实验10脂质体的制备
脂质体的制备实验报告
脂质体的制备实验报告脂质体的制备实验报告引言脂质体是一种由磷脂类物质构成的微小球体，具有良好的生物相容性和生物可降解性，因此在药物传递和生物医学领域具有广泛的应用。
本实验旨在探究脂质体的制备方法及其性质。
材料与方法实验所需材料包括磷脂、胆固醇、药物（如硝酸甘油）、有机溶剂（如氯仿、甲醇）、无水乙醇等。
制备过程如下：1. 溶解磷脂和胆固醇：将所需量的磷脂和胆固醇溶解于有机溶剂中，如氯仿和甲醇的混合物中，以获得磷脂和胆固醇的混合液。
2. 脂质体的形成：将药物溶解于混合液中，搅拌均匀，使药物与磷脂和胆固醇相互作用。
3. 溶剂挥发：将混合液转移到圆底烧瓶中，使用旋转蒸发仪将有机溶剂挥发，直到获得脂质体的混悬液。
4. 脂质体的稳定：向混悬液中加入一定量的无水乙醇，使脂质体进一步稳定。
结果与讨论通过上述制备方法，我们成功制备了硝酸甘油脂质体。
观察到脂质体呈现微小球形状，粒径均匀分布。
此外，我们还对脂质体的性质进行了一系列的实验和分析。
1. 粒径分析：使用动态光散射仪测定脂质体的平均粒径。
结果显示，制备的脂质体平均粒径为100-200纳米，符合药物传递的要求。
2. 药物包封率：采用高效液相色谱法测定药物包封率。
结果显示，硝酸甘油的包封率达到了90%以上，表明脂质体在药物传递中具有较高的效率。
3. 药物释放性能：通过离心法和体外释放实验，研究了脂质体的药物释放性能。
结果显示，硝酸甘油脂质体具有缓释性能，能够持续释放药物，延长药物的作用时间。
结论本实验成功制备了硝酸甘油脂质体，并对其性质进行了详细的研究。
结果表明，制备的脂质体具有良好的粒径分布、高包封率和缓释性能，适用于药物传递和治疗。
脂质体作为一种重要的药物传递系统，具有巨大的应用潜力，可以进一步研究其在其他领域的应用。
结语通过本次实验，我们对脂质体的制备方法和性质有了更深入的了解。
脂质体的制备过程相对简单，但对于药物传递的效果有着重要的影响。
进一步的研究可以探索不同的制备方法和改进药物的包封率和释放性能，以满足不同药物传递的需求。
实验10脂质体的制备
实验目的与要求
掌握脂质体的制备方法和技 术；
能够根据实际需求设计和优 化脂质体药物载体；
了解脂质体的理化性质和生 物学特性；
实验过程中需严格控制实验 条件，确保实验结果的准确 性和可重复性。
02 实验原理
脂质体的形成机制
脂质体的形成是磷脂分子在水和油界面自组装的结果，当磷脂分子被置于水油界 面时，由于疏水效应，磷脂分子会向油相倾斜，而头部则向水相暴露，从而形成 双层膜结构。
避免污染
在实验过程中，要保持实验室的清洁， 避免尘埃和微生物污染，以确保实验 结果的准确性。
安全防护
在实验过程中，要穿戴好实验服和化 学防护眼镜，确保实验安全。
05 实验结果与分析
实验结果展示
1 2
脂质体粒径分布
通过动态光散射法测得，结果显示脂质体粒径在 100-200nm之间，分布较均匀。
包封率
在一定条件下，磷脂分子可以在水油界面上完全排列成单层膜，形成封闭的球形 结构，即脂质体。
脂质体的制备方法
薄膜分散法
将磷脂和脂溶性药物溶于有机溶 剂中，然后将有机溶剂蒸发，使 磷脂和药物在表面上形成薄膜， 再加入水进行搅拌，得到脂质体。
逆相蒸发法
将磷脂和脂溶性药物溶于有机溶 剂中，加入水后搅拌，使药物和 磷脂在水/有机溶剂界面形成双 分子层，然后蒸发掉有机溶剂，
实验的未来发展与应用前景
实验方法改进
应用领域拓展
随着科学技术的不断发展，我们可以 探索更加先进的制备方法和技术，以 提高脂质体的质量和稳定性。例如， 采用微流控技术、纳米技术等方法制 备脂质体，可以获得更小粒径、更高 包覆率的脂质体。
脂质体作为一种模拟细胞膜的结构和 功能的载体，在药物传递、基因治疗 、生物检测等领域具有广泛的应用前 景。随着研究的深入和技术的进步， 我们可以将脂质体应用于更多的领域 ，为生物医学研究和应用提供更多可 能性。
脂质体的制备方法
脂质体的制备方法脂质体是一种在生物医学领域中具有广泛应用前景的载体，它可以用于药物传递、基因治疗等方面。
脂质体的制备方法有多种，下面将介绍其中常用的几种方法。
首先，膜溶解法是一种常见的脂质体制备方法。
在这种方法中，磷脂溶解在有机溶剂中，然后将水相缓慢注入有机相中，通过超声或搅拌等手段使两相混合，形成脂质体。
这种方法制备的脂质体粒径分布较窄，适用于一些需要较为均匀粒径的应用。
其次，薄膜水合法也是一种常用的脂质体制备方法。
在这种方法中，磷脂溶解在有机溶剂中，然后将溶液旋转蒸发，形成薄膜，最后通过加入适量的缓冲液使薄膜迅速水合膨胀，形成脂质体。
这种方法制备的脂质体结构较为稳定，适用于一些需要长期保存的应用。
另外，脂质体凝胶法也是一种常见的制备方法。
在这种方法中，磷脂和胆固醇混合后，加入溶剂并加热，形成透明的溶液，然后冷却形成凝胶，最后通过加入缓冲液使凝胶水合膨胀，形成脂质体。
这种方法制备的脂质体具有较高的稳定性和载药量，适用于一些需要长期保存和高载药量的应用。
最后，脂质体膜内溶解法也是一种常用的制备方法。
在这种方法中，磷脂和胆固醇混合后，在有机溶剂中形成薄膜，然后将药物溶解在内水相中，最后将内水相缓慢注入有机相中，通过超声或搅拌等手段使两相混合，形成脂质体。
这种方法制备的脂质体可以实现药物的高效载荷，适用于一些需要高效载药的应用。
综上所述，脂质体的制备方法有多种，每种方法都有其适用的场景和特点。
在选择制备方法时，需要根据具体的应用要求和实验条件进行综合考虑，以选择最适合的制备方法。
希望本文介绍的内容能对脂质体的制备方法有所帮助。
脂质体的制备方法
脂质体的制备方法
脂质体是一种由两层磷脂分子构成的微小囊泡，内部可以包裹
水溶性或脂溶性的药物。
由于其良好的生物相容性和药物传递性能，脂质体在药物输送领域得到了广泛的应用。
下面我们将介绍脂质体
的制备方法。
首先，脂质体的制备需要选择合适的磷脂。
常用的磷脂有卵磷脂、大豆磷脂、磷脂酰胆碱等。
在实验室条件下，我们可以根据需
要选择不同种类的磷脂来制备脂质体。
其次，将所选的磷脂溶解在有机溶剂中，得到磷脂溶液。
常用
的有机溶剂有氯仿、甲醇、乙醇等。
在此过程中需要注意控制温度
和溶剂的选择，以确保磷脂能够完全溶解。
接下来，将药物溶解在水相中。
需要注意的是，药物的选择应
当考虑其溶解度和药效学特性。
将药物溶液缓慢滴加到磷脂溶液中，并利用超声波或机械搅拌等方法使两相充分混合。
然后，利用旋转蒸发、薄膜超滤、凝胶层析等方法去除有机溶剂，得到脂质体悬浮液。
在此步骤中需要注意控制温度和压力，以
避免对脂质体结构的破坏。
最后，通过超声处理、高压均质等方法对脂质体悬浮液进行处理，得到均匀、稳定的脂质体悬浮液。
在此过程中需要注意控制处
理时间和能量密度，以确保脂质体的质量和稳定性。
综上所述，脂质体的制备方法包括选择合适的磷脂、溶解磷脂、药物的溶解和混合、去除有机溶剂以及最后的处理步骤。
在实际操
作中，需要严格控制各个步骤的条件，以确保脂质体的质量和稳定性。
希望以上内容能够对您有所帮助。
脂质体制备实验报告
脂质体制备实验报告1. 引言脂质体是一种由磷脂、胆固醇等组分构成的微小球形结构，广泛应用于药物传递、基因治疗等领域。
本实验旨在通过简单的实验步骤，了解脂质体的制备方法及其特性。
2. 实验材料•卵磷脂（L-α-磷脂酰胆碱）•胆固醇•氯仿•甲醇•磷酸盐缓冲液（pH 7.4）3. 实验步骤步骤一：制备脂质体的脂质溶液1.取适量的卵磷脂和胆固醇，按磷脂和胆固醇的摩尔比例混合（通常为10:1）。
2.将混合的脂质溶液置于干燥密闭容器中，加入适量的氯仿。
3.使用超声波仪器对溶液进行均匀混合，直到形成乳白色的透明溶液。
步骤二：制备脂质体悬浮液1.取适量的脂质溶液，将其加入磷酸盐缓冲液（pH 7.4）中。
2.使用超声波仪器对溶液进行均匀混合，直到脂质体悬浮分散均匀。
步骤三：脂质体特性分析1.利用动态光散射仪（DLS）测定脂质体的平均粒径和粒径分布。
2.利用透射电子显微镜（TEM）观察脂质体的形貌。
4. 实验结果与讨论经过实验制备得到的脂质体悬浮液呈乳白色，具有较好的分散性。
通过DLS测定，发现脂质体的平均粒径约为100 nm，粒径分布较窄。
透射电子显微镜观察结果显示，脂质体呈现球形结构，表面光滑。
这些结果表明，本实验制备的脂质体具有良好的稳定性和合适的粒径。
脂质体的制备方法简单、成本较低，适用于大规模制备。
脂质体具有良好的生物相容性，可被细胞摄取，并能够在细胞内释放药物。
因此，脂质体在生物医学领域具有广阔的应用前景，例如用于药物传递、基因治疗等方面。
5. 结论本实验通过简单的步骤制备了脂质体，并对其进行了特性分析。
实验结果表明，制备的脂质体具有较小的粒径和良好的稳定性，适用于药物传递等应用。
本实验为脂质体制备提供了一个简单可行的方法，为进一步研究和应用脂质体奠定了基础。
6. 参考文献[1] Torchilin, V. P. (2005). Recent advances with liposomes as pharmaceutical carriers. Nature Reviews Drug Discovery, 4(2), 145-160.[2] Allen, T. M., & Cullis, P. R. (2004). Drug delivery systems: entering the mainstream. Science, 303(5665), 1818-1822.。
脂质体的制备
脂质体的制备脂质体是一种常见的生物细胞的一种重要的结构元素，它拥有独特的外型和内部结构，含有丰富的脂质和蛋白质，能够构成细胞的支架并且能赋予细胞丰富的功能。
脂质体也可以被用于制备有药效负载物质（如药物、基因治疗药物等）的药物载体，有助于药物更好地穿越血脑屏障，从而更有效地治疗神经系统疾病。
因此，脂质体制备技术受到了科学家们的关注。
1、脂质体制备技术主要有三种：溶胀法、过失法和双膜法，其中溶胀法是最常见的。
溶胀法的原理是利用热溶剂应力和化学应力使表面活性剂脂质形成脂质体。
过失法是利用热溶剂或难溶的脂质的溶解度的变化使其形成脂质体，这种方法的优点是能够大量制备单组分微粒，但缺点是生成的脂质体不稳定，多组分混合也不利于微粒的形成。
双膜法是由水溶性溶剂和水不溶的溶剂混合之后，表面活性剂脂质分相聚合形成微胶囊，该方法制备的脂质体在稳定性上有很大的提高，有利于多组分混合。
2、脂质体制备需要一系列操作步骤，包括溶剂准备放入热循环搅拌器中，调整温度和搅拌速度，根据不同的技术，使脂质体形成并分离。
其中，调节温度和搅拌速度是关键步骤，必须在合理温度范围内，以保证溶液和混合能够有效完成，同时保证搅拌速度和时间，让脂质体形成并分离。
3、在实际操作中，应考虑实验室条件、材料特性和安全性，根据实验需要确定溶剂的比例，并保证材料的完整性及包覆物的质量。
另外，脂质体的安放也需要非常严格的管理，及时进行筛选试验，以保证其品质及有效投入使用。
脂质体的制备是一种微观尺度上的操作，通过合理的物理处理，可以使脂质体具有一定的结构稳定性，可以承载药物和其它物质，发挥药物平台作用，比较安全有效地用于药物载体制备，为药物的有效穿越血脑屏障而打开新的立体思路。
脂质体的制备
实验十五脂质体的制备一实验目的1.了解脂质体（liposome）在细胞工程技术中的应用及其制备方法。
2.掌握采用超声波法、冰冻干燥法和冻融法三种不同的方法制备脂质体的方法并了解该技术在细胞工程中的应用。
二实验原理脂质体（liposome）的制备技术，一般采用超声波法、振荡法、乙醚蒸发法、去污剂透析法、冰冻干燥法和冻融法等。
制备方法不同，所得脂质体结构、大小不同，性质和用途也就不同（表15-1）。
种类制备方法大小(m)特性多层大脂质体(MLV)乙醚蒸发法、醇醚水法、振荡法、液相快速混合振荡法0.1~50易制备，包被物释放速度慢单层小脂质体(SUV)直接超声波法、溶剂超声波法、乙醚注射法0.02~0.05体积小，适合包被离子、小分子药物等单层大脂质体(LUV)递相蒸发法、去污剂（胆酸纳等）透析法、冰冻干燥法0.05~0.5 适合包被蛋白质、RNA、DNA片段、大分子药物及细胞融合单层巨大脂质体(GUV)冻融法5~30适合包被蛋白质、RNA、DNA片段，除菌处理较难本实验采用超声波法、冻融法、冰冻干燥法三种不同类型的方法，超声波法的原理是：在超声波作用下，磷脂类双亲媒性分子被打碎为分子或分子团，并自动重新排布成类似生物膜的双分子层囊泡。
冻融法是在超声波法形成的小脂质体基础上，通过冷冻和融解过程使其破裂，重组为大体积脂质体，在通过透析时膜内外渗透压的变化而膨胀为更大体积的脂质体。
冰冻干燥法语原理与冻融法基本一致，只在处理条件上有所不同。
三实验用品1.器材超声波清洗机、光学显微镜、荧光显微镜、荧光分光光度计、漩涡混合器、核酸蛋白检测仪、柱层析装置、冰冻干燥机。
2.试剂１）磷脂液：100mg经丙酮-乙醚法纯化的卵磷脂，57.2mg胆固醇，溶于1ml氯仿。
２）荧光液：钙黄绿素（calcein）47mg溶于100ml Tris缓冲液。
３）Tris 缓冲液：称取Tris 0.12g，EDTA0.288mg，溶于80ml去离子水中，用0.1 mol/L盐酸调Ph7.2，再加水至100ml。
脂质体制备
脂质体的制备方法
一、试剂、器材
主要试剂:
SPAN80
聚乙烯醇1750士50
天然大豆磷脂LIPoid s100
胆固醇
无水乙醚氯仿
TWEEN80
主要仪器:
AB204一N电子天平
MICROCOMPUTERPH/MV/TEMPMODEL
6171型pH计
R一201旋转蒸发仪
JY-92一H超声波细胞粉碎机(探头式超声仪)
KQ一100E型超声波清洗仪
二、制备方法
薄膜分散法一冻融法
按大豆卵磷脂(100.0mg):胆固醇:SPAN80:TWEEN80(质量比)=4:1:0.24:0.48的比例制备脂质体,加入100.00mL梨形瓶中,加10.00mL无水乙醚,振摇,于旋转蒸发仪上30℃蒸干成膜,然后加入适量TWEEN80、2.00mL干细胞提取物,3.00mLPBS缓冲液,旋转15min,使膜溶解,超声20min使溶液透明,最后补充pH=6.5的PBS至10.00mL,将此溶液于-20℃冷冻12h以上后取出,使其缓慢融化,再超声5min即得干细胞提取物脂质体混悬液。
其流程如图。
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沈阳药科大学 药剂学教学实验中心
一、
实验目的
1、掌握薄膜分散法制备脂质体的工艺。
2、掌握用阳离子交换树脂测定脂质体包封 率的方法。 3、熟悉脂质体形成原理，作用特点。 4、了解“主动载药” 与“被动载药” 的 概念。
二、 实验原理 脂质体是由磷脂与(或不与)附加剂为骨 架膜材制成的，具有双分子层结构的封闭囊 状体。
• （4）取预热的PBS 30ml，加至含有磷脂膜的烧 瓶中，65-70℃水浴中搅拌水化10-20min。取出 脂质体液体于烧杯中，置于磁力搅拌器上，室温 下，搅拌30-60min，如果溶液体积减少，可补加 水至30m1，混匀，即得。（整个过程也可在旋转 蒸发仪上完成，其它的脂质体制备也可在旋转蒸 发仪上完成。） • （5）取样，在油镜下观察脂质体形态，画出所 见脂质体结构，记录最多和最大的脂质体的粒径； 随后将所得脂质体溶液通过0.8m微孔滤膜两遍， 进行整粒，再于油镜下观察脂质体的形态，画出 所见脂质体结构，记录最多和最大的脂质体粒径。
脂质体检测结果
脂质体 类别
空白脂质体 被动法载药 脂质体 主动法载药 脂质体
形态
最大粒径 最多粒径 (m) (m)
备注
• 五、思考题 • 1. 以脂质体作为药物载体的特点。请讨 论影响脂质体形成的因素。 • 2. 从显微镜下的形态上看，“脂质体”、 “乳剂”及“微囊”有何差别？ • 3. 如何提高脂质体对药物的包封率？ • 4. 请问如何选择包封率的测定方法？本 文所用的方法与“分子筛法”、“超速离 心法”相比，有何优缺点？ • 5. 请试着设计一个有关脂质体的实验方 案？本实验方案还有哪些方面有待改进？
inside acid pH
DH+ H+ຫໍສະໝຸດ DH+ H+
D
D
•
评价脂质体质量的指标有粒径、粒径分布 和包封率等。其中脂质体的包封率是衡量脂质 体内在质量的一个重要指标。常见的包封率测 定方法有分子筛法、超速离心法、超滤法等。 本文采用阳离子交换树脂法测定包封率。“阳 离子交换树脂法”是利用离子交换作用，将荷 正电的未包入脂质体中的药物(即游离药物)， 如本实验中的游离小檗碱，通过阳离子交换树 脂吸附除去，包封于脂质体中的药物(如小檗 碱)，由于脂质体荷负电荷，不能被阳离子交 换树脂吸附，从而达到分离目的，用以测定包 封率。示意图见下图。
• 【注意事项】 • (1)在整个实验过程中禁止用火。 • (2)磷脂和胆固醇的乙醇溶液应澄清，不能在 水浴中放置过长时间。磷脂和胆固醇的比例可 以采用4：1或5：1或6：1，如果磷脂和胆固醇 的质量不好，建议采用6：1 。 • (3)磷脂、胆固醇形成的薄膜应尽量薄。 • (4)60-65℃水浴中搅拌水化10-20min时，一定 要充分保证所有脂质水化，不得存在脂质块。
• 其他方法：冷冻干燥法 、熔融法 等。
•
在制备含药脂质体时，根据药物装载的机 理不同，可分为“主动载药” 与“被动载药” 两大类。所谓“主动载药”，即通过脂质体内 外水相的不同离子或化合物梯度进行载药，主 要有K+-Na+梯度和H+梯度(即pH梯度)等。传统上， 人们采用最多的方法是“被动载药”法。所谓 “被动载药”，即首先将药物溶于水相或有机 相(脂溶性药物)中，然后按所选择的脂质体制 备方法制备含药脂质体，其共同特点是：在装 载过程中脂质体的内外水相或双分子层膜上的 药物浓度基本一致，决定其包封率的因素为药 物与磷脂膜的作用力、膜材的组成、脂质体的 内水相体积、脂质体数目及药脂比(药物与磷脂 膜材比)等。
• ⑤吸收度的测定：以空白溶剂为对照，在 345nm波长处分别测定样品溶液与对照品 溶液的吸收度，计算柱分离度。分离度要 求大于0.95。 • 柱分离度 = 1－[A样/（A对×2.5） ] • 式中，A 样 —样品溶液的吸收度；A 对 —对 照品溶液的吸收度；2.5—对照品溶液的 稀释倍数。
• 注意：在进行柱分离度实验前，需要用 空白脂质体对分离小柱进行饱和，具体 操作如下：量取0.2ml空白脂质体，置于 分离小柱顶部，待柱顶部的液体消失后， 仔细用5mlPBS进行洗脱，待液体滴尽即 可。
• ②对照品溶液的制备：取①中制得的混合液 0.1ml置10ml量瓶中，加入95％乙醇6ml，振摇使 之溶解，再加PBS至刻度，摇匀，过滤，弃去初 滤液，取续滤液4.0ml于10ml量瓶中，加PBS至刻 度，摇匀，即得。 • ③样品溶液的制备：取①中制得的混合液0.1m1 至分离柱顶部，待柱顶部的液体消失后，放置 5min，仔细加入PBS(注意不能将柱顶部离子交换 树脂冲散)，进行洗脱(约需2-3ml PBS)，同时收 集洗脱液于10m1量瓶中，加入95％乙醇6ml，振 摇使之溶解，再加PBS至刻度，摇匀，过滤，弃 取初滤液，取续滤液为样品溶液。 • ④ 空 白 溶 剂 的 配 制 ： 取 乙 醇 (95 ％ ) 30ml ， 置 50m1量瓶中，加PBS至刻度，摇匀，即得。
• 对于脂溶性的、与磷脂膜亲和力高的药物， “被动载药”法较为适用。而对于两亲性药物， 其油水分配系数受介质的pH值和离子强度的影 响较大，包封条件的较小变化，就有可能使包 封率有较大的变化，首选“主动载药” 方法。
• 下图为“主动载药”中pH梯度法载药原理示
意图
oudside neutral pH
（二）实验部分
1．空白脂质体的制备（用于测定柱分离度用）
【处方】 注射用大豆卵磷脂 胆固醇 无水乙醇 磷酸盐缓冲液
0.9g 0.3g 2-20m1 适量 制成约30m1脂质体
• 【制备】 • （1）磷酸盐缓冲液（PBS）的配制 称取磷酸 氢二钠（Na2HPO4﹒12H2O）0.37g与磷酸二氢钠 （NaH2PO4﹒2H2O）2.0g,加蒸馏水适量，溶解并 稀释至1000ml（pH约为5.7）。 • （2）称取处方量磷脂、胆固醇于100ml（也可 以是250ml、500ml或1000ml ）烧瓶中，加无水 乙醇1-2ml（根据情况可以加10ml或20ml ）， 置于65-70℃水浴中，搅拌使溶解，于旋转蒸发 仪上旋转，使磷脂的乙醇液在壁上成膜，减压 除乙醇，制备磷脂膜。 • （ 3 ） 另 取 PBS 30ml 于 小 烧 杯 中 ， 同 置 于 6570℃水浴中，保温，待用。
• 【附注】 • （1）柠檬酸缓冲液 称取柠檬酸10.5g 和柠檬酸钠7g置于1000ml量瓶中，加水 溶解并稀释至1000ml，混匀，即得。 • （2）NaHCO3溶液 称取NaHCO3 50g，置 于 1000ml 量 瓶 中 ， 加 水 溶 解 并 稀 释 至 1000m1，混匀，即得。
• 4．盐酸小檗碱脂质体包封率的测定 • （1）阳离子交换树脂分离柱的制备 取 已处理好的阳离子交换树脂适量，装于底 部已垫有少量玻璃棉（或多孔垫片）的 5ml注射器筒中（总量约4ml刻度处），加 入PBS水化过的阳离子交换树脂，自然滴 尽PBS，即得。 • （2）柱分离度的考察 • ①盐酸小檗碱与空白脂质体混合液的制备： 精密量取3mg／m1盐酸小檗碱溶液0.1ml， 置小试管中，加入0.2ml空白脂质体，混 匀，即得。
• • • • • • •
2．盐酸小檗碱脂质体的制备（被动载药法）
【处方】 注射用豆磷脂 0.6 g 胆固醇 0.2 g 无水乙醇 2-20m1 盐酸小檗碱溶液(1mg／m1) 30ml 制成30ml脂质体
• 【制备】被动载药法 • (1)盐酸小檗碱溶液的配制 称取适量的盐酸小 檗碱溶液，用磷酸盐缓冲液配成 lmg／ml和3mg ／m1两种浓度的溶液。 • (2)盐酸小檗碱脂质体的制备 按处方量称取豆 磷脂、胆固醇置于100ml烧瓶中，加无水乙醇， 余下操作除将PBS换成盐酸小檗碱溶液外，同 “空白脂质体制备”，即得“被动载药法 ”制 备的小檗碱脂质体。 • 【质量检查】观察粒子形态，最大粒径与最多粒 径，药物的包封率。 • 【注意事项】同前。
•
脂质体的制备方法有多种，根据药物的性质或研究 需要来进行选择。 • (1)薄膜分散法 这是一种经典的制备方法，它可形成多 室脂质体，经超声处理后得到小单室脂质体。此法优点 是操作简便，脂质体结构典型，但包封率较低。 • (2)注入法 有乙醚注入法和乙醇注入法等。“乙醇注入 法”是将磷脂等膜材料溶于乙醇中，在搅拌下慢慢滴于 55-65℃含药或不含药的水性介质中，蒸去乙醇，继续搅 拌1—2h，即可形成脂质体。 • （3）逆相蒸发法 系将磷脂等脂溶性成分溶于有机溶剂， 如氯仿、二氯甲烷中，再按一定比例与含药的缓冲液混 合、乳化，然后减压蒸去有机溶剂即可形成脂质体。该 法适合于水溶性药物、大分子活性物质，如胰岛素等的 脂质体制备，可提高包封率。
常见的磷脂分子结构中有两条较长的疏 水烃链和一个亲水基团。将适量的磷脂加至 水或缓冲溶液中，磷脂分子定向排列，其亲 水基团面向两侧的水相，疏水的烃链彼此相 对缔和为双分子层，构成脂质体。
用于制备脂质体的磷脂有天然磷脂，如大 豆卵磷脂、蛋黄卵磷脂等；合成磷脂，如二棕 榈酰磷脂酰胆碱、二硬脂酰磷脂酰胆碱等。常 用的附加剂为胆固醇。胆固醇也是两亲性物质， 与磷脂混合使用，可制得稳定的脂质体，其作 用是调节双分子层的流动性，降低脂质体膜的 通透性。其他附加剂有十八胺、磷脂酸等，这 些附加剂能改变脂质体表面的电荷性质，从而 改变脂质体的包封率、体内外稳定性、体内分 布等其他相关参数。
• （2）主动载药 准确量取空白脂质体2.0ml、药 液(3mg／m1) 1.0m1、NaHCO3 溶液0.5m1，在振摇 下依次加入10ml西林瓶中，混匀，盖上塞，70℃ 水浴中保温20min（定时摇动），随后立即用冷 水降温，即得。 • 【注意事项】 • (1) “主动载药”过程中，加药顺序一定不能颠倒， 加三种液体时，随加随摇，确保混合均匀，保证 体系中各部位的梯度一致。 • (2)水浴保温时，应注意随时轻摇，只需保证体 系均匀即可，无需剧烈振摇。 • (3)用冷水冷却过程中，应轻摇。 • 【质量检查】观察粒子形态，最大粒径与最多粒 径，药物的包封率。