肠道病毒标本的采集运送保存和实验室检测指南
标本的采集、保存和运送
标本的采集、保存和运送关键词标本;采集;保存1标本的采集采集患者及未发病正常对照的标本,包括:患者发病三日内的粪便标本(每份标本1～5ml);患者的呕吐物(每份1～5ml);同一患者的急性期和恢复期(发病2周以上)血清标本(每份2ml);患者的唾液标本(每份1ml)。
同时采集疫区与患者年龄性别分布相似,相同数量的正常人群的相应标本做对照。
可疑食物采样方法为:将残余食物用灭菌镊子或匙采取,置于灭菌之容器内;如无残余食物,可用消毒棉拭在盛可疑食物的容器内涂擦,然后置于装有少量PBS 试管内。
体积较大的肉及鱼等,置于灭菌容器内。
罐头检样于采取后直接送往检验,如仅剩空盒,可将空盒送验。
采样量为固体食物约250g,液体食物约1L。
2标本的保存和运送标本在检测前可以贮存于2～8℃,但最多不能超过3天,长期贮存应在-20℃或以下。
标本的运送要用冰盒包装,运至目的地后要及时送到-20℃冰箱保存。
病毒性胃肠炎暴发疫情主要对粪便标本和呕吐物标本进行检测,对于检出的阳性毒株要并同血清标本、唾液标本和相关资料一起送至中国疾控中心病毒病所复核。
临床检验常见的标本一般包括血液(指血,静脉血),尿,粪便,脑脊液,胸腹水,前列腺液,精液,阴道分泌物等,这些标本收集的时间、方法和保存都有一定的要求。
2.1血液标本有些生理因素,如吸烟、进食、运动、情绪波动、妊娠、体位等均可影响血液中某些成分的变化,有些甚至还有昼夜变化。
因此血液标本的采集应尽量避免生理因素干扰,以条件一致为宜,如无法避免,应在标本上注明该因素。
2.1.1外周血一般选取左手无名指内侧采血,该部位应无冻疮,炎症,水肿,破损。
如该部位不符合要求,以其他手指部位代替。
对烧伤病人,可选择皮肤完整处采血。
由于部分血液常规检测(如白细胞计数、分类等)受生理因素影响波动过大,比较时宜使条件尽量一致。
涉及到体内出、凝血功能的检测项目(如血小板计数,出血时间或凝血时间等)的检测,一定要注意了解患者是否用过抗凝、促凝药物,以便在减少或避免干扰因素的影响。
肠道寄生虫标本的采集与保存
1. 1 动物及其粪便来源 大白鼠 30 只 ,雌雄不拘 ,体质量 150～200 g ;小
白鼠 30 只 ,雌雄不拘 ,体质量 10～20 g ;豚鼠 20 只 , 雌雄不拘 ,体质量 300～500 g ;黑猩猩 2 只 ,雄性 ,体 质量分别为 50 kg 和 85 kg ;绿狒 6 只 ,雌雄各半 ,体 质量 30 ～ 50 kg ; 猴子 2 只 , 雄性 , 体质量分别为 10 kg 和 20 kg 。绿狒 、猴子 、黑猩猩来自青岛市动 物园 ,其他动物来自我院动物管理科 。大白鼠 、小白
表 1 动物寄生虫感染率(χ%)
动物
微小膜壳 肠道滴虫 结肠小袋纤 n 绦虫卵 滋养体 毛虫滋养体
蓝贾第鞭 毛虫包囊
溶组织阿 蛲虫卵 隐孢 米巴包囊 及成虫 子虫
大白鼠 30 26. 7 90. 0
0
20. 0
10. 0 20. 0 46. 7
小白鼠 30 30. 0 90. 3
0 Βιβλιοθήκη 16. 70 16. 7 0
2 结 果
2. 1 动物肠道寄生虫感染情况 微小膜壳绦虫卵主要见于大白鼠 、小白鼠的粪
便中 ;肠道滴虫滋养体主要见于大白鼠 、小白鼠 、豚 鼠 ;结肠小袋纤毛虫滋养体主要见于豚鼠 ;蓝贾第鞭 毛虫包囊主要见于大白鼠 、小白鼠 、豚鼠 ;溶组织阿 米巴包囊主要见于灵长类动物 ;蛲虫卵及成虫感染 主要见于大白鼠 、小白鼠 。其中蛲虫卵及成虫在形 态上与人体寄生虫有明显区别 ,其他虫种在形态上 与人体寄生虫没有明显区别 。不同动物的不同寄生 虫感染率见表 1 。
[ ABSTRACT] Objective To investigate t he infective rate of enterozoa and t he collection and preservation met hods of parasite eggs. Met hods The parasites and t heir eggs of some animals were examined wit h direct saline smear ,iodine staining ,auramine2phenol and modified acid2fast . The samples were concentrated wit h sedimentation , and preserved in 40 g/ L formaldehyde solution. Results The infective rate of animal emterozqa was high. Different animals varied in infected parasites and infection rate. The morphology of t he parasitic eggs , which had been gained by sedimentation , concentration met hod , and preserved in 40 g/ L formaldehyde were intact , non2 soluble ,wit hout swelling or breakage. Concl usion The collection and preservation of t he parasitic eggs of animal enterozoa wit h sedi2 mentation and concentration is easy to perform and cost less ,and is a good met hod to get samples for teaching.
微生物标本的正确采集
微生物标本的正确采集正确采集微生物标本是进行病原学检查的关键步骤，因为只有采集到合适的标本，才能够准确、客观地检测出病原菌，为诊断和治疗提供科学依据。
以下是一些采集微生物标本的正确方法：一、注意清洁和消毒在采集标本前，必须对手部进行清洁和消毒，以减少污染的可能性。
使用肥皂和水清洁手部，或者使用酒精消毒剂消毒手部。
同时，还需要对采集标本所使用的器械进行消毒，确保无菌操作。
二、选择正确的标本类型不同的微生物感染会有不同的症状和体征，因此需要根据患者的具体情况选择正确的标本类型。
例如，对于呼吸道感染，可以使用鼻咽拭子、痰液等；对于胃肠道感染，可以使用大便标本等。
三、正确采集标本1.采集前准备：了解患者的病史和症状，确定需要采集的标本类型，准备好采集所需的器械和消毒用品。
2.采集方法：根据不同的标本类型，采用正确的采集方法。
例如，对于痰液标本，需要让患者用力咳嗽，将痰液咳出并放入收集器中；对于大便标本，需要让患者取适量的大便放入收集器中。
3.采集量：采集的标本量应该足够，以便进行实验室检测和分析。
一般来说，采集的标本量应该不少于检测所需量的两倍。
4.采集时间：采集标本的时间也有讲究。
例如，对于呼吸道病毒的检测，最好在患者发病的早期采集标本；对于肠道病毒的检测，最好在患者发病后一周内采集标本。
5.保存方式：采集完标本后，需要妥善保存。
一般来说，应该将标本保存在适当的介质中，如保存液或培养基中，以保持标本的活性和完整性。
同时，还需要注意温度和湿度等环境因素对标本的影响。
四、避免污染和交叉感染在采集标本的过程中，必须严格遵守无菌操作原则，避免污染和交叉感染。
例如，在采集痰液标本时，应该让患者先用清水漱口，再用无菌棉签擦拭咽部，以减少口腔和咽部的细菌污染。
同时，还需要注意实验室内的清洁卫生和消毒工作，确保实验室内的空气和环境符合要求。
五、及时送检采集完标本后，需要及时送检。
一般来说，应该将标本尽快送到实验室进行检测和分析。
肠道菌群采集方法
肠道菌群采集方法
肠道菌群一直被认为是人体健康的关键。
它们对我们的免疫系统、消化系统甚至心理健康都有着重要的影响。
因此，了解自己的肠道菌群情况，对维持身体健康至关重要。
那么，如何采集肠道菌群样本呢？目前比较常用的方法是进行粪便样本的采集。
这种方法相对简单易行，不需要太多专业设备。
但是，在采集样本时，也有一些需要注意的地方。
首先，要保持个人卫生。
在采集样本前，要先洗手，确保双手干净。
同时，要选择一个干净的容器来收集粪便样本，避免杂质的污染。
其次，要注意饮食。
在采集样本前的几天内，要尽量保持正常的饮食习惯，尽量不要吃过于油腻或辛辣的食物。
这样可以避免食物残留对菌群检测结果的影响。
另外，要避免使用有毒或有刺激性的清洁剂来清洁采集容器。
最好使用清水或专门的清洁剂来清洁容器，以免残留物影响样本的检测结果。
在采集样本后，要及时送至检测机构或实验室。
避免样本存放时间过长，导致细菌数量和品种的改变。
总的来说，肠道菌群的采集方法并不复杂，但是细节决定成败。
只有在采集过程中注意卫生、饮食和处理方法，才能得到准确、可靠的检测结果。
希望每个人都能重视自己的肠道菌群健康，从而提升整体健康水平。
检验标本的采集、储存、转运和处理制度2
检验标本的采集、储存、转运和处理程序检验标本的采集一、血液标本的采集1．惰性分离胶促凝管红色头盖，采血管内添加有惰性分离胶和促凝剂，可激活纤维蛋白酶，使可溶性纤维蛋白变为不可溶的纤维蛋白多聚体，进而形成稳定的纤维蛋白凝块。
促凝剂可快速激活凝血机制，加速凝血过程，常规用于血清生化、急诊血清生化和血清学相关检验。
2 ．肝素锂抗凝管绿色头盖，采血管内添加有肝素锂。
肝素直接具有抗凝血酶的作用，可延长标本凝血时间。
适用于血粘度、红细胞脆性试验、血气分析、红细胞压积试验、血沉及普通生化测定，不适于做血凝试验。
过量的肝素会引起白细胞的聚集，不能用于白细胞计数。
因其可使血片染色后背景呈淡蓝色，故也不适于白细胞分类。
3 E DT A 抗凝管紫色头盖，乙二胺四乙酸（ E DT A）可以有效地螯合血液标本中的钙离子。
螯合钙或将钙从反应位点移去会阻滞和终止内源性或外源性凝血过程，从而防止血液标本凝固。
适用于一般血液学检验，不适用于凝血试验及血小板功能检查，亦不适用于钙离子、钾离子、钠离子、铁离子、碱性磷酸酶、肌酸激酶和亮氨酸氨基肽酶的测定及PCR 试验。
4 ．枸橼酸钠凝血试验管浅蓝头盖，枸橼酸钠主要通过与血样中钙离子螯合而起抗凝作用。
适用于凝血实验，抗凝剂与血液的比例是 1 ∶9 。
5 ．枸橼酸钠血沉试验管黑色头盖，血沉试验要求的枸橼酸钠浓度是 3.2 ％（相当于0.109 mol／L），抗凝剂与血液的比例为1∶4 。
6 交叉配血管粉红色头盖，乙二胺四乙酸二钾是一种氨基多羧基酸，可以有效地螯合血液标本中的钙离子。
阻滞和终止内源性或外源性凝血过程，从而防止血液标本凝固。
适用于血型和血交叉配血检验。
二、尿液标本的采集（一）采集方法尿液标本有随机新鲜尿、定时尿及24 小时尿，根据检查项目选择标本的采集类型。
定量生化分析多收集24 小时尿液，24 小时尿标本采集方法如下：嘱病人在早晨8 时排尿弃去，以后每次排尿均收集于一大容器内，至次日早晨8 时最后一次尿亦收集于容器内。
临床微生物标本的采集,储存和转运
临床微生物标本的采集，储存和转运微生物检验的基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查2.在抗菌药物使用前采集标本3.采样时严格执行无菌操作4.采样后立即送检5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂6.送检标本应注明来源和检验目的标本采集1.尽早采集2.无菌操作3. 合适部位4.适量标本5. 适当方法6. 安全采集1-尽早采集标本“采集重在时效性”1.1最好是病程早期、急性期1.2尽量在抗生素使用之前采集1.3对已用抗生素又不能停药者，可在下次用药前采集2-合适部位“背景干扰”2.1无菌标本:注意局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作与外界相通的腔道:避开腔道口区标本，以免皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊。
2.2正常菌群寄生部位:采集时应特别小心;应明确检查的目的菌在进行分离培养时，采用特殊选择性培养基2.3血标本采集:应避免输液的影响。
3-无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或粘膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本。
3.1.在采集血液、脑脊液、胸腔积液、关节液等无菌标本时，应注意对局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作;3.2.对于采集与外界相通的腔道标本时，如窦道标本，应从窦道底部取活组织检查，而非从窦道口取标本，以免受皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊;3.3.采集的标本均应盛于无菌容器内送检。
盛装标本的容器须先经高压灭菌、煮沸、干热等物理方法灭菌，或使用一次性无菌容器，不能用消毒剂或酸类处理。
标本中也不得添加防腐剂，一面降低病原菌的分离率。
4-适量标本4.1标本采集应足量。
标本量过少，可能会导致假阴性结果。
4.1.1血液标本:通常成人采血量每瓶8-10ml,儿童每瓶1-5ml;脑脊液、骨髓、4.1.2脓肿、穿刺液、引流液、痰液等标本:≥1ml尿液标本: >3ml4.1.3粪标本: 1-3g或1-3ml4.2结核标本采集量要求特殊:4.2.1痰、肺泡灌洗液或支气管冲洗液: >5ml;4.2.2清晨中段尿: 5-10ml;4.2.3粪标本: >1g;4.2.4穿刺液(胸水、腹水、关节液等) : 5- 10ml。
标本采集、运送、保存程序
标本采集、运送、保存成序1.目的规范标本采集程序，保证实验室检测前标本质量。
2. 范围微生物标本。
3. 职责3.1 医护人员和检验人员负责指导病人如何正确留取标本。
3.2 标本运输人员负责收取标本和运输标本至微生物室。
4. 程序4.1 采集标本前，采样人员根据检验申请单检验项目的要求，确认采样计划并进行适当的准备工作，包括核对遗嘱、打印条形码、选择合适的标本容器、粘贴条形码及指导病人做好采样前的准备工作等。
4.2 认真核对病人、标本容器和检验申请单是否一致，严防差错。
4.3 标本送到微生物室，标本运输人员必须与微生物室标本接收人员对标本进行核收登记并签名4.4 所有标本必须记录采样时间并立即送检，一般不得超过2h.5 采集方法5.1 血液及骨髓5.1.1 血液5.1.1.1采血时间：①在抗菌药物治疗前；②尽可能在患者寒战开始时、发热高峰前30-60分钟内采血；③如患者已经应用抗菌药物进行治疗，应在下一次用药之前采血培养；④同时或短时间内完成几套血培养采集，除非怀疑存在持续性菌血症时（如亚急性感染性心内膜炎1-2小时从不同部位采集3套标本）5.1.1.2采血量：成人一次采血5～10ml,儿童2～5 ml婴幼儿为1～2ml。
（附注：儿童的采血量不能超过其总血容量的1%）。
5.1.1.3采血方法：①成年病人，推荐同时在不同部位采集2～3套（每套包括一瓶需氧瓶、一瓶厌氧瓶）；对于感染性心内膜炎和真菌血症则应多次采集；对于婴幼儿病人，推荐同时在不同部位采集2～3瓶。
因为儿童患者很少见厌氧菌感染，因此推荐仅使用需氧瓶而不常规推荐同时做厌氧培养。
②采血量充足时，应先注入厌氧瓶，后注入需氧瓶；采血量不足时，应先注入需氧瓶，后注入厌氧瓶。
5.1.2 骨髓标本用骨髓穿刺针从髂骨采集。
5.1.3 标本保存：采集标本后立即送到实验室，不能及时送检可置于室温，切勿放入冰箱。
冬季血培养瓶在送检过程中应采取一定的保暖措施。
5.2 脑脊液标本：由临床医师以无菌要求做腰椎穿刺，抽取脑脊液2～3ml,盛于无菌容器中送检。
临床微生物标本的采集方法与运送图文
临床微生物标本的采集方法与运送图文在医学诊断中，微生物检测被广泛应用于诊断及治疗方案制定。
正确采集和运送微生物标本是确保检测结果准确的关键步骤之一。
本文将详细介绍临床微生物标本的采集方法及运送注意事项。
采集方法血液标本血液标本采集是常用的微生物检测方法之一。
常规采集方法包括静脉血采集、指尖穿刺采集和动脉血采集等。
1.静脉血采集静脉血采集通常用于需要采集大量样本的情况下，如血培养、真菌检测、病毒检测等。
采集前应先消毒采血部位，选定静脉进行穿刺，然后注入抗凝剂。
2.指尖穿刺采集指尖穿刺采集用于小儿或需要采集微量血液时。
采集前应消毒手指或手掌，然后用专用的采血器进行采集。
3.动脉血采集动脉血采集比较少用于微生物检测，但对于严重感染、危重患者或需要测定动脉血分析得出合理治疗方案的情况下，动脉血采集是必要的。
采集前应选择合适的部位和方法，如可以选择桡动脉或股动脉，用专用的采血器进行采集。
呼吸道标本呼吸道标本采集常用于肺炎、支气管炎等疾病的微生物检测。
常规采集方法包括咳痰、纤维支气管镜、气管切开等。
1.咳痰采集咳痰采集过程中患者需要深呼吸几次，准备好试管，让患者咳出一口痰，不能含有口沫、唾液或食物颗粒等，尽可能采集量充足，同时尽量避免污染。
2.纤维支气管镜纤维支气管镜是通过口腔或鼻腔插入支气管，然后利用摄像技术和采样器具进行采集的方法。
此方法是针对深部病菌感染的有效手段。
3.气管切开气管切开是一种采集深部呼吸道标本的方法，因为它可以避免口咽部的影响。
采集前应选择合适的气管穿刺部位、清洁穿刺部位、取下上管再采集等步骤。
尿液标本尿液标本的采集主要是为了检测尿路感染等微生物，采集前需要保持尿液清洁，防止细菌污染。
1.中段尿采集中段尿采集是指采集尿液的中部部分，采集前应积极清洗外阴，然后让患者将外阴分开并向前弯腰（女性可用专用的尿盆）。
取适量中段尿，例如5ml，尽量避免皮肤分泌物或洗浴用品污染。
2.空腹尿采集空腹尿采集是指清晨患者从自然排空开始（胆红素改变尿色）到第二个排尿前采集尿样，此时虽然尿液浓度高，但细菌数量少，采集丰富，适用于对尿细菌进行检测。
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肠道病毒标本的采集运送保存和实验室检测指南
为及时、科学地采集和运送手足口病标本，规范实验室检测程序和检测方法，提高检测质量，特制定本指南。
一、采样液
1．pH7.4～7.6 HANK氏平衡盐（含0.5%的牛血清白蛋白）。
2．pH7.4～7.6的Eagle’s MEM培养液（含0.5%的牛血清白蛋白）。
二、标本种类及采集
1．咽拭子：用聚丙烯纤维头的塑料杆拭子同时擦拭双侧咽扁桃体及咽后壁，将拭子头浸入含3ml采样液的采样管中。
2．患者粪便：采集5～10g粪便置于15ml空采样管中。
3．血清标本：须采集急性期、恢复期双份血清。
用真空负压采血管采集血液标本5ml，室温静置30分钟，1500～2000rpm离心10分钟，收集血清于2ml 无菌螺口塑料管中。
标本采集好后，应在采样管上做好标记，并注明标本的种类，同时及时填写采样表，要求信息完整。
三、标本保存及运送
标本应在冷藏的条件下尽快进行送实验室检测，24小时内能检测的标本可置于4℃保存，24小时内无法检测的标本则应置于-70℃或以下保存。
如无－70℃保存条件，则于－20℃冰箱暂存。
血清可在4℃存放3天、-20℃以下长期保存。
标本运送期间应避免反复冻融。
四、标本的实验室检测
1．核酸检测：方法包括RT-PCR和Real-Time RT-PCR，首先使用肠道病毒
通用引物进行快速筛查，得到阳性结果后使用EV71、CoxA16等引物和探针进行分型。
2．病毒分离及鉴定：采用RD、Hep2和Vero细胞进行病毒的分离，第一代7日内仍然为阴性的标本需继续盲传一代。
病毒鉴定采用中和试验（NT）和间接免疫荧光法（IFA）。
3．血清学检测：采用组合血清进行血清中和试验，双份血清具4倍增长才具有诊断意义。