实验一 磺胺嘧啶在体小肠吸收实验
磺胺嘧啶片的实验报告
一、实验目的1. 掌握磺胺嘧啶片的制备方法；2. 了解磺胺嘧啶片的质量控制指标；3. 培养实验室操作技能，提高实验效率。
二、实验原理磺胺嘧啶（Sulfadiazine）是一种广谱抗菌药物，具有杀菌和抑菌作用。
其分子式为C10H12N4O3S，分子量为252.26。
本实验采用固体分散技术制备磺胺嘧啶片，通过将磺胺嘧啶与辅料混合，制成片剂，提高药物在体内的吸收率。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：（1）磺胺嘧啶：纯度≥98%；（2）淀粉：药用级；（3）乳糖：药用级；（4）滑石粉：药用级；（5）硬脂酸镁：药用级。
2. 实验仪器：（1）电子天平；（2）研钵；（3）混合机；（4）压片机；（5）片剂硬度仪；（6）崩解时限仪；（7）紫外分光光度计。
四、实验步骤1. 原料称量：按照处方比例，准确称取磺胺嘧啶、淀粉、乳糖、滑石粉和硬脂酸镁。
2. 混合：将称量好的原料放入研钵中，充分混合均匀。
3. 制粒：将混合好的原料加入适量的水，搅拌均匀，制成软材。
然后将软材通过制粒机制成颗粒。
4. 干燥：将制得的颗粒在60℃下干燥，直至颗粒水分含量降至2%以下。
5. 压片：将干燥后的颗粒通过压片机压制成片，每片含磺胺嘧啶100mg。
6. 检查：（1）外观：片剂表面光洁，色泽均匀；（2）片重：每片重量误差±0.05g；（3）硬度：硬度仪测定，硬度≥5.0N；（4）崩解时限：崩解时限仪测定，崩解时限≤15分钟；（5）含量测定：采用紫外分光光度法测定，含量≥95%。
五、实验结果与分析1. 外观：制备的磺胺嘧啶片外观光洁，色泽均匀，符合要求。
2. 片重：通过压片机压制的片重误差在±0.05g范围内，符合要求。
3. 硬度：硬度仪测定，硬度≥5.0N，符合要求。
4. 崩解时限：崩解时限仪测定，崩解时限≤15分钟，符合要求。
5. 含量测定：采用紫外分光光度法测定，含量≥95%，符合要求。
六、实验结论本实验成功制备了磺胺嘧啶片，通过固体分散技术提高了药物在体内的吸收率。
磺胺嘧啶在体小肠吸收实验
实验一 磺胺嘧啶在体小肠吸收实验（验证性实验）一、实验要求1.掌握大鼠在体肠管泵循环法研究吸收的实验方法。
2.掌握药物肠管吸收的机理和计算吸收速度常数(ka)、吸收半衰期(t 1/2（a ）)的方法。
二、实验原理药物消化道吸收实验方法可分为体外法(in vitro )、在体法(in situ )和体内法(in vivo )等。
在体法由于不切断血管和神经，药物透过上皮细胞后即被血液运走，能避免胃内容物排出及消化道固有运动等的生理影响，对溶解药物是一种较好的研究吸收的方法。
但本法一般只限于溶解状态药物，并有可能将其他因素引起药物浓度的变化误作为吸收。
消化道药物吸收的主要方式为被动扩散。
药物服用后，胃肠液中高浓度的药物向细胞内透过，又以相似的方式扩散转运到血液中。
这种形式的吸收不消耗能量，其透过速度与膜两侧的浓度差成正比，可用下式表示：hC C DkS dt dCP GI -=-（1） 式中dtdC为分子型药物的透过速度；D 为药物在膜内的扩散系数；k 为药物在膜／水溶液中的分配系数；S 为药物扩散的表面积；C GI 为消化道内药物浓度；C p 为血液中药物浓度；h 为膜的厚度。
令Dk ＝P ，则P 为透过常数。
一般药物进入循环系统后立即转运至全身各个部位，故药物在吸收部位循环液中的浓度相当低，与胃肠液中药物浓度相比，可忽略不计。
若设'k hPS=，式(1)可简化为： C k dtdC'=-（2） 式(2)说明药物透过速度属于表观一级速度过程。
以消化液中药物量的变化率dX/dt 表示透过速度，则：X k dtdXa =-（3） 上式积分后两边取常用对数，变为：t k X X a303.2lg lg 0-= （4） 以小肠内剩余药量的对数lgX 对取样时间t 作图，可得一条直线，从直线的斜率可求得吸收速度常数k a ，其吸收半衰期t 1/2（a ）为：aa k t 693.0)(2/1=（5）在小肠吸收过程中，药物被吸收的同时水分也被吸收，使供试液体积不断减少，所以不能用直接测定药物浓度的方法计算剩余药量。
磺胺嘧啶生物利用度的测定实验报告
磺胺嘧啶生物利用度的测定实验报告磺胺嘧啶是一种广谱的抗生素，常用于治疗革兰氏阳性和阴性细菌感染。
了解磺胺嘧啶的生物利用度对于确定适当的药物剂量和给药方式非常重要。
本实验旨在测定磺胺嘧啶的生物利用度，并探讨其影响因素。
实验所需材料：1. 健康成年大鼠；2. 磺胺嘧啶药物；3. 血液采集工具和试剂；4. 手术器械和材料。
实验步骤：1. 动物操作：将大鼠随机分为两组，每组n只。
一个组作为给药组，另一个组作为对照组。
2. 给药：将给药组大鼠口服给予一定剂量的磺胺嘧啶药物，对照组大鼠则给予等量的生理盐水。
3. 血液采集：在给药后不同时间点（如0、0.5、1、2、4、8小时等）采集大鼠血液样本。
使用合适的无菌针头和注射器采集血液，将血液转移到采血管中，然后离心分离血浆。
4. 血浆样本处理：将离心分离的血浆样本转移到标有时间和样本编号的离心管中，并进行标记。
5. 荧光法检测：使用荧光光谱仪检测磺胺嘧啶在血浆中的浓度。
根据磺胺嘧啶的荧光特性，选择合适的激发波长和发射波长进行检测。
6. 数据处理：根据血药浓度-时间曲线，计算磺胺嘧啶的生物利用度。
生物利用度（F）通过计算给药后的面积（A）与静脉给药后的面积（A0）之比来评估。
F = A / A0。
结果和讨论：通过实验数据计算出的生物利用度可以反映磺胺嘧啶的肠道吸收和首过效应情况。
一般而言，生物利用度越高，药物吸收效果越好。
实验结果应该进行统计学分析，以确定给药组和对照组之间的显著差异。
磺胺嘧啶的生物利用度受到多种因素的影响，这些因素包括：1. 药物生物可及性：药物分子的化学结构和溶解度可能会影响其在胃肠道中的溶解和吸收。
2. 肠道吸收：磺胺嘧啶可能通过主动转运或扩散从小肠吸收入血液循环。
因此，肠道功能和健康状况可能会影响生物利用度。
3. 药物代谢和消除：药物代谢和消除速率可能会影响生物利用度。
例如，如果药物在肝脏中被快速代谢和排泄，则生物利用度可能较低。
4. 其他因素：体重、年龄、性别等因素也可能对磺胺嘧啶的生物利用度产生影响。
实验一 磺胺嘧啶在体小肠吸收实验26页PPT
46、我们若已接受最坏的，就再没有什么损失。——卡耐基 47、书到用时方恨少、事非经过不知难。——陆游 48、书籍把我们引入最美好的社会，使我们认识各个时代的伟大智者。——史美尔斯 49、熟读唐诗三百首，不会作诗也会吟。——孙洙 50、谁和我一样用功，谁就会和我一样成功。——莫扎特
个，而且只有两个……公平和实用。——伯克 7、有两种和平的暴力，那就是法律和礼节。——歌德
8、法律就是秩序，有好的法律才有好的秩序。——亚里士多德 9、上帝把法律和公平凑合在一起，可是人类却把它拆开。——查·科尔顿 10、一切法律都是无用的，因为好人用不着它们，而坏人又不会因为它们而变得规矩起来。——德谟耶克斯
药理实验报告磺胺嘧啶
一、实验目的1. 了解磺胺嘧啶的药理作用和抗菌活性。
2. 掌握磺胺嘧啶的抗菌谱及其对革兰氏阳性菌和革兰氏阴性菌的抑制作用。
3. 研究磺胺嘧啶的抗菌机制及临床应用。
二、实验原理磺胺嘧啶（Sulfadiazine）是一种广谱抗菌药，属于磺胺类药物。
其抗菌机制是通过抑制细菌的二氢叶酸合成酶，从而阻止细菌体内叶酸的合成，进而影响细菌的生长和繁殖。
磺胺嘧啶对革兰氏阳性菌和革兰氏阴性菌均有抑制作用，主要用于治疗流行性脑膜炎、肺炎、淋病等感染。
三、实验材料1. 实验仪器：显微镜、细菌培养箱、菌落计数器、培养皿、接种环等。
2. 实验试剂：磺胺嘧啶、对氨基苯甲酸、氯化钠、磷酸盐缓冲液、营养琼脂等。
3. 实验菌株：金黄色葡萄球菌、肺炎链球菌、大肠杆菌、沙门氏菌等。
四、实验方法1. 抗菌活性测定（1）将金黄色葡萄球菌、肺炎链球菌、大肠杆菌、沙门氏菌分别接种于营养琼脂平板上，培养过夜。
（2）用无菌接种环分别取适量细菌悬液，均匀涂布于琼脂平板上。
（3）在平板上均匀涂布一定浓度的磺胺嘧啶溶液。
（4）将平板倒置，放入细菌培养箱中培养24小时。
（5）观察并记录磺胺嘧啶对各种细菌的抑制作用。
2. 抗菌机制研究（1）将金黄色葡萄球菌、肺炎链球菌、大肠杆菌、沙门氏菌分别接种于含有对氨基苯甲酸的培养基中，培养过夜。
（2）向培养基中加入一定浓度的磺胺嘧啶，观察并记录细菌的生长情况。
（3）通过比较含有和不含对氨基苯甲酸的培养基中细菌的生长情况，研究磺胺嘧啶的抗菌机制。
五、实验结果1. 抗菌活性测定磺胺嘧啶对金黄色葡萄球菌、肺炎链球菌、大肠杆菌、沙门氏菌均有抑制作用，且抑制作用随药物浓度的增加而增强。
2. 抗菌机制研究磺胺嘧啶能够抑制细菌的生长，其抗菌机制可能与抑制二氢叶酸合成酶有关。
在含有对氨基苯甲酸的培养基中，磺胺嘧啶的抑制作用减弱，进一步证实了其抗菌机制。
六、讨论1. 磺胺嘧啶是一种广谱抗菌药，对革兰氏阳性菌和革兰氏阴性菌均有抑制作用。
磺胺嘧啶生物利用度的测定实验报告
磺胺嘧啶生物利用度的测定实验报告以下是磺胺嘧啶生物利用度的测定实验报告：一、实验目的：测定磺胺嘧啶在体内的生物利用度。
二、实验原理：磺胺嘧啶是一种广谱抗菌素，能够抑制许多细菌的生长。
它主要在肠道吸收，并在体内代谢。
生物利用度是指口服给药后进入循环系统的药物量占总口服剂量的百分比。
因此，通过测定口服磺胺嘧啶后在血液中的浓度变化，可以计算出其生物利用度。
三、实验步骤：1. 将实验动物随机分为两组，每组5只。
2. 给予第一组动物口服磺胺嘧啶溶液，剂量为20mg/kg。
3. 给予第二组动物静脉注射磺胺嘧啶溶液，剂量为4mg/kg。
4. 在给药后不同时间点（0.5h、1h、2h、4h、8h）采集动物的血液样本。
5. 采集的血液样本离心，取上清液。
6. 使用高效液相色谱仪分析上清液中磺胺嘧啶的浓度。
7. 根据药物在体内的半衰期计算出其生物利用度。
四、实验结果：通过高效液相色谱仪分析，得到不同时间点上清液中磺胺嘧啶的浓度，如下表所示：| 时间（h） | 口服组浓度（μg/mL） | 静脉注射组浓度（μg/mL）||:--------:|:-------------:|:------------------:|| 0.5 | 3.2 | 9.1 || 1 | 4.6 | 7.2 || 2 | 2.8 | 3.9 || 4 | 1.1 | 1.5 || 8 | 0.4 | 0.5 | 根据药物在体内的半衰期计算出其生物利用度，口服组为28%，静脉注射组为80%。
五、结论：口服给药后，磺胺嘧啶的生物利用度为28%；静脉注射后，磺胺嘧啶的生物利用度为80%。
在体小肠吸收实验
在体小肠吸收实验【实验目的】1.掌握大鼠在体肠管泵循环法研究吸收的试验方法。
2.掌握药物肠管吸收的机理和计算吸收速度常数（ka）和吸收半衰期（t1/2（a））的方法。
【实验原理】研究药物消化管吸收试验方法，大致可分为体外试验法、在体试验法和体内试验法等。
在体试验法不切断血管和神经，药物透过上皮细胞后即被血液运走，能避免胃内容物排出及消化管固有运动等的生理影响，对溶解药物是一种较好的研究吸收的试验方法。
但本法只限于溶解状态药物，并有可能将其它因素引起的药物浓度的变化误作为吸收。
消化管吸收药物主要方式是被动扩散。
药物服用后，胃肠液中高浓度的药物向低浓度的细胞内透过，又以相似的方式扩散转运到血液中。
这种形式的吸收不消耗能量，其透过速度与膜两侧的浓度差成正比，可用下式表示：−dQdt =DKS C−C bℎ式中D为药物在膜内的扩散系数；k为药物在膜/水溶液中的分配系数；C为消化管内药物浓度；Cb为血液中药物浓度；h为膜的厚度。
令Dk=P，P为透过常数一般药物进入循环系统后立即转运全身，故药物在吸收部位循环液中的浓度相当低，与胃肠液中药物浓度相比，可忽略不计。
若设PS/h=k’，式（1）可简化为：−dQdt=PSℎC=kc式（2）说明药物透过速度属于表观一级速度过程。
以消化液中药物量的变化率dx/dt表示透过速度，则−dXdt=K a XlnX=lnX0−K a t以小肠内剩余的药量的对数lnX对取样时间t作图，可得一直线，从直线的斜率可求得吸收速度常数ka，其吸收半衰期t1/2（a）为：t1/2=0.693/K a小肠在吸收过程中，不仅吸收药物，也吸收水分，导致供试液体积减少，故不能用直接测定药物浓度的方法计算剩余药量。
酚红不被小肠吸收，因此向供试液中加入定量的酚红，在一定间隔时间测定酚红的浓度，就可以计算出不同时间供试液的体积，再根据测定药物的浓度，就可以得出不同时间小肠中剩余的药量或被吸收的药量。
【实验内容与操作】1. 试剂的配制（1）0.1%NaNO2溶液：称取NaNO2 0.1g置100ml容量瓶中，加蒸馏水定容，摇匀。
实验一 磺胺嘧啶在体小肠吸收实验
lg
X
lg
X0
ka t 2.303
LN ( X ) LN ( X 0 ) kat
根据回归方程求得t1/2=0.693/ka
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三、实验原理
Xn的求算
Xn=Cn×Vn
在小肠吸收过程中，药物被吸收的同时水分也
被吸收，使Vn不断减少，利用酚红不被吸收，测 定不同时间酚红的浓度，求算Vn。
空白液：0.2mol/L NaOH
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四、实验内容
(3)样品测定 ①SD的测定：取样品lmL置l0mL带塞试管中，加 入lmol/L盐酸5mL，摇匀，以下步骤按SD标准曲 线项下操作，在550nm的波长处测定吸收度。 ②酚红的测定：取样品0.5mL置10mL带塞试管中， 加入0.2mol／L NaOH 5mL，在555nm波长处测定 吸收度。
dC k'C dt
D为药物在膜内的扩散系数；k为药物在膜／水溶液中的分配系数；S为药物扩散的 表面积；CGI为消化道内药物浓度；Cp为血液中药物浓度；h为膜的厚度
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三、实验原理
以消化液中药物的量的变化率dX/dt表示透过速 度，则： -dX/dt=kaX，积分后为
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四、实验内容
3．循环实验的操作 (1)蠕动泵流速的调节：选择所需工作方向，按动快、 慢档开关，调节流速为5mL/min和2.5mL／min。 (2)恒温水浴调节：水浴温度调节为（37±0.5）℃。 (3)供试液的准备：取80mL供试液加入循环装置的 烧瓶中，见下图，将烧瓶置恒温水浴中预热至 （37±0.5）℃。 (4)生理盐水的准备：取生理盐水适量，预热至37℃ 备用。
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四、实验内容
1．试剂的配制 ➢ Krebs-Ringer试 剂 (pH7.4) （ 已 准备 ） ：称 取
NaCl 7.8g，KCl 0.35g，CaCl2 0.37g，NaHCO3 1.37g，NaH2PO4 0.32g，MgCl2 0.02g，葡萄糖 1.4g，加蒸馏水适量使成l000mL。 ➢ 1%NaNO2溶液（100mL） ➢ 0.5%氨基磺酸铵溶液（100mL） ➢ 0.1%二盐酸萘基乙二胺溶液（200mL） ➢ 1mol/L盐酸（400mL） ➢ 0.2mol/L氢氧化钠（400mL）
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四、实验内容
2．供试液与酚红液的配制（已准备） (1)供试液：精密称取磺胺嘧啶20mg、酚红20mg于 1000mL容量瓶中，加Krebs-Ringer试剂定容，摇 匀。 (2)酚红液：精密称取酚红20mg于1000mL容量瓶 中，加Krebs-Ringer试剂定容，摇匀。
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实验一 磺胺嘧啶在体小肠吸收实验
药学系药剂教研室
一、实验要求
1.掌握大鼠在体肠管循环灌流法研究药物吸收的 实验方法。 2.掌握药物肠管吸收的机理和计算吸收速度常数
(ka)、吸收半衰期(t1/2（a）)的方法。
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二、仪器、试剂和动物
lg
X
lg
X0
ka t 2.303
LN ( X ) LN ( X 0 ) kat
根据回归方程求得t1/2=0.693/ka
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三、实验原理
Xn的求算
Xn=Cn×Vn
在小肠吸收过程中，药物被吸收的同时水分也
被吸收，使Vn不断减少，利用酚红不被吸收，测 定不同时间酚红的浓度，求算Vn。
i 1
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六、问题与讨论
1.在体吸收试验方法的特点是什么? 2.影响试验结果的主要因素有哪些？ 3.供试液中为什么要加酚红?
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C2
A’2 C’2
V2=[(V1-1.5)C’1+40]/ C’2
P2=C2V2+1.5C1
0.5
A3
C3
A’3 C’3
V3=[(V2-1.5)C’2+40]/ C’3
P2=C3V3+1.5(C1+C2)
… …… … …
…
…
n 1
tn
An
Cn
A’n C’n Vn=[(Vn-1-1.5)C’n-1+40]/ C’n Pn CnVn 1.5 Ci
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大鼠在体小肠吸收量的计算
取样时 SD SD 酚红 酚红 间（h） A 浓度 A 浓度
供试液体积
剩余药量
循环前 A0
C0
A’0 C’0
V0=80mL
P0=80* C0
0
A1
C1
A’1 C’1
V1=C’0V0/ C’1
P1=C1V1
0.25 A2
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四、实验内容
5．操作注意 (3)插玻璃管时应注意方向，在十二指肠端向下插， 回肠端向上插，以构成回路。 (4)SD的测定中，加入氨基磺酸钠后要充分振摇至 无气泡发生。
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五、实验结果
+0.1％二盐酸萘基乙二胺2mL
放置3min
放置20min
摇匀
550nm的波长处测定吸收度
空白液：取酚红1.0 mL，加1mol/LHCl 5mL，摇匀，余下操作按上法操作
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四、实验内容
（2）酚红的标准曲线：精密称取酚红约25mg置 250mL容量瓶中，加蒸馏水定容，分别精密吸取1、 2、3、4、5、6mL置10mL容量瓶中，加蒸馏水定容， 再分别吸取0.5mL置10mL带塞试管中，加 0.2mol/LNaOH 5mL，摇匀。照分光光度法在555nm 波长处测定吸收度。以吸收度对浓度回归，得到酚 红标准曲线方程。
（一）仪器 恒流泵、紫外分光光度计、石英比色皿、万分之 一分析天平、电子秤（称大鼠）、恒温水浴、温 度计、红外线灯、玻璃插管、2mL和10mL移液管、 锥形瓶、烧杯、注射器、眼科剪刀、眼科镊子、 普通中号镊子、小剪刀、动物实验操作台、手术 线、手术纱布、10mL容量瓶、1000mL容量瓶、 10mL带塞试管、量筒、手术止血钳
四、实验内容
(8)做成回路：将肠管两端的玻璃管按图所示与胶管 连接，做成回路，开动蠕动泵，其流速为5mL/min。
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四、实验内容
(9)取样：以5mL/min流速循环10min后，将流速调 节为2.5mL/min，立即自供试液烧瓶中取样两份 (1mL和0.5mL各一份)，分别作为SD和酚红“0”时 间样品，另向烧瓶中补加酚红液2mL，其后每隔 15min按同法取样及补加酚红液，共取样9次，停 止循环。
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三、实验原理
消化道药物吸收的主要方式为被动扩散。其透过速度
与膜两侧的浓度差成正比，可用下式表示：
dC DkS CGI CP
dt
h
Cp相对于CGI可忽略不计，若设DkS/h=k’上式可简化为
上式说明药物膜透过速度属于表观一级速度过程。
dC k'C dt
D为药物在膜内的扩散系数；k为药物在膜／水溶液中的分配系数；S为药物扩散的 表面积；CGI为消化道内药物浓度；Cp为血液中药物浓度；h为膜的厚度
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三、实验原理
以消化液中药物的量的变化率dX/dt表示透过速 度，则： -dX/dt=kaX，积分后为
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四、实验内容
(7)肠管洗涤：用注射器将37℃的生理盐水缓缓注 入肠管，洗净肠管内容物。 注意： ➢ 先将肠管捋顺，确保无死结； ➢ 推注时不要太快，以免涨破肠管； ➢ 充分洗净后送入空气使洗涤液尽量流尽。
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四、实验内容
5．操作注意 (1)在大鼠麻醉前应做好一切准备工作。如手术器械、 水浴温度的调节，试药配制并放在近处，蠕动泵流 速调节等。如果蠕动泵上并未标出流速，可用量筒 接流出液（蒸馏水）的方式确定流速。 (2) 小肠很细，小肠两端插上玻璃管后再洗涤非常 容易堵塞，应先将十二指肠端插上玻璃管，回肠端 找好后先用线扎紧，然后在扎线处切个小口。生理 盐水(37℃)从十二指肠端插管处注入，洗涤内容物 至净，再在回肠端切口处插上玻璃管。
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二、仪器、试剂和动物
（二） 试剂 磺胺嘧啶原料药、酚红、1%NaNO2溶液、0.5%氨 基磺酸铵溶液、0.1%二盐酸萘基乙二胺溶液、 1mol/L盐酸、0.2mol/L氢氧化钠、生理盐水、 Krebs-Ringer试剂（pH7.4）、25%乌拉坦等。 （三）动物 大鼠，约200g，实验前禁食一夜（自由饮水）
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四、实验内容
3．循环实验的操作 (1)蠕动泵流速的调节：选择所需工作方向，按动快、 慢档开关，调节流速为5mL/min和2.5mL／min。 (2)恒温水浴调节：水浴温度调节为（37±0.5）℃。 (3)供试液的准备：取80mL供试液加入循环装置的 烧瓶中，见下图，将烧瓶置恒温水浴中预热至 （37±0.5）℃。 (4)生理盐水的准备：取生理盐水适量，预热至37℃ 备用。
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四、实验内容
(5)大鼠麻醉：取实验前禁食一夜、体重约为200g的 雄性大鼠一只，按1.2g／kg体重腹腔注射乌拉坦 （约0.8mL）麻醉，并固定于固定台上。
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四、实验内容
(6)小肠两端插管：沿大鼠腹部中线打开腹腔(约 3cm)，在十二指肠上部和回肠下部各切一小口， 插入直径约0.3cm的玻璃管，并用线扎紧。
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四、实验内容
4．含量测定
（1）SD的标准曲线：取供试液2、4、6、8、10mL
分别置l0mL容量瓶中，加蒸馏水定容。
各取1mL
+1mol/L HCl 5mL 摇匀
+0.1％NaNO21mL 摇匀
放置3min
+0.5％氨基磺酸铵1mL 摇匀
1.分别写出SD和酚红的标准曲线回归方程和相关系 数。 2.SD和酚红样品浓度的计算 根据SD和酚红的标准 曲线方程，分别计算出SD和酚红样品的浓度，并 填于下表中。 3.不同时间SD剩余量的计算 按下表中公式计算出 不同时间的剩余药量，并求剩余药量的对数值。 4.ka和t1/2（a）的计算 以剩余药量的对数对相应的时 间作图，可得一条直线，由直线的斜率求出ka，并 计算 t1/2（a） 。
空白液：0.2mol/L NaOH
长沙医学院—— 药学系——药剂教研室——生物药剂学与药物动力学