血糖(Glu)的测定—干扰预试验及实验.ppt
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血糖的测定.ppt
??二测定方法二测定方法11加样加样试剂蒸试剂蒸样品管样品管uu标准管标准管ss空白管空白管bb血血标标准液准液标标准液准液ml蒸蒸馏水馏水ml工作试剂工作试剂ml清清mlml002002ll002002002002200200200200各管充分混匀置各管充分混匀置37室温冷却测定室温冷却测定37水浴水浴1010分钟后分钟后mlml200200200200202202200200ml2分光光度计测定方法
工作试剂（ml）
样品管(U) 0.02 — 2.00 2.00
标准管(S) 空白管 (B) — 0.02 2.00 2.钟后， 室温冷却测定
2、分光光度计测定方法：波长505nm，
以空白管调零，测定标准管和样品管 吸光度值，按公式计算测定结果。
Assays for Serum Glucose
血糖（Glu）的测定
吴民泸
血糖（Glu）的测定 （葡萄糖氧化酶法）
一、原理 二、测定方法 三、参考值 四、临床意义 五、方法学评价 六、注意事项
一、原理
• β-D-葡萄糖+O2+H2O GOD D-葡萄糖酸+H2O2 • （GOD：葡萄糖氧化酶）
5、药物的影响：某些药物可以诱导血糖 升高或降低。 ⑴引起血糖升高的药物有：某些利 尿药、口服避孕药、儿茶酚胺、吲哚美 幸、咖啡因、甲状腺素、肾上腺素等； ⑵使血糖降低的药物：降糖药、中 毒剂量对乙酰氨基酚、抗组胺药、致毒 量阿司匹林、酒精、胍乙啶、普奈洛尔 等。
五、方法学评价
1、线性范围 22.24mmol/L，回收率 94105%，CV 0.7-2.0%，批间2%，日间 23% 2、本法特异性强 左旋多巴、尿酸、vitc、 胆红素、谷胱甘肽等达一定浓度时可竞争 过氧化氢使结果偏低 半胱氨酸（促G生成）使结果偏高。
工作试剂（ml）
样品管(U) 0.02 — 2.00 2.00
标准管(S) 空白管 (B) — 0.02 2.00 2.钟后， 室温冷却测定
2、分光光度计测定方法：波长505nm，
以空白管调零，测定标准管和样品管 吸光度值，按公式计算测定结果。
Assays for Serum Glucose
血糖（Glu）的测定
吴民泸
血糖（Glu）的测定 （葡萄糖氧化酶法）
一、原理 二、测定方法 三、参考值 四、临床意义 五、方法学评价 六、注意事项
一、原理
• β-D-葡萄糖+O2+H2O GOD D-葡萄糖酸+H2O2 • （GOD：葡萄糖氧化酶）
5、药物的影响：某些药物可以诱导血糖 升高或降低。 ⑴引起血糖升高的药物有：某些利 尿药、口服避孕药、儿茶酚胺、吲哚美 幸、咖啡因、甲状腺素、肾上腺素等； ⑵使血糖降低的药物：降糖药、中 毒剂量对乙酰氨基酚、抗组胺药、致毒 量阿司匹林、酒精、胍乙啶、普奈洛尔 等。
五、方法学评价
1、线性范围 22.24mmol/L，回收率 94105%，CV 0.7-2.0%，批间2%，日间 23% 2、本法特异性强 左旋多巴、尿酸、vitc、 胆红素、谷胱甘肽等达一定浓度时可竞争 过氧化氢使结果偏低 半胱氨酸（促G生成）使结果偏高。
血糖监测技术幻灯片PPT课件
3080密闭保存不可放在冰箱内阳光下或受潮在有效期内使用开瓶3个月标注有效期保证测量准确性每次更换新的试纸一定要核对调码一般选择无名指中指和小指的指尖两侧偏瘫患者在健侧采血不在输液侧肢体采血避开水肿或感染部位注意部位交替轮换以免形成疤痕2020729imagethankyousuccess查对床号姓名向患者解释血糖监测的目的评估患者末梢循环及穿刺部位皮肤情况询问有无过敏史询问患者进食情况是否符合空腹或餐后2小时血糖测定要求
消毒：协助患者去舒适卧
位，用75%酒精消毒手指，待干， 安装试纸做好测量准备，告诉 患者穿刺时，手指不要移动以 免影响穿刺效果。
采血: 核对床号、姓名，
实施采血。
采血针在指尖一侧刺 破皮肤挤血。
吸血或滴血（血量完全 覆盖测试孔）。
指导患者用干棉签按 压1—2 分钟。
6、操作后
再次核对患者床号、姓名，告 知患者血糖值。
SU4/23
血糖监测操作流程
1、接医嘱：两名护士核
对患者床号、姓名、检查 项目、采血时间、双人签 字。
2、仪表端庄服装整洁
3、评估
查对床号姓名
向患者解释血糖监测的目的
评估患者末梢循环及穿刺部位皮肤 情况，询问有无过敏史
询问患者进食情况，是否符合空腹 或餐后2小时血糖测定要求。
下（最后一次进食后8—10小时）、没有饮 食负荷时的血糖水平，是糖尿病诊断的重要 依据。
睡前血糖（21:30）:反应胰岛B细胞
对进食晚餐后高血糖的控制力。是指 导夜间用药或注射胰岛素剂量的依据。 为了解睡前血糖的控制情况和夜间是 否需要加餐或使用胰岛素，应监测睡 前血糖。
餐后2小时血糖：是反应胰岛B细胞储
备功能的重要指标。测餐后2小时的血糖 能发现可能存在的餐后高血糖。很多2型 糖尿病患者空腹血糖不高，而餐后血糖高。 说明基础分泌尚可，餐后的大剂量释放欠 佳。同时餐后2小时的血糖能较好的反映 进食与降糖药是否合适，这是空腹血糖不 能反映的。
消毒：协助患者去舒适卧
位，用75%酒精消毒手指，待干， 安装试纸做好测量准备，告诉 患者穿刺时，手指不要移动以 免影响穿刺效果。
采血: 核对床号、姓名，
实施采血。
采血针在指尖一侧刺 破皮肤挤血。
吸血或滴血（血量完全 覆盖测试孔）。
指导患者用干棉签按 压1—2 分钟。
6、操作后
再次核对患者床号、姓名，告 知患者血糖值。
SU4/23
血糖监测操作流程
1、接医嘱：两名护士核
对患者床号、姓名、检查 项目、采血时间、双人签 字。
2、仪表端庄服装整洁
3、评估
查对床号姓名
向患者解释血糖监测的目的
评估患者末梢循环及穿刺部位皮肤 情况，询问有无过敏史
询问患者进食情况，是否符合空腹 或餐后2小时血糖测定要求。
下（最后一次进食后8—10小时）、没有饮 食负荷时的血糖水平，是糖尿病诊断的重要 依据。
睡前血糖（21:30）:反应胰岛B细胞
对进食晚餐后高血糖的控制力。是指 导夜间用药或注射胰岛素剂量的依据。 为了解睡前血糖的控制情况和夜间是 否需要加餐或使用胰岛素，应监测睡 前血糖。
餐后2小时血糖：是反应胰岛B细胞储
备功能的重要指标。测餐后2小时的血糖 能发现可能存在的餐后高血糖。很多2型 糖尿病患者空腹血糖不高，而餐后血糖高。 说明基础分泌尚可，餐后的大剂量释放欠 佳。同时餐后2小时的血糖能较好的反映 进食与降糖药是否合适，这是空腹血糖不 能反映的。
生化实验--血糖的测定(课堂PPT)
• 葡萄糖标准工作液：5mmol/L
2020/3/25
23
实验操作
加入物 血清(ml) 葡萄糖标准液(ml)
B
S
T
－
－
0.01
－
0.01
－
蒸馏水(ml) 工作液(ml)
0.01
－
－
1.0
1.0
1.0
• 混匀，置 37 ℃水浴保温 15分钟，每管加蒸馏水0.5 ml，在 510nm波长处比色，以空白管（B管）调零，读取各管吸光度。 根据各管吸光度计算其血糖浓度。
• 糖尿病诊断标准？
2020/4/7
7
糖尿病（diabetes）是由遗传因素、免疫 功能紊乱、微生物感染及其毒素、自由基毒素、 精神因素等等各种致病因子作用于机体导致胰 岛功能减退、胰岛素抵抗等而引发的糖、蛋白 质、脂肪、水和电解质等一系列代谢紊乱综合 征，临床上以高血糖为主要特点，典型病例可 出现多尿、多饮、多食、消瘦等表现，即“三 多一少”症状，糖尿病（血糖）一旦控制不好 会引发并发症，导致肾、眼、足等部位的衰竭 病变，且无法治愈。
2020/4/7
29
血糖测定方法特点
葡萄糖氧化酶法：该法特异性高，反应条件温和，能反映血中葡萄 糖的真实含量，且已推广出试剂盒，广泛应用与临床。
Folin-Wu法：该法对葡萄糖无特异性，一切还原物质均可产生同样 的反应。虽血液中葡萄糖为主要还原物质，但仍存在其他非糖还原
物质，故该法其参考值较其他方法略高。 邻-甲苯胺法：该法涉及强酸、加热等反应条件，不便于大规模检测 ，且邻甲苯胺须蒸馏后使用，有毒性，临床和科研上已很少采用。
2020/3/25
17
无机化学法：Folin-Wu法
血糖(Glu)的测定—干扰预试验与实验
二、样品制备
干扰样品
血清 30mmol/L VitC标准液 生理盐水
基础血清（ml） 0.09
-
0.01
样品Ⅰ(ml)
0.09
0.01
-
样品Ⅱ(ml)
0.09
0.007
0.003
样品Ⅲ（ml） 0.09
0.005
0.005
三、测定方法
1、加样
试剂
校准（S）空白（B） 基础样品 干扰管1 2
3
校 准 液 （ml） 0.02 样 品 （ml） — 蒸 Байду номын сангаас 水（ml） —
干扰样品3（ml）
五、参考区间
• 干扰值即偏差，当偏差<允许误差，则表明干扰 物引起的偏差不会影响测定结果的临床应用价值。
• 对于血糖测定而言，当干扰物引起的偏差小于 1/4TEa[CLIA88（临床实验室修正法规1988）能 力对比试验的质量要求规定，血糖的TEa为 0.33mmol/L或10%]，则不会影响测定结果的临 床应用价值，可以近似地认为当干扰物浓度低于 该浓度时不会对血糖测定产生影响。
• β-D-葡萄糖+O2+H2O GOD D-葡萄糖酸+H2O2 （GOD：葡萄糖氧化酶）
• H2O2+4-AAP+酚 POD 2H2+红色醌类化合物
（4-AAP： 4氨基氨替比林） （POD：过氧化物 酶）
• 当干扰物的浓度达到一定量时，将对相应的实验 产生干扰，由于vitC、尿酸等物质对血糖测定 GOD-POD法具有干扰作用，本实验选用vitC做 GOD-POD法测血糖的干扰试验， vitC与GOD反 应生成的H2O2发生反应，使部分H2O2不能参与第 二步POD的偶联反应，从而降低显色强度，产生 负的测定误差。
血糖的测定ppt课件
2、分光光度计的正确使用。 3、实验操作中存在的问题。
17
）和调“100”（闭盖）。 4. 调模式为“吸光度”，将空白对照调“0”，测定待测
样品的吸光度值。
10
11
12
葡萄糖氧化酶-过氧化物酶法检测激 素对血糖浓度的影响
方 法
13
实验步骤：
（1）取4支试管，按下表加入试剂:
试剂
血清样品 葡萄糖标准液 蒸馏水 酶酚混合试剂
标准管 (ml)
– 0.02
测定管光密度
测定管葡萄糖含量 ＝
×5
（mmol/L）
标准管光密度
15
注意事项
正确使用比色器皿：手拿比色皿的毛面；比色液 应占比色皿的2/3。
血糖测定应在取血后2小时内完成，放置太久，血 糖易分解，故使含量降低。
酶酚混合液一般现用现配。
16
小结
1、葡萄糖氧化酶-过氧化物酶比色法 测定血糖的原理。
过氧化物酶 （POD）
H2O ＋红色醌式物质
Trinder反应
相对血糖浓度
光吸收法测定
505nm
6
分光光度计的工作原理
7
朗伯-比尔定律
朗伯定律：A=k1L 比尔定律：A=k2C 朗伯-比尔定律：如同时考虑液
层厚度和溶液浓度对吸光度的 影响，则吸光度与溶质的浓度 和溶液的厚度的乘积成正比。
A=KLC
– 3.00
测定管 1(ml)
0.02 – –
3.00
测定管 空白管 2(ml) (ml)
0.02
–
–
–
–
0.02
3.00 3.00
充分混匀，37℃ 水浴中保温20min； 冷却至室温后，505nm处比色
17
）和调“100”（闭盖）。 4. 调模式为“吸光度”，将空白对照调“0”，测定待测
样品的吸光度值。
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11
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葡萄糖氧化酶-过氧化物酶法检测激 素对血糖浓度的影响
方 法
13
实验步骤：
（1）取4支试管，按下表加入试剂:
试剂
血清样品 葡萄糖标准液 蒸馏水 酶酚混合试剂
标准管 (ml)
– 0.02
测定管光密度
测定管葡萄糖含量 ＝
×5
（mmol/L）
标准管光密度
15
注意事项
正确使用比色器皿：手拿比色皿的毛面；比色液 应占比色皿的2/3。
血糖测定应在取血后2小时内完成，放置太久，血 糖易分解，故使含量降低。
酶酚混合液一般现用现配。
16
小结
1、葡萄糖氧化酶-过氧化物酶比色法 测定血糖的原理。
过氧化物酶 （POD）
H2O ＋红色醌式物质
Trinder反应
相对血糖浓度
光吸收法测定
505nm
6
分光光度计的工作原理
7
朗伯-比尔定律
朗伯定律：A=k1L 比尔定律：A=k2C 朗伯-比尔定律：如同时考虑液
层厚度和溶液浓度对吸光度的 影响，则吸光度与溶质的浓度 和溶液的厚度的乘积成正比。
A=KLC
– 3.00
测定管 1(ml)
0.02 – –
3.00
测定管 空白管 2(ml) (ml)
0.02
–
–
–
–
0.02
3.00 3.00
充分混匀，37℃ 水浴中保温20min； 冷却至室温后，505nm处比色
生化实验--血糖的测定ppt课件
• 无糖尿病史，有明显糖尿病家族史
• 有糖尿病症状，但空腹或者随机血糖 不够标准
• 分娩巨大胎儿的妇女和有巨大胎儿史 的个体
• 不明原因肾病和视网膜病
• 妊娠期、甲亢、感染期出现糖尿者
精选ppt课件
16
血糖测定方法
• 无机化学法：如Folin-Wu法 • 有机化学法：如邻甲苯胺法 • 酶法：己糖激酶法， • 酶法：葡萄糖氧化酶法
精选ppt课件
28
实验误差分析：
本法测定葡萄糖非常特异，从原理反 应式中可知第一步是特异反应，第二 步特异性较差。误差往往发生在反应 的第二步。一些还原性物质如尿酸、 维生素 C 、胆红素和谷胱甘肽等，可 与色原性物质竞争过氧化氢，从而消 耗反应过程中所产生的过氧化氢，产 生竞争性抑制，使测定结果偏低。但 是对测定结果无显著影响。
• 酶试剂 取过氧化物酶12000U，葡萄糖氧化酶1200U ，4-氨基安替比林10mg，叠氮化钠100mg，溶于磷 酸缓冲液80ml中，定容至100ml，置4℃保存
• 酚溶液 称取重蒸馏酚100mg溶于蒸馏水100ml中， 用棕色瓶贮存。
• 酶酚混合试剂 将酶试剂和酚试剂等量混合，4 ℃下 可存放1个月。
精选ppt课件
18
有机化学法：邻甲苯胺法
• 原理： • 葡萄糖为一含醛基的已糖，在酸性条件下加热，可脱水生成5-羟 甲基-2-呋喃甲醛，后者与邻甲苯胺缩合成青色的Schiff碱。 • Schiff碱颜色的深浅与样品中葡萄糖的含量成正比。
• 评价：操作简便，由于邻甲苯胺只与醛糖作用而显色，故此种测定
精选ppt课件
29
血糖测定方法特点
葡萄糖氧化酶法：该法特异性高，反应条件温和，能反映血中葡萄 糖的真实含量，且已推广出试剂盒，广泛应用与临床。
血糖(Glu)的测定—干扰预试验及实验
实验原理
选用维生素C做GOD-POD法测血糖的干扰 试验，维生素C可和GOD反应生成的H2O2 发生反应，使部分H2O2不能参与第二步 POD催化的偶联反应，从而降低显色强度， 产生负的测定误差。
器材与试剂
❖ 1、主要器具 ❖ 微量移液 ❖ 紫外分光光度计 ❖ 水浴箱
主要试剂
1．血清标本 含血糖6.7mmol/L的血清 2．葡萄糖标准液（5.55mol/L） 3．GOD-POD法测定葡萄糖试剂盒 4. 1g/L、2g/L 、3g/L维生素C溶液
评价
这两种干扰试验各有优缺点，第一种方法的不足之处是实验标本 的介质可能与病理标本的介质不尽致，病理标本中的干扰物可能 不是原来的药物，加入的干扰物可能与病理标本中的干扰物不完 全相同。第二种方法的不足之处是①病人通常用多种药物，难以 确定干扰物；②不是每种测定项目均有参考方法，而且有的参考 方法难以在临床实验室中开展；③参考方法亦可能受某些物质的 干扰。两种方法同时使用，会起互补作用。
六、注意事项
1．干扰试验的对象有厂商研制的新产品；新建立的方法；新引进 的方法或试剂。
2．应做的主要干扰物：病人标本中常出现的黄疸、脂血和溶血； 某些药物如维生素C等；实验常用的抗凝剂，防腐剂和稳定剂。
3．可疑干扰物浓度 加入可疑干扰物的浓度应明显高于通常所见 浓度的上限，有可能时应达到病理标本的最高值。
试剂
B
S 基础管 U2
U3
U4
DDW
1oul
5.55mol/l糖标
10ul
基础样品
10ul
干扰样品1 干扰样品2 干扰样品3 工作试剂
1.5ml 1.5ml 1.5ml
10ul 1.5ml
10ul
10ul
血糖含量的测定PPT资料(正式版)
滤液中葡萄糖浓度成正比。通过分光光度计比色， 用蒸馏水加至25刻度处后，混匀，空白管调零，在波长420nm处比色，记录各管光密度。
钨酸钠与硫酸混合生成钨酸。
即可求出血糖的含量。 其生成蓝色的深度与血滤液中葡萄糖浓度成正比。
血糖管
三 实验器材
• 仪器 ：锥形瓶；试管及试管架；离心机； 电炉；血糖管；奥氏吸管；分光光度计。
• 试剂：动物全血；1／3mol·Ｌ－１ 硫酸溶液； 碱性铜试剂；磷钼酸试剂；％苯甲酸溶液； 葡萄糖应用标准溶液0.1mg·mL －１
四 实验步骤
• 1.无蛋白血滤液的制备 • 吸取充分均匀的抗凝血1mL，擦净管外血液，
缓慢放入锥形瓶或试管中。加入蒸馏水7mL，混 匀，使完全溶血。加入0.33mol·L－１硫酸溶液1mL， 充分混匀。此时血液由鲜红色变为棕色，静置 5~10min，使其酸化完全。加入10%钨酸钠溶液 1mL，边加边摇。当摇到不再产生泡沫时为止。 说明蛋白质已经完全变性沉淀。放置5~10min，过 滤或离心出去沉淀，既得无蛋白滤液（每毫升相 当于1/10全血）
2.0
2.0
混匀后放置2min（使二氧化碳气体逸出）
蒸馏水加至
25
25
25
• 用蒸馏水加至25刻度处后，混匀，空白管 调零，在波长420nm处比色，记录各管光 密度。计算求出每100mL血液中葡萄糖的 质量（mg）
• 计算公式：
• 样品中的血糖（mg/100mL）=（测定管光密度/标
准管光密度）
• = （测定管光密度/标准管光密度）*100
•
五 注意事项
• 一定要等水沸后，再放血糖管。准确加热8min，时间 过久则呈色较深，反之则浅，均影响结果的准确性。 为避免还原生成的亚铜被空气中的氧再氧化，冷却时 切勿摇动血糖管。
钨酸钠与硫酸混合生成钨酸。
即可求出血糖的含量。 其生成蓝色的深度与血滤液中葡萄糖浓度成正比。
血糖管
三 实验器材
• 仪器 ：锥形瓶；试管及试管架；离心机； 电炉；血糖管；奥氏吸管；分光光度计。
• 试剂：动物全血；1／3mol·Ｌ－１ 硫酸溶液； 碱性铜试剂；磷钼酸试剂；％苯甲酸溶液； 葡萄糖应用标准溶液0.1mg·mL －１
四 实验步骤
• 1.无蛋白血滤液的制备 • 吸取充分均匀的抗凝血1mL，擦净管外血液，
缓慢放入锥形瓶或试管中。加入蒸馏水7mL，混 匀，使完全溶血。加入0.33mol·L－１硫酸溶液1mL， 充分混匀。此时血液由鲜红色变为棕色，静置 5~10min，使其酸化完全。加入10%钨酸钠溶液 1mL，边加边摇。当摇到不再产生泡沫时为止。 说明蛋白质已经完全变性沉淀。放置5~10min，过 滤或离心出去沉淀，既得无蛋白滤液（每毫升相 当于1/10全血）
2.0
2.0
混匀后放置2min（使二氧化碳气体逸出）
蒸馏水加至
25
25
25
• 用蒸馏水加至25刻度处后，混匀，空白管 调零，在波长420nm处比色，记录各管光 密度。计算求出每100mL血液中葡萄糖的 质量（mg）
• 计算公式：
• 样品中的血糖（mg/100mL）=（测定管光密度/标
准管光密度）
• = （测定管光密度/标准管光密度）*100
•
五 注意事项
• 一定要等水沸后，再放血糖管。准确加热8min，时间 过久则呈色较深，反之则浅，均影响结果的准确性。 为避免还原生成的亚铜被空气中的氧再氧化，冷却时 切勿摇动血糖管。
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基础样品
—
—
—
干扰样品1
干扰样品2
干扰样品3
☆
五、结果判断
干扰值即偏差，对于血糖测定来说，当 干扰物引起的偏差在总允许误差的1/4范围 内，则不会影响测定结果的临床应用价值， 可以近似认为当干扰物浓度低于该浓度时不 会对血糖测定产生影响。
六、注意事项
• 干扰物对测定的影响与被分析物浓度无关，
而与干扰物本身的浓度有关，所以产生的 恒定系统误差；
—
— 0.03 —
—
—
— 0.03
—
—
—
—
3.0 3.0
3.0 3.0
各管充分混匀置37水浴10分钟后室温冷却。
3
— — — — — 0.03 3.0
2、分光光度计测定方法：波长505nm，以空白 管调零，测定标准管和各样品管吸光度值，按公式 计算测定结果。
四、计算与数据处理
⑴计算公式： Glu含量（mmol/L）= Au ×Cs
干扰试验-血糖（Glu）的测定 （葡萄糖氧化酶法）
1. 评价实验
• 准确度的评价：方法比较试验、回收试验和干扰
试验。
• 精密度的评价：批内重复性试验、日内重复性试
验、日间重复性试验、患者样本的平行双份测定。
2、原理
• 用来衡量测定方法准确度，用于测定某物质加到样品中产
生的系统误差。在加入一定浓度干扰物的条件下，形成恒 定系统误差，误差的实际大小随干扰物的浓度而变化。 。 干扰物浓度不同，误差的大小也不同 干扰试验即用于检验某方法的特异性，也用于检测干扰物 质对方法的干扰作用，以评价分析方法的准确性。
其中：Cs=5.55 mmol/L
As
干扰物加ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ量 =
干扰物浓度
干扰物溶液量（ ml） 血清量（ ml） 干扰量溶液量（
ml ）
干扰值（mmol/L）= 干扰样品测定值-基础样品测定值
干扰率（%）= 干扰值/基础值×100
⑵干扰试验的数据处理：
样品（ml） GLU测得值(mmol/L) 干扰物值加入量(mmol/L) 干扰值(mmol/L) 干扰率(%)
• 采用维生素C作为GOD-POP法测定血糖的干扰物质，当干扰
物的浓度达到一定量时，将对相应的实验产生干扰。 维生素C可以和GOD反应生成的H2O2发生还原反应，影 响H2O2参与第二步POD的反应，从而降低显色反应，产 生分析误差。
3、葡萄糖测定原理
β-D-葡萄糖+O2+H2O GOD D-葡萄糖酸+H2O2
（GOD：葡萄糖氧化酶）
H2O2+4-AAP+酚 POD 2H2+红色醌类化合物
（4-AAP： 4氨基氨替比林） （POD：过氧化物酶）
二、样品制备
干扰样品
血清
基础血清（ml） 0.9
样品Ⅰ (ml) 0.9
样品Ⅱ (ml) 0.9
样品Ⅲ （ml） 0.9
维生素C -
0.1(750mg/L) 0.1(500mg/L) 0.1(250mg/L)
蒸馏水 0.1 -
三、测定方法
1、加样
试剂
校准（S） 空白（B） 基础样品 干扰管1 2
校 准 液 （ml） 0.03
—
—
——
蒸 馏 水（ml） —
0.03 —
——
基础样品 （ml） —
— 0.03
——
干扰样品1（ml） — 干扰样品2（ml） — 干扰样品3（ml） — 工作试剂 （ml） 3.0
• 如要区别是干扰还是方法的特异性差，可
用干扰物的纯溶液作为样本测定，如仍形 成干扰值，则属侯选方法的特异性差。