血样样本的采集和处理
血液样本的采集和处理
血液样本的采集和处理 (1)
CD4+和CD8+ T淋巴细胞样品的采集和处理 (4)
血液样本的采集和处理
一、血清样品的采集和处理
1、用一次性注射器（或真空采血管）抽取一定量静脉血，室温下自然放置1～2h，待血液凝固、血块收缩后再用3000r/min离心15min，吸出血清于血清管内备用。
2、如用滤纸片采样，则手指或耳垂局部严格进行消毒，在刺破皮肤后，迅速把滤纸片沾上，切勿让血液滴落在其他物体表面造成污染。采血后要待血样干燥后再包装送检。
二、抗凝血样品采集和处理
1、用加有抗凝剂的真空采血管（或一次性注射器抽取静脉血，转移至加有抗凝剂的试管），反复轻摇，分离血浆和血细胞备用。
2、应根据实验要求选用适当的抗凝剂，如CD4+ /CD 8+T淋巴细胞测定可选用K3EDTA或肝素或枸橼酸钠，HIV病毒分离、核酸定性/定量检测可选取K3EDTA或枸橼酸纳。
3、用于核酸定性检测时，采集的抗凝全血应在4～8h内分离PBMC和血浆，否则应在24～48h内分离血浆和血细胞。
三、采集样品注意事项
1、采集样品原则上应按临床采血技术规范操作（试剂盒说明书有特殊要求除外）。
2、采集样品时应注意安全，建议采用真空采血管及蝶形针具（有条件者可用持针器），以避免直接接触血液；直接接触HIV感染者/艾滋病（AIDS）病人血液/体液的操作，应戴双层手套。
四、样品的保存
1、用于抗体检测的血清或血浆样品，应存放于-20℃以下，短期（一周）内进行检测的样品可存放于2-8℃。
2、用于抗原和核酸检测的血浆和血细胞样品应冻存于-20℃以下，进行病毒RNA检测的样品如需存放3个月以上应置于-80℃。
3、用于CD4+/CD8+T淋巴细胞测定的样品不能长期存放，样品采集时间超过48h则不可检测。
五、样品的运送
1、实验室间传递的样品应为血清和血浆，除特殊情况外一般不运送全血。
(1) 第一层容器：装样品，要求防渗漏。样品应置于带盖的试管内，试管上应有明显的标记，标明样品的编号或受检者姓名、种类和采集时间。在试管的周围应垫有缓冲吸水材料，以免破碎。随样品应附有送检单，送检单应与样品分开放置。
(2) 第二层容器：要求耐受性好，防渗漏，容纳和保护第一层
容器，可以装若干个第一层容器。将试管装入专用带盖的容器内，容器的材料要易于消毒处理。
(3) 第三层容器：放在一个运输用外层包装内，应易于消毒。在第三层容器外面要贴标签（数量，收发件人）
2、血清和血浆样品应在2～8℃条件下有专人运送。用于CD4+/CD8+T淋巴细胞测定的样品应在室温下18～23℃运送。每一包装的体积以不超过50ml为宜。
3、运送感染性材料必须有记录。
4、如分离血浆仍有困难，可直接将抗凝血-20℃以下保存，采用冰壶冷藏运输，避免冻融。
5、特殊情况下如需对个别样品进行复测，可以用特快专递形式投寄，但必须按三级包装系统将盛样品的试管扎好，避免使用玻璃容器，以保证不会破碎和溢漏。
六、样品的接收
1、含有感染性样品的包裹必须在具有处理感染源设备的实验室内由经过培训的，穿戴防护工作衣的工作人员打开，同时报告有关领导和专家。
2、核对样品与送检单，检查样品管有无破损和溢漏。如发现溢漏应立即将尚存留的样品移出，对样品管和盛器消毒，同时报告有关领导和专家。
3、检查样品的状况，记录有无严重溶血、微生物污染、血脂
过多以及黄疸等情况。如果污染过重或者认为样品不能被接受，则将样品安全废弃。并要将样品情况立即通知送样人。
4、打开标本容器时要小心，以防内容物泼溅。样品处理时若内容物有可能溅出，则应在生物安全柜中戴手套进行。同时应戴口罩、防护眼睛，以防皮肤和粘膜污染。
5、因特殊临床治疗导致自发荧光的样品不可用于荧光方法测试。
6、接受样品时应填写样品接受单。
CD4+和CD8+ T淋巴细胞样品的采集和处理
一、样品的采集
1、选择合适的抗凝剂，分别用于血液学检测和流式细胞免疫表型检测.
(1)用于血液学检测的抗凝剂
a、EDTA（1.5±0.15mg/ml血液）。
b、在血球分析仪生产商允许的时间范围内检测，不超过30h，不检测超出抗凝时间范围的样品。
(2)用于流式细胞仪免疫表型检测的抗凝剂
a、用K3EDTA抗凝，收集样品应在30h，尽早（8h以内）处理。
b、用ACD或肝素抗凝，收集样品应在48h以内，尽早（8h 以内）处理。
2、静脉采血收集血样，将血液注入一个事先加入适当抗凝剂的试管（有条件者最好用真空试管）。
3、当收集儿童样品时，采用儿童用注射器、小试管。
4、采血后立即握住试管两端，颠倒均匀数次，将血液与抗凝剂均匀，以防凝固。
5、准备适当数量的样品管
6、当同一样品的血球检测和流式细胞仪免疫表型检测在同一实验室内进行时，用1个装有K3EDA的试管即可。
7、在所有其它条件下用2个试管（用K3EDTA做血球检测，用K3EDTA、ACD或肝素做流式细胞仪免疫表型检测）。
8、对所有样品编号，并写明日期和收集时间。
二、样品的运输
1、在室温下（18～23℃）保存和运输样品，避免极端温度（冷冻或过热）。超过37℃的温度会破坏细胞，对血液学和流式细胞仪的检测有影响。天气热时，需要用一个隔热的容器装样品，并且把这个容器放于另一个有冰袋和吸热物质的容器中。这种方法有助样品的保存。
2、尽可能快地将样品送至免疫表型检测实验室。
3、如需运送样品到其它地点时，应将装样品的试管放于一个
防漏的容器中，并将此容器放于一个装有充足的吸水性物质的纸罐中，以防止震动并可吸收所有因试管破裂漏出的血液。盖紧纸罐，用橡皮带系紧。
4、应选择特定的方案，并且安排合适的时间收集和运输样品。
三、样品的收集
1、样品到达以后立即检查试管及其所装的血样。
2、如有以下现象发生，采取正确的方法处理：
(1)如果样品较热或较冷，但没有明确的溶血或结冰，可以处理样品，但要在工作表的报告上注明温度条件。不要马上加热和冷冻样品以使其达到室温，因为这样会对免疫表型检测的结果产生不利的影响，散射光模式的不正常会显示出所受到的影响。
(2)不可检测溶血或结冰的样品。
(3)不可检测凝血的样品。
(4)如果样品的采集时间已超出48h，不可检测。
血液样本的采集 运输 处理 保存
艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运 输、处理、保存 sop 版 本号：第五版 标准操作规程（SOP） 编号：DZJY/ZY450-01 题目：血液样本的采集、编号、运输、处理、保存 版本：第五版 作者：曲文才 日期：2010/05/20 页数：３ 联系人：曲文才 SOP 1 版本号：第五版 艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运 输、处理、保存sop
版本号：第五版 一、目的 确保样品的采集、运输、处置、保存得到有效的管理, 保证样品的良好、完整、不被 污染、且不污染环境, 样品在检测前保存完好、完整, 编号清晰。保证分析数据、血样 的准确性和具有可追溯性。 二、范围 适用于 HIV实验室样品的采集、运输、处置、保存。 三、责任 操作人员严格按要求执行。 四、定义 无 五、背景 本 SOP 是为配合 HIV实验室检测，现场样品从采集到检测前的工作而制定的, 以确保 检测样品良好、完整、不被污染、且不污染环境。 六、程序 1、采集 (1) 所需材料 : 乳胶手套, 工作服, 帽子, 口罩, 注射器, 止血带, 医用酒精棉球, 无菌棉签, 医用酒精, 碘伏, 采血枕, 一次性纸垫, 试管及试管架。 (2) 采血方法 : ●采血员洗手, 戴手套, 帽子, 口罩。 ●70% 酒精清洁采血工作台面, 铺上一次性纸垫。 ●在采血枕上铺上一次性纸垫。 ●让调查对象坐在凳子上, 露出一只胳膊直至上臂, 袖口不可过紧。 ●将胳膊放在采血枕上, 掌心向上, 用止血带在上臂扎紧, 肘部应低于心脏水平线。 ●在肘前区寻找鼓起的静脉，并且该静脉与周围组织固定良好，触摸该静脉，确认是静 脉。 ●用碘伏成同心圆状向外消毒, 不得用手接触己消毒部位。 ●用酒精成同心圆状向外消毒。 ●待酒精彻底干燥后, 让调查对象用力握拳。 ●沿血流方向, 以与前臂成 150°将针头插入静脉内。 ●血液流入采血管, 松开止血带, 让调查对象慢慢松开拳头, 待血液到达采血量要求 后, 将采血针头拔出的同时用无菌棉球按住采血伤口。 ●采血管编号后直立、按顺序插入试管架内。 ●嘱咐调查对象按住棉球 5 分钟以上, 抬起胳膊使之高于心脏水平 ; 将针头弃入金 属制容器桶, 一次性纸垫等放入垃圾桶。 (3) 血清采集 ●取静脉血3ml，室温放置2小时，待血液凝固、血块收缩后，3000rpm离心15分钟， 吸出血清备用，编号登记。 ●抗凝血样品采集：用注射器抽取静脉血，转移至加有抗凝剂的试管内，反复 SOP 2 版本号：第五版
血液样本的采集运输处理保存
血液样本的采集运输处理 保存 Final approval draft on November 22, 2020
艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运 输、处理、保存 sop 版本 号：第五版 标准操作规程（SOP） 编号：DZJY/ZY450-01 题目：血液样本的采集、编号、运输、处理、保存 版本：第五版 作者：曲文才 日期：2010/05/20 页数：３ 联系人：曲文才 SOP 1 版本 号：第五版 艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运 输、处理、保存sop 版本号：第五版 一、目的 确保样品的采集、运输、处置、保存得到有效的管理, 保证样品的良好、完 整、不被污染、且不污染环境, 样品在检测前保存完好、完整, 编号清晰。保 证分析数据、血样的准确性和具有可追溯性。 二、范围 适用于 HIV实验室样品的采集、运输、处置、保存。 三、责任 操作人员严格按要求执行。
四、定义 无 五、背景 本 SOP 是为配合 HIV实验室检测，现场样品从采集到检测前的工作而制定 的, 以确保检测样品良好、完整、不被污染、且不污染环境。 六、程序 1、采集 (1) 所需材料 : 乳胶手套, 工作服, 帽子, 口罩, 注射器, 止血带, 医用酒 精棉球, 无菌棉签, 医用酒精, 碘伏, 采血枕, 一次性纸垫, 试管及试管架。 (2) 采血方法 : 采血员洗手, 戴手套, 帽子, 口罩。 70% 酒精清洁采血工作台面, 铺上一次性纸垫。 在采血枕上铺上一次性纸垫。 让调查对象坐在凳子上, 露出一只胳膊直至上臂, 袖口不可过紧。 将胳膊放在采血枕上, 掌心向上, 用止血带在上臂扎紧, 肘部应低于心脏 水平线。 在肘前区寻找鼓起的静脉，并且该静脉与周围组织固定良好，触摸该静 脉，确认是静脉。 用碘伏成同心圆状向外消毒, 不得用手接触己消毒部位。 用酒精成同心圆状向外消毒。 待酒精彻底干燥后, 让调查对象用力握拳。 沿血流方向, 以与前臂成 150°将针头插入静脉内。 血液流入采血管, 松开止血带, 让调查对象慢慢松开拳头, 待血液到达采 血量要求后, 将采血针头拔出的同时用无菌棉球按住采血伤口。 采血管编号后直立、按顺序插入试管架内。 嘱咐调查对象按住棉球 5 分钟以上, 抬起胳膊使之高于心脏水平 ; 将针 头弃入金属制容器桶, 一次性纸垫等放入垃圾桶。 (3) 血清采集 取静脉血3ml，室温放置2小时，待血液凝固、血块收缩后，3000rpm离心 15分钟，吸出血清备用，编号登记。 抗凝血样品采集：用注射器抽取静脉血，转移至加有抗凝剂的试管内，反 复 SOP 2 版本 号：第五版 艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运 输、处理、保存sop 版本号：第五版 轻轻颠倒混匀6～8次，编号登记，备用。 2、样品编号 (1) 编号原则：唯一性原则，简明性原则，稳定性原则。 (2) 方法：样品编号前4位数字为年代号，后4位为样品序号 □□□□-□□□□ 年代号:为年代后四位，例如：2010年，年代号为2010
检验标本采集规范
检验标本采集规范 一、常规标本采集规范 （一）静脉血标本采集规范 1．真空采血标本对应真空管 真空管项目备注 血培养瓶血培养 儿童1-2ml 成人8-10ml 枸橼酸抗凝管（1：9抗凝）（蓝帽） 凝血全项 （PT、APTT、FIB、TT、D-D、FDP、 AT3） 标本采集2ml （不能多不能少） 枸橼酸抗凝管 （1：4）抗凝（黑色）血沉 至刻度线 （不能多不能少） 促凝剂管（黄帽）生化全项、肝功能、肾功能、血糖、血 脂、心肌酶、电解质、RF、ASO、血 清铁、血清同型半胱氨酸、淀粉酶 标本采集量4-5ml 促凝剂管 （黄帽） 肌钙蛋白I、人绒毛膜促性腺激素标本采集量4-5ml 无添加剂管 （红帽） 乙肝三系、病毒四项标本采集量4-5ml 无添加剂管甲状腺激素五项，雌激素五项，甲胎蛋标本采集量4-5ml
（红帽）白、癌胚抗原、CA125、CA19-9、CA15-3 总前列腺特异性抗原 无添加剂管 （红帽） 结核抗体、肺炎支原体标本采集量4-5ml 无添加剂管 （红帽） PCR 标本采集量4-5ml EDTA-2K 抗凝管（红帽）血常规、血型、CRP 标本采集量2ml 可以使用同一管 血 网织红细胞计数 外周血涂片 糖化血红蛋白标本采集量2ml 交叉配血标本采集量2ml 2．理想的采集血标本的时间是早晨7∶00～8∶00。 3．采血部位和数量成人首选肘部血管：正中静脉、贵要静脉、头静脉等，婴幼儿可采用大隐静脉、颈外静脉、股静脉等。 4．采血顺序 为血培养管→凝血项目管（蓝帽）→血沉管（黑帽）→促凝剂管（黄帽）→无添加剂管（红帽）→EDTA管（紫帽） 5．在实际工作中，如患者静脉条件较差，有可能采血不足，血培养优先考虑需氧瓶，其他管应首先考虑凝血（蓝帽）和血沉（黑帽）检测管，因为这2种标本对血量要求最严格，且二者抗凝剂均为枸橼酸钠。 6．检验申请条码贴在采血管上时，请注意不要将采血管完全包裹，应留出空白，以便观察液面高和血液状态，若未打印条码，请将采血管上的
各种标本的采集操作程序
[目的] 规范标本采集保证实验室检测前标本质量。 [范围] 微生物实验室所有标本. [职责] 采集、运送微生物标本的临床各科室工作人员. [标准操作程序] 1.血液、骨髓标本 1.1采集指征 对可疑血流感染患者未进行抗菌药物治疗前应及时进行血液培养可疑血流感染的患者出现以下一项或几项体征时应及时采集血培养： 1)发热(≥38℃)或低温(≤36℃)。 2)寒战。 3)白细胞增多(计数大于10,000X1 O9/L 特别有 “核左移’‘未成熟的或带状的白细胞)。 4)粒细胞减少(成熟的多核白细胞小于 1000X109/L)。 5)血小板减少。 6)皮肤粘膜出血。 7)昏迷。 8)多器官衰竭。 9)血压降低。 10)呼吸加快 11)降钙素原升高(PCT) 12) C 反应蛋白升高(CRP) 在评估可疑新生儿败血症时除发热或低烧夕卜很少培养出细菌应该补充尿液和脑脊液培养肺炎链球菌与流感嗜血杆菌菌血症的患儿(特别是2岁或以下的幼儿)一般出现于门诊,常伴有明显发热(>38.5 C)和白细胞增多(总数互20,OOOx 1 O 9/L )。老年菌血症患者,可能不发热或低体温，如伴有身体不适肌痛或中风可能是感染性心内膜炎的重要信号。 1.2血培养次数和采血时间 采血应该尽量在使用抗菌药之前进行推荐同时采集2-3套(不同部位)血培养以助于提高阳性检出率，区别病原菌与污染菌。(一套血培养为一瓶需氧培养加一瓶厌氧培养。一次静脉采血只能注入到1套培养瓶中)。尽可能选用可中和或吸附抗菌药物的培养基。临床对可疑菌血症患者应立即采集血培养标本，对间歇性寒战或发热可在寒战时或体温高峰到来之前0.5-1 h 进行采血。 除特殊情况之外（如怀疑细菌性心内膜炎），采集血培养后的2至5天内，无需重复采血培养。 1.3特殊的全身性和局部感染患者采集血培养的建议: 1.3.1急性心内膜炎:对于可能的心内膜炎患者必须在经验使用抗菌药物前30min 之内抽取血培养起始采集3套血培养，如果在24h 内仍报告为阴性则继续采集2套血培养，全部培养一共为5套。 1.3.2亚急性心内膜炎:需在24h 之内连续从不同部位抽取3套血培养，间隔30-60min 。如24h 内为阴性，则继续采集2套血培养，全部培养一共为5套。 1.3.3对于亚急性心内膜炎的评估皮肤消毒尤为重要，因为其主要的病原菌为皮肤定植菌如凝固酶阴性葡萄球菌。因此，血培养必须取自外周静脉而非留置的静脉导管。取自导管的血培养会伴有很高的污染风险从而导致错误的心内膜炎的结论。建议采用正确的皮肤消毒，从不同的外周静脉部位分别采集血培养不能从留置的导管采血。 1.3.4急性脓毒症:10min 内从不同的部位采集2-3套血培养。 1.3.5可疑菌血症但血培养持续阴性，应改变血培养方法如延长培养时间或增加特殊培养基以获得罕见的或苛养的微生物(真菌、结核菌等)。 1.3.6不明原因发热，如隐性脓肿、伤寒热和波浪热从不同体位先采集2一3套血标本24-36h 后估计体温升高之前(通常下午)再采集2套以上 4皮肤消毒剂: 1.4.1推荐使用碘酊、次氯酸和洗必太或碘伏。 1.4.2碘酊、次氯酸和洗必太的消毒效果要优于碘伏。 1.4.3消毒剂需要有足够的作用时间以保证消毒效果 (碘酊作用30s;碘伏作用1.5--2 min)。 1.4.4洗必泰的作用时间和碘酊一样但是没有过敏反应，因此不必擦去，但不能用于小于2个月的婴儿。 1.5静脉穿刺点皮肤消毒程序: 1.5.1 70%酒精消毒皮肤(以采血点为中心，螺旋式用力由内到外直径5cm 以上)，作用60秒; 1.5.2用碘伏消毒皮肤(以采血点为中心螺旋式用力由内到外直径5cm 以上)作用1.5-2min 或用碘酊消毒皮肤作用30秒； 1.5.3再用70%酒精脱碘(以采血点为中心，螺旋式用力由内到外直径5cm 以上)； 1.5.4静脉穿刺采血。 注:血液培养须特别注意消毒因许多微生物，尤
血液样本的采集与保存
实用帖｜血液样本的采集与保存 在脊椎动物中，外周血一直被认为是侵害性较小、富有价值的检测样本。在许多生物样本库中，由于血液样本的常规收集、处理及保存方法简便、成本低且富含可利用成分和生物分子，因此是进行多种项目分析的理想实验材料。然鹅，科研僧们历经千辛万苦最后发现获得的血液样本RNA降解了。。。。额，这就很惆怅了。 所以呢，在样本采集、处理及储存过程中必须格外注意，从根本上确保获得高质量的RNA。 今天小编和大家一起来聊一聊在进行RNA实验时血液样本如何进行收集与保存。 血液的组成 首先来熟悉一下血液的组成。 人类的血液由血浆和血细胞组成。其中血浆约占血液的55%，是水，糖，脂肪，蛋白质，钾盐和钙盐等的混合物。血细胞约占血液的45%，主要分为红细胞、白细胞和血小板。而哺乳动物成熟的红细胞和血小板是无核的。
血浆和血清 血浆是离开血管的全血经抗凝处理后，通过离心沉淀，所获得的不含细胞成分的液体，其中含有纤维蛋白原，不含游离的Ca2+，若向血浆中加入Ca2+，血浆会发生再凝固。 血清是离体的血液凝固之后，经血凝块聚缩释出的液体，其中已无纤维蛋白原，但含有游离的Ca2+，血清中少了很多的凝血因子但多了很多的凝血产物。
采血管的选择 采血管，大家都不陌生，去医院抽个血，一定会用到采血管，那么问题来鸟，这么多颜色的采血管，有什么区别呢？下面小编来给大家介绍一下采血管的分类及不同颜色试管帽代表的含义。 1.蓝色头盖管（含有柠檬酸钠抗凝剂的采血管） 2.黑色头盖管(含有 0.109mol/L 柠檬酸钠) 3.紫色头盖管(含有乙二胺四乙酸以及其盐的采血管) 4.绿色头盖管（肝素抗凝管） 5.灰色头盖管(含有草酸钾/氟化钠） 6.橘红色头盖管（促凝管） 7.金黄色头盖管（含有惰性分离胶及促凝剂的采血管）
血液样本采集标准操作规程
血液样本采集标准操作规程 1.目的 规范样本库采集人体血液样本的操作规程。 2.适用范围 适用于使用真空采血管采集人体血液样本的活动过程。 3.定义和术语 3.1知情同意 保证被收集者了解并理解研究的目的和内容，并自愿同意参加试验的原则。知情同意具有国际性，是对所有进行人体研究或人体取样调查的研究人员的伦理要求。在以人为研究/试验对象的科研领域，收集者必须获得研究对象/参与者的知情同意，保护被收集者合法权益的同时保护收集者免于诉讼。 3.2知情同意书 知情同意书，是每位被收集者表示自愿参加某一项试验而签署的文件。知情同意的具体体现是知情同意书的签署。知情同意书由收集者和被收集者共同签署，一式两份。正本由收集者保存，被收集者保存副本。 3.3真空采血管采血法 将有头盖胶塞的采血试管预先抽成不同的真空度，利用其负压自动定量采集静脉血样。 3.4血清和血凝块 指在凝血过程中，血浆中的纤维蛋白原转变为不溶的血纤维。血纤维交织成网，将很多血细胞网罗在内，形成血凝块。血液凝固后，血凝块又发生回缩，并释放出淡黄色液体，称为血清，其中已无纤维蛋白原。
3.5血浆 血浆是离开血管的全血经抗凝处理后，通过离心沉淀，所获得的不含细胞成分的液体，其中含有纤维蛋白原。 3.6白细胞 白细胞人体血液及组织中的无色细胞，是血液中的一类细胞，有细胞核。根据形态特征可分为粒细胞、淋巴细胞和单核细胞。 3.7枸橼酸钠(柠檬酸钠) 枸橼酸能与血液中的钙离子结合形成螯合物，阻止血液凝固。 3.8乙二胺四乙酸二钾(EDTA·K2) 与枸橼酸钠的抗凝机制相同，用21.5-2.2mg EDTA·K2可阻止1ml血液凝固。 3.9肝素 一种相对分子质量为15000，含硫酸基团的黏多糖，与抗凝血酶Ⅲ结合，促进其对凝血因子和凝血酶活性的抑制，抑制血小板聚集从而达到抗凝。 4.职责 4.1临床护理人员 按照标准操作规程采集血液。 4.2样本管理员 协助样本的采集，对样本进行处理和储存，并作相关记录。 5.设备和耗材 5.1个人防护装备 实验防护服、手套、口罩、护目镜及其它相关防护装备。 5.2设备
血样样本的采集和处理
血液样本的采集和处理 血液样本的采集和处理 (1) CD4+和CD8+ T淋巴细胞样品的采集和处理 (4) 血液样本的采集和处理 一、血清样品的采集和处理 1、用一次性注射器（或真空采血管）抽取一定量静脉血，室温下自然放置1～2h，待血液凝固、血块收缩后再用3000r/min离心15min，吸出血清于血清管内备用。 2、如用滤纸片采样，则手指或耳垂局部严格进行消毒，在刺破皮肤后，迅速把滤纸片沾上，切勿让血液滴落在其他物体表面造成污染。采血后要待血样干燥后再包装送检。 二、抗凝血样品采集和处理 1、用加有抗凝剂的真空采血管（或一次性注射器抽取静脉血，转移至加有抗凝剂的试管），反复轻摇，分离血浆和血细胞备用。 2、应根据实验要求选用适当的抗凝剂，如CD4+ /CD 8+T淋巴细胞测定可选用K3EDTA或肝素或枸橼酸钠，HIV病毒分离、核酸定性/定量检测可选取K3EDTA或枸橼酸纳。 3、用于核酸定性检测时，采集的抗凝全血应在4～8h内分离PBMC和血浆，否则应在24～48h内分离血浆和血细胞。
三、采集样品注意事项 1、采集样品原则上应按临床采血技术规范操作（试剂盒说明书有特殊要求除外）。 2、采集样品时应注意安全，建议采用真空采血管及蝶形针具（有条件者可用持针器），以避免直接接触血液；直接接触HIV感染者/艾滋病（AIDS）病人血液/体液的操作，应戴双层手套。 四、样品的保存 1、用于抗体检测的血清或血浆样品，应存放于-20℃以下，短期（一周）内进行检测的样品可存放于2-8℃。 2、用于抗原和核酸检测的血浆和血细胞样品应冻存于-20℃以下，进行病毒RNA检测的样品如需存放3个月以上应置于-80℃。 3、用于CD4+/CD8+T淋巴细胞测定的样品不能长期存放，样品采集时间超过48h则不可检测。 五、样品的运送 1、实验室间传递的样品应为血清和血浆，除特殊情况外一般不运送全血。 (1) 第一层容器：装样品，要求防渗漏。样品应置于带盖的试管内，试管上应有明显的标记，标明样品的编号或受检者姓名、种类和采集时间。在试管的周围应垫有缓冲吸水材料，以免破碎。随样品应附有送检单，送检单应与样品分开放置。 (2) 第二层容器：要求耐受性好，防渗漏，容纳和保护第一层
标本采集、送检、运送、接收、处理、保存和销毁规程
标本采集、送检、运送、接收、处理、保存和销毁 规程 1、目的 保证标本采集到贮存过程符合本实验室检测及法律法规的要求,保证标本质量。 2、适用范围 本站血液检测标本、检测留样标本及临床送检标本。 3、职责 采血人员或相关工作人员负责标本的采集、送检、运送和交接;血库工作人员负责血液检测样本的临时接收和暂存;检验人员负责标本的接收、处理、保存和销毁;办公室负责组织检验科业务人员对标本采集人员进行相关培训。 4、作业步骤 4.1样本采集要求: 4.1.1:知情同意:标本采集应征得献血者知情同意,内容包括:告知采集(留取)标本量,以及用途(仅用于本站血液检测)。 4.1.2:采集: a.初筛检测样本:采集前严格核对献血者和登记表,抽取1-2ml 的献血者血液于含饱和EDTA-Na2 /K2抗凝剂50ul的普通塑料试管中或含有抗凝剂的真空管中。贴好与献血者登记表一致的献血序列码。 b.献血后血液检测样本:
(1)留取要求:献血者献血后采集人员从血袋/留样袋中留取双份 血样用于实验室的一检和二检,两支血样试管,一支为含分离胶的促 凝真空管(黄盖),应先留取(不能混入血袋中保养液),另一支为EDTAK2抗凝真空管(紫盖),每支试管留取3-5ml血液,留取后立即轻轻上下颠倒至少3次与抗凝剂/促凝剂充分混匀,贴上与献血登记表、血袋标识条码一致校验码为07的献血序列码。 (2)序列码粘贴要求:序列码粘贴不歪斜、无褶皱,沿负压管盖下竖直粘贴,血型标识向上,条码清晰; (3)校对要求:一次只对一袋血液和同源样本进行贴签留样;所留 标本必须按规程进行操作,并经过Spring采血管理模块对采血袋、登记表和标本管三个序列号一致后方可进入下一流程。 (4)临时储存:血液标本留取结束后及时放在2-10℃环境中保存。 c.临床送检标本要求: (1)疑难血型鉴定及交叉配血:使用一次性真空采血管采集受检者血样6-10ml,一支EDTA-K2抗凝,另一支未抗凝,每支3-5ml。标识清楚,贴有与申请单一致的序列码,申请单注明被检者姓名、性别、年龄、临床诊断,病史及检测项目等信息,48h内采集。 (2)新生儿溶血病检查样本:使用一次性真空采血管采集母亲和新生儿血样各1-2ml,EDTA-K2抗凝(紫盖)。标识清楚,贴有与申请单一致的序列码,申请单注明被检者姓名、性别、年龄、临床印象及住院号床号等信息。于4℃保存72小时内检测。 4.2运输要求:
样本采集与处理综述
样本采集 样本采集要注意的重点是，所采集的临床标本一定要正确和采集的时间合适，并注意采用正确的标本容器，采集的方法程序对有些临床标本非常重要。任疾病发展过程中，标本采集过早或过晚都可能会给出假阴性结果。 尽可能在最短的时间内完成样本的采集（应该保证30min内完成，不适当的处理时间将直接影响和干扰研究的结果），应尽快降低所采集组织样本的温度。 肿瘤组织标本的采集和处理应遵循严格的生物安全处理规范，也可根据研究者所提出的特殊要求，按照对方提供的操作模式进行相关处理。 （1）患者入院后进行生物安全性检査。检测HIV以及嗜肝病毒HBV及HCV感染情况。 HIV感染患者不列为采集对象。HBV及HCV感染者，须在样本上明确注明。 （3）组织标本取材时间肿瘤外科手术后，标本离体30min内。 （4）标本采集 每种肿瘤主要采集3类生物样本，并要保证这些样本的质量和数量能够用于DNA、RNA 和蛋白质提取及满足相关的实验分析。 1）新鲜组织（包括手术和活检组织） 实体组织样本采集包括外科手术切除的或活检和尸检得到的正常、良性和恶性肿瘤组 织。手术结朿后，在临床肿瘤病理专家的指导下，在不影响病理诊断取材需要的前提 下，采集组织样本。 A.标本取材部位：肿瘤组织、癌旁组织（癌组织旁lcm）和正常组织（癌组织旁5cm 以外 或最远处）。 a）临床诊断明确，未经放疗和化疗的手术切除标本，在病理医生指导下取材。 b）尽量保证癌组织没有坏死（有坏死的标本很难提取高质量的RNA和蛋白）。 c）配对“癌旁组织”，选择距离癌灶边缘3 cm范用内的组织样本，配对"正常组织”, 要选择距癌灶边缘5 CM以上或距离癌灶边缘最远段（或手术切缘处）取组织样本，应注明距离。对于空腔器官，如食管、胃、肠、胆囊、膀胱等，“癌旁组织” “正常组织” 应取相应部位的“粘膜组织”样本。 d）在保障病理学检测所需标本的前提下，尽量提供足量的肿瘤和癌旁正常组织，一般不少于200mg或10E7细胞。 e）手术切除的组织样本必须迅速苣于液氮中，然后保存于液氮罐或-80°C冰箱，这一过程尽量在手术标本离体后30分钟内完成。 f）其中一块组织可用OCT处理后冻存，可用于形态学观察和显微切割。 （OCT（Optimal Cutting Temperature）包埋剂是一种常用的固形剂。用苴包埋组织进行速冻后，能与组织固泄成形，有利于保存组织结构完整性，便于苴形态结构的分析） B。过程：使用数码相机舶摄标本外观后，将标本切成小块（直径0.5cmX 0.5cm,厚度<0.5cm）,为减少处理时间，标本不应切得太小，然后放入冻存管中，标记后放入标本盒中，盒盖上附有记录标本编号、采集时间及标本类型的标签。每例病人样本保存3-5份冻存管标本。每份组织重虽原则上不低于2g。 2）石蜡包埋组织 a）中性福尔马林固定手术切除标本按病理学操作规范进行取材 b）取材部位包括癌灶，以及癌灶周囤3cm以内的癌旁组织,3~5cm的近癌组织和5cm 以外的远癌组织或距癌灶边缘最远段分别取2-3块。取材尽量以癌灶为中心水平向两侧取材，尽虽:保证足够大的组织样本。取材应该以“远癌-近癌-癌灶”的顺序。癌灶处取材包括癌
血液标本采集方法
血液标本采集方法 一、静脉采血法 1.用物同静脉注射法，备干燥注射器（5－10ml），7号针头，标本容器（按需要备干燥试管、抗凝管或血培养瓶），酒精灯，火柴等。 2.操作方法 （1）备齐用物，贴好标签，核对无误后按静脉穿刺法采取所需血量，立即卸下针头，将血液沿管壁缓慢注入试管内，切勿将泡沫注入，避免震荡，以防红细胞破裂而造成溶血。因血液中细胞的内外成分有很大差异，如细胞内钾离子浓度是细胞外的20倍，细胞内的某些酶含量也较细胞外高，如发生溶血，则直接影响检验结果的准确性。 （2）如需全血、血浆，可将血液如上法注入盛有抗凝剂的试管内，立即轻轻摇动，使血液和抗凝剂混匀，以防血液凝固。如需作二氧化碳结合力测定时，抽取血液后，应立即注入有石蜡油的抗凝试管中，注入时针头应插入石蜡油面以下，以隔绝空气，立即送验。否则血液中二氧化碳逸出，使检验结果降低，影响准确性。 （3）采集血培养标本时，应防止污染。静脉采血后，将血液注入培养瓶内，一般培养标本用肉汤培养瓶，如做伤寒杆菌培养则备胆汁培养瓶。 临床常用的培养瓶有两种，一种是密封瓶，瓶口除橡胶塞外另加铝盖密封。瓶内盛培养液约50ml，经高压灭菌，使用时将铝盖剔去，用2％碘酒和70％酒精消毒瓶盖，更换针头将抽出的血液注入瓶内，摇匀后送验。另一种是三角烧瓶，瓶口以棉花塞子及纸严密包封，使用时先将封瓶纸松开，取血后将棉塞取出迅速在酒精灯火焰上消毒瓶口，将血液注入瓶内，轻轻摇匀，再将棉塞经火焰消毒后盖好，扎紧封瓶纸送验。一般血培养取血5ml，亚急性细菌性心内膜炎病人，因血中细菌数目较少，为提高细菌培养阳性率，应取血10－15ml. （4）采血完毕，连同检验单及时送验，清理用物，归还原处。一次性注射器使用后应经消毒液浸泡集中处理。 血液标本采集所需血量视检验目的而定，各医院检验方法不同，其采血量也各异。下面介绍常用检验项目全血、血清标本和放射免疫检验采血量与要求（表17－1，17－2，17－3，17－4）。 表17－1常用全血标本采血量与要求（不需空腹）
血液样本的采集运输处理保存
血液样本的采集运输处 理保存 Company number【1089WT-1898YT-1W8CB-9UUT-92108】
艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运输、 处理、保存 sop 版本 号：第五版 标准操作规程（SOP） 编号：DZJY/ZY450-01 题目：血液样本的采集、编号、运输、处理、保存 版本：第五版 作者：曲文才 日期：2010/05/20 页数：３ 联系人：曲文才 SOP 1 版本 号：第五版 艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运输、 处理、保存sop 版本号：第五版 一、目的
确保样品的采集、运输、处置、保存得到有效的管理, 保证样品的良好、完整、不被污染、且不污染环境, 样品在检测前保存完好、完整, 编号清晰。保证分析数据、血样的准确性和具有可追溯性。 二、范围 适用于 HIV实验室样品的采集、运输、处置、保存。 三、责任 操作人员严格按要求执行。 四、定义 无 五、背景 本 SOP 是为配合 HIV实验室检测，现场样品从采集到检测前的工作而制定的, 以确保检测样品良好、完整、不被污染、且不污染环境。 六、程序 1、采集 (1) 所需材料 : 乳胶手套, 工作服, 帽子, 口罩, 注射器, 止血带, 医用酒 精棉球, 无菌棉签, 医用酒精, 碘伏, 采血枕, 一次性纸垫, 试管及试管架。 (2) 采血方法 : 采血员洗手, 戴手套, 帽子, 口罩。 70% 酒精清洁采血工作台面, 铺上一次性纸垫。 在采血枕上铺上一次性纸垫。 让调查对象坐在凳子上, 露出一只胳膊直至上臂, 袖口不可过紧。 将胳膊放在采血枕上, 掌心向上, 用止血带在上臂扎紧, 肘部应低于心脏水平线。 在肘前区寻找鼓起的静脉，并且该静脉与周围组织固定良好，触摸该静脉，确认是静脉。 用碘伏成同心圆状向外消毒, 不得用手接触己消毒部位。 用酒精成同心圆状向外消毒。 待酒精彻底干燥后, 让调查对象用力握拳。 沿血流方向, 以与前臂成 150°将针头插入静脉内。 血液流入采血管, 松开止血带, 让调查对象慢慢松开拳头, 待血液到达采血量要求后, 将采血针头拔出的同时用无菌棉球按住采血伤口。 采血管编号后直立、按顺序插入试管架内。 嘱咐调查对象按住棉球 5 分钟以上, 抬起胳膊使之高于心脏水平 ; 将针头弃入金属制容器桶, 一次性纸垫等放入垃圾桶。
血培养标本采集
血培养标本细菌学采集、运送、验收标准操作规程 1．目得 规范血培养标本细菌学采集、运送、验收标准操作规程，确保检验结果准确可靠。 2、范围 微生物实验室受理血培养瓶。 3、职责 3、1 医护人员正确采集血培养标本送检。 3、2 临床科室标本运输人员负责及时将血培养标本送至检验科微生物室。 2血培养指证 2、1患者出现寒战，发热（≥38℃）或低温（≤36℃）、 2、2白细胞增多（＞10×109/L，特别有“核左移”未成熟得或带状得白细胞增多）皮肤粘膜出血；血液病患者出现粒细胞减少（成熟得多形核白细胞<1×109/L），血小板减少等、 2、3怀疑血流感染时，医院内肺炎、 2、4留置中心静脉导管超过72h、 2、5感染性心内膜炎、骨髓炎、昏迷。 2、6有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状、多器官衰竭。 2、7临床医生怀疑有血流感染可能得其她情况、（血压降低，CRP升高及呼吸快）。 2、8新生儿菌血症，应同时做尿液与脑脊液培养。 3血培养采集 3、1采集血量：采血量以培养基得 1/10 为宜，成人每瓶采集：5～10ml,婴儿每瓶采集：1～2ml。儿童每瓶采集：2～5 ml。婴幼儿病人，一般只抽一瓶需氧瓶进行培养，无需常规做厌氧瓶。 3、2血培养份数与采血时间 3、2、1对怀疑菌血症得成人患者，推荐同时采集2-3套（不同部位）血培养标本。婴幼儿患者，推荐同时采集2次（不同部位）血培养标本。一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份培养或一套血培养。多次采血不应在同一部位进行，应更换部位。对
于间歇性寒颤或发热应在寒颤或体温高峰到来之前0、5-1小时采集血液。对于某些全身性与局部感染患者采血培养得建议：（一瓶需氧瓶，一瓶厌氧瓶为一套，或者两套需氧瓶为一套） 3、2、2急性发热怀疑菌血症者，应尽量在抗菌药使用之前，在10分钟内于不同部位采集两套血培养标本。 3、2、3对于非急性感染，怀疑有菌血症者，应在24h内于不同部位采集2-3份血标本，每次采血得间隔不应小于3h，并应于抗菌给药前采血。 3、2、4急性细菌性心内膜炎患者，应在1-2小时内采集3份血标本，并尽量在抗菌药前采血；如果24小时培养阴性，可再采集3份以上得血标本。入院前两周内接受抗菌药物治疗得患者，连续3天，每天采集2份。可选用中与或吸附抗菌药物得培养瓶。 3、2、5亚急性细菌性心内膜炎患者，在24小时内不同部位采集血液标本2或3份，每次间隔大于1h；如果24小时培养阴性，可再采集2或3份以上得血标本进行培养。 3、2、6不明原因发热，可在24小时内不同部位采集血液标本2或3份，每次间隔大于1h；如果24~48小时培养阴性，可再采集2或3份以上得血标本。 3、2、7可疑菌血症或真菌菌血症，但血培养持续阴性，改变血培养条件与方法，以获得罕见得或苛养得微生物。 3、2、8儿童菌血症患者在24小时只需要采一次血标本进行培养，需特别注意穿刺部位得消毒，以区别感染菌与污染菌，由于儿童厌氧菌菌血症罕见，常规血培养不做厌氧培养。 3、3血培养瓶类型： 3、3、1蓝色：成人需氧血培养瓶。 3、3、2结红色: 成人厌氧血培养瓶。 3、3、3黄色：儿童需氧血培养瓶。 3、4采血操作流程 3、4、1、手卫生：七步洗手后手消毒。 3、4、2、血培养瓶消毒：根据检验申请单，选择合适得血培养瓶，检查血培养瓶有无破损、保质期等。用75%酒精消毒血培养瓶塞，作用60s，待干。
临床输血标本采集要求和流程
输血标本采集要求和流程 输血是临床救治危重病人的手段之一，为了受血者得到安全、有效、准确、无误的治疗，标本的正确采集是最为重要的环节，对临床各科送检的血型血清学检测标本（定血型、配血、备血）有如下要求： 1.医师确定输血后，病房护士应根据《输血申请单》的信息准备标本采集试管，到床边核对病人姓名、性别、床号、住院号并贴上标签。 2.抽静脉血2-4ml血（用EDTAK抗凝），随即在床旁注入贴有正确无误标签的试管内，不准离开床边后再贴标签。未查输血前相关传染病指标检验的，要同时抽一管不抗凝血，填写输血前检查申请单送检验科。 3.由专门人员（运送队）将受血者血标本与《输血申请单》一起送到输血科，在标本接收登记本上登记，双方逐项核对后验收并签字。 注意事项： 1.标本不能溶血，因溶血会掩盖配血不合的异常反应。不许抽取胸,腹腔等处积血作配血标本。严禁从正在输液的输液管内抽取血样。 2.因右旋糖酐对配血有干扰,故应在病员输注前进行采血。 3.配血标本必须是输血前3天之内的，超过3天的标本不能代表当前病人的免疫学状态。特殊情况下（如妊娠、病人血管条件差、采血困难者）也可例外，适当延长到5天。 4.输血科收到血样应逐项核对，如对血样与病人身份有怀疑，或血样质量不合格，应要求重抽，不允许随意修改错误的标签或错误的《输血申请单》或用不合格血样配血。 5.合格血样如不需配血，应按送检时间分别放入4℃冰箱内位置保存，输血标本至少保存7天。 不合格标本拒收的条件： 血量过少、溶血、非EDTA抗凝的血标本，标签模糊，字迹不清，标本与《输血申请单》信息不符或对患者身份有怀疑等有输血安全隐患的情形。
土壤样品采集与处理实验报告
实验一土壤样品的采集与处理 土壤样品的采集是土壤分析工作中的一个重要环节，是关系到分析结果和由此得出的结论是否正确的一个先决条件。由于土壤特别是农业土壤的差异很大，采样误差要比分析误差大若干倍，因此必须十分重视采集具有代表性的样品。此外，应根据分析目的和要求采用不同的采样方法和处理方法。 一、土壤样品的采集 （一）采样时间 土壤中有效养分的含量随季节的改变而有很大变化。分析土壤养分供应情况时，一般都在晚秋或早春采样。同一时间内采取的土样，其分析结果才能相互比较。 （二）采样方法 采样方法因分析目的和要求的不同而有所差别： 1．土壤剖面样品研究土壤基本理化性质，必须按土壤发生层次采样。 2．土壤物理性质样品如果是进行土壤物理性质测定，须采原状样品。 3．土壤盐分动态样品研究盐分在剖面中的分布和变动时，不必按发生层次取样，而自地表起每l0cm或20cm采集一个样品。 4．耕层土壤混合样品为了评定土壤耕层肥力或研究植物生长期内土壤耕层中养分供求情况，采用这种方法。 （1）采样要求 在采样时，要求土样有代表性，因此需多点取样，充分混合，布点均匀，混合样品的取样数量应根据试验区的面积以及地力是否均匀而定，通常为5~20个点，采样深度只需耕作层土壤0~20cm，最多采到犁底层的土壤，对作物根系较深的，可适当增加采样深度。 （2）采样方法 根据地形、样点数量和地力均匀程度布置采样点。面积不大，比较方正，可采用对角线取样法；面积较大，形状方正，肥力不匀的地块可采用棋盘式采样方法（方格取样法）；面积较大，形状长条或复杂，肥力不匀的地块多采用蛇形取 1 对角线取样法棋盘式取样法蛇形取样法法 层的土壤，对作物根系较深的土壤，可适当增加采样深度。
1、血液样本的采集、运输、处理、保存
艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运输、处理、保存 sop 版本号：第五版 标准操作规程（SOP） 编号：DZJY/ZY450-01 题目：血液样本的采集、编号、运输、处理、保存 版本：第五版 作者：曲文才 日期：2010/05/20 页数：３ 修订历史：
联系人：曲文才 SOP 1 版本号：第五版 艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运输、处理、保存sop 版本号：第五版 一、目的 确保样品的采集、运输、处置、保存得到有效的管理, 保证样品的良好、完整、不被污染、且不污染环境, 样品在检测前保存完好、完整, 编号清晰。保证分析数据、血样的准确性和具有可追溯性。 二、范围 适用于HIV实验室样品的采集、运输、处置、保存。 三、责任 操作人员严格按要求执行。 四、定义 无 五、背景 本SOP 是为配合HIV实验室检测，现场样品从采集到检测前的工作而制定的, 以确保检测样品良好、完整、不被污染、且不污染环境。 六、程序 1、采集 (1) 所需材料: 乳胶手套, 工作服, 帽子, 口罩, 注射器, 止血带, 医用酒精棉球, 无菌棉签, 医用酒精, 碘伏, 采血枕, 一次性纸垫, 试管及试管架。 (2) 采血方法: 采血员洗手, 戴手套, 帽子, 口罩。 70% 酒精清洁采血工作台面, 铺上一次性纸垫。 在采血枕上铺上一次性纸垫。 让调查对象坐在凳子上, 露出一只胳膊直至上臂, 袖口不可过紧。
将胳膊放在采血枕上, 掌心向上, 用止血带在上臂扎紧, 肘部应低于心脏水平线。 在肘前区寻找鼓起的静脉，并且该静脉与周围组织固定良好，触摸该静脉，确认是静脉。 用碘伏成同心圆状向外消毒, 不得用手接触己消毒部位。 用酒精成同心圆状向外消毒。 待酒精彻底干燥后, 让调查对象用力握拳。 沿血流方向, 以与前臂成150°将针头插入静脉内。 血液流入采血管, 松开止血带, 让调查对象慢慢松开拳头, 待血液到达采血量要求后, 将采血针头拔出的同时用无菌棉球按住采血伤口。 采血管编号后直立、按顺序插入试管架内。 嘱咐调查对象按住棉球 5 分钟以上, 抬起胳膊使之高于心脏水平; 将针头弃入金属制容器桶, 一次性纸垫等放入垃圾桶。 (3) 血清采集 取静脉血3ml，室温放置2小时，待血液凝固、血块收缩后，3000rpm离心15分钟，吸出血清备用，编号登记。 抗凝血样品采集：用注射器抽取静脉血，转移至加有抗凝剂的试管内，反复SOP 2 版本号：第五版 艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运输、处理、保存sop 版本号：第五版 轻轻颠倒混匀6～8次，编号登记，备用。 2、样品编号 (1) 编号原则：唯一性原则，简明性原则，稳定性原则。 (2) 方法：样品编号前4位数字为年代号，后4位为样品序号 □□□□-□□□□ 年代号:为年代后四位，例如：2010年，年代号为2010 样本序号：按采样或接受样本先后顺序进行的流水编号 3、样品的运送 (1) 应符合生物安全要求，有专人专程护送，运送样品必须有记录。 (2) 样品应置于带盖的试管内，试管上应有明显的标记，标明样品的编号或受
标本采集管理制度资料讲解
标本采集管理制度
1、标本的采集 1）、血液标本的采集：静脉采血时，除卧床病人，采血时一般取坐位，成人多用肘前静脉，肥胖者可用腕背静脉，婴幼儿常用颈静脉，偶用前囟静脉。静脉采血用止血带应一人一用一消毒。使用止血带的时间不应超过一分钟，穿刺成功后应立即松开止血带。正在静脉输液者应停止输液三分钟，从未输液的另一侧或输液部位以下的部位采血。血清(浆)标本的收集各室应根据所检验项目的要求采用相应的标本收集管，并确定采血量。动脉采血一般由临床科室护士采集。 2）、尿液标本的采集一般由患者或护理人员按医嘱留取。取样时应注意明确标记，避免污染，使用合格的一次性洁净专用尿杯收集尿样。中段尿、导管尿等特殊尿样的采集一般由医护人员行相关操作留取标本。 3）、粪便标本的采集由患者留取后收集于合格的一次性洁净专用粪杯送检。应取新鲜标本，选取异常成分的粪便，如含有黏液、脓、血等病变成分的标本，外观无异常的从表面、深处及粪端多处取材，取3～5g及时送检。 4）、阴道分泌物标本的采集一般由妇科医师采集。采集阴道分泌物标本前24小时应避免性生活、盆浴。应于各种治疗、检查前采集标本，避免阴道冲洗或上药，被检者在采样前2小时不能排尿。患者取膀胱截石位。用阴道扩张器暴露宫颈，采样前，用棉拭子将宫颈口过多的分泌物轻轻搽拭干净。更换棉拭子，用生理盐水浸润的棉拭子伸到宫颈管内0．5·2cm，稍用力转动两周，以取得分泌物及脱落细胞。 5）、痰标本的采集嘱病人先行清水反复漱口，并指导或辅助病人深咳嗽，从呼吸道深部咳出新鲜痰液于无菌容器送检。一般应采集清晨第一次咳出的痰液，采样时应收集带血丝部分或有干酪样颗粒的部分。痰液极少者可用45’C10％NaCl溶液雾化吸入导痰。痰液收集于一次性洁净专用痰杯内及时送检。 6）、其他标本的采集脑脊液、胸腹水及支气管灌洗液等其他标本由临床医师按相应操作采集。 2、标本的送检样本应置于被承认的本质安全防漏的容器中运输。病房标本由各病区工人负责运送，门诊标本由我科工友运送，标本采集后均应及时送检。运送过程中标本管口垂直朝上放置，避免振动、外溅。进行微生物检验的标本要防止运送过程中的污染。 3、标本的签收所有标本均可能具有传染性，涉及标本处理的全过程均应按科室制定的生物安全手册进行。各室标本的接收在指定的区域内进行，接收标本时须检查标本状态、核对标本管标识与检验申请单内容的一致性，如姓名、住院号、检验项目等，有不清新情况时应及时与送检科室联系核实。工作人员有权拒收与检验申请单不一致的、标识不清的标本。各室应根据检验目的对标本的要求判断标本是否应该拒收，如血液凝固、严重溶血、标本量不足等，拒收标本时应及时通知采样科室。 4、标本的检验各室应严格按所在室的标准操作规程开展检验，保证检验质量，及时发放检验报告。
血常规标本采集与处理程序
血常规标本采集与处理程序 1．目的 规范血液常规检查标本的采集与处理方法，减少分析前因素对检验结果的影响，保证检验质量。 2．适用范围 适用于各种血液常规检测标本的采集。 3．职责 3.1 门诊和临床各科护士、门诊检验工作人员负责标本的采集。 3.2 临床护士或检验科后勤组人员负责标本的运送。 3.3 检验科负责标本的接收和处理，负责指导临床各科室如何正确采集标本。4．程序 4.1 标本采集前病人的准备 4.1.1 避免剧烈运动及情绪紧张。建议取血前采取坐位5分钟。 4.2 标本采集 4.2.1 静脉采血法 4.2.1.1器材：真空采血针、含EDT A·K2（3.0-4.0mg）真空采血管、消毒液、消毒棉球、压脉带。 4.2.1.2标本采集部量：2.0ml。 4.2.1.3采血部位：手臂肘部静脉。 4.2.1.4 操作程序 a. 患者坐位或卧位，扎上压脉带消毒皮肤。嘱病人握紧拳头，暴露静脉。 b.操作者以左手拇指固定静脉穿刺部位的下端，右手持真空采血针，与皮肤呈30度角的位置迅速刺破皮肤，然后适当降低角度穿破静脉壁进入静脉腔中，见回血后，解开压脉带，将针头顺势深入少许。将采血针另一端插入真空采血管中。 c. 利用真空负压，血液自动注入抗凝管直至所需血量。嘱患者松拳，用无菌干棉球压住伤口，拔出针头。 d. 立即将采血管轻轻颠倒5-8次，使其充分抗凝，并贴上对应病人及检测项目信息的条码。2小时内送检。
4.2.1.5 注意事项 a. 禁止在输液手臂同侧采血，同时在申请单上注明“输液时采血”。 b. 止血带使用时间应少于1分钟，以免引起血液淤滞，血液成分的改变。 c. 防止溶血，避免采血管过度震荡。 e. 正确选择抗凝管并注意抗凝剂与血液的比例。 4.2.2 毛细血管采血法 4.2.2.1 器材：一次性采血针、微量吸管、小试管、玻片，75%乙醇棉球、消毒干棉球、无菌镊子。 4.2.2.2 采血量：20ul。 4.2.2.3采血部位：成人以左手无名指指端内侧为宜，半岁以上儿童以中指为好，半岁以下婴幼儿通常选择足跟或拇指采血。 4.2.2.4操作程序 a. 操作者轻轻按摩采血部位，使其自然充血，用75%乙醇棉球消毒局部皮肤，自然待干。 b. 紧捏刺血部位，用一次性采血针迅速刺破皮肤，深度约2-3mm。 c. 擦去第一滴血，吸取从穿刺处自然流出的血液或从远端向指尖方向轻轻挤压的血液20ul，迅速轻轻注入已加入稀释液的小试管里。 d.用无菌玻片沾取末梢血一滴推制血片一张，用消毒干棉球压住伤口。 4.2.2.5注意事项 a. 末梢采血时，挤压力不能过大，以免过多组织液混入。 b. 避开冻疮、发炎、水肿部位，以免影响结果。 4.3 标本的处理 4.3.1 检测前的标本处理 对临床标本进行验收，对有凝块、溶血、采血量不符合要求、无条码或无标识等不合格标本，按照《标本采集与管理程序》处理。合格标本，常温放置，4小时内完成检测。 4.3.2 检测后标本的处理 按照实验室规定，血常规标本保存3天，对超过保存期的标本，由实验室工作人员放置于专门的污物间废弃标本箱中，再由医院专门工作人员统一处理。