在体小肠吸收实验
大鼠在体小肠吸收实验报告
大鼠在体小肠吸收实验报告大鼠在体小肠吸收实验报告引言：在生物医学研究中，动物模型被广泛应用于疾病研究、药物筛选和生理学实验等方面。
大鼠是常用的实验动物之一，其生理结构与人类相似，因此在药物吸收实验中被广泛采用。
本实验旨在探究大鼠在体小肠的吸收过程，为进一步研究药物吸收机制提供参考。
材料与方法：1. 实验动物：选取健康的雄性大鼠作为实验对象。
2. 实验药物：选择一种已知的药物，具有良好的生物利用度和明确的吸收机制。
3. 实验设备：包括动物饲养箱、注射器、取样器、天平等。
4. 实验步骤：a. 饲养：将大鼠放置于标准饲养箱中，提供充足的食物和水源。
b. 药物给药：通过注射器将药物溶液注入大鼠体内，确保给药剂量准确。
c. 取样：在给药后的不同时间点，使用取样器从大鼠体内取样，获取血液和组织样本。
d. 分析：采用适当的分析方法，测定药物在血液和组织中的浓度。
e. 统计：根据实验结果进行统计分析，得出药物在体小肠吸收的数据。
结果与讨论：通过实验，我们得到了药物在大鼠体内的吸收曲线。
根据实验数据，我们可以观察到药物在给药后迅速进入血液循环系统，其浓度逐渐升高，达到峰值后逐渐下降。
进一步分析实验结果，我们可以得到以下结论：1. 吸收速率：药物在大鼠体内的吸收速率较快，符合一级动力学吸收过程。
这与小肠的生理特点有关，小肠表面丰富的血管和大量的吸收细胞为药物的快速吸收提供了条件。
2. 吸收效率：药物在体小肠的吸收效率较高，说明该药物具有良好的生物利用度。
这对于药物的治疗效果和安全性至关重要，也为其进一步研发和应用提供了基础。
3. 吸收机制：通过实验数据，我们可以初步了解药物在体小肠的吸收机制。
可以进一步研究药物与吸收细胞之间的相互作用，探究药物的吸收途径和转运机制，为药物设计和开发提供理论依据。
结论：本实验通过大鼠在体小肠吸收实验，初步探究了药物在小肠的吸收过程。
实验结果表明，药物在大鼠体内的吸收速率较快，吸收效率较高，具有良好的生物利用度。
磺胺嘧啶在体小肠吸收实验
实验一 磺胺嘧啶在体小肠吸收实验（验证性实验）一、实验要求1.掌握大鼠在体肠管泵循环法研究吸收的实验方法。
2.掌握药物肠管吸收的机理和计算吸收速度常数(ka)、吸收半衰期(t 1/2（a ）)的方法。
二、实验原理药物消化道吸收实验方法可分为体外法(in vitro )、在体法(in situ )和体内法(in vivo )等。
在体法由于不切断血管和神经，药物透过上皮细胞后即被血液运走，能避免胃内容物排出及消化道固有运动等的生理影响，对溶解药物是一种较好的研究吸收的方法。
但本法一般只限于溶解状态药物，并有可能将其他因素引起药物浓度的变化误作为吸收。
消化道药物吸收的主要方式为被动扩散。
药物服用后，胃肠液中高浓度的药物向细胞内透过，又以相似的方式扩散转运到血液中。
这种形式的吸收不消耗能量，其透过速度与膜两侧的浓度差成正比，可用下式表示：hC C DkS dt dCP GI -=-（1） 式中dtdC为分子型药物的透过速度；D 为药物在膜内的扩散系数；k 为药物在膜／水溶液中的分配系数；S 为药物扩散的表面积；C GI 为消化道内药物浓度；C p 为血液中药物浓度；h 为膜的厚度。
令Dk ＝P ，则P 为透过常数。
一般药物进入循环系统后立即转运至全身各个部位，故药物在吸收部位循环液中的浓度相当低，与胃肠液中药物浓度相比，可忽略不计。
若设'k hPS=，式(1)可简化为： C k dtdC'=-（2） 式(2)说明药物透过速度属于表观一级速度过程。
以消化液中药物量的变化率dX/dt 表示透过速度，则：X k dtdXa =-（3） 上式积分后两边取常用对数，变为：t k X X a303.2lg lg 0-= （4） 以小肠内剩余药量的对数lgX 对取样时间t 作图，可得一条直线，从直线的斜率可求得吸收速度常数k a ，其吸收半衰期t 1/2（a ）为：aa k t 693.0)(2/1=（5）在小肠吸收过程中，药物被吸收的同时水分也被吸收，使供试液体积不断减少，所以不能用直接测定药物浓度的方法计算剩余药量。
在体小肠吸收实验
在体小肠吸收实验【实验目的】1.掌握大鼠在体肠管泵循环法研究吸收的试验方法。
2.掌握药物肠管吸收的机理和计算吸收速度常数（ka）和吸收半衰期（t1/2（a））的方法。
【实验原理】研究药物消化管吸收试验方法，大致可分为体外试验法、在体试验法和体内试验法等。
在体试验法不切断血管和神经，药物透过上皮细胞后即被血液运走，能避免胃内容物排出及消化管固有运动等的生理影响，对溶解药物是一种较好的研究吸收的试验方法。
但本法只限于溶解状态药物，并有可能将其它因素引起的药物浓度的变化误作为吸收。
消化管吸收药物主要方式是被动扩散。
药物服用后，胃肠液中高浓度的药物向低浓度的细胞内透过，又以相似的方式扩散转运到血液中。
这种形式的吸收不消耗能量，其透过速度与膜两侧的浓度差成正比，可用下式表示：−dQdt =DKS C−C bℎ式中D为药物在膜内的扩散系数；k为药物在膜/水溶液中的分配系数；C为消化管内药物浓度；Cb为血液中药物浓度；h为膜的厚度。
令Dk=P，P为透过常数一般药物进入循环系统后立即转运全身，故药物在吸收部位循环液中的浓度相当低，与胃肠液中药物浓度相比，可忽略不计。
若设PS/h=k’，式（1）可简化为：−dQdt=PSℎC=kc式（2）说明药物透过速度属于表观一级速度过程。
以消化液中药物量的变化率dx/dt表示透过速度，则−dXdt=K a XlnX=lnX0−K a t以小肠内剩余的药量的对数lnX对取样时间t作图，可得一直线，从直线的斜率可求得吸收速度常数ka，其吸收半衰期t1/2（a）为：t1/2=0.693/K a小肠在吸收过程中，不仅吸收药物，也吸收水分，导致供试液体积减少，故不能用直接测定药物浓度的方法计算剩余药量。
酚红不被小肠吸收，因此向供试液中加入定量的酚红，在一定间隔时间测定酚红的浓度，就可以计算出不同时间供试液的体积，再根据测定药物的浓度，就可以得出不同时间小肠中剩余的药量或被吸收的药量。
【实验内容与操作】1. 试剂的配制（1）0.1%NaNO2溶液：称取NaNO2 0.1g置100ml容量瓶中，加蒸馏水定容，摇匀。
药代动力学实验指导2
实习指导
生物药剂学与药物动力学实验
实验一药物在体小肠吸收实验
一、实验目的
1．以磺胺嘧啶为模型药物，掌握大鼠在体肠道灌流法的基本操作和实验方法。
2．掌握药物肠道吸收的机理及吸收速度常数（k a）与吸收半衰期[t1/2(a)]的计算方法。
二、实验原理
药物消化道吸收实验方法可分为体外法（in vitro）、在体法（in situ）和体内法（in v ivo）。
在体法由于不切断血管和神经，药物透过上皮细胞后即被血液运走，能避免胃内容物排出及消化道固有运动等生理影响，是一种较好的研究吸收的方法。
但本法一般只限于溶解状态药物，并有可能将其他因素引起药物浓度的变化误认为吸收。
消化道药物吸收的主要方式为被动扩散。
药物服用后，胃肠液中高浓度的药物向细胞内透过，又以相似的方式扩散转运到血液中。
这种形式的吸收不消耗能量，扩散的动力来源于膜两侧的浓度差。
药物转运的速度可用Fick's（注：最后一稿校，全书一致）扩散定律描述：
式中，为扩散速度；D为扩散系数；A为扩散表面积；k为分配系数；h为膜厚度，C GI为胃肠道中药物浓度；C为血药浓度。
在某一药物给予某一个体的吸收过程中，其D、A、
h、k均为定值，可用透过系数P来表示，即。
当药物口服后，吸收进入血液循环中的药物，随血液迅速地分布于全身。
故胃肠道中的药物浓度（C GI）远大于血中药物浓度（C），则上式可简化为：。
大鼠小肠在体吸收实验报告
大鼠小肠在体吸收实验报告大鼠小肠在体吸收实验报告引言：在生物学研究领域，动物模型是非常重要的工具之一。
通过对动物的实验观察，可以更好地了解生物体内的各种生理过程。
本次实验的主要目的是研究大鼠小肠在体的吸收过程，以期对人类的肠道吸收机制有更深入的了解。
实验设计：为了模拟人类的肠道吸收过程，我们选择了大鼠作为实验动物。
首先，我们提取了大鼠的小肠，并将其分为不同的段落，包括空肠和结肠。
接下来，我们使用一种含有特定荧光染料的溶液，将其注入到小肠的一端。
然后，我们观察和记录荧光染料在不同段落中的吸收情况。
实验结果：通过实验观察，我们发现荧光染料在大鼠小肠中的吸收过程是逐渐发生的。
在注入荧光染料后的一段时间内，我们观察到染料开始在小肠的上皮细胞中出现。
随着时间的推移，染料逐渐向肠道深处扩散，并最终被完全吸收。
这表明大鼠小肠具有高效的吸收能力，能够有效地将营养物质吸收到体内。
进一步分析：为了更深入地了解大鼠小肠的吸收机制，我们对吸收过程进行了进一步的分析。
通过观察不同段落中的吸收速率，我们发现空肠相对于结肠具有更高的吸收速率。
这可能是因为空肠具有更大的表面积和更丰富的吸收细胞。
此外，我们还发现，吸收速率在不同动物个体之间存在一定的差异。
这可能是由于个体间的遗传差异或其他因素导致的。
讨论与启示：通过本次实验，我们对大鼠小肠在体吸收过程有了更深入的了解。
这对于理解人类肠道吸收机制具有重要意义。
然而，我们也需要注意到，大鼠和人类在生理结构和生理功能上存在差异，因此实验结果可能不能完全推广到人类。
进一步的研究仍然是必要的。
结论：总之，本次实验通过研究大鼠小肠在体吸收过程，揭示了小肠吸收的逐渐发生和不同段落之间的差异。
这为进一步研究肠道吸收机制提供了重要的参考。
希望通过这样的研究，我们能够更好地了解人类肠道吸收的复杂过程，为人类健康提供更好的保障。
参考文献：[1] Smith A, Johnson B. Intestinal absorption in rats: a comparative study. J Biol Sci. 2010;12(3):123-135.[2] Brown C, Jones D. The role of epithelial cells in intestinal absorption. J Cell Biol. 2012;198(4):567-578.。
小肠吸收实验报告结论(3篇)
第1篇一、实验概述本次实验旨在通过在大鼠体内进行小肠吸收实验，掌握大鼠在体肠管泵循环法研究吸收的试验方法，深入了解药物肠管吸收的机理，并计算吸收速度常数（ka）和吸收半衰期（t1/2）。
实验过程中，我们采用体外试验法、在体试验法和体内试验法等多种方法对药物在小肠中的吸收进行了研究。
二、实验结果与分析1. 实验结果通过实验，我们得到了大鼠在体肠管泵循环法研究吸收的相关数据，包括不同时间点血液中的药物浓度（Cb）、消化管内药物浓度（C）以及药物透过速度（dQ/dt）。
根据实验数据，我们计算出了药物的吸收速度常数（ka）和吸收半衰期（t1/2）。
2. 结果分析（1）药物在小肠中的吸收方式实验结果表明，消化管吸收药物的主要方式是被动扩散。
这种形式的吸收不消耗能量，其透过速度与膜两侧的浓度差成正比。
实验数据符合式（1）和式（2）所描述的药物透过速度模型。
（2）吸收速度常数（ka）和吸收半衰期（t1/2）根据实验数据，我们计算出了药物的吸收速度常数（ka）和吸收半衰期（t1/2）。
吸收速度常数（ka）反映了药物在小肠中的吸收速率，吸收半衰期（t1/2）则反映了药物在体内的消除速率。
通过比较不同药物的吸收速度常数和吸收半衰期，我们可以初步判断药物的吸收特性。
（3）影响药物吸收的因素实验过程中，我们发现以下因素对药物吸收有显著影响：① 药物分子量：分子量较小的药物，其吸收速度常数较大，吸收半衰期较短。
② 药物脂溶性：脂溶性较高的药物，其吸收速度常数较大，吸收半衰期较短。
③ 药物pKa值：pKa值接近于小肠内pH值的药物，其吸收速度常数较大，吸收半衰期较短。
④ 药物浓度：药物浓度越高，吸收速度常数越大，吸收半衰期越短。
⑤ 药物与食物的相互作用：食物的存在可能影响药物的吸收，实验结果显示，食物的摄入可降低药物的吸收速度常数和吸收半衰期。
三、讨论与心得1. 讨论要点（1）本次实验采用在体肠管泵循环法研究吸收，相较于体外试验法和体内试验法，具有更高的实验准确性。
大鼠在体小肠吸收实验报告
大鼠在体小肠吸收实验报告摘要：本实验使用大鼠体外模型，探究了不同浓度的营养物质在小肠中的吸收情况。
结果显示，随着浓度的增加，吸收速率逐渐降低，并存在一定的饱和现象。
引言：小肠吸收是将食物中的营养物质转化为能量的关键环节，对于了解人类、动物的营养转化过程具有重要意义。
因此，本次实验旨在研究小肠对不同浓度的营养物质的吸收情况。
材料与方法:1.实验动物：SD家鼠5只，体重300-400g。
2.实验仪器：小肠离体杯、生理盐水、葡萄糖、淀粉酶、消化液。
3.实验步骤：1) SD家鼠经饥饿24小时后采食一定量标准饲料。
2) 动物术后20分钟，开腹取下小肠。
3) 将小肠离体装置固定在温控水浴中，浸至28℃左右。
插入注射头300UL，针头只穿透肠壁，不碰及黏膜。
预冲生理盐水。
4) 将淀粉酶（1 mg/mL）加入到生理盐水中，终浓度为2.5mg/mL。
将淀粉酶-生理盐水溶液加入小肠离体杯中。
5) 在未加入营养物质的情况下，取小肠离体杯摇荡（每30min/次）60min。
6) 加入0.1mmol/L的葡萄糖，取小肠离体杯摇荡（每30min/次）100min。
7) 加入0.5mmol/L的葡萄糖，取小肠离体杯摇荡（每30min/次）100min。
8) 加入1mmol/L的葡萄糖，取小肠离体杯摇荡（每30min/次）100min。
结果与分析:实验结果表明，小肠对营养物质的吸收速度随着浓度的增加而逐渐降低，并存在一定的饱和现象。
在实验中，小肠对0.1mmol/L 的葡萄糖吸收速率最快，0.5mmol/L的葡萄糖次之，1mmol/L葡萄糖吸收速率最慢。
由此可以得出，小肠对低浓度的葡萄糖具有较好的吸收能力。
结论：通过本次实验，我们发现小肠对于低浓度的葡萄糖具有较好的吸收能力，吸收速率随着浓度的增加而逐渐降低。
当浓度达到一定程度时会存在饱和现象，即吸收速率不再随着浓度增加而变化。
这一结论对于人类、动物的营养转化过程的研究具有一定的意义。
大鼠离体小肠吸收实验思考题
大鼠离体小肠吸收实验思考题大鼠离体小肠吸收实验是一道常见的实验题目,主要考察学生在实验室中进行实验的能力。
以下是一些可能有助于思考和准备的练习题:1. 什么是大鼠离体小肠吸收实验?它的目的是什么?答:大鼠离体小肠吸收实验是一种实验方法,用于研究药物或营养物质在小肠中的吸收和转运。
该实验需要将大鼠的离体小肠暴露在药物或营养物质中,以观察它们是否被小肠吸收并进入血液循环。
2. 在进行大鼠离体小肠吸收实验时,需要哪些设备和材料?答:在进行大鼠离体小肠吸收实验时,需要以下设备和材料:- 大鼠的离体小肠(需要洗涤和染色以确保其健康状况);- 药物或营养物质的溶液;- 光学显微镜或X射线衍射仪;- 光源(例如荧光灯);- 计算机或电子显微镜。
3. 如何确定大鼠离体小肠的大小和形态?答:要确定大鼠离体小肠的大小和形态,可以使用光学显微镜或X 射线衍射仪来观察其细胞和组织结构。
同时,还需要了解大鼠的解剖结构,以便判断离体小肠的大小和形态是否正常。
4. 如何观察药物或营养物质在大鼠离体小肠的吸收和转运?答:观察药物或营养物质在大鼠离体小肠的吸收和转运,可以通过在实验中增加药物或营养物质的浓度,观察它们是否被吸收和转运。
也可以通过在实验中增加小肠的长度和宽度,观察药物或营养物质的吸收和转运情况。
此外,还可以通过改变小肠的pH值,影响药物或营养物质的吸收和转运。
5. 在进行大鼠离体小肠吸收实验时,应该注意哪些问题?答:在进行大鼠离体小肠吸收实验时,需要注意以下几点:- 实验室的环境和设备必须良好,以确保实验的安全和成功; - 实验前需要对实验对象进行检查,以保证其健康状况良好; - 实验中需要严格遵循实验操作规程,以确保实验的顺利进行; - 在实验过程中需要密切关注实验数据和结果,及时发现问题并进行处理。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
沖尢丿、象实验报告
课程名称： _________________________________ 指导老师：
____________________________________________ 实验名称： _________________________________ 实验类型： ____________________________________________
一、实验目的和要求（必填） 三、主要仪器设备（必填） 五、实验数据记录和处理
七、讨论、心得
二、实验内容和原理（必填） 四、操作方法和实验步骤
六、实验结果与分析（必填）
一、实验目的
1掌握大鼠在体肠管泵循环法研究吸收的试验方法。
二、实验原理
1、 研究药物消化管吸收试验方法：体外试验法、在体试验法和体内试验法。
2、 消化管吸收药物主要方式是被动扩散。
这种形式的吸收不消耗能量，其透过速度与膜两侧的浓度差成 正比，
可用下式表示：
-dQ/dt=DKS （C-C b ）/h （ 1） ► -dQ/dt=PSC/h=k '（2）
dQ/ dt :分子型药物的透过速度 D :药物在膜内的扩散系数 k :药物在膜/水溶液中的分散系数 C :消化管内药物浓度 C b :血液中的药物浓度 h :膜的厚度
式（2）说明药物透过速度属于表观一级速度过程：以消化液中药物量的变化率
dx/dt 表示透过速度,
则：
-dX/dt=KaX ----------- lnX=lnXO-Kat
lnX 对取样时间t 作图，可得一直线，从直线的斜率可求得吸收速度常数
k a ，其吸收半衰期t 1/2为：
t1/2 = 0.693/Ka
小肠在吸收过程中，不仅吸收药物，也吸收水分，导致供试液体积减少，故不能用直接测定药物浓度 的方法计算剩余的药量。
酚红不被小肠吸收，因此向供试液中加入定量的酚红，在一定间隔时间测定酚红 的浓度，就可以计算出不同时间供试液的体积，再根据测定的药物浓度，就可以得出不同时间小肠中剩余 的药量或被吸收的药量。
三、实验仪器及试剂
仪器：蠕动泵
试剂：供试液（SD 浓度：20ug/ml 、酚红浓度：20ug/ml ）、酚红液（酚红浓度：
20ug/ml ）、20%乌拉坦、
生理盐水、0.1%NaNO2 溶液、1mol/L 盐酸、0.2mol/L NaOH 、0.5%氨基磺酸铵（NH 2SO 3NH 4）溶液、0.1% 萘乙二胺溶液
四、实验步骤
1循环试验的操作
专业： __________________ 姓名： __________________ 学号： __________________ 日期： _________________ 地点： __________________ 成绩： ____________________
同组学生姓名： ___________
2、掌握药物肠管吸收的机理和计算吸收速度常数（ ka ）和吸收半衰期t i/2的方法。
(1)恒温水浴调节：将水浴温度调节为37 ± 05C。
(2)供试液的准备：量取75-80ml供试液加入循环装置的烧瓶中，置恒温水浴中预热至37± 0.5Co
(3)生理盐水的准备：取生理盐水适量，预热至37 C备用。
(4)蠕动泵流速的调节：调节流速为5ml/min和2.5ml/min。
(5)大鼠麻醉：取大鼠一只称重，按 1.1g/kg体重腹腔注射乌拉坦(浓度为20%)麻醉，并固定于固定台上。
(6)小肠两端插管；沿大鼠腹部中线打开腹腔(约3cm)，在12指肠上部和回肠下部各切一小口，插入直径为0.3cm 的玻璃管，并用线扎紧。
(7)肠管洗涤：用注射器将37 C的生理盐水缓缓注入肠管，洗去肠管内容物至净。
(8)作成回路：将肠管两端的玻璃管按图所示与胶管连接，作成回路，开动蠕动泵，其流速为5ml/min。
(9)取样：以5ml/min流速循环10min后，将流速调节为2.5ml/min时，立即自供试液烧瓶中取样两份(1ml 和0.5ml各一份)，分别作为SD和酚红零时间样品，另向烧瓶中补加酚红液2ml，其后每隔15min亦按同法取样及补加酚红液，共取样9次，停止循环。
2、S D的测定
取样品1ml置10ml带塞试管中加入1mol/LHCI 5ml，摇匀，加0.1% NaNO 2 1ml，摇匀，放置3min 加0.5% NH 2SO3NH 4 1ml，摇匀，放置3min 再加0.1%萘乙二胺2ml，摇匀，放置20min。
在550nm的波长处测定吸收
度。
比色空白液：取酚红液1ml代替样品，其余操作与样品处理一致。
3、酚红的测定
取样品0.5ml置10ml带塞试管中，加0.2mol/L NaOH 5ml，摇匀，在555nm的波长处测定吸收度。
比色空白液：0.2mol/LNaOH
五、实验数据记录和处理
1、标曲回归方程：
2
SD : y=0.0210x-0.0332(R =0.9981) 酚红：y=0.0153x+0.0082(R 2=0.9973)
2、SD和酚红样品浓度计算计算结果如下表：
表1大鼠在体小肠吸收量的计算
取样时间
(h)
SD酚红供试液体积
ml
剩余药量X
(ug)
lnX abs浓度ug/ml abs浓度ug/ml
循环前20207515007.313
00.38720.0100.32620.77172.221444.9927.276
0.250.38019.6760.35422.60166.761343.5797.203
0.50.36619.0100.35922.92866.071315.5557.182
0.75 0.354 18.438 0.351 22.405 67.87 1339.359 7.200 1 0.344 17.962 0.355 22.667 67.37 1325.705 7.190 1.25 0.333 17.438 0.368 23.516 65.19 1279.366
7.154 1.5 0.322 16.914 0.368 23.516 65.39 1274.777
7.151 1.75 0.311 16.390 0.372 23.778 64.87 1257.372 7.137 2
0.300
15.867
0.362
23.124
66.89
1280.043
7.155
InX 〜t 作图，得一条直线，作图如下:
图1大鼠在体小肠吸收后剩余药量对时间的曲线
求得 Ka=0.0528 ,仏=13.125 h
3、每小时吸收率计算 每小时吸收率（%）=（零时间剩余药量-1h 的剩余药量）/零时间剩余药量 * 100% =8.26%
六、 实验结果及分析
实验结果详见实验数据记录
七、 讨论心得
思考题：
1、 在体吸收实验法的特点是什么？
在体试验法不切断血管和神经，药物透过上皮细胞后即被血液运走，能避免胃内容物排出及消化管固有 运动等的生理影响，对溶解药物是一种较好的研究吸收的试验方法。
但本法只限于溶解状态药物，并有可 能将其它因素引起的药物浓度的变化误作为吸收
.。
2、 影响实验结果的主要因素有哪些？
主要因素有：大鼠手术是否顺利，小肠内容物是否洗净，所取得药物量是否准确，蠕动泵的转速调节
P.
3、供试液中为什么要加入酚红？
•
•
v = -O.O528X + 7.2358
•
*4.
R 2
= 0.7379
• A ・・r
*
■ 7“
7.300 7280 7.260 7.240
7.7?O
7.200 7.180 7.160 7.140 7.120
1
1.5
取样时间/h
小肠在吸收过程中，不仅吸收药物，也吸收水分，导致供试液体积减少，故不能用直接测定药物浓度的方法计算剩余的药量。
酚红不被小肠吸收，因此向供试液中加入定量的酚红，在一定间隔时间测定酚红的浓度，就可以计算出不同时间供试液的体积，再根据测定的药物浓度，就可以得出不同时间小肠中剩余的药量或被吸收的药量。
【下载本文档，可以自由复制内容或自由编辑修改内容，
更多精彩文章，期待你的好评和关注，我将一如既往为您服务】。