qRT-PCR-生物分析检测技术
minRNA检测方法

minRNA检测方法minRNA是一种小型RNA,长度为20-25个核苷酸,起始于基因的启动子或转录起始位点处,具有高度特异性和稳定性。
随着生物学研究的深入,minRNA的检测方法也得到了不断改进和丰富。
本文将介绍几种常见的minRNA检测方法。
1. Northern blotting:Northern blotting是一种常用的minRNA检测方法,它通过将样本中的minRNA转移到膜上,并使用针对minRNA的探针进行杂交,来检测和分离minRNA。
该方法的优势在于可以同时检测多个minRNA,缺点是需要较高的样本量和较长的实验时间。
2.影像PCR:影像PCR是一种最新的minRNA检测方法,它结合了PCR技术和荧光显像技术。
首先,通过反转录将minRNA转化为cDNA,然后使用minRNA特异性的引物进行PCR扩增。
而PCR扩增产生的产物被标记上荧光染料,通过荧光显像设备进行检测。
影像PCR具有高度特异性和灵敏性,可以同时检测多个minRNA,并具有较快的实验速度。
3.qRT-PCR:实时荧光定量PCR(qRT-PCR)是一种准确、灵敏的minRNA检测方法。
它通过反转录将minRNA转化为cDNA,然后使用minRNA特异性的引物进行PCR扩增。
在PCR扩增的过程中,使用荧光染料标记引物和探针,通过荧光信号的监测来实时检测和定量minRNA的表达水平。
qRT-PCR可以检测少量的minRNA,并具有高通量的特点。
4.基因芯片技术:基因芯片技术是一种高通量的minRNA检测方法。
通过将包括minRNA的探针阵列固定在芯片上,将样本的minRNA与芯片中的探针进行杂交,然后使用荧光探针进行信号检测和分析。
基因芯片技术可以同时检测上千种minRNA,但需要较高的实验技术和数据分析能力。
5. RNA-Seq技术:RNA-Seq技术是一种高通量测序技术,可以用于检测和定量minRNA。
首先,通过反转录将minRNA转化为cDNA,然后使用测序平台对cDNA进行高通量测序。
qRT-PCR

DNA 2
55 22
条变 单性 链
子链延伸 DNA加倍 DNA单链 与引物复性
DNA双螺旋
1
2
3
时间(min)
4
5
PCR的基本原理
94℃
模板DNA
50-65℃ 72℃
引物1
DNA引物
引物2
PCR的基本原理
Taq酶
引物1
72℃
DNA引物
引物2 Taq酶
PCR的基本原理
PCR反应条件 94℃ PCR过程 PCR的特点
引物设计
引物长度:17-25bp GC%: 40-60%
Tm:60℃(Primer Premier 5.0)
产物长度:80-300bp,100-200bp最佳
DNA水平
基因
RNA水平
mRNA
蛋白水平
蛋白质多肽链
RT-PCR基本原理
mRNA
AAAAAAAAAAAAA TTTTTTTTTTT Reverse Transcription
mRNA
cDNA
AAAAAAAAAAAAA
TTTTTTTTTTT
RT-PCR一般步骤
1、RNA提取
RNA质量的检测 一般RT-PCR要求提取的RNA要有较高的完整性和纯度 完整性检测(1%琼脂糖胶电泳) 纯度检测(OD260/280)
Ct值( threshold value ) 每个反应管内的荧光信号到达设定的 域值时所经历的循环数被称为 Ct 值。 研究表明,各模板的Ct值与该模板的 起始拷贝数的对数存在线性关系,起 始拷贝数越多,Ct值越小。反之亦然。
定量PCR的数学原理
荧光定量PCR的解析方法
相对定量
提RNA+逆转录+qRT-PCR步骤

【一、提RNA】一、实验准备:1、试剂:75%乙醇、Trizol、进口EP管、氯仿、异丙醇、进口枪头(RNA专用)、2、配75%乙醇(DEPC水+无水乙醇),放-20℃冰箱预冷;3、预冷离心机EP管用的);4、清洁桌面,酒精喷过之后擦干,新手套、两层口罩;二、操作步骤:01、弃上清(不回收,直接倒去);02、1mL/孔PBS洗两遍(不回收,直接倒去,随后用200μL枪吸尽PBS);03、每孔加500μL Trizol,轻晃,随后室温放置2min左右;04、枪头吹打,吸出放入进口EP管;05、加入100μL氯仿(即1/5体积的trizol);06、4℃离心机,12000g,15min;07、吸200μL(可减少)上清放入新的进口EP管中(注意:只能吸到上清);08、加入等体积异丙醇,充分混匀,常温放置10-30min(15min);09、4℃离心机,12000g,10min;10、倒掉液体,加入1mL预冷的75%乙醇剧烈混匀;11、4℃离心机,7500g,5min;12、倒掉上清,加入1mL预冷的75%乙醇,混匀;13、4℃离心机,7500g,5min;14、倒掉上清,倒扣在餐巾纸上,5-10min,用针头或者200微升枪头去掉管壁上的水珠;15、每管中加入40μL(40μ-60μL)的DEPC水,吹打溶解;16、测浓度(先知楼21楼测RNA浓度,带DEPC水、灭菌的dd水、10微升枪和枪头);三、注意事项01、如果当时不测RNA浓度,可暂时把RNA放在-20℃冰箱。
但长时间(>24h)保存,需要放在-80℃冰箱;02、异丙醇作用是沉淀RNA,作用比乙醇好;03、04、05、06、07、08、09、【二、测RNA浓度】一、实验准备:01、先知楼21楼-2109教室,一个冰盒+DEPC水+10微升枪、灭菌dd H2O、10μL枪头(RNA 专用)、本子+笔;二、操作步骤:01、登记;02、打开电脑==>打开“N”软件==>点击“Nucleic acid”==>选择“OK”==>选择“RNA”;03、灭菌dd H2O清洗2-3遍,擦干;04、DEPC水校零:即加DEPC水一滴,点击“Blank”,擦干;05、测RNA:加样品一滴,点击“measure”,擦干,随后加下一个样品;06、记录数据,包括RNA浓度(<1000ng/μL)、260/280;07、灭菌dd H2O清洗2-3遍,擦干;08、-80℃冰箱保存;三、注意事项230nm代表有机物水平(碳水化合物),260nm代表RNA 水平,280nm代表蛋白水平,260/230表示有机物量,260/280代表RNA提取量;是核酸最高吸收峰的吸收波长,最佳测量值的范围为。
QRT-PCR(荧光定量PCR)

它的作用在于你提取的RNA逆转录成cDNA时, 加入的浓度可能会不一致,即使用分光广度计测其 浓度,也会有仪器误差,跑出的条带要进行灰度分 析。用目的基因的积分光密度比上内参的光密度就 是你这个基因实际表达的量。
加入体积 (μL)
2.5 2.5 4 -6 0.5 - 1 0.3 – 0.5 0.3 5 μL 补足 25 μL
为了定量和比较的方便,在实时荧光定量 PCR 技 术中引入了几个重要的概念:
• 基线(Baseline):是指在PCR扩增反应的最初 数个循环里,荧光信号变化不大。接近一条直线, 这样的直线即是基线。
实时定量PCR (real-time quantitative PCR)
报告人:杨霞 时间:2012-5-11
目录
一、实验原理 二、实验优点 三、实验缺点 四、实验应用 五、实验简介
一、实验原理
• 实时定量PCR (real-time quantitative PCR)是指在PCR指 数扩增期间通过连续监测荧光信号强弱的变化来即时测定 特异性产物的量,并据此推断目的基因的初始量,不需要 取出PCR产物进行分离。
• 反应要求:荧光定量对扩增片段有较高的要求,一般为 100-300bp;普通定量可以扩增长的片段。如果不需要检 测产物分子量大小,荧光定量可以不进行电泳就对产物进 行定量分析,普通pcr必须电泳。
• 结果:荧光定量可以实现精确定量,普通pcr则不行。荧 光定量体现可以看到整个扩增过程,可以看到扩增效率, 溶解温度,直接得到的标准曲线等,这些是普通pcr无法 实现的。
一个循环,收集一个荧光强度信号,这样我们就
可以通过荧光强度变化监测产物量的变化,从而 得到一条荧光扩增曲线图 ( 如下图) 。
qRT-PCR检测石蜡包埋组织microRNA的研究进展

qRT-PCR检测石蜡包埋组织microRNA的研究进展程凯;余波;王建东;石群立【摘要】实时荧光定量 PCR ( real-time quantitative PCR, qRT-PCR)是一种具有高度敏感性和特异性的核酸定量分析技术,因其具有重复性好、定量准确等优点,已成为核酸检测的重要方法。
microRNA 是核酸家族中的重要成员,可使用qRT-PCR技术进行检测。
由于microRNA具有其特殊性,与mRNA的检测方法不完全一样,仍需进行深入探讨qRT-PCR技术分析组织中microRNA的表达方式。
现就该方面的研究进展作一综述。
【期刊名称】《临床与实验病理学杂志》【年(卷),期】2014(000)011【总页数】4页(P1273-1275,1276)【关键词】qRT-PCR;microRNA;参考基因;文献综述【作者】程凯;余波;王建东;石群立【作者单位】南京大学医学院/南京军区南京总医院病理科,南京210002;南京大学医学院/南京军区南京总医院病理科,南京210002;南京大学医学院/南京军区南京总医院病理科,南京210002;南京大学医学院/南京军区南京总医院病理科,南京210002【正文语种】中文【中图分类】R446目前,研究microRNA的技术有分子克隆、原位杂交、PCR和测序等[1]。
分子克隆不仅耗时长且难以进行大范围检测,不适合于临床样本的检测。
原位杂交技术没有扩增步骤,难以检测低丰度的microRNA。
二代测序是近年来出现的最重要的microRNA表达谱分析技术。
限于成本较高,目前也难以在临床工作中广泛开展。
实时荧光定量PCR(real-time quantitative PCR, qRT-PCR)技术由于具有较高的敏感性和特异性,可以用于检测低表达的microRNA成熟体及其前体分子[2]。
与二代测序技术相比,qRT-PCR技术具有较高的敏感性和特异性,并且不需要特殊的检测仪器和复杂的数据分析方法,检测成本低且耗时少。
qRT-PCR检测结核分枝杆菌蛋白抗原编码基因表达水平

文章编号:1007-4287(2011)12-2004-04qRT-PCR检测结核分枝杆菌蛋白抗原编码基因表达水平陈 伟1,2,王远志1,李永祥1,米利古1,张 辉1,张 娟1,魏克娜1,袁 俐1(1.石河子大学医学院病原生物学与免疫学教研室,新疆石河子832002;2.娄底市中心医院输血科,湖南娄底417100)摘要:目的 运用实时定量PCR(quantitativereal-time,qRT-PCR)检测结核分枝杆菌蛋白Ag85B、38kDa及MPT64编码基因的表达水平,探讨结核分枝杆菌耐药菌株和敏感株,北京基因型和非北京基因型的蛋白抗原在转录水平的差异性及qRT-PCR诊断活菌的价值。
方法 根据Genbank提供的序列,设计目的基因fbpB、psts1、mpt64及内参基因Sigа的特异性引物,将扩增片段克隆入载体pMD18-Tsimple,重组质粒经纯化及倍比稀释,应用SYBRGreenⅠ荧光染料建立检测fbpB、psts1、mpt64基因表达水平的实时定量PCR方法。
选用46株结核分枝杆菌临床分离株,以及2株非结核分枝杆菌。
应用qRT-PCR检测上述菌株、H37Rv国际标准株fbpB、psts1、mpt64基因的表达水平。
结果 结核分枝杆菌活菌的扩增结果呈典型的S型曲线,而结核分枝杆菌死菌和非结核分枝杆菌呈水平直线,没有检测到荧光信号;耐药组中的mpt64基因表达水平低于敏感组及H37Rv标准株,有统计学意义(t=3.093,P<0.01;t=2.545,P<0.05),北京基因型组中的psts1基因表达水平低于非北京基因型组及H37Rv标准株。
结论 有统计学意义(t=2.567,P<0.05;t=2.373,P<0.05)。
结论成功建立了fbpB、psts1、mpt64基因的qRT-PCR检测方法,该方法可以快速判断活菌与死菌。
检测发现耐药组中的mpt64基因表达水平低于敏感组及H37Rv标准株;北京基因型组中的psts1基因表达水平低于非北京基因型组及H37Rv标准株。
QRT-PCR(荧光定量PCR)

实用文档
CT 值( threshold value ):每个反应管内的 荧光信号到达设定的域值时所经历的循环数被称 为 CT 值。 研究表明,各模板的CT值与该模板的起始拷贝数 的对数存在线性关系,起始拷贝数越多,CT值越 小。反之亦然。 利用已知起始拷贝数的标准品可作出标准曲线, 其中横坐标代表起始拷贝数的对数。纵坐标代表 CT值。因此,只要获得未知样品的CT值,即可从 标准曲线上计算出该样品的起始拷贝数。
• 评估基因表达水平等方面的工作,并在不需要构建和筛选 cDNA的前提下,完成对cDNA片段的克隆
实用量的飞跃,而 且与常规PCR相比,它具有特异性更强、有效解 决PCR污染问题、自动化程度高等特点。 在实时荧光定量 PCR 反应中,引入了一种荧光 化学物质,随着 PCR 反应的进行, PCR 反应产 物不断累计,荧光信号强度也等比例增加。每经 过一个循环,收集一个荧光强度信号,这样我们 就可以通过荧光强度变化监测产物量的变化,从 而得到一条荧光扩增曲线图 ( 如下图) 。
实用文档
荧光定量PCR化学原理
1、SYBR Green (荧光染料掺入法) 在PCR反应体系中, 加入过量SYBR荧光染料,SYBR荧光染料特异性地掺入 DNA双链后,发射荧光信号,而不掺入链中的SYBR染料 分子不会发射任何荧光信号,从而保证荧光信号的增加与 PCR产物的增加完全同步。
2、TaqMan (探针法) PCR扩增时在加入一对引物的同时 加入一个特异性的荧光探针,该探针为一寡核苷酸,两端 分别标记一个报告荧光基团和一个淬灭荧光基团。探针完 整时,报告基 团发射的荧光信号被淬灭基团吸收;PCR扩 增时,Taq酶的5’-3’外切酶活性将探针酶切降解,使报 告荧光基团和淬灭荧光基团分离,从而荧光监测系统可 接收到荧光信号,即每扩增一条DNA链,就有一个荧光 分子形成,实现了荧光信号的累积与PCR产物形成完全同 步。
QRT-PCR(荧光定量PCR)

加入体积 (μL)
2.5 2.5 4 -6 0.5 - 1 0.3 – 0.5 0.3 5 μL 补足 25 μL
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为了定量和比较的方便,在实时荧光定量 PCR 技 术中引入了几个重要的概念: 基线(Baseline):是指在PCR扩增反应的最初 数个循环里,荧光信号变化不大。接近一条直线, 这样的直线即是基线。 荧光阈值(threshold):是在荧光扩增曲线上人 为设定的一个值,它可以设定在荧光信号指数扩 增阶段任意位置上,一般荧光域值的设置是基线 (背景)荧光信号的标准偏差的 10 倍。荧光域 值是PCR3—15个循环荧光信号标准差的10倍, 荧光域值设定在 PCR扩增的指数期。
内参的选择:普通PCR内参的大小没有多大要求, 但real time一般选择300bp以下。
它的作用在于你提取的RNA逆转录成cDNA时, 加入的浓度可能会不一致,即使用分光广度计测其 浓度,也会有仪器误差,跑出的条带要进行灰度分 析。用目的基因的积分光密度比上内参的光密度就 是你这个基因实际表达的量。
评估基因表达水平理logo该技术不仅实现了pcr从定性到定量的飞跃而且与常规pcr相比它具有特异性更强有效解决pcr污染问题自动化程度高等特点
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实时定量PCR (real-time
quantitative PCR)
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1、SYBR Green 法
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2、SYBR Green 法的优缺点
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2、TaqMan探针法
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TaqMan作用机理
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TaqMan法优缺点
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注意事项
一、防止RNA酶污染 二、一定要做内参的。不作内参 的结果是不可信的。
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实时荧光定量PCR仪、技术 原理及应用
一、实时荧光定量PCR仪 二、实时荧光定量PCR的技术原理
1. 2. 3. 4. 5. 定量与常规的差别 荧光扩增曲线 荧光阈值和CT值 熔解曲线 标准曲线
6. 何为实时? 7. SYBR Green I 的工作原理 8. Molecular Beacons(发夹型杂交探针)的 工作原理 9. TaqMan(水解型杂交探针)的工作原理 10. 多色多通道技术应用——基因表达分析 11. 内标技术介绍 三、 实时荧光定量PCR技术的应用介绍 1. 医疗方面 2. 研究方面 3. 其它方面
CT值与起始模板的关系 研究表明,每个模板的
5. 标准曲线
CT值与该模板的起始拷 贝数的对数存在线性关 系:起始拷贝数越多, CT值越小。 利用已知起始拷贝数的 标准品可作出标准曲线, 其中横坐标代表CT值, 纵坐标代表起始拷贝数 的对数(如图3所示)。 因些只要获得未知样品 的CT值,即可从标准曲 线上计算出该样品的起 始拷贝数。
(发夹型杂交探针)的工作原理
原理:荧光谐振能量传递(FRET) 环与目标序列完全配对 茎由互补配对的序列组成 变性: 产生非特异性的荧光 延伸: 没有荧光
分子 Beacons是一种在靶DNA不存在时 形成茎环结构的双标记寡核苷酸探针。 在此发夹结构中:位于分子一端的荧光 基团与分子另一端的淬灭基团紧紧靠近。 • 在此结构中,荧光基团被激发后不是产生 光子,而是将能量传递给淬灭剂,这一过 程称为荧光谐振能量传递(FRET)。
SYBR GreenⅠ的特点
① 由于它与所有的双链DNA相结合,不必因为模板
②
③ ④
⑤
不同而特别定制,因此通用性好,且价格相对较 低。 利用荧光染料可以指示双链DNA熔点的性质,通 过熔点曲线分析可以识别扩增产物和引物二聚体, 因而可以区分非特异扩增。 此外,由于一个PCR产物可以与多个分子的染料 结合,因此SYBR GreenⅠ的检测灵敏度很高。 但是,由于SYBR GreenⅠ与所有的双链DNA相 结合,因此由引物二聚体、单链二级结构以及错 误的扩增产物引起的假阳性会影响定量的精确性。 通过测量升高温度后荧光的变化可以帮助降低非 特异产物的影响。由熔解曲线来分析产物的均一 性有助于更准确地分析SYBR GreenI。
Opticon 实时荧光定量 PCR仪
荧光检测 热循环仪 光色: 蓝色光 均一性: ±0.4°C 染料: FAM, SYBR Green I, Molecular beacons TaqMan Probes 精确性: ±0.3°C 激发光波长: 450-495nm 发射光波长: 515-545nm 升降温速率: 最 高3°C/秒. 灵敏度: <5nM的荧光素 温度梯度: 有 检测范围: 100 - 108 拷贝 容量: 96样品 反应管: 0.2mL反应管& 96 孔板 操作系统: Windows NT
CYBR GreenI 的应用范围及优缺点
起始模板浓度定量 融解曲线分析:可区分单一产物、变异产物、 多种产物和(或)引物二聚体 基因型分析 使用方便:不必设计复杂的引物 没有序列特异性:可以用于不同的模板 便宜 灵敏 与非特异性产物结合
8. Molecular Beacons
分子Beacons不同于SYBR Green的一个 优点就是它特异性地检测感兴趣的目标 DNA。 • 通过精心设计分子Beacons和优化反应 条件(温度和缓冲液)后,其灵敏度非 常高,可用于单核苷酸多态性(SNPs) 的检测。 • 但是,为检测某一特定的目标DNA,每 一个探针都必须单独仔细地设计。 分子Beacons是美国纽约公共健康研究 学会的技术专利。
当有靶序列存在的时候,靶序列和分子信 标的探针序列杂交形成有一定刚性的双螺 旋结构,导致分子信标的构象改变,干的 部分打开,荧光基团与猝灭基团分开,二 者之间的能量转移终止; • 在有相应的单色光激活时,荧光基团发出 荧光。荧光强度与溶液中靶序列的多少成 正比,通过检测荧光的强度就可以计算出 靶序列的量。 • Beacons与模板配对后:分子Beacons的构 象改变使得荧光基团与淬灭剂分开;当荧 光基团被激发时,它发出自身波长的光子。
This technology is very sensitive in that it is able to detect single copies of genes and requires very little starting material across a wide spectrum of conditions. The system monitors PCR at each cycle of a reaction, and estimates the cycle when the reaction reaches log phase increments (when the most useful quantitative information about the sample is available) Quantitation can be "relative" to an internal standard such as a housekeeping gene, or "absolute" when compared to a standard curve generated from known concentrations.
二、实时荧光定量PCR的技术原理 1.定量与常规的差别
常规PCR技术:对PCR扩增反 应的终产物进行定量及定性分析 定量PCR技术:对PCR扩增反 应中每一个循环的产物进行定量 及定性分析
SYBR Green I 定量原理
确定初始模板的浓度: 初始DNA量越多, 荧 光达到某一值(域值)时所需要的循环数 越少 Log浓度与循环数呈线性关系:根据样品 扩增达到域值的循环数就可计算出样品中 所含的模板量
实时荧光定量PCR:其反应体系中,引入了 一种荧光化学物质,随着PCR反应的进行, PCR反应产物不断累计,荧光信号强度也等 比例增加。每经过一个循环,收集一个荧光 强度信号,这样我们就可以通过荧光强度变 化监测产物量的变化,从而得到一条荧光扩 增曲线。
2.荧光扩增曲线
荧光扩增曲线可以分三个阶段:荧光背景信 号阶段,荧光信号指数扩增阶段和平台期 。 •荧光背景信号阶段:扩增的荧光信号被荧光 背景信号所掩盖,我们无法判断产物量的变化。 •平台期:扩增产物已不再呈指数级的增加。 PCR的终产物量与起始模板量之间没有线性关 系,所以根据最终的PCR产物量不能计算出起 始DNA拷贝数。 •只有在荧光信号指数扩增阶段:PCR产物量 的对数值与起始模板量之间存在线性关系,我 们可以选择在这个阶段进行定量分析。
① 目标特异性探针 ② 5’为荧光素,3’为淬灭剂 ③ 模板和探针杂交 ④ 延伸: 聚合反应,Taq酶切下5’端荧光 素出现荧光
TaqMan (水解型杂交探针)的 应用范围及优缺点
定量起始模板浓度 基因型分析 产物鉴定 SNP分析
对目标序列有很高的特异性,特别适合于SNP检测 与 Molecular Beacons 相比,设计相对简单 价格较高 只适合于一个特定的目标 不能进行融解曲线分析
Quantitative Real-Time Polymerase Chain Reaction for the Core Facility Using TaqMan and the Perkin-Elmer/Applied Biosystems Division 7700 Sequence Detector
6. 何为实时?
试剂方面: 如何做到相对荧光强度反应的是PCR 产物的相对量;如何做到相对荧光强度反应的是特 定PCR产物的相对量; 仪器方面: 如何测定相对荧光强度
Opticon 实时荧光定量实PCR仪试剂 工作原理
工作原理 哪一步可以观察到荧光信号? 变性;复性;延 伸 应用
7. SYBR Green I 的工作原理 SYBR Green I结合到双链DNA的小沟部 • SYBR Green I染料只有和双链DNA结合后才 发荧光。 • SYBR GreenⅠ的最大吸收波长约为497nm, 发射波长最大约为 520nm。 在PCR反应体系中,加入过量SYBR荧光染 料,SYBR荧光染料特异性地掺入DNA双链后, 发射强荧光信号; 而不掺入链中的SYBR染料分 子仅有微弱荧光信号背景,从而保证荧光信号 的增加与PCR产物的增加同步。 • 变性:无荧光信号,未结合SYBR Green I Dye 通过产物的Tm值来确定产物
分子信标的结构:是一个具有茎-环 (loop-stem)结构的寡核苷酸探针,通常 有25~35个核苷酸,两端分别标上一个荧 光基团和淬灭基团。 • 分子Beacons的茎环结构中,环的部分用于 与靶序列杂交(与目标序列互补),通常 由15~30个核苷酸组成,要求与靶序列杂 交后能形成与探针-靶序列双螺旋有关的 反式构型,并使干的部分打开,尽量得使 荧光基团和淬灭基团分开足够的距离。 • 一般茎(干的部分)一般5-8个核苷酸长 (碱基对),并相互配对形成茎的结构。
荧光基团连接在茎臂的一端,一般连在5’端; 而淬灭基团一般连在3’端。 • 通常用4-(4-二甲基氨基偶氮苯基)苯甲酸 (DABCYL)作为淬灭基团。 分子Beacons必须非常仔细的设计,以致于 在复性温度下: • 模板不存在时形成茎环结构; • 模板存在时则与模板配对。 自由状态时,分子信标呈发夹型结构,荧光 基团和淬灭基团靠得很近,二者之间发生能 量转移(FRET和直接能量转移),荧光基团 的能量被淬灭基团吸收并以热的形式散发, 荧光几乎完全被猝灭。
Molecular Beacons 的应用范围及优缺点
定量起始模板浓度 基因型分析 鉴定产物 单核苷酸多态性(SNP)检测