植物生理学实验指导
现代植物生理学实验指南
现代植物生理学实验指南植物生理学是一门重要的生物学科，研究植物在生长、发育、代谢和适应环境等方面的生理过程。
为了深入理解植物生理学，我们需要进行各种实验研究，这里为大家提供一份现代植物生理学实验指南，帮助大家系统了解植物生理学实验的基本方法和技巧。
实验一：光合作用实验光合作用是植物体内最重要的生理过程之一，我们可以通过测量植物的氧气释放量和二氧化碳吸收量来评估光合作用效率。
实验步骤如下：1. 将一片绿叶片放入水中，并用环状金属片夹住叶片。
2. 将装有水的容器倒置在金属片上，并使叶片完全浸入水中。
3. 在光亮条件下放置数小时，测量水中溶氧量的变化，记录并计算光合速率。
4. 重复操作若干次，得出稳定的结果。
实验二：水分利用实验水是植物生命的重要组成部分，其缺乏或过多都会对植物生长产生影响。
我们可以通过测量植物根系吸水能力和细胞渗透压来评估植物对水分的利用效率。
实验步骤如下：1. 准备两盆一模一样的植物，其中一盆为对照组，另一盆加盐水。
2. 分别测量两盆植物的根系吸水量和细胞渗透压，记录数据。
3. 将两盆植物进行比较，得出对盐水处理的植物的适应能力。
实验三：激素生理实验植物激素在影响植物生长、发育和适应环境方面发挥了重要作用，我们可以通过测量植物生长的速率和荷尔蒙水平来评估激素的作用。
实验步骤如下：1. 选择一些与生长相关的植物，如小麦或豌豆等。
2. 分别在一组处理中加入不同浓度的激素，另一组作为对照组。
3. 坚持一段时间，测量植物的生长速率和荷尔蒙水平，比较两组的差异。
以上是三个常见的植物生理学实验，希望这份实验指南能对学习植物生理学的同学们有所帮助。
在实验过程中，需要注意实验条件的一致性和数据的准确性，以确保实验的正确性和可靠性。
植物生理学实验指导
实验一叶绿体色素提取分离与理化性质及含量测定一、实验目的和意义▪绿色植物的光合作用是在叶绿体中的叶绿体色素中进行的，了解叶绿体色素的组成、性质及测定对于理解光合作用的本质很有帮助。
因此，测定叶绿素含量便成为研究光合作用与氮代谢必不可少的手段，在作物育种、科学施肥、看叶诊断中有着广泛的应用二、实验原理植物叶绿体色素是吸收太阳光能，进行光合作用的重要物质。
它一般由叶绿素a、叶绿素b、胡萝卜素和叶黄素组成。
这些色素都不溶于水，而溶于有机溶剂，故可用乙醇、丙酮等有机溶剂提取。
色素分离的方法有多种，纸层析是最简便的一种。
当溶剂（有机推动剂）不断从纸上流过时，由于混合物（叶绿素提取液）中各种成分在固定相（滤纸纤维素所吸附的水分）和流动相（有机推动剂）间具有不同的分配系数，所以移动速度不同，经过一定时间后，可将各种色素分开。
▪叶绿素是一种二羧酸——叶绿酸与甲醇和叶绿醇形成的复杂酯，故可与碱起皂化反应而生成醇（甲醇和叶绿醇）和叶绿酸的盐，产生的盐能溶于水中，可用此法将叶绿素与类胡萝卜素分开。
▪叶绿素与类胡萝卜素都具有光学活性，表现出一定的吸收光谱，可用分光光度计精确测定。
叶绿素吸收光量子而转变成激发态，激发态的叶绿素分子很不稳定，当它变回到基态时可发射出红光量子，因而产生荧光。
叶绿素的化学性质很不稳定，容易受强光的破坏，特别是当叶绿素与蛋白质分离以后，破坏更快，而类胡萝卜素则较稳定。
叶绿素中的镁可以被氢离子所取代而成褐色的去镁叶绿素。
去镁叶绿素遇铜则成为铜代叶绿素，铜代叶绿素很稳定，在光下不易破坏，故常用此法制作绿色多汁植物的浸渍标本。
▪测定叶绿体色素混合提取液中叶绿素a、b和类胡萝卜素的含量，只需测定该提取液在三个特定波长下的吸光度D，并根据叶绿素a、b及类胡萝卜素在该波长下的吸光系数即可求出其浓度。
▪Ca=12.7D663–2.69 D645（3）▪Cb=22.9 D645–4.68D663（4）▪Ck=4.7D440- 0.27C a+b三、实验材料和器材1、实验材料▪菠菜或白菜叶片2、器材：722型分光光度计、电子天平、量筒、研钵、剪刀、漏斗、滤纸、移液管（1mL）、试管及试管架、洗耳球、酒精灯、电筒等。
植物生理学作业指导书
植物生理学作业指导书1. 实验目的本次实验旨在帮助学生加深对植物生理学相关知识的理解与应用，通过实际操作实验室中的常见技术和方法，培养学生的实验观察能力和数据分析能力。
2. 实验仪器和材料- 植物样本（如豆芽、植物叶片等）- 干燥器- 秤- 显微镜- 毛细管- 温度计- pH计- 高速离心机- 甘油3. 实验步骤3.1 实验准备3.1.1 准备不同植物材料，确保植物样本的健康状态。
3.1.2 对植物样本进行干燥处理，使其水分含量降至一定程度。
3.1.3 使用秤量取干燥后的植物样本质量，并记录下来。
3.2 水分传导实验3.2.1 取一段长度适当的毛细管，将其一端与水分容器相连，另一端插入植物茎部。
3.2.2 观察水分在毛细管中的上升高度，并记录下来。
3.2.3 根据水分上升高度计算植物茎部的水势。
3.3 光合作用实验3.3.1 准备好一片健康叶片，并在其表面涂抹甘油。
3.3.2 使用显微镜观察叶片中的叶绿素体，并记录下来。
3.3.3 在不同光强下测量光合作用速率，并绘制光合作用速率与光强之间的关系曲线。
3.4 酶活性实验3.4.1 取一定量的酶液，并在不同温度下进行酶活性测定。
3.4.2 使用高速离心机离心酶液，并测定上清液中的酶活性。
3.4.3 根据测定结果，分析酶活性与温度之间的关系。
4. 实验结果分析根据实验步骤中所记录的数据，对每个实验环节进行结果分析。
可以通过绘制图表、计算数据指标等方式呈现实验结果，并结合理论知识进行解释和讨论。
5. 思考题5.1 就水分传导实验结果，探讨植物水势与植物体内水分传导之间的关系。
5.2 对光合作用实验结果进行解读，分析光合作用速率与光强之间的关系，以及甘油对光合作用的影响。
5.3 对酶活性实验结果进行分析，并探讨酶活性与温度之间的关系。
6. 实验总结结合实验步骤、实验结果和思考题，总结本次实验的目的、方法、结果和意义，提出改进措施，并陈述你在本次实验中的收获和体会。
植物生理学实验指导
植物生理学实验指导周祖富黎兆安主编广西大学实验规则1. 做好实验前的预习及准备。
每次实验前务必将指定项目的实验指导仔细阅读，熟悉每项实验的目的、原理、方法和操作程序，并复习教材或笔记中有关部分，使实验进行时能独立操作及分析实验结果2. 保特室内安静，在实验中不得随意走动或谈话，以免影响他人实验。
3. 要爱惜国家财物。
每一位同学应本着爱护国家资财及节约的精神，对器具谨慎使用，如有损坏，应立即报告指导教师，并进行登记。
4.遵守仪器、器具使用规定。
贵重仪器使用时，应有教师在旁指导，未明了正确使用方法前，切勿乱动，以免损坏仪器。
凡属公用器具及药品，不得拿到自己桌上，用后应放回原处，以便他人使用。
5. 保特室内的清洁卫生。
实验室不准随地吐痰或乱掷废纸屑。
每次实验结束后，每组负责清洗并整理本组的实验器具及桌面，以养成良好的工作习惯；值日生应负责扫地、抹桌、倒污水等工作，以保特实验室的整洁。
6. 认真做好实验观察及实验报告。
当实验有继续观察必要时，应按时观察。
凡需同学负责照管的实验，必须按规定管理。
7. 实验完毕后，应按规定格式书写实验报告，并按指定日期交给指导教师批阅。
实验报告内容应包括：实验日期；实验题目；实验目的；实验基本原理；实验材料、仪器设备、药品；实验方法与步骤；实验结果与分析。
8. 实验结果应根据自己实验所得如实记录，不得擅自修改。
如因不严格按实验操作规程进行实验，而导致实验失败时，必须重做。
前言《植物生理学》是农学、园艺、植保、农业资源与环境和生物技术等专业必修的专业基础课程，植物生理学实验是该课程重要的实践性教学环节。
通过实验，进一步加深学生对基础理论的认识和理解，加强对学生基本实验技能的训练和动手能力的培养，使学生初步掌握植物生理的基本测定方法和技术，提高学生分析问题和解决问题的能力，为今后参与科学研究奠定基础。
本教材根据《植物生理学》的各章节内容编写，目的在于让学生较全面接触和了解植物生理学各个过程的实验技术方法。
植物生理学实验指导
实验一小液流法测植物组织水势一、目的学会用小液流法和质壁分离法测植物组织水势和渗透势。
二、材料用具及仪器药品马铃薯、刀片、移液管、培养皿、蔗糖溶液（1mol/L），显微镜三、原理1、小液流法测植物组织水势植物细胞是一个渗透系统，若将植物细胞放在各种不同浓度的蔗糖溶液中时，由于细胞液的浓度与外界溶液的浓度（或水势）的差异。
两者便会发生水分的交换。
当ψ cell外＞ψw cell时，细胞则吸水，细胞外溶液的浓度↑，细胞外溶液的比重↑。
当ψ cell外＝ψw cell时，细胞液与细胞外溶液水分平衡，细胞外溶液的浓度不变，细胞外溶液的比重不变。
当ψ cell外＜ψw cell时，细胞则失水，细胞外溶液的浓度↓，细胞外溶液的比重↓。
本实验是以有色液滴的比重变化确定等渗浓度。
根据公式，即可计算出外溶液的ψs，即ψs= - CiRT[i:离解系数，蔗糖等于1;c:等渗浓度；R：气体常数，0.0083 MPa·L/mol·K；T表示绝对温度，即273+t（实验时溶液的温度）]。
2、质壁分离法测渗透势ψw＝ψp＋ψs。
当ψ cell外＞ψw cell时，细胞则吸水。
当ψ cell外＜ψw cell时，细胞则失水，发生质壁分离。
当发生初始质壁分离时，ψp＝0 ，ψw＝ψs＝ψ cell外= - CiRT四、方法步骤小液流法测植物组织水势1．按十字交叉法把1mol/L蔗糖溶液（母液）分别配成0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 mol/L蔗糖溶液各10ml。
分别置于5支大试管中，编号作为实验组。
2．另取5支小试管对应于实验组编号，从实验组取2ml蔗糖溶液作为观察组。
3．切约2mm左右见方的马铃薯片。
4．把马铃薯片放入实验组，每组20片，20分钟后，加一点点亚甲基蓝粉末，摇匀。
5．用吸管吸蓝色液，伸入对应观察组中部，轻轻挤出一滴液滴，轻轻取出吸量管，观察液滴移动方向。
6.根据公式ψs=-CiRT,计算出所测材料的ψ cell质壁分离法测渗透势1、按十字交叉法把1mol/L蔗糖溶液（母液）分别配成0.1、0.2、0.3、0.5、0.6 mol/L 蔗糖溶液各2ml。
植物生理学实验指导张志良
植物生理学实验指导引言植物生理学是研究植物内部生物化学和物理活动的科学。
通过实验的方法研究植物的生理过程和生理功能，能够帮助我们更好地了解植物的生长发育、代谢、适应环境等方面的机制。
本实验指导将介绍几个常见的植物生理学实验，并详细说明实验的步骤和注意事项。
实验一：光合作用的测定实验目的通过测定植物光合作用的速率，了解光合作用的基本原理和影响因素。
实验材料和设备•高度光合作用活跃的绿叶片•蒸馏水•滤纸•光合色素提取液•盐酸•詹氏液•光合作用速率测定仪实验步骤1.准备一片新鲜的绿叶片，并使用滤纸将其表面的水分吸干。
2.将绿叶片放入提取瓶中，加入适量的蒸馏水，盖好瓶盖，放置在强光下静置30分钟。
3.将提取瓶中的绿叶片取出，并将其压碎，制成绿叶片提取液。
4.在一次容器中加入10ml绿叶片提取液，同时加入1ml盐酸，用詹氏液调节为酸性条件。
5.将调节好酸性的绿叶片提取液瞬时注入光合作用速率测定仪中。
6.根据测定仪的说明书进行操作，记录每个时间点下的光合作用速率值。
注意事项•实验中所使用的绿叶片应当是光合作用活跃的绿叶片，新鲜度较高。
•测定的过程中应注意光照的稳定性，以免影响光合作用速率的准确性。
•实验过程中应注意安全操作，避免盐酸和其他化学试剂的直接接触。
实验二：渗透压的测定实验目的通过测定植物细胞内外溶液的渗透压差，了解渗透压的基本原理和影响因素。
实验材料和设备•草莓或马铃薯等含有较多汁液的植物组织•单质水•盐水•倒置显微镜•毛细管实验步骤1.取一片新鲜的含有较多汁液的植物组织，如草莓或马铃薯。
2.用刀将该组织剪碎，并将碎片放入一个玻璃杯中。
3.加入适量的单质水，使植物组织完全浸泡其中，静置12小时。
4.取一根毛细管，在一端封闭后，用吸管吸取约5cm 长的盐水，并保持液柱不断。
5.将封闭端的毛细管插入玻璃杯中，并用胶带固定在较深的位置。
6.进行倒置显微镜观察，记录质点的运动情况。
7.根据质点的运动情况，判断渗透压差的大小。
植物生理学实验指导
植物生理学实验指导目录植物材料的采集、处理与保存..................................... 实验一拟南芥种植和形态观察................................... 实验二植物细胞的活体染色和死活的鉴定......................... 实验三植物原生质体的分离和融合............................... 实验四植物叶面积测定原理、方法和步骤......................... 实验五植物细胞渗透势的测定（质壁分离法）..................... 实验六植物组织水势的测定（小液流法）......................... 实验七植物根系活力的测定（TTC法）............................ 实验八根系总吸收面积和活跃吸收面积的测定..................... 实验九离体叶绿体的制备以及完整度的测定....................... 实验十叶绿体色素的提取、分离和理化性质....................... 实验十一植物叶片光合速率的测定（改良半叶法）................. 实验十二氧电极法测定植物组织的光合与呼吸速率................. 实验十三小篮子法（广口瓶法）测定植物的呼吸速率. (37)实验十四谷物淀粉含量的测定（旋光法）......................... 实验十五类似生长素对种子萌发的影响........................... 实验十六赤霉素对α-淀粉酶的诱导形成........ 错误！未指定书签。
实验十七植物种子生活力快速测定............................... 实验十八植物光周期现象的观察................................. 实验十九植物抗逆性的测定（电导仪法）....... 错误！未指定书签。
植物生理学模块实验指导
植物生理学模块实验指导植物生理学是生物学中研究物质合成、物质积累和物质运输等生命活动,以及与之有关的光、热、水等环境因素的科学。
它是植物和环境的互动的一个研究方向，是进行农业生物学研究所需的一门重要基础课。
植物生理学模块实验指导旨在提供学生一个系统的实验指导，帮助他们深入了解植物生理学实验的各个方面。
植物生理学实验指导中，共有四个实验模块，分别是：光合作用模块、植物激素与营养元素模块、水营养模块和叶色谱模块。
1.合作用模块光合作用模块是植物生理学实验指导中最重要的模块，用于研究光能的转化、光的光谱特性、植物的光合速率等。
实验原理主要是研究植物的光合特性，以及光照下植物的叶绿素彩谱特征;具体包括：测量植物光合速率，观察植物叶片上不同类型光谱的变化，测定植物叶绿素的分布，了解光照下植物细胞活性蛋白的变化。
2.物激素与营养元素模块这个模块强调植物激素以及植物营养元素的作用。
主要子模块研究内容是植物激素的影响和作用，如：植物激素对营养元素和生长的影响，营养元素对有机物合成的影响，以及植物激素对植物的构造及功能的影响。
3.营养模块水营养模块重点研究不同环境条件下植物生理活性的变化，主要通过观察植物根系和叶片的水分变化，以及植物叶片的膨大、伸长、剪切和扭曲等性状变化来评价植物对水分的响应。
4.色谱模块叶色谱模块用于评价植物对光照和营养元素的响应，可以通过叶绿素的吸收和发射特性来评价植物的生长、叶片颜色、响应光照强度以及叶片表层的温度等。
实验中，学生将学习如何操作叶色谱仪，进行叶片的色谱测定，并对植物的叶片表层温度做出正确的判断。
以上就是本文关于植物生理学模块实验指导的内容，希望能够对学生们有所帮助，更好地理解植物生理学实验，并在实践中获得成功。
只要学生们认真阅读实验指导，仔细按照实验模块所提供的操作步骤进行操作，搭配实际的实验演示和练习，就能够取得较好的实验效果。
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实验五 蒽酮法测定可溶性糖
2 标准曲线制作 取 6 支大试管，从 0 ~ 5 分别编号， 按下表 加入各试剂。 空白对照
管号 试剂 100 µ g/ml 葡萄糖溶液 （ ml ） 蒸馏水（ ml ） 蒽酮试剂（ ml ） 葡萄糖量（ µ ） g 0 0 1.0 5.0 0 1 0.2 0.8 5.0 20 2 0.4 0.6 5.0 40 3 0.6 0.4 5.0 60 4 0.8 0.2 5.0 80 5 1.0 0 5.0 100
植物生理学实验指导
试验一 小液流法测定植物组织水势
• 试验目的 了解测定植物组织水势的方法 • 原理 将植物放在已知水势的一系列溶液中， 如果组织的水势与溶液的水势不相等，则 组织吸水或失水或维持平衡，引起溶液的 浓度、密度、电导率等参数发生变化。然 后根据这些变化情况确定植物组织的水势。
试验一 小液流法测定植物组织水势
实验五 蒽酮法测定可溶性糖
• 四、结果计算 可溶性糖(µ g/g)= (C×V1/V2)/W 式中： C —— 从标准曲线查得葡萄糖量， µ 。 g V1 ——样品提取液总体积，ml。 V2 ——显色时取样品液量， ml。 W ——样品重（ g ）。
实验五 蒽酮法测定可溶性糖
• 【实验报告】 1、本法测定的可溶性糖包含哪些种类？提高 试验精确度要注意那些步骤？
器材与试剂 1、实验仪器 高级分光光度计，离心机，天平，剪 刀、研钵，漏斗，移液管，20ml棕色容量瓶；
试验二 叶绿素ab含量的测定
2、实验试剂 丙酮，碳酸钙 3、植物叶片：同一种植物的阴叶和阳叶； 实验步骤 1、色素的提取 取新鲜叶片0.5g，放入研钵，加入纯丙酮5ml，少许 碳酸钙和石英砂，研磨成匀浆，再加入80%丙酮 酸5ml，将匀浆移入离心管，并用适量80%丙酮清 洗研钵。5000rpm离心5分钟，取上清液用80%丙 酮定容至20ml
实验六 丙二醛（MDA）的测定
• 【实验作业】 • 比较正常状况下植物组织中的MDA含量与 逆境情况下的有何不同？
实验五 蒽酮法测定可溶性糖
• 【实验材料、试剂与仪器设备】
（一）实验材料 任何植物鲜样或干样。 （二）试剂 1. 葡萄糖标准溶液（ 100 µ g/ml ）：准 确称取 100 mg 分析纯无水葡萄糖，溶于蒸 馏水并定容至 100 ml ，使用时再稀释 10 倍（ 100µ g/mL ）。
实验五 蒽酮法测定可溶性糖
实验四 小篮子法测定呼吸强度
2. 实验试剂 ①0.05mol.L-1 Ba(OH)2； ②0.1%麝香草酚酞酒精溶液； ③1/44mol.L-1草酸溶液。重结晶草酸 2.8652g，蒸馏水定容至1000ml。 3. 实验材料 发芽的小麦种子或其它植物活体。
实验四 小篮子法测定呼吸强度
• 【实验步骤】 1. 实验装置
实验四 小篮子法测定呼吸强度
4. 对照测定：材料为沸水煮死的种子，其余 步骤同上； 5. 计算 呼吸强度(CO2，mg/g.h)=(v1-v0)/{种子鲜 重(g) ×时间(h)} ******本实验应按照分析化学实验的要求， 对每个实验步骤严格操作，才能有实验结 果！
实验五 蒽酮法测定可溶性糖
Solar radiance (w.m )
-2
800
总辐射
600
400
200
0 0 500 1000 1500
-2 -1
2000
2500
光合有效辐射
PAR (umol photon.m .s )
实验五 蒽酮法测定可溶性糖
3. 样品测定 取待测样品提取液 1.0 ml 加蒽酮试剂 5 ml ，同以上操作显色测定光 密度。重复 3 次。
试验一 小液流法测定植物组织水势
• 实验报告 • 1、实验的结果； • 2、产生误差的原因。
试验二 叶绿素ab含量的测定
• 实验目的 熟悉测定未经分离的叶绿素ab的方法与 计算； • 实验原理 叶绿素a和b分别在663nm和645nm处有 吸收峰；
Ca=12.7OD663-2.69OD645 Cb=22.9OD645-4.68OD663
试验二 叶绿素ab含量的测定
2、测定光密度 取上述色素提取液1ml，加 80%丙酮溶液4ml，转入比色杯中中，以 80%丙酮为对照，分别测定663和645nm时 的吸收值； 3、计算 实验报告 1、比较阴阳叶叶绿素ab的含量比值的差异。
实验三 改良半叶法植物光和强度测定
• 实验原理 将植物对称叶片的一部分遮光或 取下置于暗处，另一部分则进行光合作用， 过一定时间后，在这两部分叶片的对应部 位去同等面积，分别烘干称重。开始时视 为相等，照光后叶片重量超过暗中的重量， 超过部分即为光合产物的产量，并通过一 定的计算可得到光合作用强度。
2 ．蒽酮试剂：称取 1.0 g 蒽酮，溶于 80% 浓硫酸（将 98% 浓硫酸稀释，把浓硫酸缓缓加入 到蒸馏水中） 1000 mL 中，冷却至室温，贮于具 塞棕色瓶内，冰箱保存，可使用 2 ～ 3 周。 （三） 仪器设备 分光光度计，分析天平，恒温水浴，试管， 三角瓶，移液管（ 5 、 1 、 0.5 ml ），剪刀，瓷 盘，玻棒，水浴锅，电炉，漏斗，滤纸,镊子。
• 器材与试剂 ①实验仪器：试管，移液管，毛细滴管，打 孔器，镊子； ②实验试剂：1.00 mol.L-1蔗糖溶液，甲烯蓝； ③实验材料：玉米、菠菜或其它植物叶片。 • 实验步骤 ①取8支试管，编号，配制0.1~0.8mol.L-1
试验一 小液流法测定植物组织水势
的溶液，加好塞子，作为对照组； ②另取8支试管，对应于对照组编号，然后从 对照组的试管中分别取4ml溶液移入对应编号 的试验组试管中，加塞； ③用打孔器在叶片上打孔，随机取样，向试 验组的每一试管中放入20片，加塞，放置30 分钟，其间摇动数次。到时间后，用大头针 沾取少许甲烯蓝粉末加入每一试验试管。
实验五 蒽酮法测定可溶性糖
• 【实验步骤】 1 样品中可溶性糖的提取 取新鲜植物叶片，摖净表面污物，剪碎 混匀，称取新鲜样品 0.5 ～ 1.0 g （或干样 粉末 5 ～ 100 mg ），放入大试管中，加 入 15 ml蒸馏水，在沸水浴中煮沸 20 min （为什么？），取出冷却，过滤入 100 ml 容量瓶中，用蒸馏水冲洗残渣数次，定容 至刻度。
试验一 小液流法测定植物组织水势
④用8支毛细滴管从试验组的各管中依次吸取 少许着色的液体少许，缓慢插入对照组相应 试管的中部，缓慢横向放出一滴溶液，观察 蓝色液滴的移动方向。 液滴向上运动——说明？ 液滴向下运动——说明？ 液滴静止不动——说明？ ——蔗糖溶液的密度大于纯水的密度！
试验一 小液流法测定植物组织水势
实验六 丙二醛（MDA）的测定
• 【实验目的】熟悉测定MDA的常用方法； • 【实验原理】植物遭遇逆境，丙二醛含量升高； 1. 丙二醛与硫代巴比妥酸（TBA）在酸性和高温条 件下呈红色，在532nm处有吸收峰；
• TBA与可溶性糖同样能反应，在450nm处有吸收峰； 2. 加入低浓度的Fe3+，增加450nm的糖吸收； 提取液C糖/（mmol/L）=11.71OD450 提取液C醛/（μmol/L）=6.45OD532-0.560OD450
• 【实验原理】 糖在浓硫酸作用下生成的糠醛或羟甲基糠醛 与蒽酮反应生成蓝绿色糠醛衍生物，在一定范围 内，颜色的深浅与糖的含量成正比，故可用于糖 的定量测定。 由于反应液中的浓硫酸可以把多糖水解成单 糖，因此，蒽酮法能测出溶液中全部可溶性碳水 化合物总量。 糖类与蒽酮反应生成的有色物质在可见光区 的吸收峰为 620 nm 。
实验五 蒽酮法测定可溶性糖
• 将各管快速摇动混匀后，在沸水浴中煮 10 min ，取出冷却，在 620 nm 波长下，用空 白调零测定光密度，以光密度为纵坐标， 含葡萄糖量（µ ）为横坐标绘制标准曲线。 g
1200
Solar=-7.98018 + 0.50802 * PAR(P<0.0001)
1000
实验三 改良半叶法植物光和强度测 定
• 器材与试剂
1、仪器 2、试剂 三氯乙酸（10%） 3、代表性植物叶片
• 实验步骤 1、选择测定样品 选择光照条件好、叶龄一致的 叶片20片，编号。 2、叶基部处理 用5%三氯乙酸处理叶柄基部。
实验三 改良半叶法植物光和强度测 定
注意：可见灼伤，但叶片姿势保持不变。 时间（精确到分钟）；剪取时 注意不要伤及主脉。 样品用湿纱布保存，置于4℃暗处保存。 4、光和后取样 4~5小时候，取样，方法同上
实验三 改良半叶法植物光和强度测 定
• 5、称重比较 测定打孔器面积；每叶片打孔15片。分别 置于不同的培养皿中。80℃烘干至恒重， 称重。 • 6、计算结果 • A=干重增加数（mg）/(叶面积*光照时数)
实验四 小篮子法测定呼吸强度
• 【实验原理】 利用Ba(OH)2溶液吸收呼吸过程中释放 的CO2，试验结束时，用草酸溶液滴定残留 的Ba(OH)2，从空白和样品两者消耗草酸溶 液之差，计算出呼吸过程中释放的CO2。 • 【器材与仪器】 1. 实验仪器 广口瓶，温度计，酸式滴定管， 干燥管，尼龙网制小篮。
• • • • • • • • ⑤计算叶片细胞的水势 Фcell= Фout=-icRT; 其中：Фcell为植物细胞水势； Фout为外界溶液渗透式； i为解离系数，蔗糖为1； c为液体浓度（mol.L-1）； R为摩尔气体常数，0.083×105 L.Pa/mol.K T绝对温度值，=t℃+273
实验四 小篮子法测定呼吸强度
2. 称取萌发的小麦种子15.00g，装于小篮内， 然后将小蓝挂于广口瓶内，同时加入25.0 ml Ba(OH)2溶液，立即塞紧瓶塞，并用融 化的石蜡密封瓶口；每隔10分钟，轻轻摇 动广口瓶。 注意：勿让小篮侵入溶液中！！！！！！
实验四 小篮子法测定呼吸强度
3. 1h后，小心打开瓶塞，迅速取出小篮，加 入2滴指示剂，立即重新塞紧瓶塞。然后拔 出小橡皮塞，经滴定管插入小孔中，用草 酸滴定，直到蓝绿色变成无色为止。记录 滴定所含用的草酸溶液的体积（ml）数。