免疫组化原理和步骤(精)
免疫组化的原理及流程介绍
免疫组化原理及流程介绍
(2)封闭内源性过氧化酶
其主要目的是降低内源性过氧化 物酶的活性。在传统的ABC法和SP 法中，免疫组化反响结果简洁受到 内源性过氧化物酶的干扰，必需用 过氧化氢等进展灭活。
免疫组化原理及流程介绍
具体操作:
1)用封闭通透液浸润切片 30 min〔RT 避 光〕。 其配法是用预热 40 ml PBS 加120ul TritonX-100 加热几分钟，在临用前加 400 ul的30％H2O2。
80年月 Hsu 等建立了抗生物素—生素 〔ABC〕法之后，免疫金—银染色法、半 抗原标记法、免疫电镜技术相继问世。 90年月 分子杂交技术、原位杂交技术、免 疫细胞化学分类方法快速进展。 2023年 各种免疫组化技术更加成熟，使免 疫组化技术成为当今生物医学中形态、功 能代谢综合争论的一项有力工具。其应用范 围深达医学各个学科，是目前生命科学工作 者应当把握的根本技术之一。
免疫组化原理及流程介绍
留意事项：
• 1.苏木素复染时间需要摸索，尤其要考虑阳 性染色的位置。
• 2.切片脱蜡和水化要充分；加反响液时要掩 盖组织充分；每次加 液前甩干洗涤液，但 又防止干片 。
免疫组化原理及流程介绍
• 3.以下缘由可能导致片子着色不均匀： • ① 脱蜡不充分。可以 60 ℃烤 20 min，马上放入新颖
具体操作：
1)将一抗倒掉并用 PBS 洗 5 min×5 次； 2)用滤纸将圆圈四周的水吸去，参加已 稀释的二抗后放入 37℃恒温烤箱中 30 min。 3)用 PBS 洗 5 次×5 min
7.SP反响
SP染色法即链霉素抗生物素蛋白 生 物素过氧化酶连接法。
该法是ABC法根底上的进一步改进， 使卵白素与链霉〔而非生物素〕结合， 而后再结合PO基。
免疫组化原理步骤及要注意的事项
免疫组化原理步骤及要注意的事项免疫组化是一种常用的细胞和组织学检测方法，通过利用免疫学原理，使用特异性抗体对目标分子进行检测，主要应用于分析蛋白质分子的表达，可以帮助研究者了解不同细胞和组织中蛋白质的分布和功能，对于疾病的诊断和治疗也具有重要意义。
下面将介绍免疫组化的原理、步骤及要注意的事项。
原理：免疫组化是利用特异性抗体与抗原发生特异性反应的原理来进行的。
主要包括两种反应：免疫定位反应和信号测定反应。
-免疫定位反应：通过组织抗原表面与抗体的结合，将目标分子定位于细胞或组织的特定位置。
-信号测定反应：将已定位的抗原-抗体复合物进行颜色或荧光标记，发出可见信号，用于检测和记录。
步骤：免疫组化的主要步骤包括标本制备、抗原修复、非特异性反应阻断、一抗染色、二抗染色和显微镜观察。
1.标本制备：选择合适的组织样本，常用的样本有组织切片、细胞涂片和细胞悬液。
样本制备主要包括取材、固定、包埋等步骤，其中固定是关键步骤，常用的固定剂有福尔马林、乙酸乙酯和交联剂等。
2.抗原修复：组织样本在固定过程中往往会导致抗原的空间结构改变和蛋白质交联，使其成为免疫组化的目标结构。
为了恢复抗原的免疫反应性，常常需要进行抗原修复，包括酶解法、消化法、热解法等。
3.非特异性反应阻断：为了减少非特异性结合，需要采取一些措施来阻断非特异性背景信号。
常用的方法包括用蛋白质阻断剂进行封闭、用牛血清白蛋白或BSA预处理等。
4.一抗染色：在经过上述步骤之后，用特异性抗体与目标抗原结合，构成抗原-抗体复合物。
为了增强抗原-抗体的结合力，常采用多种放大手段，如辣根过氧化物酶、碱性磷酸酶或二级抗体等。
5.二抗染色：一抗与抗原结合后，用特异性二级抗体进行检测，二级抗体上带有标记物（如荧光素、酶等），对抗原-抗体复合物进行定位。
6.显微镜观察：通过显微镜观察，检测特定信号的强度和位置，同时进行结果的记录和分析。
注意事项：-选择合适的抗体：免疫组化的关键在于合适的抗体选择，需要选择高度特异性和高亲和力的抗体。
免疫组化的完整步骤及各步原理
免疫组化的完整步骤及各步原理免疫组化是一种常用的实验诊断技术，它通过检测细胞或组织中的特定蛋白质来帮助诊断疾病。
免疫组化的完整步骤包括抗原制备、抗体制备、预处理、染色和结果分析等几个环节。
下面我将详细介绍每个环节的原理及操作步骤。
首先是抗原制备。
抗原是指能够与特异性抗体结合的物质，常见的抗原有蛋白质、多肽和核酸等。
在免疫组化中，我们需要选择一种合适的抗原，并将其制备成适合免疫反应的浓度和形式。
一般来说，抗原可以采用化学合成法、生物来源法或基因工程技术等方法进行制备。
接下来是抗体制备。
抗体是指能够与抗原特异性结合的免疫球蛋白，它是免疫组化的核心成分。
在抗体制备过程中，我们需要先确定需要检测的抗原类型和数量，然后选择合适的动物或植物源材料，进行细胞融合或表达纯化等步骤，最终得到高纯度的单克隆抗体。
第三步是预处理。
在进行免疫组化之前，我们需要对样品进行一系列的预处理操作，以去除杂质和干扰物质的影响。
预处理包括样品稀释、缓冲液调整、基质效应消除等步骤。
还需要根据具体的实验设计选择合适的预处理方法和条件。
第四步是染色。
染色是免疫组化的核心步骤之一，它可以将标记有抗体的二抗与待测样本中的抗原结合，形成可视化的斑点分布。
常用的染色方法包括直接荧光法、间接荧光法、免疫印迹法等。
在染色过程中，需要注意染料的选择、浓度和作用时间等因素，以保证染色效果的质量和稳定性。
最后一步是结果分析。
免疫组化的结果分析需要综合考虑多个因素，如阳性对照品的比较、背景值的控制、图像处理和统计分析等。
常用的结果分析方法包括图像分析软件(如ImageJ)和统计分析软件(如SPSS)。
在结果分析过程中，需要注意数据的可靠性和准确性，避免误判和漏判的情况发生。
免疫组化是一项复杂而精细的技术，它需要综合运用多种知识和技能才能完成高质量的实验诊断任务。
希望以上的介绍能对您有所帮助！。
免疫组化的原理
免疫组化的原理
免疫组化是一种利用抗体与其特异性抗原结合的反应来检测或定位特定分子的方法。
它主要基于抗体的高度特异性与高亲和力，能够识别并结合到抗原上。
免疫组化的过程一般包括固定组织、抗原还原、孵育抗体、洗涤、孵育二次抗体和检测。
具体步骤如下：
1. 固定组织：将待检测的生物组织固定在载玻片上，通常使用形式固定剂或冷冻剂进行固定。
2. 抗原还原：对固定组织进行抗原还原处理，以破坏抗原与抗体结合时的形态学阻滞并使抗原更易于与抗体结合。
3. 孵育抗体：将含有特异性抗体的抗体溶液加到载玻片上的组织切片上，允许其与目标抗原结合。
此时，如果组织中存在目标抗原，抗体就会与其结合形成免疫复合物。
4. 洗涤：通过洗涤步骤去除未结合的抗体，减少干扰性信号的产生。
洗涤通常使用磷缓冲盐溶液或其他缓冲溶液进行多次冲洗。
5. 孵育二次抗体：加入标记有酶、荧光物质或放射性同位素等的二抗溶液，使其与已结合的抗原-一抗复合物发生反应。
二次抗体通常是对多种一抗的特异性抗体。
6. 检测：使用相应的技术，如酶标记法、荧光标记法或放射性
探测等，检测二次抗体与抗原-一抗复合物的结合情况。
通过信号的产生和可视化，可以确定抗原的存在位置以及其表达程度。
总的来说，免疫组化是一种通过利用抗体与抗原间的特异性反应，实现对目标抗原的检测和定位的方法。
其原理主要是通过抗原-抗体的结合来实现对特定分子的识别和鉴定。
免疫组化的原理及操作规程
免疫组化的原理及操作规程免疫组化，即免疫组织化学染色技术，是一种利用抗原与抗体特异性结合的原理，通过化学反应使标记抗体的显色剂（如荧光素、酶、金属离子、同位素等）显色，从而确定组织细胞内抗原（多肽和蛋白质）的定位、定性及相对定量的研究方法。
该技术广泛应用于临床病理诊断、生物医学研究以及药物开发等领域。
本文将详细介绍免疫组化的原理及操作规程。
一、免疫组化的原理免疫组化的基本原理是抗原与抗体的特异性结合。
抗原是指能够刺激机体产生免疫应答，并能与免疫应答产物（抗体或致敏淋巴细胞）发生特异性结合的物质。
抗体是机体的免疫细胞在抗原刺激下产生的具有特异性识别能力的免疫球蛋白。
在免疫组化中，通常将目标抗原（如某种蛋白质或多肽）作为待检测物，通过特定的抗体与之结合，再利用标记技术使抗体可视化，从而实现对目标抗原的定位、定性和定量研究。
免疫组化的标记技术主要有直接法和间接法两种。
直接法是将标记物（如荧光素、酶等）直接标记在抗体上，使其与目标抗原结合后直接显色。
间接法则是利用未标记的抗体（一抗）先与目标抗原结合，然后再通过标记的二抗（与一抗特异性结合的抗体）与一抗结合，最终实现显色。
间接法具有更高的灵敏度和灵活性，因此在实际应用中更为常见。
二、免疫组化的操作规程免疫组化的操作规程主要包括以下几个步骤：1. 标本处理：根据实验需求选择合适的组织标本，并进行固定、脱水、包埋等处理，制备成组织切片或细胞涂片。
固定是为了保持组织或细胞的形态结构，防止抗原丢失；脱水则是为了去除组织中的水分，便于后续操作；包埋则是将组织块包裹在支持物（如石蜡）中，便于切片。
2. 抗原修复：由于固定和脱水等处理过程可能导致抗原表位的遮蔽或改变，因此在进行免疫组化染色前，需要对抗原进行修复。
常用的修复方法包括热修复、酶修复和酸修复等。
具体方法应根据实验需求和抗原性质进行选择。
3. 阻断内源性酶活性：为了避免组织内源性酶对后续显色反应的干扰，需要使用相应的阻断剂（如过氧化氢）对内源性酶活性进行阻断。
免疫组化原理步骤及试剂
免疫组化原理步骤及试剂免疫组化（Immunohistochemistry，IHC）是一种广泛应用于生物医学领域的实验技术，用于检测组织切片中特定抗原的分布和表达水平。
它结合了免疫学和组织学的原理，能够在组织切片上定位和检测抗原，并通过染色方法将抗原可视化，从而实现对抗原的定性和定量分析。
免疫组化实验的步骤通常包括固定、脱脂、抗原修复、抗体和检测步骤。
下面将详细介绍每个步骤的操作和常用试剂。
1.组织固定：组织固定的目的是保持组织结构完整并固定细胞的抗原。
常用的固定试剂包括10%中性缓冲福尔马林（10% neutral buffered formalin，NBF）和乙醇等。
2.脱脂：脱脂是将组织切片中的脂质去除，以提高抗体对抗原的结合效率。
常用的脱脂试剂包括二甲苯、甲醛和乙醚等。
3.抗原修复：抗原修复是为了使被固定的组织恢复原样，增强抗原的可检测性。
抗原修复的方法包括热处理、酶解法和pH调整等。
常用的抗原修复试剂包括热解剂例如EDTA缓冲液、Tris-EDTA缓冲液，酶解剂例如胰蛋白酶和蛋白酶K，以及甲酸、盐酸等酸性溶液。
4.抗体：5.检测：检测步骤用于将抗原-抗体复合物可视化。
这通常通过染色方法完成。
常用的染色方法包括免疫酶标记、免疫荧光和免疫金标记等。
免疫组化实验所需的试剂种类繁多，下面列举一些常用的试剂：1. NBF（10% neutral buffered formalin）：用于组织固定，保持组织形态完整。
2.二甲苯：用于脱脂步骤，去除组织中的脂质。
3.甲醛：用于脱脂步骤。
4.乙醚：用于脱脂步骤。
5.EDTA缓冲液：用于抗原修复的热解剂。
6. Tris-EDTA缓冲液：用于抗原修复的热解剂。
7.胰蛋白酶：用于抗原修复的酶解剂。
8.蛋白酶K：用于抗原修复的酶解剂。
9.盐酸：用于抗原修复的酸性溶液。
10.一抗：选择特异性良好的一抗抗体，常用的有多克隆和单克隆抗体。
11.二抗：用于检测一抗结合的抗体，常用的二抗有反兔、反小鼠或反人的多克隆抗体。
免疫组化原理和步骤
免疫组化原理和步骤免疫组化（Immunohistochemistry，IHC）是一种广泛应用于组织学和细胞学研究中的实验方法，主要用于检测和定位蛋白质在组织或细胞中的分布和表达水平。
它结合了免疫学原理和组织学技术，通过使用特异性的抗体和染色剂来实现对目标蛋白质的检测和可视化。
免疫组化的原理主要是利用抗体的高度特异性与抗原相结合，然后使用染色技术来显示抗原的位置。
该技术的基本原理可分为抗原-抗体反应、信号放大和信号显示三个步骤。
第一步：抗原-抗体反应免疫组化的第一步是选择合适的抗体，通过与目标蛋白质的特异性结合来形成抗原-抗体复合物。
抗体可以是单克隆抗体或多克隆抗体。
单克隆抗体具有高度特异性，只能结合到特定的抗原上。
多克隆抗体具有高度敏感性，可以结合多个位点，从而实现信号放大。
通常，为了提高抗原的可检测性，需要对组织样本进行抗原修复处理。
这可以通过热处理（如蒸汽加热、微波加热）或酶切处理来实现。
修复可以解除组织样本中抗原与蛋白质结构之间的交联，增加抗体的渗透性和可结合性。
当抗原-抗体反应发生时，可通过一系列化学反应来形成抗原-抗体复合物。
例如，可以使用二抗来与抗原-抗体复合物结合，然后使用辣根过氧化物酶（HRP）或碱性磷酸酶（AP）标记的二抗来与二抗结合。
该反应可形成稳定的抗体-酶复合物。
第二步：信号放大由于抗原-抗体复合物的信号很弱，通常需要进行信号放大以便更好地检测到目标蛋白质。
放大信号的方法有很多种，其中最常用的是酶免疫标记联合酶放大技术。
酶免疫标记是通过将抗体与酶结合，使其能够催化特定的化学反应来产生荧光、色素或光学信号。
常用的酶免疫标记包括辣根过氧化物酶（HRP）和碱性磷酸酶（AP）。
这些酶能够催化荧光素、二苯基胺、硝基蓝等底物的氧化还原反应，从而产生可视化的信号。
酶放大技术常用的方法包括：免疫酶化学法（如DAB法）、免疫荧光法和免疫酶学荧光混合法等。
这些方法可通过将底物转化为可见的色素或荧光信号来标记抗原-抗体复合物，从而实现目标蛋白质的检测和定位。
免疫组化步骤及原理
免疫组化步骤及原理免疫组化（Immunohistochemistry，IHC）是一种常用于检测组织中特定蛋白质表达的技术。
它在病理诊断、生物医学研究以及药物开发等领域具有广泛的应用。
本文将介绍免疫组化的步骤及原理，帮助读者更好地理解和应用这一技术。
首先，进行免疫组化实验需要准备组织切片。
通常情况下，组织切片是从已固定的组织样本中制备的。
固定的方法可以选择福尔马林固定、乙醇固定等，不同的固定方法会对后续实验产生影响，因此需要根据实验要求进行选择。
接下来，进行抗原修复。
抗原修复是为了使组织样本中的蛋白质抗原重新暴露出来，以便后续的抗体结合。
常用的抗原修复方法包括热处理、酶消化等，选择合适的抗原修复方法可以提高实验的成功率和结果的准确性。
然后，进行蛋白质的非特异性结合抑制。
在进行免疫组化实验之前，需要阻断组织中非特异性的蛋白质结合，以减少假阳性结果的产生。
一般可以使用牛血清蛋白（BSA）或者其他蛋白质来进行阻断。
接着，进行一抗的孵育。
选择合适的一抗对于免疫组化实验的成功至关重要。
一抗的选择应该考虑抗体的特异性、敏感性和稳定性等因素。
孵育时间和温度也需要根据实验要求进行调整。
随后，进行二抗的孵育。
二抗通常是与荧光素或者酶结合的抗体，用于检测一抗的结合情况。
选择合适的二抗可以提高实验的信号强度和特异性。
最后，进行显色或者荧光检测。
根据实验要求，可以选择酶标法或者免疫荧光法进行信号的检测。
在显色或者荧光检测之后，可以对组织样本进行染色和镜检，最终得到免疫组化实验的结果。
免疫组化的原理是利用抗体与抗原特异性结合的原理，通过显色或者荧光检测来观察组织中特定蛋白质的表达情况。
通过对组织样本的处理和抗体的选择，可以实现对蛋白质表达的定量和定位分析。
总之，免疫组化是一种重要的实验技术，它在病理诊断和生物医学研究中具有广泛的应用前景。
掌握免疫组化的步骤及原理，有助于提高实验的成功率和结果的准确性，为相关领域的研究和临床诊断提供有力支持。
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免疫组化原理及步骤免疫组化操作规程
一、实验原理与意义
免疫组织化学又称免疫细胞化学,是指带显色剂标记的特异性抗体在组织细胞原位通过抗原抗体反应和组织化学的呈色反应,对相应抗原进行定性、定位、定量测定的一项新技术。
它把免疫反应的特异性、组织化学的可见性巧妙地结合起来,借助显微镜 (包括荧光显微镜、电子显微镜的显像和放大作用,在细胞、亚细胞水平检测各种抗原物质 (如蛋白质、多肽、酶、激素、病原体以及受体等。
二、实验器材
微波炉、吹风机、组化笔、湿盒、烤箱、振荡器、染缸、光学显微镜、纯木浆卫生纸、计时器和通风橱等。
三、试剂配制
1. 0.01 M PBS(pH 7.34 :9.0 g NaCl + 50 ml 0.2 M PB 加双蒸水至 1000 ml;
1000 ml 0.2M PB (pH 7.4=5.93 g NaH 2 PO 4 ·2H 2 O+58.02 g Na 2 HPO 4 ·12H 2 O in 1000 ml 双蒸水或=190 ml A + 810 ml B(A. 0.2 M NaH 2 PO 4 ·2H 2 O:15.6 g in 500 ml ddH 2 O; B. 0.2
M Na 2 HPO 4 ·12H 2 O:71.632 g in
1000 ml dH 2 O。
2. Citrate Buffered Saline(0.01 M 柠檬酸缓冲液, PH6.0:28 ml A + 72 ml B + 200 ml ddH 2 O(A.Citrate acid (柠檬酸 :10.5 g 加双蒸水至 1000 ml ; B.Citrate sodium(柠檬酸钠:
29.41 g 加双蒸水至 1000 ml。
3. 细胞通透液:由终浓度分别为 0.3%双氧水和 0.3%Triton X-100 混合而成。
配制方法是先用微波加热的 36 ml PBS, 再接着加 120 ul TritonX-100,
并加热一儿,冷却至临用前加 0.4 ml
30%H 2 O 2 。
4. 5%羊血清或封闭血清,用 PBS 稀释。
5. 含 0.03%H 2 O 2 的 0.05%DAB (避光 :用 20×DAB (1%, 10 mg/ml 5 ul+0.1 ul 30% H 2 O 2 +95 ul PBS 。
6. 一抗、二抗均用 PBS 稀释。
7. Xylene 、梯度 Ethanol (100%×2、 95%、 80%、 70%、 50%、双蒸水、中性树胶(封裱剂。
8. 苏木精染液:
四、操作步骤
1 、脱蜡、水化 1 60 ℃ ×20 min→Xylene
2 ×10 minutes ;
2 100% absolute ethanol:2 ×5 minutes ;
3 95% ethanol 2 minutes;
4 80% ethanol 2 minutes;
5 70% ethanol 2 minutes;
6 distilled water:5 min;
7 PBS 洗 3 次 ×3 min。
2、细胞通透、封闭内源性过氧化物酶
8 用封闭通透液浸润切片 30 min (RT 避光。
配法是用预热 40 ml PBS 加 120ul TritonX-100 加热几分钟后, 临用前加 400 ul 30%H 2 O 2 。
9 PBS 溶液洗 3 次 ×3 min。
3、抗原修复暴露抗原决定族
10 切片放入 0.01 M 柠檬酸钠缓冲溶液(pH6.0后,在微波炉里高火 4 min 至沸腾后, 再加热约 6 min×4 次, 每次间隔补足液体,防止干片。
4、封闭非特异性蛋白
11 PBS 溶液洗 3 次 ×3 min; 12 将切片取出 , 周围水分用滤纸吸干 , 用组化笔在组织周围画上圈 , 在圆圈内组织滴入 5%羊血清 (与二抗来源一致后放入湿盒中 , 室温 30(10~30 min ;
5、一抗孵育
13 甩去切片上的羊血清 , 用滤纸擦干组织周围残留血清,直接加入已稀释的一抗(1:250、 500、 1000后,放入湿盒中室温 1 小时,然后 4 度过夜, 从冰箱中取出需37 ℃复温 45 min。
6、二抗孵育
14 将一抗倒掉并用 PBS 洗 5 min×5 次;
15 用滤纸将圆圈周围的水吸去, 加入已稀释的二抗后放入 37 ℃恒温烤箱中 30 min (回收。
16 用 PBS 洗 5 次 ×5 min;
7、 SP 反应
17 加入 SP 后放入 37 度烤箱中 30 min。
18 用 PBS 洗 5 次 ×5 min;
8、显色
19 加入 DAB (快速滴入,观察染色情况, 倒掉染液 , 显色时间控制在约 5 min (3~10 min,由镜下观察颜色控制时间。
0.05%DAB (避光 (1:20 储备液:5 ul 20×DAB +0.1 ul 30% H 2 O 2 +95 ul PBS。
1%DAB 储备液的制 :50mgDAB+5ml 0.05 mol/L PBS 充分溶解, -20 ℃保存。
9、复染、脱水、透明、封片
20 用 PBS 3 次 ×3min 后, 用双蒸水洗 5 min;
21 加一大滴苏木素染液, 胞核蛋白染几秒,胞浆或胞膜蛋白染 20 s 后自来水冲洗,
双蒸水洗 5 min,再用 PBS 返蓝 5 min 。
22 脱水:
50% ethanol 1-2 min,
70% ethanol 1-2 min
95% ethanol 1-2 min;
95% ethanol 1-2 min;
100% absolute ethanol: (1-2 min; 100% absolute ethanol: (1-2 min。
23 透
明:Xylene 1×(1-2
min →Xylene 2×(1-2 min
24 封片:中性树胶。
五、注意事项
1. 苏木素复染时间需要摸索,尤其阳性染色也在细胞核上。
2. DAB 显色时间需要达到最优化, 镜下观察达到阳性染色明显但背景不太
深。
3. 抗体孵育时间和抗体浓度需要摸索。
尤其一抗孵育最好在 4 度过夜。
4. 切片脱蜡和水化要充分;加反应液时要覆盖组织充分;每次加液前甩干洗涤液,但又防止干片;用组化笔画圈时尽量画大一点,否则墨水排斥液体, 引起片周边干片。
5. 片子着色不均匀的原因如下:①脱蜡不充分。
可以 60 ℃烤 20 min ,立即放入新鲜的 xylene1; ②水化不全。
应经常配制新鲜的梯度乙醇;
③抗体没混匀。
用移液器充分混匀一抗 /二抗等试剂;
④抗体孵育时,切片放倾斜;
⑤抗体孵育后 PBS 冲洗不充分。
⑥制片厚薄不均匀等问题。
染片盒不平,切片倾斜。
6. 一抗从 4 ℃拿出后,为什么有人说要 37 度复温,目的是什么?
①一方面, 防止切片从 4 ℃直接放入 PBS 易脱片; ②另一方面,使抗原抗体结
合更稳定。
一般不需要 , 但对表达较弱的抗原可能有用 ,4 ℃和 37 ℃度
时分子运动方式不同 , 前者分子碰撞机率和运动速度小于后者 , 后者结合更快 , 但敏感性也提高了并易造成非特异染色。
7. 切片染色后背景太深,不易区分特异性与非特异性着色?
①抗体孵育时间过长、抗体浓度高易增加背景着色。
这可通过缩短一抗 /二
抗孵育时间、稀释抗体来控制;
②一抗用多克隆抗体易出现非特异性着色,建议试用单克隆抗体看看; ③内源性过氧化物酶和生物素在肝脏、肾脏等组织含量很高,需要通过延长灭活时间和增加灭活剂浓度来降低背景染色;
④非特异性组分与抗体结合,这需要通过延长二抗来源的动物免疫血清封闭时间和适当增加浓度来加强封闭效果; ⑤ DAB 显色时间过长或浓度过高; ⑥ PBS 冲洗不充分, 残留抗体结果增强着色;
⑦标本染色过程中出现干片,易增强非特异性着色。
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