分析前质量控制：血液标本的采集与处理
血液学质量控制流程
血液学质量控制流程引言概述：血液学是临床实验室中重要的学科之一，质量控制是保证检验结果准确性和可靠性的关键环节。
本文将介绍血液学质量控制的流程，包括样本采集、标本处理、实验操作、结果判读和质控记录等方面。
一、样本采集1.1 确保采集工具的清洁：使用干净的采血针和采血管，避免交叉污染。
1.2 采集前准备：患者需空腹采血，避免饮食、饮水和吸烟等对检验结果的影响。
1.3 采集技术：采血时要注意避免气泡和血液溢出，确保采集的血液量足够进行检验。
二、标本处理2.1 标本标识：在采集样本时要正确标识患者信息和样本信息，避免混淆。
2.2 样本保存：标本需储存于适当的温度和环境中，避免受热、受光和受污染。
2.3 样本运送：样本需迅速送至实验室进行检验，避免延迟对结果的影响。
三、实验操作3.1 仪器校准：在进行实验前需要对仪器进行校准，确保结果的准确性。
3.2 试剂准备：按照试剂说明书的要求准备试剂，避免试剂变质或受污染。
3.3 操作规范：按照操作规程进行实验操作，避免操作失误对结果的影响。
四、结果判读4.1 结果解读：根据标准结果范围对实验结果进行判读，判断是否正常或异常。
4.2 异常结果处理：对于异常结果需要及时进行复检和确认，避免误诊或漏诊。
4.3 结果报告：将结果准确记录并报告给医生或患者，确保结果的正确传达和使用。
五、质控记录5.1 质控样本：定期使用质控样本进行质控检验，评估实验室的准确性和稳定性。
5.2 质控结果：记录每次质控的结果，并进行分析和比对，及时发现问题并进行改进。
5.3 质控报告：将质控结果进行报告和归档，确保实验室的质量得到监控和管理。
结论：血液学质量控制流程是保证检验结果准确性和可靠性的重要环节，只有严格按照流程进行操作和记录，才能确保实验室的质量得到有效管理和控制。
希望本文的介绍对血液学实验室的质量控制有所帮助。
血液标本在分析前的质量控制
糖250m l,给予地塞米松5m g静脉推注,盐酸异丙嗪15m g 肌肉注射,低流量氧气吸入1L/m in,心电监护,监测生命体征。
16∶20患儿上述症状缓解,生命体征正常。
2 护理出现上述症状护理人员需沉着冷静,及早发现病情恶化,正确评估判断病情,果断采取有效措施,密切配合医生,尽快让患儿转危为安。
2.1 心理护理 患儿因发病突然病情变化快,护理人员应向患儿及家属说明药物过敏的原因,抢救措施和预后,及时进行安慰劝导,提供心理支持,以消除患儿及家长的紧张,恐惧心理[1],根据患儿病情变化及心理特点,详细讲解药物治疗方法及注意事项,以积极配合治疗[2],病情好转后告知患儿及家长有关用药知识,由于患儿年龄小,机体对药物作用敏感对药物的致敏性耐受性差,加强原发病的治疗,平时注意锻炼,以增强机体的抵抗力。
2.2 一般护理 严格执行无菌操作,按照静脉输液的配制方法药物现配现用,中药制剂常有多种成份组成,其中某些成份容易受酸碱度变化的影响而出现溶解度下降或产生聚合物出现沉淀,因此在静脉输液时最好使用一次性精密过滤输液器,减少药物的吸收,从而减轻过敏反应。
临床实践显示用生理盐水配制的双黄连药物稳定性要比用葡萄糖配制的双黄连药物稳定性好,因此双黄连(冻干)粉剂最好使用生理盐水配制。
对于首次使用双黄连的患儿应详细询问用药史、过敏史,即使患儿无过敏史,也需备齐各种抢救药品,首次用药患儿开始应缓慢滴注,每分钟不超过20滴,30m in后如无异常可适当加快滴速。
输液过程中及时巡视患儿,密切观察病情变化。
发现过敏反应立即停药,更换输液器,静脉滴注葡萄糖或生理盐水。
配合医生进行积极有效的抢救治疗,并在患儿护理病历中详细、准确记录抢救过程,严密观察药物的治疗效果。
3 讨论双黄连(冻干)粉剂是一种抗菌、抗病毒的中药制剂,临床使用较广泛,疗效可靠,其药物说明书上注明的不良反应是偶见皮疹,停药后可自行消失,并未注明可引起胸闷、心慌、恶心、呕吐等其它不适。
简述血液标本的处理流程
简述血液标本的处理流程：
血液标本的处理流程主要包括以下几个步骤：
1.采集：首先，需要按照规范的操作步骤进行血液样本的采集。
采集过程中需要注意
各种细节，如选择合适的静脉，按照静脉穿刺法抽取所需血量等。
同时，采集前需要核对病人的信息，解释采血的目的和配合方法，确保采集过程的顺利进行。
2.静置（若适用）：根据具体的实验要求，有时需要对采集到的血液样本进行静置处
理。
静置的目的是让血液中的某些成分（如红细胞、白细胞等）沉降或聚集，以便后续的处理和检测。
3.离心（若适用）：如果需要对血液样本进行离心处理，需要选择合适的离心机，并
按照规定的离心力、转速和时间进行设置。
离心过程中需要注意安全，避免发生意外。
4.分装（若适用）：离心后，根据实验需要，将血液样本分装到不同的容器中，以便
后续的处理和检测。
5.储存：血液样本需要按照规定的条件进行储存，如温度、湿度、光照等。
同时，需
要记录样本的储存时间和条件，以确保样本的质量和可靠性。
6.运送：当需要对血液样本进行运送时，需要选择合适的物流方式和运输条件，确保
样本在运输过程中不会受到损坏或污染。
同时，需要记录样本的运送时间和条件，以便后续的追踪和管理。
血液标本采集的注意事项
血液标本采集的注意事项血液标本采集的正确性是获得准确、可靠检验结果的前提。
一般按照时间顺序，从临床医嘱开始，到分析检验操作结束，包括检验申请、患者准备、样本采集、样本运输。
血液样本的采集和处理是分析前质量控制的主要环节，是很重要的基础工作。
血液标本采集的注意事项：1. 采血器械采血用的注射器、试管必须干燥清洁，注射器及针头不宜用酒精消毒，目前多用一次性注射器及试管。
2.采血操作皮肤采血：轻轻按摩患者采血部位，使局部组织自然充血，消毒皮肤，干燥后紧捏采血部位两侧，右手持采血针迅速刺入2-3mm为宜，稍挤压，血液自然流出，第一滴血因混入组织液相对较多，多弃去不用。
静脉采血：采血部位上端扎压脉带(松紧适宜)，使血管暴露充盈，消毒静脉穿刺处，沿静脉走向，针头与皮肤呈30度夹角迅速刺入皮肤，然后放低注射器(采血针)呈5度角向前刺破静脉壁，进入静脉腔。
动脉采血：消毒患者皮肤及操作者左手食、中指后，以左手紧绷皮肤，右手持注射器，左手食指触摸动脉搏动处，以30-45度夹角进针。
3.防止气体逸散采集血气分析样本，抽血时注射器内不能有空泡，抽出后立即用小橡皮密封针头，隔绝空气，因空气中的氧分压高于动脉血，二氧化碳分压低于动脉血;作二氧化碳结合力测定时，盛血标本的容器亦应加塞盖紧，避免血液与空气接触过久，影响检验结果。
血液标本采集的注意事项：4.防止分解及自身变化采血后应尽快送检，因血液中有些化学成分离体后极易分解，使其含量改变。
如血糖及酶类测定，时间过久，血细胞酵解可使血糖下降，酶活力变化等;有些化学成分在细胞内外相差悬株，离体时间过长，细胞内外浓度会发生变化，影响测定结果，如肌酸激酶、乳酸脱氢酶、电解质等。
5.防止污染有些检查项目要求极严格，其采血器具及标本容器必须经过化学清洁。
如血氨、铜、锌、铁等项目，因其含量极低，稍有污染即影响结果。
作淀粉酶测定时，要防止唾液污染，因唾液中含有大量的淀粉酶，污染后会引起假性淀粉酶升高。
检验标本分析前的质量控制
检验标本分析前的质量控制检验标本分析前的质量控制1. 背景介绍在医学实验室中，进行检验标本分析前的质量控制是十分重要的。
标本质量的控制对于确保检验结果的准确性和可靠性至关重要。
准确定量和质量的标本对于正确的诊断和治疗决策具有重要的意义。
质量控制主要通过严格的操作标准、标本采集和处理、设备维护和校准等措施来保证。
2. 标本采集和处理2.1 采集过程的规范化标本采集是影响分析结果准确性的一个重要环节。
标本采集需要规范操作流程，确保采集的标本是代表性的、完整的，并且没有受到外界干扰的。
采集过程中的不合理操作可能会导致标本污染、溶液挥发等问题。
2.2 标本处理的要求标本采集后需要保鲜处理以防止标本中的生物分子失活或降解。
不同类型的标本需要采用不同的方法进行处理。
例如，血液标本需要迅速离心取血浆或血清，尿液标本需要避光贮存，病理标本需要尽快进行固定和冷藏等。
3. 校准和校正设备3.1 设备的选择和校准在进行标本分析前，需要确保使用的分析设备是准确、可靠的。
设备选择应根据分析要求和标本特性进行，且经过严格的校准和验证。
校准设备是确保仪器测量结果准确的关键步骤，设备校准应定期进行，并在校准后进行记录。
3.2 内部质量控制内部质量控制是对设备分析结果准确性的一种监测手段。
通过使用已知浓度的标准样本，定期进行内部质量控制，可以评估设备的准确性和稳定性。
结果与预期结果有偏差时，应及时进行故障排除和设备维护。
4. 操作标准和质量管理4.1 操作标准的编制和执行标本分析的操作标准应根据实验室的要求进行编制，标准应详细描述每个步骤的要求和操作流程。
每个操作者都应接受标准化的培训，确保操作的一致性和可重复性。
，定期进行操作方法的评价和改进，以提高操作效率和准确性。
4.2 质量管理体系的建立和监控建立一个完善的质量管理体系对于标本质量控制至关重要。
质量管理体系应包括文件控制、风险评估、不符合事件管理和内审等内容。
通过监控和评价体系的运行，可以及时发现存在的问题并采取相应的纠正和改进措施。
浅谈分析前检验的质量控制
浅谈分析前检验的质量控制临床检验质量控制可分为分析前、分析中、分析后三部分，分析前质量控制常被忽视。
为了保证结果准确，应严格管理分析前质量控制。
分析前质量控制主要包括病人的准备、标本的采集、标本转运处理等部分。
现就分析前检验的质量控制浅谈如下。
1标本采集前病人的准备为了提高检验结果的准确性，医护人员应了解标本采集前，影响结果的非病理因素，提出采集前及采集时间的具体要求，要求有以下几方面：1.1运动的影响强烈肌肉运动会引起血中某些成分浓度的改变，如：乳酸、AST、ALP、LDH等升高，故应在抽血前24h不做剧烈运动。
1.2饮食的影响1.2.1 采血前应禁食12h，因蛋白饮食可使尿素氮、血氨、尿酸升高；高脂肪饮食可使甘油三酯大幅度升高；3h后才能恢复到空腹血糖水平。
而乳酸脱氢酶、碱性磷酸酶的活性也增加。
饮酒可使乳酸及尿酸升高；检查血脂、粪便隐血，需要患者素食3d后采集标本。
1.2.2空腹时间（超过16h）影响血液化学成分，饥饿时血糖、血清白蛋白、补体C3、转铁蛋白质含量下降，而血清胆红素因清除率减少而升高。
1.2.3 特殊试验的饮食要求，测定葡萄糖耐量时，应详细告诉病人何时服用葡萄糖和服用的量，何时开始记录时间，何时抽血，服用糖后应注意休息，减少运动，避免影响测定结果1.3 采集时间对结果的影响有些检验结果可出现昼夜周期性变化，如WBC早晨较低而下午较高，促肾上腺素（ACTH）及皮质醇的分泌，高峰在早晨，以后逐渐下降。
入睡后，生长激素短时间内达到高峰，而此时皮质醇浓度最低。
血清铁及胆红素在清晨最高，血钙中午最低。
性激素的日周期变化最为明显；血胆固醇在经前最高，排卵期最低。
采集静脉血做细菌培养时应在使用抗菌素之前采血。
1.4 药物的影响很多药物可使检验结果增高或降低。
如咖啡因可使血糖和胆固醇增高；维生素C可使乳酸脱氢酶降低；左旋多巴可使肌酐、AST结果升高，排泄在尿中可使葡萄糖测定结果偏低等。
因此，在采血前应尽可能停服对实验有干扰的药物。
临床检验血液标本采集和处理
临床检验血液标本采集和处理标本采集是检验分析前质量管理的主要内容，严格控制标本误差因素，作为实验分析前质控的标本质量控制应给予广泛重视。
随着现代医学技术的迅速发展，临床检验技术不断改进、完善和更新，实验方法学在微量、简便、快速、准确的基础上正朝着超微量、高精度、大批样、多指标和自动化的方向发展。
但是全面质量管理和临床医学科研的日益深入与拓展，都对检验质量提出了更高的要求。
而在预防质量控制的诸多因素中标本的采集和处理即标本误差的控制尤为重要。
临床反馈不满意结果80%的最终可溯源到标本误差。
因此标本误差的控制十分重要，本文从实验室内外的不同角度，结合临床上抽送血样的具体情况做一些分析，供临床同仁参考。
1 采血时间和部位的选择体内有些化学成分的血浓度具有周期性变化，因此采血应尽可能在上午进食前空腹采血。
因为进食后的不同时间内，血液中的某些化学成分有较大的波动，例如：糖类、脂类、蛋白质及氨基酸等。
而饮水又可使血液暂时性稀释，虽然人体具有完善的调节机制，但进食后的数小时内机体正处于代谢活跃阶段，此期间血液成分的波动不容忽视，但血液生化指标参考值的调查与界定通常以空腹血样的检测值为统计样本。
为了尽可能取得检验条件的一致性，临床检验血样原则上必须坚持空腹采血。
就实验室检测角度而言，进食后血液化学成分的改变还可给检验操作的本身造成困难并带来误差。
例如：进食后血中脂质的增加不仅是甘油三酯的含量增高，还可导致血清（血浆）呈乳白色样浑浊（脂浊），这可给测定的比色、比浊或滴定带来一定干扰。
然而许多生化检验都是用比色等分析方法进行的，这就可能干扰检验的准确性；又由于乳糜微粒占容积影响检测加样量的准确，故几乎能对甘油三酯以外的所有检项造成负误差。
此外，血液粘度的变化可给某些检项带来干扰。
另一方面，受试者采血的空腹时间不应超过16小时，因过度饥饿会使血清蛋白、补体、葡萄糖含量下降，而血胆红素因清除率减少而上升。
文献报道皮质醇、血胆红素、血清铁清晨高，血钙中午最低。
血液学质量控制流程
血液学质量控制流程一、引言血液学质量控制流程是为了确保实验室在进行血液学检测过程中的准确性和可靠性而制定的一套标准化流程。
本文将详细介绍血液学质量控制流程的各个环节，包括样本采集、标本处理、仪器校准与质量控制、数据分析与报告等。
二、样本采集1. 采集器具准备：确保采集器具（如针头、管子等）的清洁和无损。
2. 采集前准备：确认患者身份、检查项目和采集时间，告知患者相关注意事项。
3. 采集过程：采集标本时注意无菌操作，避免污染和血栓形成。
三、标本处理1. 标本接收：接收样本时要认真核对患者信息和样本标识，确保准确性。
2. 标本处理：按照标本种类和检测项目的要求进行处理，如离心、分装等。
3. 标本保存：根据不同检测项目的要求选择适当的保存条件，确保标本的稳定性。
四、仪器校准与质量控制1. 仪器校准：按照仪器的操作手册进行校准，确保仪器的准确性和稳定性。
2. 质量控制品准备：选择适当的质量控制品，并按照要求进行稀释和保存。
3. 质量控制测试：每天开始工作前、每一个批次样本测试前和每一个检测项目测试前进行质量控制测试。
4. 数据分析与判定：根据质量控制品的测定结果，进行数据分析和判定，确保仪器的准确性。
五、数据分析与报告1. 数据分析：对测定结果进行统计学分析，如平均值、标准差等。
2. 结果判定：根据参考范围和临床意义，对结果进行判定，如正常、异常等。
3. 报告编写：将结果整理并编写成报告，确保报告的准确性和规范性。
4. 报告审核：由专业人员对报告进行审核，确保报告的准确性和可靠性。
六、总结与改进1. 总结经验：定期对质量控制流程进行总结，总结经验和问题，并进行改进。
2. 持续改进：根据总结的经验和问题，制定改进措施，并进行实施，以提高质量控制流程的效率和准确性。
以上就是血液学质量控制流程的详细介绍。
通过严格按照这套流程进行操作，可以确保血液学检测结果的准确性和可靠性，提高实验室的工作效率和质量水平。
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护士
实验人员
医生
护理员
病人
生活习性
饮食 饥饿 运动 吸烟 饮酒 饮茶和咖啡
全程质量控制包括实验前（分析 前）、实验中（分析中）和实验后 （分析后）三个阶段的质量控制。 其中，在实验误差中实验前误差 占70%，因而实验前质量保证对减少 实验误差显得尤其重要。
标本类型
临床化学检验血液标本分为血清、 血浆和全血3种。 血清和血浆为临床常用，除前者 不含纤维蛋白原外，其余多数化学成分 无差异;全血只有在红细胞内成分与血 浆成分相似时才用;做血气分析、血红 蛋白电泳等检查时用全血，一般临床化 学分析多不用全血。
人的体位改变，也可引起一系列的生理变化， 其中也包括一些血液成分的改变。比如白蛋白， 在取坐位或站位时所取的血标本，其测定参考值 约为37~52g/L，而取卧位时所采标本测定的参 考范围为30~50g/L。其他一些血中化学成分也 有相似变化，从站位改为卧位时，所采标本之测 定值有降低趋势，所以在采集标本时要注意保持 正确的体位和保持体位的一致性。
（二）抗凝剂
需用血浆或全血作为测定物的标本，应预先 加入合适的抗凝剂。 抗凝剂与血液标本量的要成一定的比例。 真空管中抗凝剂的量是一定的，所要求的血 液标本量也是已经规定好的，所以抽取标本量太 多或太少都会对检验结果产生影响。
常用的抗凝剂有草酸盐、枸橼酸盐、EDTA、肝素 等。选择使用合适的抗凝剂十分重要，应特别注意： ①含有K+、Na+的抗凝剂不能用于测定K+、Na+的标 本； ②EDTA、氟化物、草酸盐等不能用于测定Ca2+标本， 因为Ca2+可与它们形成不溶性物质；EDTA影响血小板 聚集，不适合于作凝血象检查和血小板功能试验。 ③草酸盐、氟化物不能用于测定酶和用酶法测定的标本， 因为它们有激活或抑制某些酶活性的作用，如草酸盐可 抑制淀粉酶、酸性磷酸酶、乳酸脱氢酶的活性，氟化物 则有激活尿素酶、淀粉酶的作用。 ④肝素抗凝血是红细胞渗透脆性试验理想的抗凝剂，但 不适合血液学一般检查。
关于再离心 标本离心最好一次完成，若需再次离心， 应距上次离心相隔时间很短;对于含有分离 物质的血标本绝对不可以再离心。
离心后 （1）血清或血浆与接触的血细胞和凝块的分 离应在采血后尽快（2h内）完成。 （2）分离的血清或血浆的贮存:实验室的温 度和血清或血浆的贮存温度、时间，是分 析物稳定性和测定结果准确性的重要参数。
同时，输液或者药物也会影响血液标 本的成分比例产生影响。 一般情况下，输入脂肪乳剂的病人应在8 小时后采血； 输入碳水化合物、氨基酸、蛋白质或电解 质的患者在1小时后采血。 应尽可能避免在输液同时取血；输液 不仅使血液稀释，而且对实验室检查结果 发生严重干扰，特别是糖和电解质。
（二）采集时的体位
标本处理
血液标本采取后应尽可能早地自然地使血清 （浆）从与血细胞接触的全血中分离出来。 一般应于采血后2h内分离出血清或血浆。全 血处理为血清或血浆分为离心前、离心中和 离心后三个阶段，对各不同阶段均有具体要 求。
（一）及时转送和尽快分离血清或血浆
取血后应尽快转送或分离血清、血浆，否则血清 与血块长时间接触可发生以下变化： （a）由于血细胞的酵解作用，血糖以每小时5%-15%的 速率降低，糖酵解产物乳酸和丙酮酸升高。 （b）由于红细胞膜通透行增加和溶血加重，红细胞内化 学成分发生转移和释放，酶活性受影响，血清无机磷、 钾、铁、乳酸脱氢酶、天冬氨酸转移酶、肌酸肌酶等升 高。 （c）由于酯酶作用，胆固醇酯因分解而减少，游离脂肪 酸增加。 （d）与空气接触，Ph和PO2、Pco2改变，影响结果的准 确性。
影响医学检验结果的因素 一、标本采集 二、标本处理 ……
标本采集
（一）采集标本的时间 （二）采集时的体位 （三）采集标本的方法
（一）采集标本的时间
• 样本采集选择时间的最佳原则
最具“代表性” 最具“代表性”的时间 检出阳性率最高的时间 诊断最有价值的时间
（一）采集标本的时间
身体血液中的许多成分在一日中会出现周期性变化， 如胆红素、血清铁浓度以清晨最高；生长激素于入 睡后会出现短时高峰；血浆蛋白则在夜间降低，血 钙往往在中午出现最低值。有的则是以月为周期的， 如女性生殖激素与月经周期密切相关；胆固醇则在 经前最高，排卵时最低；纤维蛋白原在经前期最高， 血浆蛋白则在排卵时减少，而一般酶与电解质则并 无多大变化。因此，在通常情况下，为了减少由于 采血时间造成测定结果的波动，最好应在相同时间 采集标本。
（三）离心
离心时间和相对离心力（ 离心时间和相对离心力（RCF） ） （1）标本的离心：离心分离血清应选择相对离 心力 RCF（1000～1200）×g，离心时间为5～ 10min。离心全血需2000g，离心时间为15min。 增加相对离心力或离心时间，将会引起溶血。 （2）溶血标本的处理：溶血可导致RBC内多种 成分的释出，引起对测定方法的干扰， Hb≥0.2g/L,肉眼可见溶血，可导致假性增高。对 于轻度溶血，可同时作血清空白对照；严重溶血， 应重留标本。
血液标本的正确处理，是检验人员给临 床提供正确辅助诊断依据的重要前提，当 我们做好了分析前与分析过程中的质量控 制，我们可以告诉医生，我们的结果是准 确的！
谢谢！
（三）采集标本的方法
在采集标本时应注意正确的方法，尤其在采集静脉血时， 许多因素可引起测定值的改变。如应用止血带的时间，止 血带的压迫可以使静脉扩张、淤血、使压迫处的液体由血 管内漏出，从而影响被测物的浓度。如BUN在系上止血带 后80秒，浓度即开始下降，120秒~200秒时可下降4%， 80 120 ~200 4% 到240秒时又会恢复正常。在系止血带3分钟后，Alb、Ca、 ALP、AST、Chol、Fe等浓度可分别升高5%~10%，其中 尤以AST最为突出，在系止血带40秒，即可上升16%，到 200秒时可上升25%。1988年有人报道，抽血用针头过细， 可使血K+浓度升高。所以在采血时，应尽量缩短系止血 带的时间，注意采血的体位、部位、针头的粗细、血液流 出的速度等等。
温度控制离心 离心时产热不利于分析物稳定，临床化学 分析血液标本离心时必须采用温度控制离 心机。一些温度依赖性分析物（如促肾上 腺皮质激素、环腺苷酸、儿茶酚胺等）应 在4℃分离;无特殊温度要求的分析物，离心 温度应设定在20℃～22℃;温度低于15℃可 以人为地使血钾测定值增高;冷藏运送的标 本必须在要求的温度下离心。
分析前质量控制： 血液标本采集与处理 对检验结果的影响
主讲：
当有医生向我们询问： 你们的结果准不准？
临床检验的目的： 临床检验的目的：为临床提供 准确可靠的实验诊断依据。
为了保证实验数据的可靠性，在检验医学 中必须坚持全程质量控制（total quality control,TQC）。
涉及的人员
（四） 存放
标本采集后，应进行及时处理并在合适的环境中存放， 一般血液标本均应首先分离血清或血浆。有报道说，在 未分离的血液中，Glu浓度会以每小时7%的速度下降， K+、CL+浓度会随放置时间的延长而增高。分离的血清 或血浆一般应置于0~4℃的环境中，但对于多种用于酶 活性测定的标本来说应注意到它们特殊的存放条件，如 淀粉酶在25℃情况下可稳定一周，而CK在室温中4小时 则活性即可出现明显下降；冰冻可是一些酶变性， LDH3、4、5在4℃环境中保存容易失活，而在室温条 件下反而能稳定2~3天。所以一般情况下，各项测定均 应及时进行，标本不宜存放时间过长。
①于22℃～25℃血清或血浆的保存不超过8h; ②实验于8h内不能完成时，血清或血浆应置2℃～8℃保 存; ③48h内不能完成的实验项目，或分离的血清或血浆需贮 存48h以上时，应于-20℃保存; ④标本不可反复冻融（只能冻融1次），且不可贮存于无 霜冰箱（可造成样品温度变化）; ⑤离心后分离凝胶（凝胶屏障）上面的血清可保存2～5天 但必须保证凝胶的完整性;但应用非凝胶分离物质时， 离心后必须立即将血清或血浆移出。 ⑥血清或血浆必须保存于密闭的试管中