汉恒腺病毒载体操作手册

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腺病毒中文操作手册

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腺病毒载体操作手册中文版腺病毒重组系统AdEasyTM操作手册目录第一章简介 1第二章应用重组腺病毒的优点 2第三章 AdEasyTM 技术 33.1 技术概况 33.2 AdEasyTM系统中产生重组腺病毒的时程 3第四章主要流程 44.1 将基因克隆入AdEasyTM转移载体44.1.1 克隆的一般原则 44.1.2 构建重组AdEasyTM转移载体 54.2 细菌内AdEasyTM重组子的产生 54.2.1 共转化的一般原则 54.2.2 共转化方法 54.2.3 预期结果 54.3 AdEasyTM重组质粒的筛选和扩增6 4.4 AdEasyTM重组子转染QBI-293A 细胞 64.4.1 细胞铺板 64.4.2 磷酸钙转化技术 7第五章常用技术 85.1 QBI-293A细胞培养 85.1.1 QBI-293A细胞的初始培养85.1.2 QBI-293A细胞的维持培养和增殖 85.1.3 QBI-293A细胞的冻存 8 5.2 QBI-293A细胞的转染和病毒空斑的产生 95.2.1 感染QBI-293A细胞 95.2.2 病毒空斑形成 95.2.3 琼脂糖覆盖被感染细胞 9 5.3 MOI测定 105.4 腺病毒感染力测定 105.4.1 X-Gal染色 115.5 重组腺病毒的筛选和纯化 115.5.1 挑选最佳重组腺病毒:表达和基因输送 115.5.2 病毒空斑挑选和小量扩增125.5.3 Western杂交 135.5.4 Southern杂交和点杂交 135.5.5 病毒裂解产物PCR 145.5.6 免疫测定 145.5.7 功能测定 145.6 病毒颗粒在QBI-293A细胞中的大量扩增 155.7 两次氯化铯密度梯度离心纯化重组腺病毒 165.7.1 不连续密度梯度离心 175.7.2 连续密度梯度离心 175.7.3 病毒溶液去盐和浓集 17 5.8 病毒滴度测定 185.8.1 O.D.260 nm (VP/ml) 195.8.2 空斑测定法 205.8.3 50%组织培养感染剂量法 20 第六章疑难解答 226.1 QBI-293A细胞培养 226.2 感染力测定 226.3 转移载体克隆 236.4 在BJ5183细胞中共转化和重组246.5 转染QBI-293A细胞 256.6 筛选和测定 256.7 在QBI-293A细胞中表达 266.8 重组腺病毒的扩增 266.9 纯化 266.10 病毒滴度测定 27缩写英文全称中文全称Ad Adenovirus 腺病毒Ad5 Adenovirus serotype 5 血清5型腺病毒AdV Adenoviral Vector 腺病毒载体Amp Ampicillin 氨苄青霉素β-Gal β-Galactosidase β-半乳糖苷酶bp Base Pair 碱基对BSA Bovine Serum Albumin 小牛血清白蛋白cDNA Complementary DNA 互补DNA cccDNA Closed Circular Coiled DNA 闭环螺旋DNACPE Cytopathic Effect 细胞病理效应CsCl Cesium Chloride 氯化铯DMEM Dulbecco’s Modified Eagle Medium DMEM培养基DMSO Dimethyl Sulfoxide 二甲基亚砜DTT Dithiothreitol 二硫苏糖醇EDTA Ethylene Diamine Tetraacetic Acid 乙二胺四乙酸EtBr Ethidium Bromide 溴化乙锭FBS Fetal Bovine Serum 胎牛血清Hr Hour 小时ITR Inverted Terminal Repeat 反向末端重复Kan Kanamycin 卡那霉素kb Kilobases 千碱基对KDa KiloDaltons 千道尔顿LB Luria-Bertani ( broth ) LB培养基MCS Multiple Cloning Site 多克隆位点Min Minute 分钟MOI Multiplicity of Infection (Virus/Cell ) 感染复数mRNA Messenger RNA 信使RNA MWCO MOIecular Weight Cut-off PAGE PolyAcrylamide Gel Electrophoresis 聚丙烯凝胶电泳PBS Phosphate Buffered Saline 磷酸盐缓冲液PFU Plaque Forming Unit 空斑形成单位pi Post Infection 感染后RCA Replication Competent Adenovirus 增殖性腺病毒RITR Right Inverted Terminal Repeat 右侧反向末端重复SDS Sodium Dodecyl Sulfate 十二烷基硫酸钠TBE Tris Borate/EDTA 三羟甲基氨基甲烷硼酸盐/乙二胺四乙酸TCID50 Tissue Culture Infectious Dose 50 50%组织培养感染剂量TCP Total Cellular Protein 细胞总蛋白TE Tris/EDTA TE溶液wt Wild Type 野生型X-Gal5-bromo-4-chloro-3-indolyl-D-Gal actopyranoside 5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷第一章简介当今基因输送技术的发展日趋复杂,一些治疗药物(生长激素、干扰素、抗病毒和抗癌复合物)和诊断性蛋白(单克隆抗体)的设计、发展与合成需要更高效的基因输送工具。

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腺病毒载体操作手册中文版腺病毒重组系统AdEasyTM操作手册目录第一章简介13.2AdEasyTM系统中产生重组腺病毒的时程3第四章主要流程2 4第二章应用重组腺病毒的优点4.1技术3 将基因克隆入AdEasyTM转移载体4 第三章AdEasyTM4.1.13 3.1技术概况缩写英文全称中文全称AdAdenovirus腺病毒LBLuria-Bertani(broth)LB培养基MCSMultipleCloningSite5Ad5Adenovirusserotype5血清型腺病毒多克隆位点分钟腺病毒载体MinMinuteAdV AdenoviralVector AmpAmpicillin氨苄青霉素感染复数MOIMultiplicityofInfection(Virus/Cell) -半乳糖苷酶β-Galβ-GalactosidaseβRNA mRNAMessengerRNA信使MWCOMOIecularWeightCut-offbpBasePair碱基对PAGEPolyAcrylamideGelElectrophoresisBSABovineSerumAlbumin小牛血清白蛋白聚丙烯凝胶电泳PBSPhosphateBufferedSaline磷酸盐缓冲液互补cDNAComplementaryDNADNADNA 闭环螺旋空斑形成单位PFUPlaqueFormingUnitcccDNAClosedCircularCoiledDNA CPECytopathicEffect细胞病理效应感染后piPostInfection CsClCesiumChloride氯化铯RCAReplicationCompetentAdenovirus增殖性腺病毒培养基DMEMDulbecco'sModifiedEagleMediumDMEM RITRRightInvertedTerminalRepeat右侧反向末端重复DMSODimethylSulfoxide二甲基亚砜SDSSodiumDodecylSulfate十二烷基硫酸钠乙二胺四/二硫苏糖醇DTTDithiothreitol TBETrisBorate/EDTA三羟甲基氨基甲烷硼酸盐EDTAEthyleneDiamineTetraaceticAcid乙二胺四乙酸乙酸组织培养感染剂TCID50TissueCultureInfectiousDose5050%溴化乙锭EtBrEthidiumBromide量FBSFetalBovineSerum胎牛血清TCPTotalCellularProtein细胞总蛋白小时HrHourITRInvertedTerminalRepeat反向末端重复溶液TETris/EDTA TE 卡那霉素KanKanamycin wtWildType野生型溴千碱基对X-Gal5-bromo-4-chloro-3-indolyl-D-Galactopyranoside5-kbKilobases半乳糖苷-3--4-氯吲哚-千道尔顿KDaKiloDaltons β-D-第一章简介当今基因输送技术的发展日趋复杂,一些治疗药物(生长激素、干扰素、抗病毒和抗癌复合物)和诊断性蛋白(单克隆抗体)的设计、发展与合成需要更高效的基因输送工具。

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腺病毒中文操作手册腺病毒载体操作手册中文版腺病毒重组系统AdEasyTM操作手册目录第一章简介 1 第二章应用重组腺病毒的优点 2 第三章AdEasyTM 技术 3 3.1 技术概况 3 3.2 AdEasyTM系统中产生重组腺病毒的时程 3 第四章主要流程 4 4.1 将基因克隆入AdEasyTM转移载体 44.1.1 克隆的一般原则 4 4.1.2 构建重组AdEasyTM转移载体54.2 细菌内AdEasyTM重组子的产生54.2.1 共转化的一般原则 54.2.2 共转化方法 54.2.3 预期结果 5 4.3 AdEasyTM重组质粒的筛选和扩增 6 4.4 AdEasyTM重组子转染QBI-293A 细胞 64.4.1 细胞铺板 64.4.2 磷酸钙转化技术7 第五章常见技术85.1 QBI-293A细胞培养8 5.1.1 QBI-293A细胞的初始培养8 5.1.2 QBI-293A细胞的维持培养和增殖8 5.1.3 QBI-293A细胞的冻存8 5.2 QBI-293A细胞的转染和病毒空斑的产生9 5.2.1 感染QBI-293A细胞95.2.2 病毒空斑形成9 5.2.3 琼脂糖覆盖被感染细胞9 5.3 MOI测定10 5.4 腺病毒感染力测定105.4.1 X-Gal染色11 5.5 重组腺病毒的筛选和纯化11 5.5.1 挑选最佳重组腺病毒:表示和基因输送11 5.5.2 病毒空斑挑选和小量扩增125.5.3 Western杂交13 5.5.4 Southern杂交和点杂交13 5.5.5 病毒裂解产物PCR 145.5.6 免疫测定145.5.7 功能测定14 5.6 病毒颗粒在QBI-293A细胞中的大量扩增15 5.7 两次氯化铯密度梯度离心纯化重组腺病毒16 5.7.1 不连续密度梯度离心17 5.7.2 连续密度梯度离心17 5.7.3 病毒溶液去盐和浓集17 5.8 病毒滴度测定185.8.1 O.D.260 nm (VP/ml) 195.8.2 空斑测定法20 5.8.3 50%组织培养感染剂量法20 第六章疑难解答226.1 QBI-293A细胞培养22 6.2 感染力测定22 6.3 转移载体克隆23 6.4 在BJ5183细胞中共转化和重组246.5 转染QBI-293A细胞25 6.6 筛选和测定25 6.7 在QBI-293A细胞中表示26 6.8 重组腺病毒的扩增26 6.9 纯化26 6.10 病毒滴度测定 27缩写英文全称中文全称Ad Adenovirus 腺病毒Ad5 Adenovirus serotype 5 血清5型腺病毒AdV Adenoviral Vector 腺病毒载体Amp Ampicillin 氨苄青霉素β-Gal β-Galactosidase β-半乳糖苷酶bp Base Pair 碱基对BSA Bovine Serum Albumin 小牛血清白蛋白cDNA Complementary DNA 互补DNA cccDNA Closed Circular Coiled DNA 闭环螺旋DNA CPE Cytopathic Effect 细胞病理效应CsCl Cesium Chloride 氯化铯DMEM Dulbecco’s Modified Eagle Medium DMEM培养基DMSO Dimethyl Sulfoxide 二甲基亚砜DTT Dithiothreitol 二硫苏糖醇EDTA Ethylene Diamine Tetraacetic Acid 乙二胺四乙酸EtBr Ethidium Bromide 溴化乙锭FBS Fetal Bovine Serum 胎牛血清Hr Hour 小时ITR Inverted Terminal Repeat 反向末端重复Kan Kanamycin 卡那霉素kb Kilobases 千碱基对KDa KiloDaltons 千道尔顿LB Luria-Bertani ( broth ) LB培养基MCS Multiple Cloning Site 多克隆位点Min Minute 分钟MOI Multiplicity of Infection (Virus/Cell ) 感染复数mRNA Messenger RNA 信使RNA MWCO MOIecular Weight Cut-off PAGE PolyAcrylamide Gel Electrophoresis 聚丙烯凝胶电泳PBS Phosphate Buffered Saline 磷酸盐缓冲液PFU Plaque Forming Unit 空斑形成单位pi Post Infection 感染后RCA Replication Competent Adenovirus 增殖性腺病毒RITR Right Inverted Terminal Repeat 右侧反向末端重复SDS Sodium Dodecyl Sulfate 十二烷基硫酸钠TBE Tris Borate/EDTA 三羟甲基氨基甲烷硼酸盐/乙二胺四乙酸TCID50 Tissue Culture Infectious Dose50 50%组织培养感染剂量TCP Total Cellular Protein 细胞总蛋白TE Tris/EDTA TE溶液wt Wild Type 野生型X-Gal 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-D-Galactopyranoside 5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷第一章简介当今基因输送技术的发展日趋复杂,一些治疗药物(生长激素、干扰素、抗病毒和抗癌复合物)和诊断性蛋白(单克隆抗体)的设计、发展与合成需要更高效的基因输送工具。

自噬双标腺病毒(mRFP-GFP-LC3)使用指南1404

自噬双标腺病毒(mRFP-GFP-LC3)使用指南1404

自噬双标腺病毒〔mRFP-GFP-LC3〕使用指南背景:自噬是细胞内的一种“自食〔Self-eating〕〞的现象,凋亡是“自杀〔Self-killing〕〞的现象,二者共用相同的刺激因素和调节蛋白,但是诱发阈值和门槛不同,如何转换和协调目前还不清楚. 自噬是指膜〔目前来源还有争议,大部分表现为双层膜,有时多层或单层〕包裹部分胞质和细胞内需降解的细胞器、蛋白质等形成自噬体,最后与溶酶体融合形成自噬溶酶体,降解其所包裹的内容物,以实现细胞稳态和细胞器的更新。

目前文献对自噬过程进行观察和检测常用的策略和手段有:通过western blot检测LC3的剪切;通过电镜观测自噬体的形成;在荧光显微镜下采用GFP〔-RFP〕-LC3等融合蛋白来示踪自噬体形成以与降解。

近几年对自噬流的研究日趋增多,针对于此我们汉恒生物科技〔XX〕XX自主研发了用于实时监测自噬(流)的mRFP-GFP-LC3腺病毒,mRFP 用于标记与追踪LC3,GFP的减弱可指示溶酶体与自噬小体的融合形成自噬溶酶体,即由于GFP荧光蛋白对酸性敏感,当自噬体与溶酶体融合后GFP 荧光发生淬灭,此时只能检测到红色荧光。

这种串联的荧光蛋白表达载体系统直观清晰的指示了细胞自噬流的水平,是我们自噬研究尤其是自噬流研究不可或缺的利器。

mRFP-GFP-LC3腺病毒的操作收到病毒后的处理〔一〕、腺病毒的储存1、腺病毒采用冰袋运输。

〔1〕、收到病毒液后如未融化请置于-80℃冰箱,下次使用时再进行分装;〔2〕、如客户收到时腺病毒已融化,请直接分装后置于-80℃冰箱保存;若短期内用于实验,可分装部分于4℃保存〔尽量一周内用完〕。

2、尽量避免反复冻融,否则会降低病毒滴度〔每次冻融会降低病毒滴度10%〕。

建议不要在-20℃下长期保存。

如果病毒储存时间超过6个月,应该重新测定病毒滴度。

3、建议收到病毒产品后根据实验需求自行分装或购买经过分装的小包装病毒产品〔购买时请提出〕。

汉恒生物-病毒载体操作安全手册

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病毒载体操作安全手册引言根据W HO生物安全手册对感染性微生物的相对危害程度制订的危险度等级的划分标准。

病毒的危险度为 4 级,它对个体和群体的危险均高,通常能引起人或动物的严重疾病,并且很容易发生个体之间的直接或间接传播,对感染一般没有有效的预防和治疗措施。

所以我们需要制定一定的安全注意事项,包括设备的要求、操作人员的防护、操作的规范性以及废弃物的处理等,以避免潜在的危险。

一、病毒房设备要求我们知道细胞培养技术与其他一般实验室工作的主要区别在于要求保持无菌操作,避免微生物及其他有害因素的影响。

目前超净工作台的广泛使用,很大程度上方便了组织细胞培养工作,并使一些常规实验室有可能用于进行细胞培养。

细胞培养实验室应能进行六方面的工作:无菌操作、孵育、制备、清洗、消毒灭菌处理、储藏。

病毒房的设备在普通细胞房的基础上要求更高,尤其是其无菌操作设备。

(一)无菌操作区1、无菌操作室:无菌操作区只限于细胞培养及其他无菌操作的区域,最好能与外界隔离,不能穿行或受其他干扰。

理想的无菌操作室应划为三部分:1(1)更衣室—―供更换衣服、鞋子及穿戴帽子和口罩。

(2)缓冲间—―位于更衣间与操作间之间,目的是为了保证操作间的无菌环境,同时可放置恒温培养箱及某些必需的小型仪器。

(3) 无菌操作间—―专用于无菌操作、细胞培养。

无菌操作间的空气消毒:紫外线灯。

2、二级生物安全柜:生物安全柜是为操作原代培养物、菌毒株以及诊断性标本等具有感染性的实验材料时,用来保护操作者本人、实验室环境以及实验材料,使其避免暴露于上述操作过程中可能产生的感染性气溶胶和溅出物而设计的。

(二)孵育区本区对无菌的要求虽不比无菌区严格,但仍需清洁无尘,因此也应设置在干扰少而非来往穿行的区域。

孵育一般可在恒温培养箱内进行。

(三)制备区在该区主要进行培养液及有关培养用的液体等的制备,如条件有限,可以在操作区进行。

(四)储藏区主要存放各类冰箱、干燥箱、液氮罐、无菌培养液、培养瓶等,此环境也需要清洁无尘。

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4、细胞离心,1000rpm,5min。去掉上清。 5、根据细胞计数结果加入细胞冻存液(70%完全培养基 +20%FBS+10%DMSO),重悬细胞,密度为 3 x 106 个/ml。 6、分装进细胞冻存管,放入冻存盒中,放入-80℃超低温冰箱。 7、第二天将细胞放于液氮罐中长久保存,并作记录。保存过程 中,要不时复苏细胞检测细胞存活率,观察细胞状态等。
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T实e验l:室02地1-址51:29上62海58市张江高科技园区蔡伦路 781 弄张江药谷 503
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四、腺病毒包装、扩增和纯化
(一)腺病毒包装
5118bp
GFP
(NotI ) (NcoI ) (NcoI )
pUC ori
SV40 PolyA LoxP
HindIII
[ SacI SalI
Amp r pUC ori
SacII
XbaI(456)
ITR
ITR
1
(NdeI )
(NdeI )
NheI(1384)
pHB Ad-U6-RFP 4993bp
1
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蛋白(GFP)。pHBAd-CMV-IRES-RFP 和 pHBAd-U6-RFP 能表达 红色荧光蛋白(RFP)。
3、将细胞溶液转移到 15ml 离心管中,并在其中加上 1ml 新鲜 的完全培养基,混匀后离心,1000rpm,5min。

腺相关病毒操作手册--汉恒生物

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汉恒生物科技(上海)有限公司 400‐092‐0065 1汉恒生物---腺相关病毒操作手册一、腺相关病毒(Adeno-Associated Viral Vector ,AAV )简介腺相关病毒属微小病毒科( parvovirus),为无包膜的单链线状 DNA 病毒。

AA V 的基因组约 4700bp ,包括上下游两个开放读码框架(ORF),位于分别由 145 个核苷酸组成的2个反向末端重复序列(ITR)之间。

基因组中有 3 个启动子(P5、P19 和 P40) 和 2 个开放阅读读框(ORF),rep 和 cap ,如图 1 所示。

rep 编码 4 个重叠的多功能蛋白,即 Rep78、Rep68、Rep52 和 Rep40,其中 Rep78 与 Rep68 参与 AA V 的复制与整合,Rep52 和 Rep40 具有解螺旋酶和 ATP 酶活性,与 Rep78、Rep68 共同参与单链基因组的复制;cap 编码的 VP1、VP2、VP3是装配成完整病毒所需要的衣壳蛋白,它们在 AA V 病毒整合、复制和装配中其重要作用。

图 1. AA V 基因组结构二、腺相关病毒的优点1. 安全性高:迄今从未发现野生型A A V 对人体致病,重组A A V 基因组序列上去除了大部分的野生型A A V 基因组元件,进一步保证了安全性;2. 免疫原性低:AA V2 的基因组仅 4681 个核苷酸,便于用常规的重组 DNA 技术进行操作,而且进行动物实验时造成的免疫反应小;3. 宿主范围广:能感染分裂细胞和非分裂细胞;4. 表达稳定:能介导基因的长期稳定表达;5. 物理性质稳定:在60℃不能被灭活,能抗氯仿;三、重组腺相关病毒载体系统简介汉恒生物科技(上海)有限公司 400‐092‐0065 2AAV 是一种复制缺陷型微小病毒,其增殖复制需要腺病毒或疱疹病毒的辅助。

AAV 无辅助病毒系统(AAV Helper-Free System )可以在无辅助病毒的条件下生产出重组腺相关病毒。

ips操作指南-腺病毒版本

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IPS操作指南第四版IPS操作指南--腺病毒版本IPS简介:iPS细胞是通过基因转染技术(gene transfection)将某些转录因子导入动物或入的体细胞使,体细胞直接重构成为胚胎干细胞(embryonic stemcell,ESC)细胞样的多潜能细胞。

现在大多是通过病毒携带特定的转录因子进入体细胞内,来获得多能性干细胞。

2006年日本京都大学Shinya Yamanaka在世界著名学术杂志《细胞》上率先报道了诱导多能干细胞的研究。

他们把Oct3/4,Sox2、c-Myc和Klf4这四种转录因子基因克隆入病毒载体,然后引入小鼠成纤维细胞,发现可诱导其发生转化,产生的iPS细胞在形态、基因和蛋白表达、表观遗传修饰状态、细胞倍增能力、类胚体和畸形瘤生成能力、分化能力等方面都与胚胎干细胞相似。

用Retrovirus、Lentivirus诱导IPS成功的例子已经非常多,但是由于retrovirus和lentivirus的基因组整合性,往往伴随基因组的破坏与癌化。

用Lentivirus和retrovirus 建立的IPS子宫移植繁衍而成的克隆鼠往往都伴随着肿瘤的高发生率。

Adenovirus(腺病毒)是一类滴度极高,不整合基因组,可以简单实现高效感染的病毒载体,近年来以Adenovirus介导的IPS诱导已被证实成功且安全。

一、实验材料腺病毒OSKM四因子:Ad-OCT4、Ad-SOX2、Ad-KLF4和Ad-c-MYC;病毒扩增细胞:293A细胞;ES Feeder细胞:MEF(C57)。

二、实验仪器和耗材(一)实验仪器二级安全柜、37度培养箱、4度冰箱、液氮储存器、倒置显微镜、低温离心机。

耗材PBS、无菌水、明胶粉、DMEM培养基、FBS、非必须氨基酸、β-巯基乙醇、胰酶、血清替代物(SR)、mTESR1、T75培养瓶、无菌水、15ml离心管、50ml离心管,巴氏管等。

三、ips诱导方法(一)Feeder细胞1、Feeder细胞的分离(MEF)取妊娠13.5-14.5d的孕鼠,在无菌情况下取出胎鼠,去除鼠头,尾,四肢及内脏,然后用PBS进行冲洗。

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  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
收集密度在 1.30g/ml 和 1.40g/ml 之间的病毒条带至透析袋中 (透 析袋使用前用 10mM 的 EDTA-Na2 煮沸 10min)。在透析缓 冲液(50g 蔗糖,10ml 1M Tris-HCl,PH8.0,2ml 1M MgCl2 定容至 1L)中,4 ℃搅拌透析过夜,中间换一次透析液。收集病毒,测定病毒滴度。
(二)293A 细胞的传代 当细胞生长到汇合率达到 80%~90%时需要对细胞进行传代操
作,以扩大细胞数量,维持细胞良好的生长状态。 1、消化细胞,方法同细胞冻存。 2、细胞离心结束后,加入完全培养基重悬。 3、根据具体情况,将细胞分到 10cm 培养皿中,每个培养皿补
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(五)病毒重悬和保存 500ul PBS 重悬病毒沉淀,一周内使用则置于 4 度冰箱保存,如
需长时间存放需置于-80 度甚至液氮保存。
五、感染目的细胞 因为不同细胞的 MOI 不同,所以在将病毒感染正式感染目的细
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腺病毒载体名称 pHBAd-U6-GFP,pHBAd-U6-RFP pHBAd-CMV-IRES-GFP, pHBAd-CMV-IRES-RFP pHBAd-CMV-IRES-GFP, pHBAd-CMV-IRES-RFP, pHBAd-U6-GFP,pHBAd-U6-RFP
2) 骨架质粒信息如下:
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3、菌株 大肠杆菌菌株 DH5α。用于扩增腺病毒载体和腺病毒骨架 载体质粒。
三、包装细胞 293A 细胞的培养
(一) 293A 细胞的冻存 293A 细胞来源于一个用作空斑测定的亚克隆,具有易使用和易
转染的特性。该细胞株对于高细胞密度很敏感,当细胞超过 70%汇 合时,一些细胞可能会丢失它们的表型。若细胞密度持续在 70%以 下,QBI-293A 细胞则能连续培养 3~4 个月维持原有细胞特性。若以 购买得到的 293A 作为第一代,则 30 代内能得到最佳结果。随着传 代的次数增加,293A 细胞会出现生长状态下降、突变等。为了防止 此类现象的出现,我们需要在开始就对细胞进行大量冻存,以保证实 验的稳定性和持续性。在细胞对数生长期进行冻存,增加细胞复苏成 活率。
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胞前,需要做一个预实验以确定目的细胞中加入的病毒数。
(一)细胞准备 将状态良好的目的细胞接种到 24 孔板,使细胞浓度为 1×105/ml
3、将细胞溶液转移到 15ml 离心管中,并在其中加上 1ml 新鲜 的完全培养基,混匀后离心,1000rpm,5min。
4、去掉上清,加入 5ml 新鲜的完全培养基,混匀沉淀后,转入 6cm 培养皿。
5、将培养皿平稳放入 37℃、5%CO2 和 95%相对湿度的培养箱 中培养。
6、第二天观察细胞存活率。给细胞换一下培养基。以后每天观 察细胞生长情况。
细胞,接种细胞数量因细胞的生长速度而略有不同,一般是保证第二 天进行病毒感染的时候细胞汇合率介于 50%至 70%直接。
(二)病毒感染 1.polybrene 的选择: Polybrene:是带正电的小分子,与细胞表面的阴离子结合,提高
( NotI )
( AgeI(731) ) EcoRI(742) BamHI(748) NsiI
( NotI )
RFP
LoxP SV40 PolyA
(AgeI ) HindIII SacI SaII
Amp r
ITR
ITR
1
pHBAd-MCM V-IRES-EGFP 5322bp
M
C
V M
EcoRI(1042) IR ES
物产品,使用说明参考 LipofiterTM 说明书。 转染前细胞必须处于良好的生长状态。 病毒实验带有一定的危险性,为了您的安全和健 康,请穿实验服并戴一次性手套,在生
物安全柜里进行实验操作。
(二)病毒收集 病毒收集前要观察病毒空斑是否形成,为限制病毒 的扩散及空斑
更好的形成,通常在培养液中加入琼脂糖,感染后 7 天左右可以在显 微镜下看到小的空斑,一般在 10 至 21 天内形成,空斑形成后连着 琼脂糖一起将空斑挑起,放入新鲜培养基中过夜。
5118bp
GFP
(NotI ) (NcoI ) (NcoI )
pUC ori
SV40 PolyA LoxP
HindIII
[ SacI SalI
Amp r pUC ori
SacII
XbaI(456)
ITR
ITR
1
(NdeI )
(NdeI )
NheI(1384)
pHB Ad-U6-RFP 4993bp
1
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腺病毒载体操作手册
蛋白(GFP)。pHBAd-CMV-IRES-RFP 和 pHBAd-U6-RFP 能表达 红色荧光蛋白(RFP)。
二、实验材料
(一)腺病毒载体、包装细胞和菌株 该病毒包装系统为两质粒系统,组成为穿梭质粒(包括 pHBAd-CMV-IRES-GFP,pHBAd-CMV-IRES-RFP,pHBAd-U6-GFP, pHBAd-U6-RFP)和骨架质粒 pBHGlox(delta)E1,3Cre。其中穿 梭质粒 pHBAd-CMV-IRES-GFP 和 pHBAd-U6-GFP 能表达绿色荧光
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四、腺病毒包装、扩增和纯化
(一)腺病毒包装
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% DMEM,用 10mL 移液管进行吹打,较大力吹打 6-8 次即可, 不留死角,之后,将所有细胞吸出,置于 15mL 离心管中,取 50ul 混 匀后的细胞于 1.5mL eppendorf 管中,加 入 450ul 10% DMEM, 即为 10 倍稀释,混匀,取 10ul 细胞于计数板 中计数。计数板上 共 4 大格,每大格 16 小格。计数时,4 大格均计 数,总数除以 4 (得每大格细胞数),再乘以 10(10 倍稀释),即 为实际 n 万/mL 细 胞浓度。
腺病毒载体操作手册
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一、实验流程
制备腺病毒穿梭质粒,分别高纯度无内毒素抽提腺病毒穿梭质 粒和骨架质粒,共转染 293A 细胞,转染后 6h 更换为完全培养基, 培 养十几天,在中间四五天左右更换一次新鲜培养基,然后收集细 胞和 1ml 培液置于 15ml 离心管后,液氮/37 度冻融三次(冻-融要 彻底), 2000rpm 离心 5 分钟,取上清即为病毒液初代原液。连续三代反复 扩 增收集病毒后,行病毒的大量扩增,然后通过 CsCl 密度梯度离 心-透 析联用法纯化病毒。
1、去掉上清液,加入 PBS 洗去残留的培养基; 2、加入 0.25%的胰酶,消化 1~2min 后,镜下观察细胞变圆, 细胞间间隙加大时,去除胰酶,加入新鲜培养基吹打混匀,移入离心 管中。 3、细胞计数,将细胞全部晃下,加入 3mL 37 ℃ 预热的 10
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1、载体信息 1) 腺病毒克隆载体图谱如下:
V M C
V M C M
6 U
Amp r
SacII
XbaI(456) ( NotI )
ITR ITR
AgeI(731)
6 U
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ1 (NdeI)
EcoRI(742) BamHI(748)
NsiI
V M C
(NdeI )
NheI(1384) pHBAd-U6-GFP
事先准备好用于包装病毒的 293A 细胞和病毒质粒,转染每个直 径为 6cm 的培养皿 complex 成分如下:
穿梭质粒
2μg
p-BHG(delta)E1,3 cre
4μg
Opti MEM 需在 37 度水浴中预热,LipofiterTM 转染试剂需恢复至室温方可
使用,使用前需摇匀。转染后 6h 换新鲜培液。 注:LipofiterTM 转染试剂为汉恒生
pUC ori
EGFP
AgeI LoxP SV40 PolyA ClaI
Amp r
Pac I
ITR
ITR
1
pHBAd-M CM V-RFP 5337bp
NheI
PCMV
Ps tI BamHI SmaI EcoR I B glII
NotI Ns iI
NdeI
Nc oI R FP
pUC ori
Age
LoxP SV40 PolyA
中培养。
(三)293A 细胞的复苏 当细胞传代次数过多,细胞状态变差时,或 者细胞出现污染事故
时,需要丢弃并对最初冻存的细胞进行复苏。 1、设置温度为 37~42℃的水浴。 2、查看细胞库记录,根据记录从液氮罐中取出冻存的细胞(需
戴上棉手套,防止被冻伤),迅速丢入水浴锅中并快速晃动,尽量在 1~2 min 内使细胞溶液完全溶解。
(三) 病毒扩增 第二天,将培养基中病毒加入新鲜 293A 细胞培养液中进行病毒
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