传染性疾病标本采集方法
---------------------------------------------------------------最新资料推荐------------------------------------------------------传染性疾病标本采集方法标本采集、运送与报告操作规程一、血培养指征患者出现寒战，体温超过38℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过 72 h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做血培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物 24 h 后，以寒战、发热时采集为宜。
三、采血流程（一）消毒 1．培养瓶消毒程序：用消毒液消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。
2．皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达 5 cm 以上，待消毒液挥发干燥后（常需 30 s 以上）穿刺采血。
（二）静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头（如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头），先注于厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。
近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。
1/ 10（三）注意事项 1．检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
2．采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。
3．采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
4．细菌性心内膜炎：在 24 h 内取血 3 次，每次间隔不少于 30 min;必要时次日再做血培养 2 次。
5．采血量：以培养基与血液之比 10：1 为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
采血量过少会明显降低阳性率。
成人每次每培养瓶采血 8～ 10 ml，婴幼儿每次每培养瓶采血2 ml。
四、运送要求 1．所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在 2h 内。
如果不能及时送检，宜置于室温环境。
血培养瓶送到检验科放入培养箱前，不应暂存于冰箱内。
---------------------------------------------------------------最新资料推荐------------------------------------------------------ 2．送检标本应正确粘贴条形码，注明采样时间和送检时间。
3．安全防护：放标本的容器必须防漏，禁止将渗漏的标本送往实验室。
五、报告要求（一）紧急口头（电话）报告血培养出现阳性报警时，立即进行革兰氏染色、镜检，并在最短时间内将结果向临床主管医生进行紧急口头（电话）报告。
口头报告包含以下内容，并记录在案。
(1) 报告者全名（或工号）； (2) 报告的时间； XXXX 年 XX 月 XX 日 XX 时 XX 分（ 24 小时制） (3) 所联系医生的全名（或工号）； (4) 报告镜检结果并强调其紧急价值； (5) 确认临床医生收到报告并复述结果。
（二）最终结果（书面）报告 (1) 无菌生长（培养 5 天无需氧菌和厌氧菌生长）； (2) 阳性培养结果（最终鉴定结果、最终药敏结果）。
（三）其他报告和记录 1．标本被拒收时，需即刻通知临床立即重新采血，并记录在案。
2．最终结果与紧急口头报告结果不符，需要变更时，需立即通知临床，同时必须在书面报告上提供正确的结果，注明变更的内容。
3．其他需临床注意的事项的记录，如：采血量不足、标本转运时间过长、标本采集份数不够等信息。
3/ 10痰标本采集与运送标准操作规程一、采集目的一般可用于普通细菌、分枝杆菌、真菌和军团菌的涂片或培养检测，经气管穿刺吸引物可用于厌氧菌的检测。
二、一般原则 1．采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前。
2．宜采集清晨第二口痰液。
3．对于普通细菌性肺炎，痰标本送检每天 1 次，连续 2～3 天。
不建议 24 h 内多次采样送检，除非痰液外观性状出现改变。
4．怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集 3 天清晨痰液送检。
三、采集方法（一）自然咳痰法与雾化导痰法 1．用物准备：无菌容器（盒）、生理盐水(250 ml 或 500 ml) 、化验单。
2．核对患者床号、姓名等。
3．无痰或痰量极少者可用 3%～ 5%氯化钠溶液 5 ml 雾化吸入约 5 min后留取痰液。
4．如有可能，应在医护人员直视下留取清晨第二口痰。
嘱咐患者留取前摘去牙托，清洁口腔，如刷牙后反复用生理盐水漱口；深吸气后用力自气管深部咳出痰液，置无菌容器内。
应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品，不应用纸巾包裹痰液。
（二）支气管镜法鼻或口腔插入支气管镜。
---------------------------------------------------------------最新资料推荐------------------------------------------------------ 常用采集方法有经支气管镜吸引、支气管肺泡灌洗、防污染毛刷采样或防污染支气管肺泡灌洗等。
（三）经人工气道吸引法 1．用物准备：负压吸引器、生理盐水、一次性吸痰管、无菌手套，无菌容器（试管）、化验单。
2．核对患者床号、姓名等。
3．将患者头部转向操作者一侧。
4．进行手卫生后将一次性吸痰管末端拆开，连接吸引器，调节吸引器至适宜负压(成人：40. 0～ 53. 3 kPa; 小儿：＜ 40. 0 kPa) 。
5．将一次性吸痰管外包装去除，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，检查管道是否通畅。
6．折叠一次性吸痰管末端，插入口腔或鼻腔或人工气道至适宜深度，放开吸痰管末端，轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。
见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管与吸引器分离(使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过15 s，吸痰前后需吸入高浓度氧气 1～ 2 min) 。
7．将痰液注入无菌容器（试管）内，如痰液黏稠可用一次性针筒向吸痰管末端注入少量生理盐水，将痰液冲人无菌容器（试5/ 10管）内。
四、运送和保存应在 2h 之内送至实验室，否则应4℃冷藏，但放置时间不可超过 24 h。
尿液标本采集和运送标准操作规程一、采集时机宜为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿液。
二、采集方法（一）清洁中段尿 1．女性：采样前用肥皂水或 0. 1%的高锰酸钾溶液等冲洗外阴，用手指分开阴唇，弃其前段尿，不终止排尿，留取中段尿 10～ 20 ml 于无菌容器内。
2．男性：采样前用肥皂水或 0. 05%～ 0. 1%的聚维酮碘（碘伏）溶液等消毒液清洗尿道口，擦干后上翻包皮，弃其前段尿，不终止排尿，留取中段尿 10～ 20 ml 于无菌容器内。
（二）耻骨上膀胱穿刺主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿、脊柱损伤患者的尿液采集。
先用 0. 25%的聚维酮碘溶液等消毒液消毒穿刺部位皮肤，然后使用无菌注射器直接从耻骨联合与脐连线上高于耻骨联合2 cm处刺入膀胱吸取尿液 10--20 ml 于无菌容器内。
（三）导尿管尿 1．直接导尿法：使用 0. 05%～ 0. 1%的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒会阴局部，用导尿管直接经尿道插入膀胱，先弃其前段尿液约 15 ml，再留取中段尿液 10～ 20 ml 于无菌容器内。
---------------------------------------------------------------最新资料推荐------------------------------------------------------ 2．留置导尿管法：医院内尿路感染中，临床最常用此法。
采集前先夹住导尿管，采集时则松管弃其前段尿液，使用 0. 25%～ 0. 5%的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒导尿管的采样部位，使用无菌注射器斜刺入导尿管（从采样口或靠近尿道的导尿管管壁）抽取 10～ 20 ml 尿液于无菌容器内。
3．回肠造口导尿管法：摘除导管，弃去里面的尿液，先用 0. 05%～0. 1%的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒吻合口，再将导尿管插入到清洁的吻合口，直至筋膜的深部采集 1020 ml 尿液于无菌容器内。
（四）小儿收集包对于无自控能力的小儿可应用收集包采集尿液，这种装置由于很难避免会阴部菌群污染产生假阳性，所以只有在检验结果为阴性时才有意义。
如果检验结果为阳性，应结合临床进行分析，必要时可使用耻骨上膀胱穿刺或导尿法留取尿液进行复检。
三、标本运送标本采集后应及时送检并接种，室温下保存时间不应超过 2 h（夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存）。
如果不能及时运送或接种，应4℃冷藏，但保存时间也不应超过 8h。
四、注意事项 1．不应从集尿袋中采集尿液。
2．尿液中不应加防腐剂或消毒剂。
7/ 103．若尿液培养前患者曾使用抗菌药物，应反复多次送检。
4．多次采集或 24 h 尿不应用于尿液培养。
5-除非进行流行病学调查，不应对长期留置导尿管患者常规进行尿液培养。
6．培养结果应结合临床表现、菌落计数以及微生物种类等，进行综合判断。
粪便标本采集法【目的】 1、常规粪标本检查粪便的颜色、形状及有无脓血。
2、隐血粪标本检查粪便内肉眼不能看见的微量血液。
3、寄生虫及虫卵粪标本检查寄生虫成虫、幼虫及虫卵并计数，进行浓缩集卵、日本血吸虫毛蚴孵化等。
4、培养粪标本检查粪便中的致病菌。
【操作前准备】 1、患者评估（ 1）了解患者的临床诊断及合作能力。
（ 2）了解需做的检查项目，以明确收集粪便标本的种类及注意事项。
2、患者准备使患者了解留取粪标本的目的、意义和方法，能够配合，3、用物准备干净便盆，常规检查应备集便盒（内附棉签 2 支），粪便培养应备培养皿，寄生虫检查应备寄生虫检便盆。
【操作步骤】 1、核对医嘱，贴检验单副联于集便盒上。
2、核对患者姓名，做好解释。
---------------------------------------------------------------最新资料推荐------------------------------------------------------ 3、告知患者正确的留取方法。
（ 1）常规粪标本采集：用棉签取较中央的粪便或脓血黏液部分少许于集便盒内。
（ 2）培养粪标本采集：解大便之前用消毒液冲洗肛门，用无菌棉签取粪便中央处置于培养皿中，盖好盖子。
法定报告传染病检验标本的采集要求
取5g左右新鲜粪便放入干净的容器内直接送检
排毒率明显下降
血清4℃待检 直接送培养
及时送检
立即送检
分离血清后置4℃待检
分离血清后送检 分离血清后，1周内可放4 ℃，长期保存应放-20℃，防 止反复冻融，血清管需加胶 塞或封口 同上，但不需离心 尽早送实验室短时间可放4 ℃，长期保存应放-20℃
脊髓
灰质
血液
脊髓 灰质 脑脊液
炎 粪便
肥达氏反应，双相 血清抗体4倍增长分 离培养
发病早期未用抗菌药前采血培 养
静脉血3-5ml注入无菌试管内，待其凝固，取出 血清备用。搅碎血块，放入20-30ml葡萄糖胆汁 肉汤中
分离培养，血清鉴 定
病后1周极少阳性，第2-3周逐 渐升高，经抗生素治疗病人， 应停药后2天再采便培养
分离血清后4℃保存送检；其 他检材根据不同情况而定
及时专人送检 快速送检
尽快送检，短时间可放4℃， 长期保存应放-20℃
急性期采血，检测IgG需双相血 清
静脉血2ml或末梢血0.3ml
分离血清后放4℃，长期保存 置-20℃
血液 伤寒 副伤
寒 粪便
细菌 粪便 性痢
疾 外环境标本
乙型 肝炎
血液
艾滋 病
血液
发病早期
使用抗菌药物前；可能受污染 的外环境标本消毒处理前采集 发病早期采便，越早越好， （免疫电镜还需采恢复期血
静脉血5ml。其中3ml供血清学试验；另根据各型 特点，采集不同局部材料 肛拭或留便可使用文蜡氏保存液；采水体：直接 采水法或纱布块集菌法；食品、鱼、肉类等：一 般采取50-100g样品，放入灭菌广口瓶或塑料袋 内 取5g左右新鲜粪便放入干净的青霉素瓶内直接送 检
人感染H7N9采样方法及实验室检测策略
采集鼻咽拭子注意事项
• 1、采样时用干拭子采，不能蘸采样液，因为采样 液中有抗菌素，防止过敏。
• 2、采样液平时保存在-20℃或-70℃，采样前融化 到4℃。
• 3、采样液颜色呈紫色时失效不能用了。
人感染H7N9禽流感病毒鼻咽拭子标本 采集方法（2）
• 三、标本运送：
• • 新鲜的临床采集标本应在4℃条件下随样品送检单24小时
（二）标本转送和检测
• 1.H7N9禽流感病毒实验室活动和样本运输按照《人间传染 的病原微生物名录》中高致病性禽流感病毒进行管理。病 例的临床标本采集后，县级疾病预防控制机构和病例收治 的医疗机构要密切配合，按照生物安全的相关规定进行包 装，在24 小时内送到当地流感监测网络实验室进行检测。
• 2.当地流感监测网络实验室收到标本后24 小时内，立即对 呼吸道标本开展甲、乙型流感病毒通用引物、H5、H7亚型 的检测。
内运送至市CDC流感检测实验室。未能24小时内送至实验 室的，应置-70℃或以下保存；冻存的标本应在冻存条件 下，低温送至实验室。
• 四、采样时的生物安全防护：
• 采样时应带口罩，穿隔离衣，带一次性手套及帽子。若在 现场进行快速检测，应将现场用过的所有废物带回销毁。
谢谢，祝大家工作顺利！
• 若当地流感监测网络实验室检测结果为H5、H7核酸检测 阳性时，应当于24小时内将其中2管呼吸道相关原始标本 分别送省级疾控中心流感网络实验室和国家具备相应生物安全条件的网络实验室可开展病毒 分离，并将分离的毒株按要求及时送国家流感中 心。
• 3.若当地流感监测网络实验室检测结果为甲型流 感和乙型流感通用引物均阴性时，应当立即将1管 原始呼吸道标本送省级疾控中心。省级疾控中心 收到标本后，应当立即对其中1管进行SARS 、新 型冠状病毒等相关病原体的检测，另1管送国家流 感中心。
传染病标本采集
类别
病种
标本类型
标本数量
保存条件
检测单位
结果反馈时间
呼吸
道传
染病
流感
咽拭子
每周20份
2个工作日内2-8℃保存,超过48h要-70℃保存
市CDC
3个工作日进行核酸检测，一周内进行病毒分离。所有结果在流感监测系统查询。
H7N9
禽流感
呼吸道标本
（尤其是下呼吸道标本）
1份
水体、水产品，甲鱼活体或使用肛拭子法、涂抹法、肠内容物采集法进行采集。
水体标本≥5份/月： 500ml灭菌水样瓶加盖密封，每个采样点采集不少于2瓶做为平行检测；
室温（20-25℃）条件下3小时内送抵实验室。
县级CDC
每月5号前各区县疾控统计好所有相关监测报表上报至市CDC；
阳性标本，由市CDC进行毒素基因检测并一周内上送省CDC；
重症病例：
咽拭子、肛拭子、血清
重症病例全部采样
在上送前应保存在-70℃冰箱，尽量避免反复冻融。
市CDC
3个工作日内
双份血清
雨湖区中心医院和岳塘区一医院每年各3份样
血标本采集后尽快分离血清，存放在-20℃冰箱保存。
由市CDC收集上送省CDC
结果不反馈
伤寒、副伤寒
伤寒、副伤寒血清或粪便
推荐急性期采血量为10ml，病后2~3周恢复期血液2ml；
湘潭县、湘乡对辖区病例做初筛和确认，阳性标本送省疾控复核。其余地区由市疾控做。
初筛、确认实验一周，培养35天。省疾控复核实验时间待定。如试管凝集试验检测滴度≥1：400++的布鲁氏菌病确诊病人要用双向细菌培养瓶再次采集血液标本进行细菌培养，由市疾控中心完成。
传染病样品采集方法
样品采集一、标本采集对象1、预警病例：2、医学观察病例、疑似病例、临床诊断病例及需要进一步研究地确诊病例。
3、其他需要进行诊断或排除者。
4、需要采集地环境标本。
二、标本采集要求1、从事标本采集地技术人员必须经过生物安全培训和具备相应地实验技能。
在标本采集过程中,采集人员必须采取相应生物安全防护。
2、住院病例地标本由所在医院医护人员在当地疾控机构专业人员地指导下采集.(人感染高致病禽流感标本采集技术方案)3、标本采集具体种类和数量由现场工作组确定。
4、密切接触者标本由当地疾控机构负责采集。
5、结果不好判断时，结合病程再次采样。
三、标本采集种类1、上呼吸道标本：包括咽拭子、鼻拭子、鼻咽抽取物、咽漱液、深咳痰液、最佳采集时间为发病后3天内。
2、下呼吸道标本；包括呼吸道抽取物、支气管灌洗液、肺组织活检标本.3、尸检标本：病人死后应依法尽早进行解剖，在严格按照生物安全防护地条件下进行尸检，主要采集肺、气管组织标本、条件允许下也可采集肝、肾、脾、脑、淋巴结等组织标本。
4、血清标本:每一病例必须采集血清标本.须采集急性期、恢复期双份血清.第一份血清应尽早（最好在发病后7天内）采集，第二份血清应在发病后第3—4周采集。
采集量要求5ml，以空腹血为佳，建议使用真空采血管。
5、其他标本：如果病例由腹泻症状,可采集粪便标本：有胸水者可采集胸水标本。
淤血点等。
四、标本采集方法1、咽拭子:用棉签擦拭双侧咽扁桃体及咽后壁，将拭子头浸入含4~5ml采样液地管中,尾部弃去，旋紧管盖。
注：亦可将鼻、咽拭子收集于同一采样管中，以便提高分离率,减少工作量.2、鼻拭子：将棉签轻轻插入鼻道内鼻腭处，停留片刻后缓慢转动退出。
以同一拭子拭两侧鼻孔。
将棉签浸入4~5ml 采样液中,尾部弃去，旋紧管盖.3、鼻咽抽取物或呼吸道抽取物：用与负压泵相连的收集器从鼻咽部抽取粘液或从气管抽取呼吸道分泌物.先将收集器头部插入鼻腔或气管，接通负压,旋转收集器头部并缓慢退出.收集抽取的粘液，并用3ml采样液涮洗收集器1次4、咽漱液:用10ml不含抗菌素的采样液漱口，漱口时让患者头部微后仰，发“噢声"，让洗液在咽部转动。
传染病病例标本采集和运输
途中监控
对运输过程进行全 程监控，确保安全 无虞。
包装检查
确保标本包装严密 、无破损、无泄漏 。
专人专车运输
确保专人负责，使 用专用车辆进行运 输。
送达确认
送达目的地后，进 行签收并确认无误 。
03
传染病病例标本采集和运输的安 全防护
安全防护原则
安全性原则
确保采集和运输过程的安 全，避免病毒、细菌等病 原体的传播和扩散。
。
血液采集
抽取静脉血液，用于检测病毒 抗体或病毒核酸。
粪便采集
收集粪便样本，用于检测肠道 病毒或细菌。
其他样本采集
如尿液、痰液、伤口分泌物等 ，根据不同病原体和检测需求
进行采集。
采集流程
核对病例信息
在采样前应核对病例的基本信息 ，确保采样的准确性。
采样操作
按照采集方法对病例进行采样， 注意无菌操作和采样部位的准确 性。
及时性原则
尽快完成标本采集和运输 ，确保检测结果的准确性 和及时性。
准确性原则
确保标本采集和运输过程 中的操作规范，避免人为 误差和污染。
个人防护措施
穿戴个人防护装备
包括医用口罩、护目镜、一次性手套等，确保采集和运输人员的 安全。
定期更换个人防护装备
及时更换破损或污染的防护装备，避免交叉感染。
勤洗手
政府部门
政府部门需加强对医疗机构和实验室的监管，确保相关法规和标准得到有效执行。在突发疫情时，政府 部门还需协调各方资源，确保传染病病例标本采集、运输等环节的高效运作。
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相关标准
《医疗机构临床实验室管理办法》
对医疗机构临床实验室的设立、运行和管理提出了规范性要求，其中包括传染病病例标 本的采集、运输和检测等方面的规定。
炭疽患者标本采集原则
炭疽患者标本采集原则一、炭疽概述炭疽是由炭疽杆菌引起的一种急性传染病，主要通过接触或吸入受污染的炭疽杆菌引起的孢子而感染。
炭疽病菌广泛存在于土壤、草地等自然环境中，因此与土壤接触的职业人员、农民等群体易患炭疽病。
二、标本采集原则1. 标本采集时间对于疑似炭疽患者，应尽早采集标本以进行实验室检测。
最佳采集时间是在疾病早期出现症状的第一天内，因为此时病原体在体内的数量较多，便于检测。
2. 标本类型炭疽的标本采集主要包括皮肤疱疹、溃疡、脓液、血液、呼吸道分泌物等。
对于皮肤上的疱疹或溃疡，可以用消毒棉签轻轻刮取患处分泌物。
对于脓液，应使用无菌容器收集。
对于血液和呼吸道分泌物，应采用相应的采集管进行采集。
3. 标本采集方法皮肤疱疹或溃疡的采集方法是用消毒棉签轻轻刮取患处分泌物，并放入无菌容器中。
在采集血液时，应选择无菌的采血针和抗凝剂，按照惯常的采血程序进行采集。
对于呼吸道分泌物的采集，一般采用痰液或咽拭子的方式，将采集的标本放入无菌容器中。
4. 标本保存与运输采集完标本后，应立即送往实验室进行检测。
在运输过程中，应避免高温和低温环境，以免影响病原体的活性。
标本应放置在密封的容器中，并在外部标记上标明病人的相关信息和采集时间。
5. 个人防护措施在采集炭疽标本时，医务人员应佩戴防护口罩、手套、隔离衣等个人防护装备，以降低感染的风险。
采集完标本后，应立即将防护装备进行正确的处理和消毒。
6. 实验室检测炭疽标本的实验室检测主要包括细菌培养、PCR检测、血清学检测等。
采集的标本应送往合格的实验室进行检测，以确保结果的准确性和可靠性。
三、注意事项1. 在采集标本时，应注意避免污染其他物品或人员，避免交叉感染的发生。
2. 采集标本的过程中，应注意个人防护，避免直接接触患者的体液或分泌物。
3. 采集标本的容器应是无菌的，并在外部进行正确标记，以避免混淆。
4. 采集标本后，应及时送往实验室进行检测，以便及时作出诊断和治疗方案。
传染性疾病标本采集方法
传染性疾病标本采集方法标本采集、运送与报告操作规程一、血培养指征患者出现寒战，体温超过38℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72 h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做血培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24 h 后，以寒战、发热时采集为宜。
三、采血流程（一）消毒1．培养瓶消毒程序：用消毒液消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。
2．皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5 cm 以上，待消毒液挥发干燥后（常需30 s 以上）穿刺采血。
（二）静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头（如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头），先注于厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。
近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。
（三）注意事项1．检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
2．采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。
3．采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
4．细菌性心内膜炎：在24 h 内取血3 次，每次间隔不少于30 min;必要时次日再做血培养2 次。
5．采血量：以培养基与血液之比10：1 为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
采血量过少会明显降低阳性率。
成人每次每培养瓶采血8～10 ml，婴幼儿每次每培养瓶采血2 ml。
四、运送要求1．所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在2h 内。
传染病病例标本采集和运输
病原微生物标本的采集
采样容器 采集标本应使用无菌容器，一个标本一个
容器。 对容器基本要求是选耐用材料制成，容器
包装好后可防渗漏。 能承受空中地面运送过程中可能发生的温
度和压力变化。
病原微生物标本的采集
采样标本的标识 包括种类、原始采样容器、标本性质、数量、运送人和
接受人及其包装日期、运输日期、统一的识别编号及病 人联系方式、姓名、检验目的、临床诊断等信息。 其他信息如病人信息（年龄、性别、完整地址），临床 资料（发病日期、临床症状、治疗史、可疑的发病原因、 采样前是否用抗生素），急性或恢复期标本，症状类似 病人的其他标本。
实验室必须对所有标本建立追踪系统，此 系统中必须严格注明标本基本信息，如标 号，标本唯一识别码，采样日期，地点， 采样人等；患者的基本信息、临床诊断检 测结果，以及实验室检测信息，如检测项 目、时间和结果。从而可随时了解标本涞 源信息，追踪原始出处。
病原微生物标本的包装
任何感染性材料的包装和运输都必须遵循WHO对 传染性物质和诊断性标本的安全运送指南（WHO， 1997）。
接收标本的实验室也应记录接收日期和时间、接受标本者的姓名、 标本性质和状态等。
这些信息都是解释检验结果所必需的。
病原微生物标本的采集
各种标本的采样方法 (1)血液采集 全血：作血液病原培养时，严格用无菌穿刺法采静脉血，移入无菌的有螺口的抗凝的
容器或培养瓶中送检。采集量为3-5毫升。 做核酸检测时，抗凝剂一般使用EDTA-K3或枸橼酸钠，不可用肝素。 血清：用于检测IgM的血清一般采于发病1个月内；用于检测IgG的血液应收集两次，
第一次于发病初期（1～3天），越早越好，第二次血样一般在恢复期（第一次采血后 3～4周）。双份血清同时检测，如抗体滴度有4倍以上升高才有意义。 （2）粪便采集：应在急性腹泻期及用药前采集自然排出的粪便。采集时应用灭菌棉拭子 多点蘸取患者新鲜排出粪便的脓血、粘液、水样便或稀便部分，采样量一般3-5克。 （3）咽拭子：令患者仰头张口，用压舌板压舌，将无菌棉拭子伸入口腔，适度用力拭涂 抹咽后壁和两侧扁桃体部位，放入盛有3-5mlHank’s液的采样管中，在靠近顶端处折 断棉签杆，旋紧管盖并密封。
医院实验室强传染性样本的采集、运输、处理与保存制度
7强传染性样本的采集、运输、处理与保存制度7.1目的为有效预防医务人员在工作中发生职业暴露感染，防止实验室污染、交叉污染和周围环境污染，特制定本指导原则。
7.2定义强传染性样本是指含有一类、二类高致病菌的微生物标本，如：含SARS病毒、霍乱弧菌、艾滋病毒、炭疽芽孢杆菌、结核杆菌等具有强致病性病原微生物的样本。
7.3适用范围本管理细则适用于检验科各专业组。
7.4具体制度7.4.1标本采集7.4.1.1为避免交叉污染，检验人员原则上不直接进入病区采集标本，如必须进入时，应穿隔离衣和防护服，戴口罩（12-18层或N95口罩）、双层帽、护目镜、面罩、戴三层手套、靴子。
7.4.1.2详细登记有关病例的姓名、性别、年龄、家庭住址、联系电话等基本信息以及标本采集日期。
7.4.1.3采集的标本放入带盖的容器内，盖紧盖子装入标本运送箱，加注特别标识，密封专人送检。
采集标本时不能污染容器外部。
7.4.2标本运输将密封包装好的，放在专门运输用双层标本箱里，加盖，由两人运送。
运送过程严防破碎和外溢。
送入检验科由双人签收。
7.4.3标本前处理标本接种、血清分离等在生物安全柜内进行。
使用专用的离心机，离心时使用密闭的离心机转头或密闭样品杯，离心停止10-30分钟后取出。
7.4.4标本检测标本应在专用区由专人进行检测，以便标本、仪器、环境集中消毒和处理。
尽量避免标本分散到多个实验室。
7.4.5标本检测后处理废弃标本放入带盖套有黄色塑料口袋的专用污物桶内，集中高压灭菌后送到特殊垃圾处进行无害化处理。
所有检测标本后废液都用2500mg/L有效氯消毒液浸泡4小时以上，或直接高压灭菌，再排入医院污水站消毒处理。
7.4.6标本的保存7.4.6.1疑似强致病菌标本保存，应专室专柜，两人管理，每天查看并记录。
明确有高致病菌标本，P2实验室不得保存。
7.4.6.2疑似HIV阳性标本送到东阳市疾控中心确认，先通知保健科，标本应三层包装，专人送到东阳市疾控中心，标本双人交接并签字。
传染病病原标本采集和检测质量控制要求_概述说明
传染病病原标本采集和检测质量控制要求概述说明1. 引言1.1 概述引言部分将讨论传染病病原标本采集和检测质量控制的要求。
在传染病预防和控制中，准确有效的病原标本采集是确诊和监测疾病的关键步骤。
同时，为保证病原标本检测结果的可靠性，质量控制也至关重要。
因此，本文将概述传染病病原标本采集和检测质量控制的要求，并介绍相应的操作规范、设备选择与验证、样本处理与存储条件控制以及流行病学信息收集与报告要求。
1.2 文章结构文章主要分为五个部分：引言、传染病病原标本采集要求、传染病病原标本检测质量控制要求、排查流行病学信息收集与报告要求以及结论及展望。
1.3 目的通过详细介绍传染病病原标本采集和检测质量控制方面的要求，旨在提高相关工作者对于该领域内操作规范的认识，并促进在实际工作中的应用。
同时，本文还将对相关工作中存在的问题进行分析总结，并提出未来研究和改进的建议与展望。
通过这些内容的介绍和讨论，我们可以更好地确保传染病病原标本采集和检测质量控制工作的可靠性和准确性，有助于提高传染病防控水平，保障公众健康安全。
2. 传染病病原标本采集要求2.1 标本种类与采集方法传染病病原标本的种类和采集方法在确保准确诊断的同时，也需要采取必要的防护措施以避免交叉感染。
常见的传染病病原标本包括血液、呼吸道分泌物、尿液、粪便、组织样本等。
不同的传染病可能需要不同类型的标本进行检测和诊断，必须根据具体情况选择合适的标本。
在进行标本采集时，应严格遵守消毒规范，佩戴个人防护装备，并使用合适的采集工具。
根据不同标本类型，有以下一些常用的采集方法：- 血液：通过穿刺静脉或指尖采血。
获取血液样本前，需要先清洁皮肤，并在穿刺点周围进行消毒。
- 呼吸道分泌物：如咽拭子或口腔漱口液等。
在收集口腔样本时，可使用棉签或喉镜取样。
注意避免患者飞沫的扩散。
- 尿液：通常需要要求患者收集早晨排尿时的第一次尿液，使用无菌容器进行收集，并确保容器密闭。
- 粪便：使用无菌容器收集新鲜粪便样本，以避免细菌和寄生虫数量的改变。