标本采集、送检、运送、接收、处理、保存和销毁规程

标本采集、送检、运送、接收、处理、保存和销毁

规程

1、目的

保证标本采集到贮存过程符合本实验室检测及法律法规的要求,保证标本质量。

2、适用范围

本站血液检测标本、检测留样标本及临床送检标本。

3、职责

采血人员或相关工作人员负责标本的采集、送检、运送和交接;血库工作人员负责血液检测样本的临时接收和暂存;检验人员负责标本的接收、处理、保存和销毁;办公室负责组织检验科业务人员对标本采集人员进行相关培训。

4、作业步骤

4.1样本采集要求:

4.1.1:知情同意:标本采集应征得献血者知情同意,内容包括:告知采集(留取)标本量,以及用途(仅用于本站血液检测)。

4.1.2:采集:

a.初筛检测样本:采集前严格核对献血者和登记表,抽取1-2ml 的献血者血液于含饱和EDTA-Na2 /K2抗凝剂50ul的普通塑料试管中或含有抗凝剂的真空管中。贴好与献血者登记表一致的献血序列码。

b.献血后血液检测样本:

(1)留取要求:献血者献血后采集人员从血袋/留样袋中留取双份

血样用于实验室的一检和二检,两支血样试管,一支为含分离胶的促

凝真空管(黄盖),应先留取(不能混入血袋中保养液),另一支为EDTAK2抗凝真空管(紫盖),每支试管留取3-5ml血液,留取后立即轻轻上下颠倒至少3次与抗凝剂/促凝剂充分混匀,贴上与献血登记表、血袋标识条码一致校验码为07的献血序列码。

(2)序列码粘贴要求:序列码粘贴不歪斜、无褶皱,沿负压管盖下竖直粘贴,血型标识向上,条码清晰;

(3)校对要求:一次只对一袋血液和同源样本进行贴签留样;所留

标本必须按规程进行操作,并经过Spring采血管理模块对采血袋、登记表和标本管三个序列号一致后方可进入下一流程。

(4)临时储存:血液标本留取结束后及时放在2-10℃环境中保存。

c.临床送检标本要求:

(1)疑难血型鉴定及交叉配血:使用一次性真空采血管采集受检者血样6-10ml,一支EDTA-K2抗凝,另一支未抗凝,每支3-5ml。标识清楚,贴有与申请单一致的序列码,申请单注明被检者姓名、性别、年龄、临床诊断,病史及检测项目等信息,48h内采集。

(2)新生儿溶血病检查样本:使用一次性真空采血管采集母亲和新生儿血样各1-2ml,EDTA-K2抗凝(紫盖)。标识清楚,贴有与申请单一致的序列码,申请单注明被检者姓名、性别、年龄、临床印象及住院号床号等信息。于4℃保存72小时内检测。

4.2运输要求:

运送前做好各项安全保障工作,包装材料应满足防水、防破损、防外泄、耐高温、易于消毒处理的要求。采集的血液标本由采血人负责臵于试管架上。扬中、句容采储血点采集的标本应水平放臵于专用标本运输箱中并附加适当冰块冷藏运输,血液样本运输过程中保持在

2-10℃,运输2小时以上应记录标本运输箱内温度。运输过程中应防颠簸,防止试管溶血,妥善保管,以防标本被污染,或污染其它样品、物品,一旦破损,立即消毒,并报告分管领导。

4.3交接要求:

(1)血液检测样本:

a.接收质量要求:样本采集量3-5ml;标识清晰、粘贴规范;标本信息与交接单完全对应;离心后无溶血、重度脂肪。

b.核对检查内容:句容和扬中样本送达后,由接收人员检查样本起运时间,记录接收时间,运输时间超过2小时记录接收时温度,箱内温度应不高于10℃。当天不检测的标本由采集部门送至供血处核对标本数量,检查标本质量并登记签字,贮存在待检标本暂存区,再由供血处集中后与检验科进行标本交接。当天采集并检测的标本直接由采集部门与检验科交接。检验科人员核对标本数量、检查标本质量,双方签字确认。所有接收的样本由检验人员进行电脑交接核对。

(2)临床样本接收要求:

a.质量要求:样本管使用正确;样本数量正确;每管样本量3-5ml;标识清晰,与申请单一致,申请单内容完整;采集时间距离送检时间不得超过48h。

b.核对检查内容:样本接收人员检查样本质量,采集时间,记录标本状态。登记时应给予唯一性编号,防止标本混淆。记录交接时间、送检人签字,报告方式为书面报告,并注明实验室所在地点、工作时间和联系人。

(3)问题标本的处理:

a.血液检测样本:溶血标本、标识不清或不规范,血样量不足、试管破损等不符合检测要求的标本,予以拒收,通过填写《检验标本留取不合格拒收记录》,通知留取科室,重新留样,并制定纠正预防措施。

b.临床送检样本:样本标识不清、量不足、不符合检测要求的样本,通知临床重新送检样本,并告采集要求。

4.4处理程序:检测样本3000-3800rpm离心15分钟,静臵3-5分钟后,在生物安全柜中拔盖或由试管脱盖机自动脱盖,临床送检样本按检测项目规程规定要求处理。

4.5保存程序:

4.5.1检验科负责留取血液标本的保存期为全血或成分血使用后二年。全血留样标本由供血处和采储血点从与血袋相连接的采血管(留样管)上留取,机采血小板留样标本由成分采集人员留取。以上全血及机采血小板留样标本统一交供血处后,由质量管理科人员核对签收并保管,保存期限为35天。留样标本留取时均必须严格核对无误。血液标本留取数目和标识必须和标本留样图一一对应,并由质量管理科审核和监控,外调血没有留臵留样管时可直接吸取检测标本进行保

存,并做好标识。采集的标本如当天不能检测,须将标本放入指定冰箱2-8℃保存。

4.5.2分站检验科负责血液检测标本的保存,保存期为35天。全血留样由血库人员从与血袋相连接的采血管(留样管)上留取,机采血小板留样标本由成分采集人员留取。留存样本由血库集中保存,保存期限为为全血或成分血使用后二年。留样标本留取时均必须严格核对无误。

4.6销毁程序:实验室检测结束后的血样标本经高温高压处理后,交站内医疗废物暂存处,并做好相关交接记录;已到规定留样期的留样标本,由保管人员提交分管领导审批后送至站内医疗废物暂存处,并做好相关记录;初筛后标本由初筛检测人员于当日无渗漏包装后交医疗废物暂存处,并做好相关交接记录。以上标本由指定单位集中进行焚烧处理。

4.7本实验室不使用分样标本,以确保标本来源准确和实验结果。

病理标本采集及送检标准操作程序修订稿

病理标本采集及送检标准操作程序 WEIHUA system office room 【WEIHUA 16H-WEIHUA WEIHUA8Q8-

病理标本采集及送检标准操作程序一、目的规范标本的采集和送检，保证送检标本的质量，从而确保病理诊断的准确性，为病人的诊断及治疗提供正确指导二、适用范围组织学、细胞学标本的采集、固定、包装运输，申请单填写。三、工作流程（一）组织活检标本 1、病人知情同意:所有为了疾病的诊断而采取的有创组织活检，在活检前均应向患者和或其家属说明活检病理诊断的必要性。特别向其说明，病理诊断并不是万能的，有时病理活检并不能得出明确诊断，使患者和/或其家属了解病理诊断的局限性，使其对活检不能明确诊断表示理解，必要时（根据各自医院的相关规定）和患者签署知情同意书 2、申请单填写:根据检测要求填写本中心相应的专用申请单，病人信息对病理诊断非常重要，临床医师应认真、详细填写申请单各项内容（包括医生姓名、联系电话），特别要填写有意义的阳性体征、影像学检查及其它检验结果，以前做过病理学检查（包括细胞学和组织学）的，应填写检查结果，在本中心检查的应填写相应的病理号。妇科标本应填写月经史、妊娠史。字迹应清晰可辨。 3、样本获取（1）组织样本获取

①对于病理诊断来说，组织越多，诊断成功率越高，因此临床医师在切取组织时，在病人状况允许的情况下，尽量多取组织。 ②取材时应尽量获取未坏死组织，较大肿瘤中央区域常常坏死，做穿刺时应避开坏死区域。 ③取材动作应轻柔，尽量避免挤压组织。 ④肿瘤切除标本应标记标本的方位，并在申请单中记录清楚，以便在发报告时报告各切缘情况，建议对下述标本进行方位标记。 A.带皮肤的肿瘤在标本的十二点位用缝线标记。 B.不带皮肤的软组织肿瘤、乳腺肿瘤、甲状腺肿瘤切除标本分别在十二点位和前面用长度明显不同的缝线标记。 C.宫颈环切（leep术）标本在12点位用缝线标记； D.肠管切除标本于近断端用缝线标记 E.肾切除标本分别用长度明显不同的缝线标记输尿管与肾血管切缘。 F.膀胱切除标本分别用长度明显不同的缝线标记左、右输尿管及尿道切缘。 G.子宫全切、次全切标本可在子宫前壁用缝线标记。 H.其它部位肿瘤以方便病理医师识别切缘为原则进行标记。（2）组织标本固定 ①标本应完整送检，尽量不要将同一份标本分开，分送不同单位作检查；不要任意将标本切开，如需要将标本切开，应按同一方向将其切开。

检验标本采集和送检的基本要求

检验标本采集和送检的基本要求一、分析前阶段质量保证工作的内容及重要性分析前阶段又称检验前过程。按CNAS-CL02：2008《医学实验室质量和能力有专用要求》的定义：分析前阶段按时间顺序，该阶段始于来自临床医师的申请、患者准备、原始样本采集、运送到检验科并在实验室内部的传递，至检验分析过程开始时结束。根据此定义，分析前阶段质量保证的主要内容为：保证检验项目申请的科学性、合理性；根据临床医师的检验要求，患者的病情正确准备；原始样本的正确采集及运送。这一阶段质量保证的重要性在于保证所提供的检验信息对临床医师用于患者诊断、治疗时的有效性、可靠性。也就是说这一阶段质量保证工作是为保证检验结果能真实、客观地反映患者当前病情或健康状态所应采取的必要保证措施。如一个溶血的血清标本，即使用最好的方法、技术熟练的人员去检测，其钾的测定值一定是增高的。对该标本来说，此结果是准确的，因他反映了血清中钾的真实含量，但对患者来说，此信息是无效的，因为此结果并不反映患者当前病情变化，因为血钾增高是由溶血引起，而并不是病情变化引起的。所以分析前阶段质量保证是临床实验室质量保证体系中最重要、最关键的环节之一，是保证检验信息正确、有效的先决条件，而检验信息的有效性是检验工作的目的，也是检验质量重要内涵之一。检验信息的不正确、不可靠，不仅会造成人力、物力的浪费，还可能对临床诊治产生误导，延误对患者及时治疗。二、检验项目的正确选择检验项目选择是否正确，是检验信息是否有用的前提。临床实验室向临床提供的信息如下： 1、诊断信息。 2、治疗信息。 3、患者病情转归的信息。 4、预防信息。 5、人体健康状况评估的信息。 6、其他。

检验标本采集要求

检验标本采集要求一、病人准备 1．病人状态一般需在安静状态下采集标本，因运动能影响许多项目的测定结果。活动的影响可分暂时和持续性两类。暂时性影响如使血浆脂肪酸含量减少；丙氨酸、乳酸含量增高。持续性影响，如激烈运动后使CK、LDH、ALT、AST和GLU等的测定值升高，有些恢复较慢，如ALT在停止运动1h后测定，其值仍可偏高30％～50％。 2．饮食多数试验要求在采血前禁食12h，因为饮食中的不同成分可直接影响实验结果。 (1) 餐后血液中ALT、GLU、BNU、Na等均可升高，但空腹达24h以上，可出现低血糖，血中TG、游离甘油及脂肪酸可增高。 (2) 高脂餐后2～4h采血，多数人ALP含量增高，主要来自肠源性同工酶，且与血型有密切关系，O型或B型兼为Le+分泌型者增高更为明显。 (3) 高蛋白质餐使血浆尿素、血氨增加，但不影响肌酐含量。 (4) 高比例不饱脂肪酸食物，可减低胆固醇含量；香蕉、菠萝、番茄可使尿液5-羟色胺增加数倍。 (5) 含咖啡因饮料，可使血浆游离脂肪酸增加，并使肾上腺和脑组织释放儿茶酚胺。食物如含有动物血液，可引起粪隐血假阳性。 (7) 饮酒后使血浆乳酸、尿酸盐、乙醛、乙酸等增加，长期饮酒者高密度脂蛋白胆固醇偏高、平均血细胞体积增加、谷氨酰转肽酶亦较不饮酒的病人为高，甚至可以将这三项作为嗜酒者的筛选检查。吸烟：瘾大者血液一氧化碳血红蛋白含量可达8％，而不吸烟者含量在1％以下。此外，儿茶酚胺、血清可的松亦较不吸烟者为高，血液学方面亦有变化，白细胞数增加、嗜酸粒细胞减少、中性粒细胞及单核细胞增多、血红蛋白偏高、平均红细胞体积偏高。吸烟组血浆硫氰酸盐浓度明显高于非吸烟组。 3．药物药物对检验的影响非常复杂，在采样检查之前，以暂停各种药物为宜，如某种药物不可停用，则应了解可能对检验结果产生的影响。 4．体位体位影响血液循环，由于血液和组织间液因体位不同而平衡改变，则细胞成分和大分子物质的改变较为明显，例如由卧位改为站位，血浆ALB、TP、酶、Ca、胆红素、Tch及TG等浓度增高；Hb、HCT、RBC等亦可增加。由于体位的因素，在确立参考值时，应考虑门诊和住院病人可能存在的结果差异，故采集标本时要注意保持正确的体位和保持体位的一致性。 5．时间病人准备还应考虑病人的生物钟规律，特别是激素水平分析，如女性生殖激素与月经周期密切相关；胆固醇则在经前期最高，排卵时最低；纤维蛋白原在经前期最高，血浆蛋白则在排卵时减少。生长激素于入睡后会出现短时高峰。胆红素、血清铁以清晨最高；血浆蛋白在夜间降低；血Ca往往在中午出现最低值。故采血时间应在相同时间进行。二、标本采集

检验标本采集核对制度

检验标本采集核对、运送、交接制度临床检验的任务就是对临床标本进行检测分析，为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室结果，并为临床提供咨询服务。因此，检验标本的正确采集、运输、交接处理是确保临床检验顺利进行的重要条件。为此，制订检验标本采集核对、运送和签收制度。标本采集核对制度 1、护士应掌握各种标本的正确留取方法。 2、护士为患者采集标本时要实施正确的双人核对。双人核对医嘱、标本容器及标识、患者身份等，必要时病人参与确认。 3、正确选择标本采集时机。晨起患者处于安静状态，为大部分标本采集的最佳时间。静脉采血前至少要禁食8h；血脂测定需禁食12-14h；做微生物培养检查，最好在使用抗生素之前采集标本；大便隐血检查前要素食3天；尿液检查应按不同项目分别留置取晨尿、随机尿、计时尿等。 4、正确选择标本采集体位。如住院患者建议采用卧位采血，非住院患者可采用坐位；醛固酮检测要在起床前卧位取血，起床后活动4h 立位取血。 5、正确选择标本容器。护士根据采集血液、尿液及粪便等不同标本种类及容量，准备合适的采集容器。在容器外整齐规范地贴上条形码。 6、正确使用止血带。采集血液标本时应尽量缩短使用止血带的压迫时间，一般不超过1min。见到血液进入采血容器后立即松开止血带。当需要重新采集标本时，应换另一手臂。

7、尽可能避免在输液过程中采集血液标本。因为血液被稀释、输入药物可能干扰检验结果。静脉输入葡萄糖、氨基酸、蛋白质或电解质的患者，应在输液结束1h后采集标本；输入脂肪乳剂的患者，应在输液8h后采集标本。如必须在输液时采集标本，要避免在输液同侧的静脉采集标本。 8、采集血液标本时，要避免导致标本溶血的因素。包括：标本管壁粗糙、容器不干燥和不清洁、穿刺处消毒液未干即开始采血、从血肿处采血、抽血速度过快、血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫、震荡过于激烈、止血带捆扎时间过长或让患者反复拽拳、运送标本震荡及放置时间过长等因素。 9、对于有特殊要求的如：患者体位、采集时间、患者体温等需要特别说明的标本，请在条形码空白处用文字备注，字迹清晰。 10、不得随意涂改标本条码上的信息，包括：患者信息、检验项目等。标本运送和签收制度 1、各病区、科室标本采集后，由责任护士与运送工人双方做好交接清点、并做好交接记录（项目、数目、时间、签名），再由运送工人送检验科。 2、安全、及时地运送标本。标本应统一安排后勤服务公司专职人员送检。标本运送应遵循唯一标识、生物安全和及时运送三大原则：（1）唯一标识原则：应用可扫描自动识别的条形码是解决唯一标识最好的方式。（2）生物安全原则：要求使用可以反复消毒的专用容器运送标本。

标本采集和送检原则精编版

标本采集和送检原则集团企业公司编码：（LL3698-KKI1269-TM2483-LUI12689-ITT289-

正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键！其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性，同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。采样时机抗生素使用前（停用抗生素3至5天或下次用药前）采样采样方法采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。采样容器专用的无菌，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。送检尽快送检，一般不超过2小时。若不能及时送检可于4-8℃保存，但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。微生物检查的标本采集和运送原则 1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。 2.尽量在抗菌药物使用前，或停药3至5天后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。

3.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。 4.采样时应严格执行无菌操作，将污染可能降至最低。 5.收集真正感染的病灶处的标本，且避免邻近区域常居菌群的污染。 6.采用专用无菌容器收集标本。容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。标本中不可添加防腐剂。 7.采样后应立即送检，最好在2h内。如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但不超过24小时。对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。 8.尽量不要以一般棉花拭子收集标本，应使用专用的纤维拭子。 9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。（要标明病区、病人姓名、感染状况、近期抗菌药物使用情况、标本来源、检验目的、采集部位、采集及送检时间等） 10.同一天同一检测目的、相同标本（血液标本除外）一般只需送检一次（份）。涂片检查最好和细菌培养同时做！

微生物标本采集送检及处理原则

微生物标本采集、送检及处理原则一、标本采集的一般原则： 1、病程早期、急性期或症状典型时，使用抗生素前。 2、无菌采集应无污染，严格进行无菌操作。 3、根据目的菌的特性用不同的方法采集适量标本，采集量不应过少。 4、注意在不同病程采集不同部位标本。 5、采集标本时要防止传播和自身感染。二、标本的处理： 1、标本保存在4℃环境中，在2h之内送检。脑脊液则要在25 ℃保存，用于细菌培养的标本保存时间不应超过24h。对环境敏感的细菌应保温并立即送检。 2、标本中可能含有致病菌，必须注意安全防护。切勿污染环境。对于烈性传染病标本运送时更要由专人运送，严格按规定包装。 3、厌氧性标本应放在专门的运送瓶或试管内运送，有时可直接用抽取标本的注射器运送。 Ⅰ血液及骨髓标本：血液标本的细菌培养是诊断菌血症或败血症的基本方法。如从患者血液中检出细菌，一般应视为病原菌。常见的病原菌主要有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌（A、B群、肺炎链球菌等）、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、脑膜炎奈瑟菌、伤

寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等。 1、采血时间及次数 2、抽血部位及抽血量 3、报告方式：培养5d无菌生长者报告“培养5d无菌生长”。查见细菌报告菌名和药敏结果。 4、菌血症、败血症的诊断标准：1）两次培养均出现同一种细菌（可排除污染）； 2）发病星期后血中抗体滴度上升。 Ⅱ脑脊液标本：脑脊液的细菌学检查对于细菌性脑膜炎的诊断有重要价值。正常人的脑脊液是无菌的，检出细菌提示有细菌性（急性化脓性、结核性等）脑膜炎。常见的病原菌主要有脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、链球菌（A、B群和肺炎链球菌）、葡萄球菌、产单核细胞李斯特菌、结核分枝杆菌等。 1、涂片检查： (1) 一般细菌涂片检查：例如：革兰阴性、凹面相对的球菌，可能是脑膜炎奈瑟菌；链状排列的革兰阳性球菌；长丝状等多形态性的革兰阴性杆菌，可能是流感嗜血杆菌。 (2)结核分枝杆菌涂片检查 (3)新生隐球菌涂片检查

标本采集、运送、保存程序

标本采集、运送、保存成序 1.目的规范标本采集程序，保证实验室检测前标本质量。 2. 范围微生物标本。 3. 职责 3.1 医护人员和检验人员负责指导病人如何正确留取标本。 3.2 标本运输人员负责收取标本和运输标本至微生物室。 4. 程序 4.1 采集标本前，采样人员根据检验申请单检验项目的要求，确认采样计划并进行适当的准备工作，包括核对遗嘱、打印条形码、选择合适的标本容器、粘贴条形码及指导病人做好采样前的准备工作等。 4.2 认真核对病人、标本容器和检验申请单是否一致，严防差错。 4.3 标本送到微生物室，标本运输人员必须与微生物室标本接收人员对标本进行核收登记并签名 4.4 所有标本必须记录采样时间并立即送检，一般不得超过2h. 5 采集方法 5.1 血液及骨髓 5.1.1 血液 5.1.1.1采血时间：①在抗菌药物治疗前；②尽可能在患者寒战开始时、发热高峰前30-60分钟内采血；③如患者已经应用抗菌药物进行治疗，应在下一次用药之前采血培养；④同时或短时间内完成几套血

培养采集，除非怀疑存在持续性菌血症时（如亚急性感染性心内膜炎1-2小时从不同部位采集3套标本） 5.1.1.2采血量：成人一次采血5～10ml,儿童2～5 ml婴幼儿为1～2ml。（附注：儿童的采血量不能超过其总血容量的1%）。 5.1.1.3采血方法：①成年病人，推荐同时在不同部位采集2～3套（每套包括一瓶需氧瓶、一瓶厌氧瓶）；对于感染性心内膜炎和真菌血症则应多次采集；对于婴幼儿病人，推荐同时在不同部位采集2～3瓶。因为儿童患者很少见厌氧菌感染，因此推荐仅使用需氧瓶而不常规推荐同时做厌氧培养。②采血量充足时，应先注入厌氧瓶，后注入需氧瓶；采血量不足时，应先注入需氧瓶，后注入厌氧瓶。 5.1.2 骨髓标本用骨髓穿刺针从髂骨采集。 5.1.3 标本保存：采集标本后立即送到实验室，不能及时送检可置于室温，切勿放入冰箱。冬季血培养瓶在送检过程中应采取一定的保暖措施。 5.2 脑脊液标本：由临床医师以无菌要求做腰椎穿刺，抽取脑脊液2～3ml,盛于无菌容器中送检。脑膜炎奈瑟菌离体后能产生自酶，会迅速自溶，肺炎链球菌及流感嗜血杆菌离体后也易死亡，因此，脑脊液无论图片或培养，必须于采集后立即送检。 5.3 上呼吸道标本 5.3.1 鼻咽标本：将鼻咽拭子缓缓地伸进鼻孔直至鼻咽喉部（注意：不可用力），轻轻转动，并于该深度停留20～30s,然后迅速地抽出（注意：避免受口或咽部中细菌的污染）。

微生物标本采集及保存要求

微生物标本采集及保存要求一、总则：用于培养的标本在收集时应注意严格无菌操作和及时送检，检测后标本应妥善保存。二、临床标本的采集（一）下呼吸道分泌物（痰液）令患者早上起床后用清水濑口，不要刷牙，立即从下部呼吸道咳出第一口痰，吐在无菌塑料痰盒中，及时送检。（二）、尿液（中段尿）护理人员协助采取中段尿约3ml入无菌试管中，及时送检。（三）、粪便：取有粘液、脓血部分的粪便置玻璃大便专用管中，如为稀水便，可直接收集于玻璃管中，及时送检。（四）、眼、耳、鼻、喉拭子：将棉拭子沾取少许无菌生理盐水（如沾取的太多，可在无菌生理盐水瓶壁上挤去多余的水份），然后采取可疑部位的分泌物，倒悬于无菌试管内,及时送检。（五）、脓液：用沾有生理盐水的棉拭子沾取脓液，要尽量多取一些，然后将棉拭置于无菌试管中，及时送检。（六）、： 1、凡怀疑菌血症和败血病的患者，采血培养时，应尽量在未使用抗菌素前采血，如已使用抗菌素，应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血，应在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。当然在病人发热或寒颤时采集也可。 2、成人每次采血5—10ml，小儿采血2—3ml； 3、严格消毒病人采血部位和血培养瓶口，抽一定量血液后，无菌注入血培养瓶内，轻轻摇匀， 4、从抽血到接种入瓶，动作要快，防止血液凝固，同时要及时送检。（七）、穿刺液：胸腹水、心包液、关节腔液、鞘膜积液：严格无菌抽取后，注入含肝素抗凝的无菌试管中，轻轻颠倒试管10余次，使肝素与穿刺液混匀达到抗凝的目的，或直接无菌注入血培养瓶内及时送检。（八）、胆汁：由专科医生以无菌方法取引流液10ml注入无菌试管。（九）、脑脊液：以无菌方法取脑脊液3-5ml，置无菌试管内，常温保存送检，如只做培养可直接无菌注入血培养瓶内，及时送检。（十）、生殖器官标本：阴道、子宫颈及前列腺等分泌物应由医师采集，收集于无菌试管内送检。如疑为淋病奈瑟菌感染，做培养检查时，采集的标本应床旁接种并及时放入孵箱培养。（十一）、烧伤标本：以无菌棉拭子直接采取多个部位创面的脓汁分泌物放入无菌试管中. （十二）、支原体（解脲、人型）培养+药敏的标本采集 1、支原体对干、热抵抗力差，标本采集后应尽快接种支原体运送培养基送检。 2、男性：用细的无菌棉拭子沾取无菌盐水少许深入尿道口内2.5-3cm。三、临床标本的保存细菌室标本原则上要求及时送检、及时处理，不得保存。

病理标本采集及送检标准操作程序

病理标本采集及送检标准操作程序一、目的规范标本的采集和送检，保证送检标本的质量，从而确保病理诊断的准确性，为病人的诊断及治疗提供正确指导二、适用范围组织学、细胞学标本的采集、固定、包装运输，申请单填写。三、操作人临床医师四、工作流程（一）组织活检标本 1、病人知情同意:所有为了疾病的诊断而采取的有创组织活检，在活检前均应向患者和或其家属说明活检病理诊断的必要性。特别向其说明，病理诊断并不是万能的，有时病理活检并不能得出明确诊断，使患者和/或其家属了解病理诊断的局限性，使其对活检不能明确诊断表示理解，必要时（根据各自医院的相关规定）和患者签署知情同意书 2、申请单填写:根据检测要求填写金域检验中心相应的专用申请单，病人信息对病理诊断非常重要，临床医师应认真、详细填写申请单各项内容（包括医生姓名、联系电话），特别要填写有意义的阳性体征、影像学检查及其它检验结果，以前做过病理学检查（包括细胞学和组织学）的，应填写检查结果。妇科标本应填写月经史、妊娠史。字迹应清晰可辨。

3、样本获取（1）组织样本获取 ①对于病理诊断来说，组织越多，诊断成功率越高，因此临床医师在切取组织时，在病人状况允许的情况下，尽量多取组织。 ②取材时应尽量获取未坏死组织，较大肿瘤中央区域常常坏死，做穿刺时应避开坏死区域。 ③取材动作应轻柔，尽量避免挤压组织。 ④肿瘤切除标本应标记标本的方位，并在申请单中记录清楚，以便在发报告时报告各切缘情况，建议对下述标本进行方位标记。 A.带皮肤的肿瘤在标本的十二点位用缝线标记。 B.不带皮肤的软组织肿瘤、乳腺肿瘤、甲状腺肿瘤切除标本分别在十二点位和前面用长度明显不同的缝线标记。 C.宫颈环切术标本在12点位用缝线标记； D.肠管切除标本于近断端用缝线标记 E.肾切除标本分别用长度明显不同的缝线标记输尿管与肾血管切缘。 F.膀胱切除标本分别用长度明显不同的缝线标记左、右输尿管及尿道切缘。 G.子宫全切、次全切标本可在子宫前壁用缝线标记。 H.其它部位肿瘤以方便病理医师识别切缘为原则进行标记。（2）组织标本固定 ①标本应完整送检，尽量不要将同一份标本分开，分送不同单

临床管理制度-83：病理标本采集与送检制度

1 病理标本采集和送检 1.1 病理标本包括手术标本、活检标本及细胞学标本。 1.2 具有执业医师资格者才能采集病理标本。 1.3 病理申请单包括下列信息： a 患者姓名、性别、年龄、住院号、病床号。 b 临床资料。 c 采集标本的日期。 d 标本的来源。 e 申请医生。 1.4 注意事项： a 申请单勿放在标本袋中以防止污染。 b 细胞学标本在采集时： 1) 正确选择采集部位，尽可能自病变部位直接采集； 2) 尽可能避免干扰物，如血液等； 3) 保证标本新鲜，防止细胞自溶、变质或腐败，采集后必须尽快送检。如各种情况不能及时送出的浆膜腔积液标本，请放入4-6℃冰箱冷藏； 4) 痰标本：以晨痰为宜，嘱患者先漱口再深咳嗽； 5) 尿液标本:排去晨尿后，收集下次尿量

30-50ml； 6) 浆膜腔积液：标本量应在100ml以上。 c 常规组织标本用10%中性福尔马林固定，用量为组织标本体积的5-10倍。 d 术中冰冻须送未固定的新鲜组织，手术取下后立即送检。 2 标本核对、接收标本接收者核对病理申请单与标本袋/瓶标签上的患者姓名、住院号、标本名称，无误后在标本接收本上签收。

3 不符合要求的病理标本 3.1 接收标本时发现下列情况，被认为是不符合要求的标本: a 申请单与标本不符； b 申请单上重要项目填写不全或漏填； c 标本袋无患者姓名、住院号或只有标本而无病理申请单； d 标本袋中未见标本。 3.2 病理科对不符合要求标本的处理方法： a 联系手术医师，要求更正； b 标本容器外的标签只能由标本采集者更正，在错误未被纠正之前不得再次送检； c 符合要求后由医生/护士送至病理科。获经批准院长日期

检验标本的采集储存转运和处理制度

检验标本的采集、储存、转运和处理制度检验标本的采集一、血液标本的采集血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。静脉血是最常用的标本，静脉穿刺是最常用的采血方法。毛细血管采血主要用于儿童，血气分析多使用动脉血。（一）静脉采血法 1?．采血步骤采血前核对病人姓名、性别、年龄、编号及检验项目等，按试验项目要求，准备好相应的容器，如空白试管、抗凝管或促凝管等。病人应取坐位或卧位，采血部位通常是前臂肘窝的正中静脉。若用普通采血法，采血后应取下针头，将血液沿管壁缓慢注入试管内。 2?．注意事项（ 1 ）防止溶血：造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁；淤血时间过长；穿刺不顺利，组织损伤过多；抽血速度太快；血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫；震荡过于剧烈等。若用普通注射器采血后，未取针头直接将血注入真空管内，也易造成溶血。体内溶血属合格标本，但应在报告单上注明。（ 2 ）避免充血和血液浓缩：采血时应动作迅速，尽可能缩短止血带使用时间。用止血带压迫时间最好不超过半分钟，否则将使生化结果升高或下降。（ 3 ）若病人正在进行静脉输液，不宜在输液同侧手臂采血；若女性病人做了乳腺切除术，应在手术对侧手臂采血。（ 4 ）采血的体位：体位改变可引起一系列的生理变化，使血液中的许多指标发生改变。一般采取直立位采血，其二标本的测定值比卧位高 5 ％～ 15 ％。因此，采血时要注意保持正确的体位（坐位或卧位），以及体位的一致性。（ 5 ）采血时只能向外抽，决不能向静脉内推，以免注入空气，形成气栓而造成严重后果。（ 6 ）很多生化成分受膳食影响，因此，采血前要确认病人是否空腹。（二）动脉采血法肱动脉、股动脉、桡动脉以及其它任何部位的动脉都可以作为采血点，但多选择肱动脉和桡动脉。在摸到明显搏动处，按常规消毒，左手固定搏动处，右手持注射器，针头成 60 °角刺入，血液将自动进入注射器内。采血注意事项见血气分析部分。（三）真空采血法双向针的一端在持针器的帮助下刺入静脉，另一端插入真空试管内，血液在负压作用下自动流入试管内。由于在完全封闭状态下采血，避免了血液外溢引起的污染，并有利于标本

(推荐)血液标本采集、送检留样保存制度

血液标本采集、送检、留样保存管理制度 1、病人血液标本采集由两名护士共同配合采集静脉采血 5ml,血清和血浆都可以用于交叉实验和抗体检测，最好是血清标本，标本使用限制在3 天内含有肝素等抗凝标本可以用凝血酶或硫酸鱼精蛋白处理使其凝集析出血清。 2、允许通过静脉输液口采集标本，但必须丢弃受残留静脉输液影响的 5ml 标本。 3、一般不允许使用溶血标本，对急性溶血性贫血和烧伤病人的溶血标本，在实验前后必须做溶血程度的比较。 4、标本和输血申请单上的所有资料必须填写清楚 5、确定输血后，护士输血申请单和贴好标签的试管，当面对患者姓名，性别，年龄，病案号，病室/门急诊、床号、血型和诊断，同时采血样。 6、由护士及时将受血者血样与输血申请单送配血室，双方进行逐项核对。 7、患者标本管上必须有标签，收到标本时应当面与医护人员核对血样标签与输血申请单是否相符，即双方逐项核对患者姓名、病案号、病室/门急诊、床号、血型和采血日期等，并检查送检标本的质量是否与申请项目的要求相符，不符合要求的样本一律退回，并进行书面记录。收到标有“急”字样的标本应及时处理。 8、配血室科工作人员应复核受血者（患者）ABO血型、Rh血型、抗体筛查后按科室分类保存在4℃冰箱备用。对中心血站提供的全血及红细胞悬液血液制品也应核对ABO血型后按血型分类保存在4℃冰箱备用。 9、预约输血患者的血样在4℃冰箱保存不能超过48小时，逾期应重新抽取血样。对反复输血的患者更应注意抽取新的标本做不规则抗体筛查及交叉配血，以避免患者体内因回忆反应而产生抗体。

10、确定输血后，输血科工作人员对患者的血样在交叉配血之前，应再次认真查对病人姓名、性别、年龄、住院号、病区床号及血型。交叉配血时要严格按照规程进行。 11、血液发出后，受血者和供血者的血样按日期的先后保存于2－6℃冰箱，至少7天，以便对输血不良反应追查原因。逾期的血样应按医疗废物处理原则处理，并做好登记工作。 12、血液标本留样保存冰箱的温度要定期监控记录，如发生故障要立即检查原因，及时解决并记录。（注：专业文档是经验性极强的领域，无法思考和涵盖全面，素材和资料部分来自网络，供参考。可复制、编制，期待你的好评与关注）

标本采集管理制度

1、标本的采集 1）、血液标本的采集：静脉采血时，除卧床病人，采血时一般取坐位，成人多用肘前静脉，肥胖者可用腕背静脉，婴幼儿常用颈静脉，偶用前囟静脉。静脉采血用止血带应一人一用一消毒。使用止血带的时间不应超过一分钟，穿刺成功后应立即松开止血带。正在静脉输液者应停止输液三分钟，从未输液的另一侧或输液部位以下的部位采血。血清(浆)标本的收集各室应根据所检验项目的要求采用相应的标本收集管，并确定采血量。动脉采血一般由临床科室护士采集。 2）、尿液标本的采集一般由患者或护理人员按医嘱留取。取样时应注意明确标记，避免污染，使用合格的一次性洁净专用尿杯收集尿样。中段尿、导管尿等特殊尿样的采集一般由医护人员行相关操作留取标本。 3）、粪便标本的采集由患者留取后收集于合格的一次性洁净专用粪杯送检。应取新鲜标本，选取异常成分的粪便，如含有黏液、脓、血等病变成分的标本，外观无异常的从表面、深处及粪端多处取材，取3～5g及时送检。 4）、阴道分泌物标本的采集一般由妇科医师采集。采集阴道分泌物标本前24小时应避免性生活、盆浴。应于各种治疗、检查前采集标本，避免阴道冲洗或上药，被检者在采样前2小时不能排尿。患者取膀胱截石位。用阴道扩张器暴露宫颈，采样前，用棉拭子将宫颈口过多的分泌物轻轻搽拭干净。更换棉拭子，用生理盐水浸润的棉拭子伸到宫颈管内0．5·2cm，稍用力转动两周，以取得分泌物及脱落细胞。 5）、痰标本的采集嘱病人先行清水反复漱口，并指导或辅助病人深咳嗽，从呼吸道深部咳出新鲜痰液于无菌容器送检。一般应采集清晨第一次咳出的痰液，采样时应收集带血丝部分或有干酪样颗粒的部分。痰液极少者可用45’C10％NaCl溶液雾化吸入导痰。痰液收集于一次性洁净专用痰杯内及时送检。 6）、其他标本的采集脑脊液、胸腹水及支气管灌洗液等其他标本由临床医师按相应操作采集。 2、标本的送检样本应置于被承认的本质安全防漏的容器中运输。病房标本由各病区工人负责运送，门诊标本由我科工友运送，标本采集后均应及时送检。运送过程中标本管口垂直朝上放置，避免振动、外溅。进行微生物检验的标本要防止运送过程中的污染。 3、标本的签收所有标本均可能具有传染性，涉及标本处理的全过程均应按科室制定的生物安全手册进行。各室标本的接收在指定的区域内进行，接收标本时须检查标本状态、核对标本管标识与检验申请单内容的一致性，如姓名、住院号、检验项目等，有不清新情况时应及时与送检科室联系核实。工作人员有权拒收与检验申请单不一致的、标识不清的标本。各室应根据检验目的对标本的要求判断标本是否应该拒收，如血液凝固、严重溶血、标本量不足等，拒收标本时应及时通知采样科室。 4、标本的检验各室应严格按所在室的标准操作规程开展检验，保证检验质量，及时发放检验报告。

血标本的采集与送检管理制度

血标本的采集与送检管理制度 -标准化文件发布号：（9456-EUATWK-MWUB-WUNN-INNUL-DDQTY-KII

血标本的采集与送检管理制度为了执行《临床输血技术规范》第三章“受血者血样采集与送检”有关规定，确保血液样本的有效性，防止发生差错事故，以及便于追踪调查，特制定本制度。 1 预防患者血标本张冠李戴，应根据医院护理部要求，建立有利于鉴别病人信息的一切措施。 2 血标本由输血患者所在科室采集，不得由别的科室代为采集。住院患者采集血标本后又转科或转床，此时需要输血应重新采集血标本。已执行给患者配戴腕带的医院可以例外。 3 如果患者未配戴腕带，又不知血型者，应严格遵循两次采集血标本的规定，即检验科做正定型，输血时由输血科复查正定型，加做反定型，或者备血时由输血科做血型鉴定，不配血。输血时，重抽血标本做血型鉴定及交叉配血试验。如发现两次血标本血型不一致或者血标本血型与《临床输血申请单》所填写血型不一致时应通知所在科室重抽血标本。 4 采集血标本时，采血护士必须认真核对受血者身份，如果患者是清醒的，应要求患者回答自己的姓名；若患者意识不清，通过询问患者的亲属确认患者身份。只有当《临床输血申请单》与患者腕带的资料完全一致时方可采集血标本，二者有矛盾时不得采集血标本，不得使用来源不明或者无人对其来源负责的血标本进行交叉配血。绝对禁止通过床头卡来核实患者身份。使用条形码的，应在采血后将标有患者姓名、性别、年龄、住院号、检测项目的条形码标签贴在采血试管上并与患者腕带资料仔细核对。 5 血标本采集后，采血护士必须在离开患者床边之前在血标本标签上标明患者姓名、病案号及血标本采集日期（应强制执行该项规定）。不要在采血前贴上标签，一位医护人员不得同时采集两位患者的血标本，因为这样做存在将血样注入到错误的试管中的危险。使用血标本专用试管采集的，应将试管上两个相同的号码条其中一个粘贴在该患者的《临床输血申请单》上。最好由采血者和患者在申请单上签名共同确认血标本的正确性。若患者不能签名时，则应说明理由，并请随同人员见证并签名。保证采血和填写标签人员由同一人完成，出现任何差错均由同一人负责。推荐标签在计算机上完成并打印，以避免书写错误。 6 贴有标签的血标本连同输血申请单经核对后由医护人员送输血科（血库），双方仔细核对患者信息，包括患者姓名、性别、年龄、病案号及试管与输血申请单的号码是否一致等，并签名确认。不得由非医护人员送血标本。 7 输血科工作人员在检验前必须确认试管上的标签与输血申请单上的资料一致，如有疑问应重新采集血标本，不得电话询问后就擅自修改错误的标签及输血申请单。 8 血标本须不抗凝或EDTA抗凝（大约需5ml血液），且要做到八不收： 8.1 血标本无标签或填写不清不收； 8.2 血标本与申请单所填项目不符不收； 8.3 血标本量少于3ml不收； 8.4 血标本被稀释不收（如从输液管获取血标本，应以生理盐水冲注，并将首先抽取的5ml血液弃去，以防血标本被稀释）；

细菌标本采集规范

临床微生物学标本采取和处理的规范化要求正确的采取、处理与运送用于细菌培养的标本是临床细菌检验成功的关键。标本采取与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础；而标本采取与处理不当将严重影响检验结果，给临床以误导，延误对患者的正确治疗。为此，我们提出初步的参考意见，并希望在实践中不断完善。一、血液细菌培养标本的采集和处理临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者，需做血液细菌培养以明确病原。 1．采集方法：静脉采血，以无菌操作方法抽取血液后，直接注入血培养瓶中，轻轻颠倒混匀，以防血液凝固。如果同时作需氧和厌氧培养，应先将标本接种到厌氧瓶中，再注入需氧瓶，严格防止将空气注入厌氧瓶中。 2.采血时间以及血培养份数：在患者发热期间越早越好，最好在抗菌治疗前，用药前24小时内采集2～3次血液标本，可使细菌检出率高达99%。对间歇性寒战或发热的患者，应在寒战或体温高峰到来之前0.5～1小时采血，亦可在寒战或发热后1小时采集血液标本。特殊感染患者采血培养时应遵循以下原则：（1）可疑急性发热性菌血症、败血症患者：应在使用抗菌药物之前，在24小时内从不同部位采集2～3份血液标本培养。（2）可疑细菌性心内膜炎患者、感染性心内膜炎患者：在1～2小时内采集3份血标本培养，如果24小时后阴性，再采集两份血标本培养。（3）不明原因发热患者：先采集2～3份血标本，抽血间隔60 min，24～36小时后体温升高之前，再采集2份血标本进行培养。因为1次血培养不足以说明问题，可能会遗漏阳性结果。

（4）可疑菌血症但血培养持续阴性时；应改变血培养方法，以获得罕见或苛养的微生物。（5）在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎，需马上做抗菌治疗；或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者，应立即从两臂分别取2份标本。 3.采血部位：采血部位通常为肘静脉。疑为亚急性心内膜炎的患者，以肘动脉或股动脉采血为宜。疑为细菌性骨髓炎或伤寒患者，在病灶或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓。多次采血应在不同部位的血管穿刺以排除皮肤菌丛污染的可能。要避免从血管插管内取血，因插管常被污染，其培养结果不能反映真实情况。在不同部位取血，2次分离出同样菌种才是确定病原菌的有力证据。采血时要求严格无菌操作，防止皮肤正常菌群污染。 4.采血量：采血量与血培养的检出率相关，所以采血量一定要足够。成人一般为8～10ml/瓶，新生儿与婴幼儿为1～5 ml/瓶，骨髓采血量为1～2ml/瓶。 5.标本运送与保存：含血样的培养瓶应立即送往实验室；不能及时送检的标本，应将其放在室温，切忌冰箱存放，因为某些苛养菌可在低温环境中死亡，而使培养阳性率下降。二、下呼吸道分泌物(痰培养)的标本采取和处理下呼吸道分泌物(痰)的细菌学检查对病原学诊断起着重要作用，但痰标本的质量往往难以保证，造成病原学诊断和实际引起感染的病原菌脱节，直接影响抗菌药物的应用、甚至耐药菌的出现或流行。痰标本的细菌学检验地带网检查应注意如下几个问题。 1.标本的采集：痰液标本最好在应用抗菌药物之前采集，以深咳晨痰最好，主要有自然咳痰法、支气管镜采集法、胃内采痰法、小儿采痰法和气管穿刺法等。

标本采集和送检原则

正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键！其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性，同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。 ?采样时机抗生素使用前（停用抗生素3至5天或下次用药前）采样 ?采样方法采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。 ?采样容器专用的无菌，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。 ?送检尽快送检，一般不超过2小时。若不能及时送检可于4-8℃保存，但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。微生物检查的标本采集和运送原则 1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。 2.尽量在抗菌药物使用前，或停药3至5天后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。

3.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。 4.采样时应严格执行无菌操作，将污染可能降至最低。 5.收集真正感染的病灶处的标本，且避免邻近区域常居菌群的污染。 6.采用专用无菌容器收集标本。容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。标本中不可添加防腐剂。 7.采样后应立即送检，最好在2h内。如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但不超过24小时。对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。 8.尽量不要以一般棉花拭子收集标本，应使用专用的纤维拭子。 9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。（要标明病区、病人姓名、感染状况、近期抗菌药物使用情况、标本来源、检验目的、采集部位、采集及送检时间等）10.同一天同一检测目的、相同标本（血液标本除外）一般只需送检一次（份）。涂片检查最好和细菌培养同时做！

标本采集及保存要求

标本采集及保存要求一、总则：用于细菌培养的标本在收集时应注意严格无菌操作和及时送检，检测后标本应妥善保存。二、临床标本的采集（一）下呼吸道分泌物（痰液）令患者早上起床后用清水濑口，不要刷牙，立即从下部呼吸道咳出第一口痰，吐在无菌塑料痰盒中，及时送检。（二）、尿液（中段尿）护理人员协助采取中段尿约3ml入无菌试管中，及时送检。（三）、粪便：取有粘液、脓血部分的粪便置玻璃大便专用管中，如为稀水便，可直接收集于玻璃管中，及时送检。（四）、眼、耳、鼻、喉拭子：将棉拭子沾取少许无菌生理盐水（如沾取的太多，可在无菌生理盐水瓶壁上挤去多余的水份），然后采取可疑部位的分泌物，倒悬于无菌试管内,及时送检。（五）、脓液：用沾有生理盐水的棉拭子沾取脓液，要尽量多取一些，然后将棉拭置于无菌试管中，及时送检。（六）、血液： 1、凡怀疑菌血症和败血病的患者，采血培养时，应尽量在未使用抗菌素前采血，如已使用抗菌素，应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血，应在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。当然在病人发热或寒颤时采集也可。 2、成人每次采血5—10ml，小儿采血2—3ml； 3、严格消毒病人采血部位和血培养瓶口，抽一定量血液后，无菌注入血培养瓶内，轻轻摇匀， 4、从抽血到接种入瓶，动作要快，防止血液凝固，同时要及时送检。（七）、穿刺液：胸腹水、心包液、关节腔液、鞘膜积液：严格无菌抽取后，注入含肝素抗凝的无菌试管中，轻轻颠倒试管10余次，使肝素与穿刺液混匀达到抗凝的目的，或直接无菌注入血培养瓶内及时送检。（八）、胆汁：由专科医生以无菌方法取引流液10ml注入无菌试管。（九）、脑脊液：以无菌方法取脑脊液3-5ml，置无菌试管内，常温保存送检，如只做培养可直接无菌注入血培养瓶内，及时送检。（十）、生殖器官标本：阴道、子宫颈及前列腺等分泌物应由医师采集，收集于无菌试管内送检。如疑为淋病奈瑟菌感染，做培养检查时，采集的标本应床旁接种并及时放入孵箱培养。（十一）、烧伤标本：以无菌棉拭子直接采取多个部位创面的脓汁分泌物放入无菌试管中. （十二）、支原体（解脲、人型）培养+药敏的标本采集 1、支原体对干、热抵抗力差，标本采集后应尽快接种支原体运送培养基送检。 2、男性：用细的无菌棉拭子沾取无菌盐水少许深入尿道口内2.5-3cm。三、临床标本的保存细菌室标本原则上要求及时送检、及时处理，不得保存。

标本采集及送检制度

标本采集及送检制度一、目的：确保实验室标本的安全、有效，保证检验质量。二、适用范围：适用于检验科全体工作人员。三、内容： 1、标本的采集 1）、血液标本的采集：静脉采血时，除卧床病人，采血时一般取坐位，成人多用肘前静脉，肥胖者可用腕背静脉，婴幼儿常用颈静脉，偶用前囟静脉。静脉采血用止血带应一人一用一消毒。使用止血带的时间不应超过一分钟，穿刺成功后应立即松开止血带。正在静脉输液者应停止输液三分钟，从未输液的另一侧或输液部位以下的部位采血。血清(浆)标本的收集各室应根据所检验项目的要求采用相应的标本收集管，并确定采血量。动脉采血一般由临床科室护士采集。 2）、尿液标本的采集一般由患者或护理人员按医嘱留取。取样时应注意明确标记，避免污染，使用合格的一次性洁净专用尿杯收集尿样。中段尿、导管尿等特殊尿样的采集一般由医护人员行相关操作留取标本。 3）、粪便标本的采集由患者留取后收集于合格的一次性洁净专用粪杯送检。应取新鲜标本，选取异常成分的粪便，如含有黏液、脓、血等病变成分的标本，外观无异常的从表面、深处及粪端多处取材，取3～5 g及时送检。 4）、阴道分泌物标本的采集一般由妇科医师采集。采集阴道分泌物标本前24小时应避免性生活、盆浴。应于各种治疗、检查前采集标本，避免阴道冲洗或上药，被检者在采样前2小时不能排尿。患者取膀胱截石位。用阴道扩张器暴露宫颈，采样前，用棉拭子将宫颈口过多的分泌物轻轻搽拭干净。更换棉拭子，用生理盐水浸润的棉拭子伸到宫颈管内0．5·2cm，稍用力转动两周，以取得分泌物及脱落细胞。 5）、痰标本的采集嘱病人先行清水反复漱口，并指导或辅助病人深咳嗽，从呼吸道深部咳出新鲜痰液于无菌容器送检。一般应采集清晨第一次咳出的痰液，采样时应收集带血丝部分或有干酪样颗粒的部分。痰液极少者可用45℃10％NaCl溶液雾化吸入导痰。痰液收集于一次性洁净专用痰杯内及时送检。 6）、其他标本的采集脑脊液、胸腹水及支气管灌洗液等其他标本由临床医师按相应操作采集。 2、标本的送检：样本应置于被承认的本质安全防漏的容器中运送。标本采集后均应由专门负责人及时送检。运送过程中标本管口垂直朝上放置，避免振动、外溅。进行微生物检验的标本要防止运送过程中的污染。