、不耐旱，对土壤要求不严，以疏松、肥沃、排水良好的砂壤土为宜。
（2）繁殖方式：百合的繁殖方式主要有分球繁殖、鳞片扦插和播种繁殖。
2. 百合的繁殖方法（1）分球繁殖：在每年的秋季，将百合母株从土壤中挖出，把着生在母株上的小鳞茎掰下来，将鳞茎放在阴凉通风处。
等鳞茎上的伤口风干后重新种下，适当深栽15-20cm，等到第二年春天追施肥水，慢慢将小鳞茎养大养开花即可。
（2）鳞片扦插：在每年的秋季，将成熟的百合大鳞茎挖出，用手剥掉百合健壮的鳞片，将其放在阴凉通风处晾干，然后把鳞片扦插在潮湿的基质中。
保持温度在20左右，等鳞片生出小鳞片并且生根后，就可以将其移栽定植到土壤中了。
（3）播种繁殖：百合播种繁殖适用于容易着生珠芽的品种，如卷丹百合。
在植株的叶腋处着生珠芽，等这些珠芽长大后，我们可以摇晃植株茎秆，将叶腋处的珠芽摇下来。
或者用手把珠芽取下来，直接放在土壤表面，甚至都不用覆土。
3. 百合的栽培技术（1）选地整地：百合喜温暖、湿润的环境，种植地宜选择疏松、肥沃、湿润、日照不强的山间缓坡地域。
土地经多次翻耕打碎，深度为15cm—20cm左右，每亩施牛羊粪作基肥，牛羊粪必须至少发酵一个月，量根据土壤肥沃度定，起畦高20厘米、宽100~120厘米。
（2）种植时间：百合的种植时间一般在农历9月中旬至春节共计4个月左右。
（3）种植密度：百合的种植密度应根据品种和土壤肥力而定，一般行距为25cm左右，株距为15cm左右。
百合繁殖技术实训报告总结
一、实训背景百合作为一种世界著名的观赏花卉，其花朵色彩鲜艳，形态优美，深受人们的喜爱。
百合繁殖技术的研究对于提高百合的产量和品质具有重要意义。
本实训旨在通过实践操作，掌握百合繁殖技术，为我国百合产业发展提供技术支持。
二、实训目的1. 熟悉百合繁殖的基本原理和方法；2. 掌握百合组织培养、分株繁殖、扦插繁殖等繁殖技术；3. 提高百合繁殖的成活率和产量；4. 为百合产业发展提供技术支持。
三、实训内容1. 百合组织培养（1）材料准备：选取百合鳞茎、叶片、茎段等部位作为外植体，消毒处理后备用。
（2）培养基配制：采用MS培养基，添加不同激素比例进行实验。
（3）接种与培养：将外植体接种于培养基中，在适宜的条件下进行培养。
（4）结果观察：观察百合组织培养的成活率、生根情况、芽分化等指标。
2. 百合分株繁殖（1）材料准备：选取生长健壮的百合植株，消毒处理后备用。
（2）分株操作：将百合植株从土壤中挖出，按照一定的比例进行分株。
（3）栽植与管理：将分株后的百合栽植于花盆或大田中，进行浇水、施肥、病虫害防治等管理。
（4）结果观察：观察百合分株繁殖的成活率、生长状况等指标。
3. 百合扦插繁殖（1）材料准备：选取百合茎段、叶片等部位作为扦插材料，消毒处理后备用。
（2）扦插操作：将扦插材料插入沙床或珍珠岩中，保持适宜的温度、湿度。
（3）栽植与管理：将扦插生根后的百合栽植于花盆或大田中，进行浇水、施肥、病虫害防治等管理。
（4）结果观察：观察百合扦插繁殖的成活率、生长状况等指标。
四、实训结果与分析1. 百合组织培养通过实验，我们发现MS培养基添加0.5mg/L NAA和0.1mg/L 6-BA的激素组合，对百合组织培养效果较好。
在该条件下，百合外植体成活率达到90%，生根率达到70%，芽分化率达到60%。
2. 百合分株繁殖经过实践操作，百合分株繁殖的成活率达到了85%。
在适宜的管理条件下，分株后的百合生长状况良好，产量较高。
3. 百合扦插繁殖实验结果表明，百合扦插繁殖的成活率为80%，生根率达到60%。
兰州百合的组织培养
试验步骤
1.培养基的设计（初代培养15个，继代培养6 个，生根培养6个） 2.培养基的配制 3.材料的消毒 4.接种 5.生长及观察
材料的消毒
鳞茎由外向内剥取鳞片，用清水冲洗干净， 于无菌操作台上进行消毒。方法如下，将鳞 片放入无菌烧杯中，用75%的酒精消毒30s， 无菌水冲洗2次，再用2%次氯酸钠溶液消毒 10min，用无菌水冲洗4-5次，最后用无菌滤 纸吸干水分。
试验意义
一、兰州百合的研究离不开组织培养（包括 百合的脱毒，快速繁殖，育种等）； 二、兰州百合营养丰富，兰州对百合的生长 比较适宜，因此具有广泛的市场潜力。
试验方法及步骤
通过单因素的设计分别筛选出在各个阶段的 最佳培养基配方； 取材——材料消毒—制备培养基—— 接种——初代培养——继代培养——增殖— —生根——炼苗——移栽
结论
1、百合的鳞茎内部比外部鳞片分化能力强 2、通过反复试验得出2%的次氯酸钠的消毒 时间为10min 3、褐变用VC 200mg/l+pvp100mg/l
试验结果
初代培养培养基：MS+6-BA+NAA 继NAA
植物组织培养综合实验报告
生物工程中游技术综合实验百合花的组织培养——探究并比较不同部位诱导愈伤组织的生长情况学院：生命科学学院班级：生物工程101班摘要：实验选取百合花的子房、花柱、花药、花丝和花茎为外植体, ;利用植物组织培养技术，探究百合花不同部位诱导愈伤组织的生长情况，并比较不同的植物生长素对百合花愈伤组织诱导分化影响的差异。
关键词:百合组织培养生长素愈伤组织1 前言百合(L ilium tenuim folium Fisch)为百合科百合属多年生球根花卉。
我国约有47 种,占世界种数的51% ,其中的36个种、15个变种是我国特有的珍稀种类。
由于其花形独特、芳香宜人而深受人们的喜爱,成为近年来国内外市场热销的花卉种类之一。
百合是通过杂交育种选育出来的,种子高度败育,传统的分球、扦插等繁育方式易使百合病毒积累、种性退化。
目前,国内为了降低生产成本,实现种球的自主繁育,进行组织培养与快速繁殖已十分必要。
最早关于百合组培的文章是Robb于1957年发表的,到现在关于百合组织培养的方法已有40多种 ,百合的许多组织和器官都可作为外植体,例如鳞片、根尖、叶片、子房、花柱、花托、花丝等。
本实验选取百合花的子房、花柱、花药、花丝和花茎为外植体, 利用植物组织培养技术，探究百合花不同部位诱导愈伤组织的生长情况，并比较不同的植物生长素对百合花愈伤组织诱导分化影响的差异。
2 材料和方法2.1 材料2.11 外植体百合花的子房、花柱、花药、花丝和花茎2.1.2 培养基配方一：MS+6-BA3+NAA0.05+3%蔗糖+8g琼脂（1L，pH=5.8）配方二：MS+6-BA1.5+NAA0.05+3%蔗糖+8g琼脂（1L，pH=5.8）2.1.3 试剂蔗糖、琼脂、培养基母液（大量元素、微量元素、铁盐、有机附加物）2.1.4 仪器设备高压灭菌锅、分析天平、果酱瓶、烧杯、量筒、培养皿、灭菌的滤纸、称量纸、玻璃棒、电炉、石棉网、移液瓶，剪刀，镊子，解剖刀、酒精灯、记号笔、标签纸、药匙等。
百合初代培养实训报告
一、实训目的本次实训旨在通过学习百合初代培养的方法和技巧，掌握百合组织培养的基本原理和操作流程，提高对植物组织培养技术的理解和应用能力。
同时，通过对百合初代培养过程中的各个环节进行实践操作，培养自己的动手能力和团队协作精神。
二、实训内容1. 百合组织培养概述百合（Lilium）是百合科百合属多年生草本植物，具有较高的观赏价值。
百合组织培养技术是一种无性繁殖方法，通过将百合的外植体接种到培养基上，使其在无菌条件下生长、分化，最终形成完整的植株。
2. 百合初代培养方法（1）外植体选取选取百合鳞茎或叶片作为外植体。
鳞茎选取饱满、无病虫害的健康鳞茎；叶片选取叶尖或叶缘部位。
（2）外植体消毒将外植体放入70%酒精中浸泡30秒，然后用无菌水冲洗3-5次。
将消毒后的外植体放入0.1%的氯化汞溶液中浸泡5-10分钟，再用无菌水冲洗3-5次。
（3）接种将消毒后的外植体接种到含有不同植物激素的培养基上。
培养基成分：MS培养基+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.1mg/L。
（4）培养条件将接种后的培养基放入培养箱中，温度设置为25℃±2℃，光照强度为1000勒克斯，每天光照12-14小时，空气相对湿度保持在70%-80%。
3. 百合初代培养过程（1）愈伤组织诱导接种后3-5天内，外植体开始生长，形成愈伤组织。
愈伤组织呈白色、质地松软。
（2）芽分化愈伤组织培养7-10天后，开始分化出芽。
芽分化过程中，可适当调整培养基中植物激素的比例，以促进芽的分化。
（3）生根芽分化后，将芽转移到含有NAA 0.1mg/L的培养基上，促进生根。
生根过程中，芽可逐渐转移到生根培养基中。
（4）移栽当百合植株长到2-3片叶时，可将其移栽到营养土中。
三、实训结果与分析1. 百合初代培养结果通过本次实训，成功诱导出百合愈伤组织，并分化出芽和根，最终形成完整的植株。
2. 实训结果分析（1）外植体选取对百合初代培养效果有较大影响。
鳞茎外植体诱导愈伤组织的效果优于叶片外植体。
百合组织培养快速繁殖
百合组织培养快速繁殖组织培养是进行植物快速繁殖的常规手段,通过组织培养可以快速获得无病毒植株,对繁殖珍贵花卉品种是简易而有效的方法。
本研究通过组培快繁再生体系的建立、试管鳞茎的增、大再分化及移栽后的生理检测对东方百合“西伯利亚”、“索邦”和铁炮百合“白天堂”的快速繁殖进行了系统的研究。
以鳞片和试管苗叶片为外植体,通过直接诱导不定芽再生的方式,对启动培养、增殖培养、生根移栽等组织培养快速繁殖各个环节的影响因素进行了分析。
研究结果表明:1、MS基本培养基中附加适宜浓度配比的NAA与6-BA可诱导不定芽再生,再生频率在80%以上。
2、试管苗叶片下部分化能力较强,是建立高频快速增殖体系的首选材料:“西伯利亚”和“白天堂”再生芽的能力要强于“索邦”;用NAA或IBA与KT组合诱导不定芽增殖效果较好,再生频率在86%以上,适宜“白天堂”“西伯利亚”“索邦”试管苗增殖的激素配比分别为NAA 0.2mg/L+KT 0.4mg/L、NAA 0.1mg/L+KT0.2mg/L、IBA 0.1mg/L+KT 0.2mg/L。
3、百合试管苗具有较强的生根能力,在继代增殖的同时就可达到生根的目的。
4、以珍珠岩:土(3:1)为移栽基质,选取鳞茎直径≥1cm的试管苗移栽,成活率在95%以上。
培养基添加物对百合快繁体系影响的研究结果表明:培养基中添加30g/L蔗糖和3mg/L多效唑分别为促进“索邦”和“西伯利亚”生长的最佳培养基。
在添加60g/L蔗糖和3mg/L多效唑的培养基中“白天堂”试管鳞茎的增大及再分化效果最佳。
在上述最佳培养基中,各供试品种出瓶直径均在1cm以上,东方百合增殖系数可达8以上。
活性炭可以提高试管苗的质量,浓度在4～10g/L时,“白天堂”、“索邦”及“西伯利亚”试管鳞茎生长情况较好。
将移栽成活的健壮试管苗移栽入土后进行多效唑叶面喷施,研究结果表明:以500mg/L多效唑处理5周,百合叶片的气体交换特性得到明显改善、叶绿素、可溶性糖、可溶性蛋白含量均有所提高,组织含水量减少,对试管苗移栽入土后的生长发育起到了显著的促进作用。
百合的组织培养
百合的组织培养一、百合叶片的组织培养(一)外植体百合鳞茎。
(二)灭菌方法取百合花茎于洗涤灵液中浸泡20min, 自来水冲洗20 min, 离花茎叶片基部上下各0.2cm 左右, 剪取0.5cm 带叶片茎段。
自叶片基部留叶片长1.5~ 2.0cm, 剪去以上大部叶片, 于0.1% 农用链霉素水溶液中浸泡1h, 自来水冲洗20 min; 无菌条件下, 75% 酒精处理2~ 3s; 0.1% 升汞溶液处理3~ 4 min, 无菌水洗5~ 6 遍, 备用接种。
(三)发育途径将叶片茎段接种于诱导分化培养基, 待诱导出芽后将芽接种于增殖培养基, 最后增殖芽进行生根诱导。
(四) 培养基以MS 和LS 为基础培养基, 细胞分裂素采用BA, 生长素采用NAA, 以二者不同浓度和比例制成诱导分化培养基和芽增殖培养基, 探求基础培养基MS 和LS 及不同浓度激素及其配比对新普百合诱导分化和不定芽增殖的效果。
生根培养基采用LS, 培养基中添加不同浓度生长素、活性炭, 研究生长素浓度及活性炭对生根苗的影响。
培养基均添加琼脂7g / L。
在103kPa、121℃条件下灭菌15min。
(五)培养条件培养室温度( 25±1℃) , 相对湿度60%~ 70% , 光强1800~ 2500lx , 光照每天12h。
(六)讨论愈伤组织的诱导及不定芽的分化设计8 种起始诱导培养基, 每种培养基接种50 片叶。
接种后, 在适宜培养基上, 15 天左右可见叶片基部膨大隆起, 继而生出黄绿色愈伤组织,20 天左右可长至0.5cm3 , 并生出绿色芽点后分化出芽, 50 天左右可长至2~ 3cm。
统计愈伤组织及不定芽诱导状况。
结果表明, 经50 天的培养后, 单一使用细胞10分裂素的处理效果不佳, 愈伤组织诱导率、不定芽分化率均较低。
因此在新普百合的诱导培养中需细胞分裂素( BA) 和生长素( NAA) 配合使用。
当BA 浓度较高时, 有利于愈伤组织的形成, 不利于不定芽的分化。
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百合组织培养实验报告
一、实验原理
植物细胞全能性理论是植物组织培养的核心理论。
立体细胞具有生命的特征属性，在全能性的基础上，提供合适的营养和环境条件，立体细胞经历脱分化（dedifferentiation）和再分化（redifferentiation）过程，可形成再生植物。
二、实验用品
实验材料：百合种球
实验仪器：高压消毒锅、超净工作台、镊子、剪刀、手术刀柄、手术刀片、酒精灯、定
时器、人工气候箱、分析天平、酸度计、电炉、蒸馏水机、培养皿、烧杯、
量筒、移液管、吸球、药匙、玻璃棒、锥形瓶、称量纸、滤纸、枪、枪头、
试剂瓶、打火机、塑料膜、绳子
实验试剂：琼脂、蔗糖、75%，95%乙醇、α-萘乙酸（NAA）、6-苄氨基嘌呤（6-BA）、
0.1%升汞、盐酸、大量元素（磷酸二氢钾、硝酸钾、硝酸铵、七水硫酸镁、
二水合氯化钙）、微量元素（四水合硫酸猛、七水合硫酸锌、五水合硫酸铜、
二水合钼酸钠、碘化钾、六水合氯化钴、硼酸）、铁盐（乙二胺四乙酸二钠、
七水合硫酸亚铁）、有机物（甘氨酸、盐酸吡哆辛、盐酸硫胺素、烟酸、肌
醇）
三、实验操作步骤
1、用分析天平去8.8g琼脂，30g蔗糖，放入烧杯中，加蒸馏水至900ml，把烧杯放
在电炉上煮琼脂，并用玻璃棒搅拌，时间为50-60分钟。
2、将煮好的琼脂加蒸馏水至900ml，按顺序用移液管加50ml大量元素，5ml微量元
素，10ml铁盐，10ml有机物，再用枪加1ml6-BA，0.5mlNAA，并用玻璃棒搅拌。
调ph至5.6-6.0之间。
3、将配好的培养基倒入锥形瓶中（50-60ml），用绳子将塑料膜绑好。
准备蒸馏水，
并将培养皿、手术刀柄、镊子用报纸包好，同培养基一起放入高压灭菌锅灭菌，
温度为121℃，时间为23min。
4、灭完菌后将培养基放至室内，冷却。
准备好洗净的百合种球，75%的酒精，0.1%
升汞（注：升汞有剧毒，注意操作），定时器，手术刀片，烧杯等，准备进行无
菌操作。
5、开启紫外灯30min，关闭10min后进入，用酒精擦拭无菌操作台，在手上喷洒酒
精，将酒精灯点燃放入无菌操作台中，把酒精倒满烧杯，将镊子与手术刀放入烧
杯中。
6、百合种球的灭菌方法：75%酒精泡1min→切成3段→用0.1升汞泡15min→用蒸
馏水洗5次
7、接种方法：将灭好菌的百合种球四周切去，取中间部分切成2mm×2mm×0.5mm
大小，将切好的百合快速放入培养基中，将培养基绑好。
8、将接好的百合培养基放入光照培养箱中进行培养。