人脐带静脉灌注液间充质干细胞的分离和鉴定

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人脐血间充质干细胞体外分离、培养与鉴定

人脐血间充质干细胞体外分离、培养与鉴定
c d bl d( CB) a o i e tga e w he h r is i m u phe ot e i oic d nc t on a r or oo U nd t nv s i t t e t m no n yp sc n i e e wih b e m r ow- e ie SCs d rv d M .M eho H u t ds — m a CB a pl a r sedf om ul t r el r e a e n s c i nU s m e w sha ve t r f l e m d i y by c s r a e ton.T hem on ve onu larc lsw e e s pa a e r m CB ig c e e l r e r t d fo U usn l m ph y e e r ton m e um nd s p nd d on y oc t d s pa a i di a us e e eswer e o d i he lt rc t r .T hea er ntc ls er m ve n t a e ulu e dh e el pr ie a i n a elc — olf r to nd c l y ce w e e o e v d t i m m un he ot sw e ean l z d by fow y om e r FCM ) l r bs r edan he ri op n ye r a y e l ct ty( .Re ut I o g uc eDM EM ,c t i i g s ls n l w— l os on a n n f t lb vi e um ,a e a o ne s r dhe e c ls xh b t d m e e c r nt el e i ie s n hym a—i ph no ype The e c ls e e ab e o llke e t . s e l w r l t be purfe nd e a iid a xp nde by d

人脐带间充质干细胞的分离、培养及鉴定

人脐带间充质干细胞的分离、培养及鉴定

人脐带间充质干细胞的分离、培养及鉴定韩华;薛改;张俊勤;闫萍;李艳丽【摘要】目的:探讨人脐带华通胶间充质干细胞体外分离、培养、鉴定及冻存、复苏的方法。

方法收集健康足月新生儿脐带组织,采用组织块贴壁法分离、培养脐带间充质干细胞,流式细胞仪检测细胞表面抗原,将细胞冻存3个月后复苏,鉴定复苏后细胞的特性。

结果组织块贴壁法获得脐带间充质干细胞成功率高;细胞表面高表达CD29、CD44、CD90和CD105,不表达造血干细胞表型CD34、CD45等;冻存后再复苏细胞活性高达80%~90%。

结论组织块贴壁法可以从人脐带华通胶中较好的分离、培养出间充质干细胞,为干细胞移植实验研究和临床治疗提供了理想的细胞来源。

%Objective To exploreisolating,culturing,identifying,freezing and thawing mesenchymal stem cells(MSCs)approach from Wharton j elly of human umbilical cord.Methods The MSCs were isolated from neonate umbilical cord,cultured by tissue explants adherent method.The surface markers were identified by flow cytometry.Passage cells,frozen 6 months, were thawed,then their biological characteristics were identified.Results MSCs were easily obtained from Wharton j elly of human umbilical cord via the proposed approach of tissue adherence.The flow cytometry analysis showed that MSCs expressed CD29,CD44,CD90 and CD105 positively,but negatively for CD34,CD45.The living cells of MSCs were 80%-90% after having been frozen and the thawed cells had the same characteristics as the previous.Conclusion MSCs can be successfully isolated from Wharton j elly of human umbilical cord by this method. The stem cells derived from Wharton j elly of humanumbilical cord may be a novel alternative source of human MSCs for experimental and clinical applications.【期刊名称】《河北医科大学学报》【年(卷),期】2015(000)001【总页数】3页(P21-23)【关键词】脐带;间充质干细胞;胎血【作者】韩华;薛改;张俊勤;闫萍;李艳丽【作者单位】河北省人民医院妇产科,河北石家庄 050051;中国人民解放军白求恩国际和平医院药剂科,河北石家庄 050082;河北省人民医院妇产科,河北石家庄 050051;河北省人民医院妇产科,河北石家庄 050051;中国人民解放军第二六○医院病理科,河北石家庄 050041【正文语种】中文【中图分类】R394.2干细胞是一群具有自我更新和分化潜能的细胞,根据发育状态可以分为胚胎干细胞和成体干细胞。

脐带间充质干细胞培养操作细则

脐带间充质干细胞培养操作细则

脐带间充质干细胞分离培养操作细则一、样本接收1.观察运输箱的温度是否符合要求,采集瓶有无渗漏。

2.查看客户信息是否与交接表一致。

3.样本采集瓶外表面喷酒精擦拭消毒,并粘贴样本编码,填写样本接收记录,传入洁净区准备制备。

二、脐带间充质干细胞分离与接种1)准备耗材试剂:10cm培养皿、15ml离心管、50ml离心管、离心管架、10ml 移液管、T75培养瓶、离心管架、无尘布、50ml注射器针头、封口膜、灭菌止血钳、灭菌镊子、灭菌剪刀、废液缸、无血清干细胞培养基(常温复温)、生理盐水、75%酒精(已过滤)。

2)仪器设备准备及预热:电动移液枪、生物安全柜、离心机3)将75%酒精喷到台面,用无尘布擦拭台面,包括侧面及玻璃。

4)将生物安全柜开紫外30min通风10min,样本喷酒精擦拭,放入生物安全柜中,电动移液枪、移液管、离心管、离心管架喷酒精擦拭放入生物安全柜中,无菌棉球放入到广口瓶中加75%酒精放入生物安全柜中。

50ml、15ml离心管放到离心管架上,10cm皿5-7个。

将装有灭菌器械的灭菌盒喷酒精擦拭放入生物安全柜中。

5)取5个10cm皿依次摆开,1,2,4,5号皿依次加入适量的生理盐水,3号皿加入适量的已过滤的75%酒精。

拿出灭菌盒中已灭菌的止血钳,将脐带从保存瓶中取出放到第一个皿里,并取适量样本保存液留样送检支原体。

使用两个止血钳将脐带在第一个皿里清洗尽量去除脐带外表面的血污以及动静脉的血液和血凝块,将脐带转移至2号皿中,同样的方法再次清洗一次并测量其长度。

6)将清洗干净的脐带转移到装有已过滤75%酒精的3号皿中浸泡1min左右(不要超过两分钟),计时结束后,将脐带转移至4号皿中,同样的洗涤方法去除酒精。

清洗结束后将脐带剪成1-2cm短节,放入5号皿中,再次洗涤尽量去除血管内的血污。

再次拿两个10cm皿,加入适量的生理盐水,去一皿的盖子加少许盐水湿润底部及可。

7)将1-2cm的脐带小段转移到新的皿里,用带齿口的镊子取一段脐带,将脐带展开,再按血管走势剔除脐带的两条动脉,一条静脉。

人脐带间充质干细胞的分离鉴定及多向诱导分化

人脐带间充质干细胞的分离鉴定及多向诱导分化

人脐带间充质干细胞的分离鉴定及多向诱导分化李茂;黄文【期刊名称】《中国组织工程研究》【年(卷),期】2014(000)019【摘要】背景:脐带间充质干细胞取材方便、无创,不受伦理学限制,比一般干细胞原始,免疫原性小,其应用前景广阔,是一种理想的种子细胞。

<br> 目的:分离鉴定脐带间充质干细胞,并诱导其向成骨细胞和成脂细胞分化。

<br>方法:组织块贴壁法分离纯化脐带间充质干细胞,取对数生长期的第3代细胞,观察细胞形态、生长方式;流式细胞仪检测干细胞表型CD90、CD105、CD34和CD45的表达情况,并在体外检测能否将其诱导分化为成脂细胞及成骨细胞。

<br> 结果与结论:用组织块法成功分离培养出脐带间充质干细胞,流式细胞学鉴定显示细胞强表达 CD90和CD105,不表达 CD34和 CD45;能在体外将其成功诱导为脂肪细胞和成骨细胞。

结果显示组织块贴壁法能够从人脐带中分离出间充质干细胞,该细胞可向成脂细胞及成骨细胞分化。

%BACKGROUND:The umbilical cord mesenchymal stem cels can be obtained conveniently, noninvasively, without ethical restrictions, which are more original that stem cels from other sources and have little immunogenicity. Therefore, umbilical cord mesenchymal stem cels are a kind of ideal seed cels with promising application prospects. <br> OBJECTIVE: To induce the differentiation of mesenchymal stem cels derived from human umbilical cord into adipocytes and osteoblasts. <br> METHODS: The umbilical cord mesenchymal stem cels were isolated by tissue explants method. Themorphology, proliferation and immunophenotype of the 3rd passage cels were analyzed, and then cels were induced to adipocytes and osteoblastsin vitro. The expressions of CD90, CD105, CD34 and CD15 were detected by flow cytometry. <br> RESULTS AND CONCLUSION:The umbilical cord mesenchymal stem cels isolated by tissue explants method could be cultured and proliferatedin vitro. Flow cytometry analysis revealed that the cels were strongly positive for CD90 and CD105, but negative for CD34 and CD45. The umbilical cord mesenchymal stem cels could be induced to adipocytes and osteoblastsin vitro. These findings indicate that mesenchymal stem cels can be successfuly obtained from human umbilical cord by tissue explants method and have the potential of multi-directional differentiation.【总页数】5页(P3012-3016)【作者】李茂;黄文【作者单位】重庆医科大学附属第一医院血管外科,重庆市 400016;重庆医科大学附属第一医院血管外科,重庆市 400016【正文语种】中文【中图分类】R394.2【相关文献】1.人胎盘羊膜上皮细胞的分离鉴定及多向诱导分化 [J], 李萍;王久存;陆瑶;许惠利;2.人胎盘羊膜上皮细胞的分离鉴定及多向诱导分化 [J], 李萍;王久存;陆瑶;许惠利3.人脐带间充质干细胞的分离鉴定及多向诱导分化 [J], 李茂;黄文;4.人脐带间充质干细胞向神经元样细胞诱导分化:两种方法的比较 [J], 王武;齐保军;武忠炎;崔泳;;;;5.人脐带间充质干细胞向神经元样细胞诱导分化:两种方法的比较 [J], 王武;齐保军;武忠炎;崔泳因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

人脐带间充质干细胞的分离培养与鉴定

人脐带间充质干细胞的分离培养与鉴定
1.武汉大学 中南 医院 ,湖北 武 汉 443071;2.湖北 医药学 院 a.胚胎 干细胞 重点实验室 ;b.基础 医学院生化教研 室 ;C.附属 太和 医院检 验 科 ;湖 北 十 堰 442000
[摘 要 ] 目的 :建 立并优化人脐带 间充质 干细胞 分离纯化方法 ,并对其表 面标 志与多 向分化潜能进行鉴定。方法 :收 集健康足 月产胎儿脐带组 织,采用组织块贴壁 法进行 原代 培养 ,流 式细胞仪 对其表 面标 志进 行检测 ,通过 向成 骨成脂 分化 对其多 向分化潜 能进 行鉴定 ,RT—PCR对其干细胞特 性基 因Oct4、Nanog、Sox2、Nestin进行检测 。结果 :采用组 织 块贴 壁法可在 2周 左右获得 大量间充质 干细胞 ,培养的细胞 经流式细胞仪检 测 ,高表 达 CD29、CD44、CD105、CD106, 低表 达 CD34、CD45;经成 骨成脂诱 导 2周 后可分 化为 成骨 细胞 和成 脂细胞 ,RT—PCR检测 发现原代 细胞表 达 Oct4、 Nanog、Sox2、Nestin基 因。结论 :人脐 带 间充质 干细胞 可在体 外扩增培养 ,具有 多 向分化 潜能 ,可作为组 织工程种子 细 胞 来 源 。 [关键 词] 人脐 带间充质干细胞 ;原代培养 ;分 离鉴定 [中图分 类号] Q25 [文献标识码 ] A [文章编号 ] 1009—0002(2014)01—0087—04
【Key words】 human umbilical cord mesenchymal stem cells;primar y culture;cell isolation and identif ication
Isolation and Identif ication of Hum an Um bilical Cord M esenchym al Stem Cao—Li。 LI Dong—Shenf ,YAN Shi—Rong ,CHEN Ling ,YANG Xiao—Wen

脐带血间充质干细胞的分离培养和鉴定

脐带血间充质干细胞的分离培养和鉴定

脐带血间充质干细胞的分离培养和鉴定【摘要】目的分离培养脐带血间充质干细胞并检测其生物学特性。

方法在无菌条件下用密度梯度离心的方法获得脐血单个核细胞,接种含10%胎牛血清的DMEM培养基中。

单个核细胞行贴壁培养后,进行细胞形态学观察,绘制细胞生长曲线,分析细胞周期,检测细胞表面抗原。

结果采用Percoll(1.073 g/mL)分离的脐血间充质干细胞大小较为均匀,梭形或星形的成纤维细胞样细胞。

细胞生长曲线测定表明接后第5天细胞进入指数增生期,至第9天后数量减少;流式细胞检测表明50%~70%细胞为CD29和CD45阳性。

结论体外分离培养脐血间充质干细胞生长稳定,可作为组织工程的种子细胞。

【关键词】脐血;间充质干细胞;细胞周期;免疫细胞化学Abstract: Objective Isolation and cultivation of mesenchymal stem cells (MSCs) in human umbilical cord in vitro, and determine their biological properties. Methods The mononuclear cells were isolated by density gradient centrifugation from human umbilical cord blood in sterile condition, and cultured in DMEM medium containing 10% fetal bovine serum. After the adherent mononuclear cells were obtained, the shape of cells were observed by microscope, then thecell growth curve, the cell cycle and the cell surface antigens were obtained by immunocytochemistry and flow cytometry methods. Results MSCs obtained by Percoll (1.073 g/mL) were similar in size, spindle-shaped or star-shaped fibroblasts-liked cells. Cell growth curve analysis indicated that MSCs were in the exponential stage after 5d and in the stationary stages after 9d. Flow cytometry analysis showed that the CD29 and CD44 positive cells were about 50%~70%. Conclusions The human umbilical cord derived mesenchymal stem cells were grown stably in vitro and can be used as the seed-cells in tissue engineering.Key words:human umbilical cord blood; mesenchymal stem cells; cell cycle; immunocytochemistry间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs)在一定条件下具有多向分化的潜能,是组织工程研究中重要的种子细胞来源。

_三阶段法_分离培养与鉴定人脐血间充质干细胞

_三阶段法_分离培养与鉴定人脐血间充质干细胞

三阶段法 分离培养与鉴定人脐血间充质干细胞张东辉1*,许永华1,许琴1,李建瑛1,是文辉1,李佳佳1,卢开伯1,邢彦超2,于良宽3,龙志新4(1兰州军区乌鲁木齐总医院实验动物科,2输血科,3妇产科;4新疆出入境检验检疫局,新疆乌鲁木齐830000)摘要:目的探讨运用 三阶段法 分离培养与鉴定人脐血间充质干细胞的效果。

方法取人脐带血4份,经过3个阶段(去除红细胞阶段、短暂培养阶段、持续培养阶段),以完全低糖DM EM(含20%胎牛血清)为培养基,纯化分离人脐血间充质干细胞。

传代至第3代通过流式细胞仪和间充质干细胞诱导分化为成骨细胞进行鉴定。

结果4份人脐血中3份分离出间充质干细胞。

分离培养的细胞经流式细胞仪检测不表达造血细胞的抗原(CD34-),表达间充质干细胞的抗原(CD29+、CD44+、CD105+),并能向成骨细胞方向分化。

结论 三阶段法 能够简便、有效地从人脐血中分离出间充质干细胞。

关键词:人脐静脉血;间充质干细胞;体外培养中图分类号:R446;R34文献标识码:A文章编号:1009 5551(2010)10 1188 03C ulture and identify hu man umbilical cord b lood MSC s using three p hase approachZHANG Don ghui,X U Yong hua,XU Qing,et al(Dep ar tm ant of A nimal E x p eriment,Ur umqi General H osp ital of L anz hou Command,P L A,Urumqi830000,China)Abstract:Obiective To culture and identify human umbilical cord blood MSCs(m esenchy mal stem cells) using three phase approach.Methods Through three phases(remov al ofr ed blo od cell,br iefly culturing and phase of lasting culturing)to separate M SCs from4hum an umbilical co rd bloo d sam ples.Culture me dium w ith low g lucose DMEM w as supplemented w ith20%fetal calf serum.Isolated M SCs w er e passag ed to the third g eneration fo r identifying.Results Three gro ups o f M SCs w er e separated fro m4g roups of samples.By flow cytom etry analysising,cells expressed M SCs surface markers of CD29,CD44and CD105positively and CD34negatively.T he result of the differentiation of osteoblast like cells derived from human umbilical cord blood w as positive also.Conclusion We can easily and effectiv ely separ ate M SCs fro m human umbilical Cord Blood by thr ee phases appro ach.Key words:hum an um bilical co rd blo od;mesenchym al stem cells;in vitro culture人脐血间充质干细胞(umbilical cord blo od mesenchymal stem cells,U CB M SCs)具有良好的多向分化潜能,在适当的诱导条件下可以多向分化为间质谱系内的各种细胞[1-2],跨系分化为外胚层的神经细胞[3]、内胚层的肝细胞[4]。

人类脐带血间充质干细胞的培养及鉴定

人类脐带血间充质干细胞的培养及鉴定

复旦学报(医学版)Fudan Univ J Med Sci2007Nov ,34(6)人类脐带血间充质干细胞的培养及鉴定马晓生1 姜建元1△ 吕飞舟1 李小康2(1复旦大学附属华山医院骨科 上海 200040;2日本国立成育医疗中心研究所移植免疫研究室 日本 东京 157-8535)【摘要】 目的 对人类脐带血中的有核细胞进行分离培养及鉴定,观察能否得到间充质干细胞。

方法 抽取人类脐带静脉血,进行细胞分离和培养,并进行荧光激活细胞分析。

结果 脐带血中间充质干细胞与骨髓中的类似,其外表呈纤维样;流式细胞术鉴定结果表明这种细胞能表达CD29、CD44、CD90、CD95、CD105、CD166以及M HC Ⅰ(组织相容性抗原复合体Ⅰ),但不能表达CD14、CD34、CD40、CD45、CD80、CD86、CD117、CD152以及M HC Ⅱ(组织相容性抗原复合体Ⅱ);并且具有分化成骨细胞和脂肪细胞的潜能。

结论 可以从人类脐带血中成功分离培养得到间充质干细胞。

【关键词】 人脐带血; 间充质干细胞; 成骨细胞; 脂肪细胞【中图分类号】 R392.12 【文献标识码】 B 国家自然科学基金项目(333);上海市卫生局基金项目 △通讯作者 2x 83@Cultiva tion a nd identif ica tion of mesenchyma l stem cells f r omhuman umbilical cor d bloodMA Xiao 2Sheng 1,J IAN G Jia n 2Y uan 1△,L V Fei 2Zhou 1,L I X iao 2Kang 2(1D epa rtment of Or thopaedics ,H uashan H o s pita l ,Fudan Univ e rsit y ,S hanghai 200040,China ;2L abor atory of T ra nsplantation Immunity ,J a pa nese Chengyu Resea rch Institute ,Tokyo 157-8535,J a pa n )【Abstract 】 Purpose To cultivat e and identify mesenchymal st em cells (MSCs)fro m h uman umbilicalcord blood. Methods Hu man umbilical cord blood was draw n o ut ,t hen MSCs was sep arat ed and cultivated.They were identified by FA C 2Scan. R esul ts MSCs were fo und in human u mbilical cord bloo d wit h fibro bla st 2li ke ap pearin g.Flow Cyto metry result s showed t hat t hey exp ressed CD29,C D44,CD90,CD95,CD105,CD166and M HC class Ⅰ,but the exp ressio n of CD14,CD34,CD40,C D45,CD80,CD86,CD117,CD152and MH C class Ⅱwas negative.These cell s had t he p otential of differentiatio n i nto o steo blast s and fat cell s. C onclusion s MSCs can be separat ed and culti vated fro m human umbilical cord bloo d.【Key words 】 hu man umbilical co rd blood ; mesenchymal st em cell s ; o st eoblast s ; fat cell s 在骨髓中存在间充质干细胞和造血干细胞早已是被研究者广泛接受的事实。

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人脐带静脉灌注液间充质干细胞的分离和鉴定作者:刘晓丹,刘兵,李秀森,毛宁【摘要】本研究旨在探讨人脐带静脉灌注液中是否存在间充质干细胞及其分离和扩增方法。

从正常产妇分娩后的脐带静脉灌注液分离间充质干细胞,观察细胞形态并用流式细胞仪分析其细胞表型和细胞周期,在体外分别诱导其成骨、成脂肪和成软骨细胞分化。

结果表明:脐带静脉灌注液来源的间充质干细胞为成纤维细胞样,高表达CD29、HLA ABC、CD166、CD105、CD73、CD44;不表达造血和内皮标志(CD34、CD45、CD144和CD14)。

它们可向骨、脂肪和软骨细胞分化,符合间充质干细胞的基本功能特征。

结论:人脐带静脉灌注液存在间充质干细胞,能够在体外培养和扩增,可作为今后细胞治疗和组织工程的种子细胞。

【关键词】脐带静脉灌注液Isolation and Identification of Mesenchymal Stem Cells from Perfusion of Human Umbilical Cord VeinAbstract This study was aimed to investigate whethermesenchymal stem cells (MSCs) existed in human umbilical cord vein and to establish the methods of isolation and expansion in vitro. The MSCs direved for perfusion of umbilical cord vein (UVMSCs) were collected after parturition of Healthy pregnant women. The morphology of MSCs and their differentiation potential into osteoblast, adipocyte and chondrocyte were observed the phenotype and cell cycle of MSCs were determined by using flow cytometry. The result showed that the mesenchymal stem cells separated from umbilical cord vein gave rise to a population of adherent cells with a typical fibroblast like morphology. Similarly to bone marrow derived MSCs, they highly expressed CD29, HLA ABC, CD166, CD105, CD73 and CD44, and were negative for any hematopoietic and endothelial markers (CD45, CD34, CD14 and CD144). Functionally, they could differentiate into the osteoblast, adipocyte and chondrocyte. It is concluded that MSCs exist in the human umbilical cord vein perfusion. Their read amplification in vitro contribute to clinical applications for cell therapy and tissue engineering.Key words mesenchymal stem cell; umbilical cord vein perfusion; cell isolation; cell identification间充质干细胞(mensenchymal stem cells, MSC)最早自骨髓中分离,是一类具有自我更新及多向分化潜能的中胚层源干细胞[1]。

作为多种骨髓基质的前体细胞,MSC能通过调节造血微环境以促进造血干细胞增殖、分化,它亦能调节淋巴细胞免疫功能,从而减轻移植排斥反应等生物学效应[2]。

MSC的发现为针对性解决造血干细胞移植,尤其是脐血移植中的干细胞数量相对不足及减轻移植物抗宿主病提供了一个有效手段[3,4]。

然而,临床上骨髓取材困难,供体有限,随年龄的增加其增殖和分化能力下降,且有病毒污染的可能[5]。

因此,寻找MSC的新来源具有重要意义。

本研究从易于获取、且组织来源较为原始的脐带静脉灌注液中寻找MSC(UVMSC),并对其进行生物学特性的鉴定。

材料和方法材料与试剂脐带来自北京市中西医结合医院正常分娩产妇,均经父母授权同意。

Ⅳ胶原酶为Sigma公司产品,αDMEM为Hyclone公司产品,胎牛血清为FBS,Stem Cell产品,L谷氨酰胺为Amresco公司产品,EGF为Peprotech公司产品,rh VEGF为R&amp;D公司产品,bFGF 为双鹭药业公司产品,胰蛋白酶为Amresco公司产品,诱导试剂:地塞米松、β甘油磷酸钠、抗坏血酸磷酸盐、3异丁酸1甲基黄嘌呤(IBMX),胰岛素、消炎痛、丙酮酸钠均为Sigma公司产品,TGF β3为R&amp;D公司产品,ITS A为Sigma公司产品;流式相关鼠抗人单克隆抗体:CD29PE、CD166PE、 CD14、CD144PE、CD34 FITC、CD45FITC、HLA ABC FITC、HLA DR FITC、CD44 FITC、CD105FITC均为Becton Dickinson公司产品),碱性磷酸酶检测试剂盒为Sigma公司产品。

中国实验血液学杂志 J Exp Hematol 2007; 15(5)人脐带静脉灌注液间充质干细胞的分离和鉴定UVMSC的分离培养与传代取正常产妇分娩后的脐带静脉,无菌条件下用PBS清洗脐带静脉外表面及脐带静脉,止血钳夹住一端,根据脐带静脉的长度,加入适量的0.1% Ⅳ型胶原酶,37℃孵育30分钟,弃去脐带静脉内液体,用PBS灌注脐带静脉3次,收集灌注液,按1×105/cm2,接种于25 cm2的塑料培养瓶中,培养体系为: 10% FBS、αMEM、EGF(10 ng/ml)、rh VEGF(10 ng/ml),青霉素(100 U/ml )、链霉素(100 U/ml )、L谷氨酰胺2 mmol/L,置于37℃和5% CO2条件下孵育72小时后换新鲜培养液,待细胞融合达80%以上,加入0.05%胰蛋白酶EDTA溶液消化,按1∶3或1∶4传代。

待3代后,细胞形态呈纤维细胞状,可停止加入EGF和VEGF。

取3代以上细胞作后续试验。

UVMSC 表面抗原的检测取第5代处于对数生长期UVMSC,按每管2×105个细胞,依次加入10 μl鼠抗人单克隆抗体CD29PE、CD166PE、CD73PE、CD14PE、CD144PE、CD34FITC、CD45FITC、HLA ABC、HLA DR、CD44FITC、CD105FITC,另设1管为对照组,室温避光30分钟;用PBS反复洗2-3次,减少非特异性结合;离心后,加入1%多聚甲醛固定,4℃保存,1周以内进行流式细胞仪检测。

UVMSC的细胞周期检测收集对数生长期UVMSC 1×106,PBS洗2次,0.9% FBS的70%乙醇重悬,4℃保存过夜,然后用PBS洗2次,加1 mg/ml RNase于37℃孵育30分钟,加入150 μg/ml PI,室温避光20分钟,上流式细胞仪进行细胞周期检测。

UVMSC的生长曲线检测收集UVMSC细胞,按每孔500个细胞接种于96孔板内,每组3个复孔,待24小时后,加入MTT 20 μl,4小时后加入100 μl裂解液,于37℃过夜,第2天用酶联仪测定OD540,连续测定6天。

定向诱导UVMSC向成骨细胞分化的方法与鉴定收集消化后UVMSC,按3 000/cm2接种于6孔板内,成骨的诱导体系为:地塞米松0.1 μmol/L、β甘油磷酸钠10 mmol/L、抗坏血酸磷酸盐50 μmol/L、10% FBS、高糖DMEM,每3天全量换液,维持3周,然后进行碱性磷酸酶检测,方法同文献[6]。

定向诱导UVMSC向脂肪细胞分化的方法与鉴定收集UVMSC后按9 000/cm2接种于6孔板内,待细胞贴壁后,加入脂肪诱导体系:地塞米松1 μmol/L、IBMX 0.5 μmol/L、消炎痛200 μmol/L、10% FBS、高糖DMEM,每3天全量换液,维持3周,然后进行油红染色,显微镜下观察细胞内脂肪小滴形成情况。

定向诱导UVMSC向软骨细胞分化的方法与鉴定收集第3代到第5代细胞,取2×105细胞放于15 ml塑料管内,300×g离心10分钟,弃上清液,加入0.5 ml软骨培养体系,包括:ITS A 5 μl、地塞米松0.1 μmol/L、抗坏血酸磷酸盐50 μmol/L、丙酮酸钠1 mmol/L、TGFβ3 10 ng/ml、高糖DMEM补足0.5 ml。

每3天全量换液,培养3周后,石蜡包埋,切片,进行甲苯胺蓝染色鉴定。

结果形态学观察Ⅳ型胶原酶消化的细胞接种72小时后全量换液。

此时可见少量形态各异的细胞贴壁,散在分布。

1周左右,贴壁细胞形成集落,绝大多数细胞呈纺锤形或成纤维样细胞,与骨髓来源的MSC形态相似。

细胞折光性较好,核仁明显,胞体较骨髓MSC大,且胞体较宽(图1A)。

同时可见少量鹅卵形细胞,可能为脐带静脉内皮细胞。

约14天后,细胞可长至80%-90%融合,用0.05%胰蛋白酶EDTA消化。

传代1-2次后,细胞形态变得较为均一,脐带静脉Figure 1. Morphology of MSCs from perfusion of umbilical cord vein (UVMSC). A: UVMSC in primary culture for one week. B: UVMSC at passage 5, reaching a 100% confluence and forming a vortex arrangement(10×10).内皮细胞得到抑制。

将培养液更换为含有bFGF(10 ng/ml)、2 mmol/L谷氨酰胺的10% FBS的αMEM。

细胞长100%融合时,细胞呈漩涡状(图1B),细胞可培养20代以上。

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