实验19急性右心衰竭病理模型制备
急性右心衰实验
实验局限性及未来展望
• 实验使用了小规模动物模型，尚未进行临床试验。 • 实验结果可能受其他因素影响，需要进一步验证。 • 未来，我们希望进行更大规模的研究，将实验结果应用到临床实践中。
感谢致辞
感谢大家的关注和支持。我们将继续努力，为改善急性右心衰患者的生活质 量做出更大的贡献。
急性右心衰实验
欢迎来到本次急性右心衰实验的演示。通过深入研究，我们旨在探索新的治 疗方式以改善急性右心衰患者的生活质量。
实验目的
发现新的治疗方法
通过实验，我们希望发现针对急性右心衰的新的治疗方法，以提高患者的生存率和生活质量。
确定有效的药物
我们的目标是确定针对急性右心衰最有效的药物，以便医生可以更好地为患者进行个体化的 治疗。
实验结果
1 药物A显著改善症状
通过实验，我们发现药物A对急性右心衰具有显著的疗效，能够缓解患者的症状并改善心 功能。
2 药物B无明显改善作用
相比之下，药物B在急性右心衰的治疗方面表现不佳，对症状和心功能的改善效果有限。
3 药物C潜在治疗效果
药物C在实验中显示出潜在的治疗效果，但仍需进一步研究以确定其安全性和疗效。
实验分析
药物A 药物B 药物C
显著改善，安全性高 效果一般，需副作用监测 潜在效果，需进一步验证
通过对实验结果的分析，我们可以得出药物A对急性右心衰的治疗效果最佳，药物B效果一般，而药物C存在一 定的潜在治疗效果。
实验结论
综上所述，我们的实验结果表明药物A具有显著的治疗效果，对急性右我们也需要注意实验局限性，并进一步研究和验证这些药物的安全性和长期疗效。
了解疾病机制
通过实验，我们希望深入了解急性右心衰的疾病机制，以便开发更精确的诊断方法和治疗方 案。
急性右心衰(梁俊晖)
1.静脉插管须小心谨慎，避免损伤血管。如插管途中不是很顺利， 不能硬插，可以将插管轻微旋转或将插管适当后退，否则易将血 管壁插破，影响输液及CVP的测定。
注意事项（Notes）
2.液体石蜡加温的目的是为了降低石蜡的粘滞性，使其注入血液 后能形成细小栓子。注射液体石蜡后应尽量加快输液速度。 3.本实验的关键是注射栓塞剂。在注射时要密切注意血压的变 化。当出现血压明显降低时，应暂停注入，观察5min。若血压 逐渐恢复到对照水平，可再缓慢注入少量液体石蜡。通常，液 体石蜡的用量不超过0.5mL/kg，注射速度以0.1mL/min为宜。
实验方法（methods）
1.动物手术：麻醉、仰卧固定家兔。行气管、颈总动脉、颈外静 脉插管术，气管插管用于描记呼吸，动脉插管用于描记动脉血压， 静脉插管用于测量CVP。耳缘静脉留臵针头以注射肝素以全身肝 素化、注射液体石蜡和输液。 2.安装实验装臵：连接生物信号采集与处理系统。
3.进行实验：启动软件，选取相应的实验项目。 4.观察项目 ⑴监测正常血压、心率、呼吸，CVP，用听诊器听心音强度、肺 部呼吸音等。 ⑵自耳缘静脉缓慢注入加温至37℃的液体石蜡（0.5mL/kg）， 约2～3min后观察上述指标有何变化。
急性右心衰
韶关学jective）
理论
掌握： 1.心力衰竭时机体、血流动力学的变化。
2.心力衰竭的发生机制。
操作
掌握： 1.中心静脉压的测定。 2.动物尸体解剖的一般观察方法。
实验原理（principle）
心力衰竭是由于心肌收缩和（或）舒张功能障碍， 导致心输出量降低，不能满足机体组织代谢需要的一种 病理过程或综合征，又称为泵衰竭。 心力衰竭的常见病因包括：①压力或容量负荷过度； ②原发性心肌收缩、舒张功能障碍（心肌炎、心肌梗死 等心肌病变；心肌缺血缺氧如冠心病、严重贫血；维生 素B1严重缺乏等导致心肌能量代谢障碍等） 本实验通过耳缘静脉注射栓塞剂（液体石蜡）造成 急性肺小血管栓塞，引起右心压力负荷过重；通过大量 输液引起右心容量负荷增加。由于右心前、后负荷过度 增加，造成右室收缩和舒张功能降低，从而导致急性右 心衰竭。
病理生理实验：急性右心衰
2. 静脉回流↓，静脉淤血→静脉压↑→CVP↑
3. 体循环淤血水肿：肝淤血，肝－颈静脉回流征⊕
4. 液体石蜡造成肺栓塞→死腔样通气 肺水肿，肺出血→功能性分流
PaO2↓→R↑
5. 心脏扩大：心肌肌源性扩张
【实验目的】：
1. 复制急性右心衰竭的动物模型。 2. 观察实验性右心衰竭时的机能变化。 【实验动物】：
【实验中注意事项】：
1. 颈外V插管，插管应为钝形。 2. 三通活塞的应用：插管时要排气泡！！
注射器
中心静脉压
三不通
静脉推注
测肝颈颈脉回流征
3. 推注液体石蜡要慢。有血压改变时应停止等血压
恢复后再推。
【提问】：
1. 用什么方法复制急性右心衰竭？
2. 心脏代偿分为急性、慢性。本实验中只能见到什么
代偿？为什么？
实验原理：
耳缘静脉缓慢注射液体石蜡→肺栓塞，右心后负荷↑ 颈外静脉输入大量NS→右室前负荷↑
急性右心衰竭
当心脏负荷过重时，心脏出现急性代偿：HR↑，紧张源性扩张 （在注射液体石蜡，NS 50ml时）
当前负荷继续增加时：心脏进入失代偿发生急性右心衰竭
1. 右心输出量↓→进入左心血量↓左心输出量↓→BP↓
3.1%肝素1ml/kg肝素化
4. 颈总A — 血压换能器、测BP 颈外V — 三通活塞（插管插入上腔V与右心房交 界处约3-4cm）测CVP；肝一颈静脉回流征。
5. 观察正常指标：R、BP、HR、CVP ，肝颈V回流征。
6. 耳缘V缓慢推注预热38℃液体石蜡1ml，10分钟推 完；5分钟后观察各项指标的变化。
7.在三通活塞处推注N.S 50ml，速度5ml/kg.min， 观察指标变化，再推50ml，100ml，150ml直 到动物死亡。
急性右心衰竭_实验报告
一、实验目的1. 复制动物急性右心衰竭模型，观察右心衰竭时心功能的变化。
2. 探讨急性右心衰竭的病理生理机制。
3. 分析急性右心衰竭的治疗方法及疗效。
二、实验原理急性右心衰竭是指右心室收缩或舒张功能障碍，导致心输出量不足，引起体循环淤血和脏器灌注不足的一系列临床综合征。
本实验通过快速增加右心室的前、后负荷，复制急性右心衰竭模型，观察心功能变化，分析其病理生理机制，并探讨治疗方法及疗效。
三、实验材料1. 实验动物：家兔（体重2-3kg）6只。
2. 实验仪器：电子血压计、心电监护仪、血气分析仪、超声心动图仪、手术器械、注射器、生理盐水、液体石蜡、呋塞米、毒毛花甙K、卡托普利、肼屈嗪等。
3. 实验药品：中分子右旋糖苷、呋塞米、毒毛花甙K、卡托普利、肼屈嗪等。
四、实验方法1. 实验分组：将6只家兔随机分为实验组和对照组，每组3只。
2. 模型复制：实验组通过快速输注中分子右旋糖苷（右旋70）增加右心室前负荷，缓慢静脉注射液体石蜡形成肺小动脉栓塞，增加右心室后负荷，复制急性右心衰竭模型。
3. 指标观察：在模型复制前后，观察两组动物的心率、血压、心电图、血气分析、超声心动图等指标。
4. 治疗干预：实验组给予呋塞米、毒毛花甙K、卡托普利、肼屈嗪等药物治疗，观察治疗效果。
五、实验结果1. 心率、血压：实验组动物在模型复制后心率明显加快，血压下降；治疗后，心率、血压逐渐恢复正常。
2. 心电图：实验组动物在模型复制后出现ST-T改变，治疗后逐渐恢复正常。
3. 血气分析：实验组动物在模型复制后动脉血氧分压（PaO2）降低，二氧化碳分压（PaCO2）升高；治疗后，PaO2逐渐升高，PaCO2逐渐降低。
4. 超声心动图：实验组动物在模型复制后右心室射血分数（RVEF）降低，右心室舒张末期直径（RVEDD）增大；治疗后，RVEF逐渐升高，RVEDD逐渐减小。
六、实验讨论1. 急性右心衰竭的病理生理机制：本实验通过快速增加右心室的前、后负荷，复制急性右心衰竭模型，观察到动物出现心率加快、血压下降、心电图ST-T改变、血气分析PaO2降低、PaCO2升高、超声心动图RVEF降低、RVEDD增大等表现，与临床急性右心衰竭的病理生理变化相符。
急性右心衰竭 实验报告
急性右心衰竭实验报告急性右心衰竭实验报告摘要：急性右心衰竭是一种严重的心血管疾病，其发病机制尚不完全清楚。
本实验旨在探究不同因素对急性右心衰竭的影响，并分析其可能的发病机制。
通过动物实验，我们观察了心肌缺血、心肌梗死、肺动脉高压等因素对急性右心衰竭的影响，并研究了相关的生理指标变化。
实验结果表明，心肌缺血和心肌梗死是急性右心衰竭的重要诱因，而肺动脉高压则是其常见的合并症。
这些发现有助于进一步理解急性右心衰竭的发病机制，为临床诊断和治疗提供了重要的参考依据。
引言：急性右心衰竭是一种心血管疾病，其临床表现为心脏右侧泵功能不全，导致肺循环淤血和体循环低灌注。
尽管对急性右心衰竭的研究已经取得了一定的进展，但其发病机制尚不完全清楚。
因此，本实验旨在通过动物实验，探究不同因素对急性右心衰竭的影响，并分析其可能的发病机制，以期为该疾病的临床诊断和治疗提供科学依据。
方法：本实验选取实验动物（大鼠）进行研究，将其分为对照组和实验组。
对照组不进行任何处理，实验组则分别进行心肌缺血、心肌梗死和肺动脉高压的诱导。
通过监测动物的心功能指标、肺循环指标以及血液生化指标的变化，来评估急性右心衰竭的发生程度和可能的发病机制。
结果：实验结果显示，在心肌缺血和心肌梗死诱导的实验组中，动物出现了明显的右心室功能减退，伴随着肺循环淤血和体循环低灌注的表现。
心肌缺血和心肌梗死导致了心肌细胞的坏死和纤维化，进而影响了心肌的收缩功能和泵血能力。
而在肺动脉高压诱导的实验组中，动物出现了右心室肥厚和扩张，以及肺循环高压的表现。
肺动脉高压导致了肺循环阻力的增加，进而使右心室承受更大的负荷，最终导致右心室功能减退。
讨论：通过本实验的结果可以看出，心肌缺血和心肌梗死是急性右心衰竭的重要诱因。
心肌缺血和心肌梗死导致心肌细胞的坏死和纤维化，进而影响了心肌的收缩功能和泵血能力。
这与临床上急性右心衰竭常见于冠心病等心肌缺血性疾病的观察结果相吻合。
另外，肺动脉高压也是急性右心衰竭的常见合并症。
简述如何制备急性右心衰动物模型
简述如何制备急性右心衰动物模型急性右心衰动（AcuteRightHeartFailure，ARHF）是一种心脏病，体现为右心室充血引起的右心室肥大和右心室功能障碍，这一病症主要由代谢性疾病、充血性心脏病、心内膜炎、心内膜病变、心脏及大血管外伤等原因导致。
以往对于ARHF的研究主要依赖于死亡或者病例研究，而实验性的ARHF动物模型的建立，则可以有效地实验性地研究ARHF的病因、发病机制以及治疗等方面。
建立实验性ARHF动物模型的方法有很多，主要包括外源性后跳动腔白血病形成的ARHF动物模型、内源性升压性ARHF动物模型、内源性减压性ARHF动物模型、早产ARHF动物模型、电失衡ARHF动物模型、肝性ARHF动物模型、限制心肌血流量ARHF动物模型、同时减压性和升压性ARHF动物模型等。
其中，外源性后跳动腔白血病形成的ARHF动物模型是目前最为广泛应用的实验性模型，通过外源性peptidogeic compound动物体内注射，可以介导小鼠的右心衰竭，从而建立相应的ARHF动物模型。
首先，选择8-12周的小鼠，将它们随机分为3组：空白组，对照组和ARHF组。
然后，将peptidogeic compound通过静脉给药的方式给给定三组小鼠，空白组接受空白治疗，对照组接受对照治疗，ARHF 组接受ARHF治疗。
经过24小时的治疗，可以得到ARHF动物模型。
之后需要进行定量的评价，以判断动物模型是否建立成功。
包括血气分析、超声图等。
血气分析可以显示动物之间的 PH，PaCO2 PaO2不同，以及乳酸和乳酸脱氢酶的变化状况；超声图则可以观察右室的肥大程度、血流动力学参数的变化等。
此外，心肌活检可以分析出动物模型中心室壁 thickening、肥厚度及心肌松弛度等指标，从而评估动物模型的成功程度。
最后，动物模型建立成功后，可以进行其他相关的研究和评价，如药物治疗效果评价、动态血液气体分析等。
总之，建立实验性ARHF 动物模型，可以有效地研究ARHF的病因、发病机制以及治疗效果，为有效治疗ARHF奠定基础。
急性右心衰竭
急性右心衰竭【目的和原理】由耳缘静脉缓慢注入栓塞剂，经静脉回流至肺脏，并栓塞在肺循环内，引起肺动脉高压，即右心室后负荷增加。
如再输入大量生理盐水，使回心血量大大增加，则在右心室后负荷增加的基础上，又增加了前负荷，右心负荷过重，导致急性右心衰竭，其症状越来越重，甚至出现腹水，直至动物死亡。
本实验要求掌握急性右心衰竭模型的制备方法。
观察复制过程中机体出现的表现，理解其发生机制。
【实验对象】兔，体重2.5kg以上。
【实验器材和药品】兔手术台、哺乳类手术器械一套、中心静脉压测定装置、呼吸描记装置、心室插管、听诊器、注射器（1ml、2 ml、5 ml、20 ml）、输液瓶、胶管、螺旋夹、二道生理记录仪与电刺激器（或计算机实时分析系统）。
20％乌拉坦、生理盐水、液体石蜡、25％尼可刹米、0.5％肝素生理盐水。
【实验步骤】1．实验装置的准备输液装置：排气。
二道生理记录仪参考参数：血压：灵敏度6～12 kPa /cm；走纸速度1mm/s，基线为零；呼吸：灵敏度2mV/cm，时间常数DC，滤波30Hz，直流，基线中线。
2．称兔体重，从耳缘静脉注入20％乌拉坦5ml/kg麻醉，仰卧位固定于兔手术床上。
3．剪去颈部兔毛，作正中切口，钝性分离颈部组织至气管，作左侧颈总动脉插管（连接血压换能器）与气管插管（连接呼吸换能装置）。
4．经右侧颈外静脉插入插管至右心房或右心房口（5～7cm左右），先使插管与输液瓶相通，缓慢输液，保持静脉插管通畅。
如用多导生理记录仪（或计算机实时分析系统）观察记录实验结果，可把右侧颈外静脉插管插入右心室（7～10cm左右），插管的同时开动多导生理记录仪描记右心室的压力曲线以观察是否已插入右心室，此兔从耳缘静脉处输液。
5．观察记录下述各项生理指标：心率、心音强度、肺部听诊（有无异常呼吸音）、动脉血压、中心静脉压*或右心室内压（包括收缩与舒张期压力）、循环时间**。
6．用2ml注射器吸取液体石蜡，按0.5ml/Kg由耳缘静脉缓慢注射，同时密切观察中心静脉压（或右心室内压）及血压的变化。
急性右心衰竭
急性右心衰竭【著者署名】【摘要】目的：学习家兔急性右心衰竭模型的制备方法。
观察急性右心衰竭过程中家兔血压、中心静脉压、呼吸的变化，了解变化的发生机制。
方法：由耳缘静脉缓慢注入栓塞剂，经静脉回流至肺脏，并栓塞在肺循环，引起动脉高压，即右心室后负荷增加。
观察记录注射前后家兔血压、呼吸发生的变化。
结果：相比于注射前，兔子呼吸加快加深，血压下降。
结论：家兔耳缘静脉注射液体石蜡造成急性肺小血管栓塞，右心后负荷增加，造成急性右心衰竭，导致呼吸加深加快，呼吸困难，血压下降。
【关键词】急性右心衰竭呼吸血压一、实验材料和方法1.1实验动物：家兔；1.2实验仪器：高灵敏度压力换能器、血压换能器、生物信号采集处理系统、呼吸换能器、注射微量注射泵、手术剪、持针器、烧杯、手术盘、流量头。
1.3实验药品：氨基甲酸乙酯、生理盐水、液体石蜡、肝素。
二、实验方法2.1 系统连接和参数设置：血压换能器、高灵敏度压力换能器、呼吸换能器分别连接生物信号采集处理系统1、2通道。
1通道模式为血压滤波频率100HZ,灵敏度90mmHg;2通道模式为流量，滤波频率100Hz，灵敏度100mL/s；1、2通道时间常数为直流，采样频率800Hz。
2.2 麻醉固定：家兔称重后，按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。
待兔麻醉后，仰卧固定。
剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤5 ~7cm，用止血钳钝性分离组织及颈部肌肉，分离颈外静脉，气管，左侧颈总动脉。
2.3 气管插管：在气管下两根粗棉线备用，在环状软骨下约1cm处，做倒T形剪口，用棉签将气管切开及气管里的血液和分泌物擦净，气管插管由剪口处向肺端插入，插时应动作轻巧，避免损伤气管粘膜引起出血，用意粗棉线将插管口结扎固定，另一棉线在切口的头端结扎止血。
2.4 左侧颈总动脉插管：用注射器向三通管内注射肝素，使之充满液体，并与插管相连。
在右颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住，并在动脉下面穿线备用；用眼科剪在靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字形切口，将动脉插管向心方向插入颈总动脉内，扎紧固定。
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实验19 急性右心衰竭病理模型制备
作者
（浙江大学级临床医学（八年制）专业班组）
【目的】本实验要求掌握急性右心衰竭模型的制备方法。
观察复制过程中机体出现的表现，理解其发生机制。
1．材料健康成年兔；呼吸换能器，高灵敏度压力换能器，血压换能器，生物信号处理系统，微量注射泵，流量头；氨基甲酸乙酯，生理盐水，液体石蜡。
2．方法
2．1 系统连接和参数设定血压换能器接生物信号采集处理系统1通道，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度12Kpa（90mmHg）；高灵敏度换能器接生物信号采集处理系统2通道，时间常数为直流，滤波频率30Hz，灵敏度50cmH2O，呼吸换能器接生物信号采集处理系统3通道，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度50~100ml；采样频率800Hz。
2．2 手术和插管
2．2．1 兔称重、麻醉固定按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L 氨基甲酸乙酯麻醉家兔。
仰卧固定。
颈部剪毛，作正中切口，切口5~7cm，钝性分离颈部组织、肌肉。
分离气管、左侧颈总动脉。
行左侧颈总动脉插管、右颈外静脉插管、气管插管。
2．3 实验观察
2．3．1 观察记录动脉血压、中心静脉压（或右心房内压），呼吸曲线，监听呼吸音。
2．3．2 以10ml/min的速度静脉注射生理盐水50ml。
观察记录动脉血压、中心静脉压（或右心房内压），呼吸曲线，监听呼吸音。
2．3．3 按0.5ml/kg体重剂量由耳缘静脉注射37℃的液体石蜡，用微量注射泵控制在2~3min （0.5ml/min）注射完毕，观察中心静脉压、血压、呼吸、呼吸音的变化。
待呼吸加强时，停止注射，观察血压是否下降20mmHg，中心静脉压是否持续升高，如是，停止注射液体石蜡。
否则继续注射。
2．3．4 血压下降20mmHg稳定5~10min后，以1ml/min的速度静脉注射生理盐水，直至动物死亡。
连续观察记录动脉血压、中心静脉压（或右心房内压），呼吸曲线，监听呼吸音。
2．3．5 待动物出现明显的心衰血流动力学变化后，处死家兔并尸检。
2．3．6 动物死亡后，剖开胸、腹腔（注意不要损伤脏器与大血管），观察有无胸、腹水、肠系膜血管充盈与脏器水肿。
3．结果
3．1 家兔正常平均动脉压mmHg，中心静脉压cmH2O,呼吸频率(次/min)，肺通气量ml/min，见表1。
3．2 以10ml/min的速度静脉注射生理盐水50ml，家兔平均动脉压由mmHg
至mmHg；中心静脉压由cmH2O 至cmH2O；呼吸频率由(次/min)至(次/min)，肺通气量由ml/min 至ml/min。
3．3 按0.5ml/kg体重剂量由静脉注射37℃的液体石蜡，家兔平均动脉压由mmHg
至mmHg；中心静脉压由cmH2O 至cmH2O；呼吸频率由(次/min)至(次/min)，肺通气量由ml/min 至ml/min。
表1 家兔急性右心衰竭动脉血压、中心静脉压、呼吸的变化
观察项目
平均动脉压
(mmHg)
中心静脉压
(mmHg)
呼吸频率
(次/min)
通气量
（ml/min）对照处理对照处理对照处理对照处理
i.v 生理盐水
i.v 石蜡0.5ml/kg
i.v 生理盐水
3．4 尸检胸、腹水、其他。
4．讨论
4．1 本实验右心衰竭模型的复制机制
4．2 家兔右心衰竭过程中动脉血压、中心静脉压、呼吸变化的机制。