植物组织培养简介及流程图

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植物组织培养技术流程 ppt课件

植物组织培养技术流程 ppt课件
路 线 一
路 线 二
路 线 三
1.培养基配制
MS+6-BA 2 mg/L+琼脂粉 5.5 mg/L+糖 30
mg/L pH 6.0
1L
2.培养基灭菌
植物组织培养技术流程
三、外植体的消毒与无菌操作 1.外植体消毒
消毒剂
使用浓度 (%)
消毒时间 (minຫໍສະໝຸດ )效果残液去除 难易
乙醇
70-75
0.1-3


新洁尔灭 10~20 5~30 好

氯化汞
0.1~1
2~15 最好 最难
过氧化氢 抗菌素
10~12 5~15
4~50mgl1
30~60
较好 较好
最易 较难
次氯酸钙/纳 9 ~ 10 5~30 好

植物组织培养技术流程
正确
错误
2.无菌操作

植物组织培养技术流程
植物组织培养技术流程
植物组织培养技术流程
正确
错误
§3.植物组织培养流程
植物组织培养操作流程
植物组织培养技术流程
植物组织培养技术流程
§2 实验基本操作
一、母液的配制 1.MS母液的配制
大量元素(20倍)、微量元素(1000倍)、铁盐 (100倍)、有机元素(100倍)
2.激素母液的配制 6-BA、KT、ZT等浓度为0.5mg/ml; NAA浓度为0.1mg/ml
二、培养基的配制与灭菌

植物组织培养流程图及注意事项

植物组织培养流程图及注意事项
4.接种:小心小心再小心,把处理好的外植体轻轻地放到培养基上,动作得轻柔呢!
5.培养:放在合适的环境里,温度、光照、湿度都得控制好哇!
6.观察和记录:要时刻盯着,看看有没有啥异常情况,及时做好记录哟!
接下来讲讲注意事项哈!
1.无菌操作:这可是重中之重呢!任何一个环节都不能让细菌病毒钻空子呀!
2.培养基配方:哎呀呀,配方得合适,营养不均衡可不行!
9.仪器设备清洁:用完的仪器得洗干净消毒好,为ห้องสมุดไป่ตู้一次使用做好准备哦!
10.人员培训:操作人员得经过专业培训,不然容易出错哟!
怎么样,这些流程图和注意事项是不是很重要呀?希望能对您有所帮助哇!
3.外植体来源:得保证来源可靠,质量过关呀!
4.培养条件控制:温度不能高也不能低,光照时间和强度都得恰到好处,你说难不难?
5.防止污染:哇,一旦污染了,那可就前功尽弃啦!
6.定期观察:可别偷懒,要经常看看植物的生长情况,及时调整条件呢!
7.操作规范:每个步骤都得按照标准来,不能随心所欲哟!
8.材料处理:处理外植体的时候,手法要熟练,不能损伤了它们呀!
植物组织培养流程图及注意事项
嘿呀!以下就是植物组织培养的流程图及注意事项啦!
首先咱们来说说流程图哈!
1.准备阶段:哎呀呀,这可得把各种器具都准备齐全呢!像培养皿、培养基、消毒工具等等,一个都不能少呀!
2.外植体选取:哇,这可重要啦!得挑那些健康、无病害的部位,你说是不是?
3.消毒处理:这一步可不能马虎哟!要用合适的消毒剂,把外植体好好消消毒,不然细菌病毒啥的可就捣乱啦!

植物组织培养基本操作图解

植物组织培养基本操作图解
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植物组培基本操作图解
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202X
植物组织培养的内容 植物组织培养包括以植物和它的离体器官、组织、细胞和原生质体为外植体的离体无菌培养,拥有几种不同水平的培养技术,即整体的、器官的、组织的、细胞和原生质的培养技术。(植株培养、胚胎培养、器官培养、组织培养、细胞培养、原生质体培养 )
组 培 实 验 用 品
1
2
3
一、无菌苗的快速切繁
1、点着酒精灯
2、双手擦拭消毒
3、剪刀灭菌
外焰
4、开三角瓶——铝箔纸的拿法a
8、瓶口在火焰上烧过
9、铝箔纸的放法
11、镊出苗
12、放入培养皿中
幼苗形态——生长点
14、剪取茎段
15、剪好的苗
培养皿的拿法
7、倒去消毒液
8、无菌水冲洗5次
9、取出茎尖
10、在滤纸上吸干水分
双目解剖镜下解剖茎尖
显微解剖镜使用图解
目镜
放大倍数 旋钮
物镜
解剖载物台
焦距旋钮
底光源开关
01
在光照培养箱中,25℃下,16小时光照,培养两周,可形成愈伤组织。
02
二 愈伤组织的培养
1、将苗剪出伤口
2、剪好的叶片和茎段
3、打开培养皿
5、愈伤组织接种
6、培养皿封口
三、苗的茎尖培养
1、幼苗形态
2、剪取茎尖
茎尖
3、剪好的茎尖
4、倒入70%酒精处理1分钟
5、倒去酒精
6、倒入消毒液(一般为升汞)处理15分钟
16、茎段接种a
17、茎段接种b
18、接种好的苗a
19、接种好的苗b

【工作总结】植物组织培养技术ppt模版课件

【工作总结】植物组织培养技术ppt模版课件

红芽芋种苗
试管苗
红芽芋栽培技术
一、植物组织培养所需仪器设备
▪ 1.实验室:药品室、称量室、洗涤室、 配剂室、消毒室、接种室、培养室等。 2.仪器设备:高压灭菌锅(器)、光照 培养箱、振荡培养箱、电子天秤、酸度计、 超净工作台、煤汽炉、铝锅等。 3.器械及用具:镊子、手术刀、接种针、 细菌过滤器、牛皮纸、记号笔等。 4.玻璃器皿:三角瓶、培养瓶、培养皿、 量筒、容量瓶等。
▪ 微繁有许多优势:
①繁殖速度快,通常一年内可以繁殖数以万计 的,较为整齐一致的种苗,大大提高繁殖系数。 特别对于难繁殖的园艺植物的名贵品种、稀有 种质的繁殖推广具有重要意义。一个兰花的茎 尖一年内可育成400万个原球茎,一个草莓茎 尖一年内可育出成苗3000万株。 ②占用空间小,一间30平方米的培养室可以放 置一万多个瓶子,足以同时繁殖几万株种苗。 ③可以培养脱毒种苗
▪ 化学药品 1升量 10升量 ▪ ① NH4NO31650 mg/L16.5g ▪ ② KNO31900 mg/L19.0g ▪ ③ CaCl2·2H2O 440 mg/L4.4g ▪ ④ MgSO4·7H2O 370 mg/L3.7g ▪ ⑤ KH2PO4170 mg/L1.7g
▪ MS微量元素母液(100X) 按扩大倍数称量溶解在1000ml蒸馏水中。配1升 培养基取母液10ml。
MS 培养基的配制
▪ 配制培养基通常都按配方浓度的若干倍称 量,配制成一系列的母液置于冰箱保存, 使用时按比例稀释。一般要配下列母液:
大量元素母液
微量元素母液
铁盐母液
植物生长物质母液
有机化合物母液
▪ MS大量元素母液(10X) 按扩大倍数分别称取各元素溶解后定溶在1 升蒸馏水中。配1升培养基取母液100ml。

《植物组织培养技术》课件

《植物组织培养技术》课件

04 植物组织培养技术的应用实例
快速繁殖技术
快速繁殖技术是指利用植物组 织培养技术,快速、大量繁殖
植物种苗的一种方法。
该技术广泛应用于花卉、果树 、林木等植物的快速繁殖,能 够大大缩短繁殖周期,提高繁
殖系数。
快速繁殖技术还可以通过控制 培养条件,实现植物的定向繁 殖,如矮化、无病毒等。
快速繁殖技术具有高效、环保 、可重复利用等优点,是现代 农业和林业生产的重要手段之 一。
濒危植物保护与复壮是保护生 物多样性和维护生态平衡的重 要手段之一,具有深远的社会 意义和生态意义。
05 植物组织培养技术的挑战与前景
技术瓶颈与解决方案
技术瓶颈
目前植物组织培养技术面临的主要瓶颈包括培养基的优化、外植体的选择与处 理、污染控制以及基因转化效率等。
解决方案
针对这些问题,研究者们正在探索新型的培养基成分、优化外植体的选择标准 、开发新型的消毒方法以及改进基因转化技术,以期提高植物组织培养的效率 和成功率。
指任何一个植物细胞都包含该物种的 全套遗传信息,具有发育成完整个体 的潜在能力。
植物细胞全能性证明
植物细胞全能性的应用
植物组织培养技术利用植物细胞的全 能性,通过离体培养获得完整的植株 ,广泛应用于植物繁殖、品种改良、 基因工程等领域。
许多植物细胞如胡萝卜、烟草、草莓 等在适宜条件下能够发育成完整的植 株,证明了植物细胞的全能性。
技术发展趋势与展望
发展趋势
随着生物技术的不断发展,植物组织培 养技术也在不断进步和完善。未来,该 技术将更加注重与基因编辑、合成生物 学等新兴技术的结合,以实现更为精准 和高效的植物育种和种质资源保护。
VS
展望
未来,植物组织培养技术有望在农业、园 艺、林业等领域发挥更大的作用,为解决 全球粮食安全、生态恢复等问题提供有力 支持。

植物组织培养第三章 植物器官和组织培养ppt课件

植物组织培养第三章 植物器官和组织培养ppt课件
(一)根无性系的建立 来自无菌种子发芽产生的幼根切段或植物根系经灭 菌处理后的切段,可以以两种方式进行培养,建立根的 无性繁殖系。
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18
一、离体根的培养
1、根的直接增殖 1)根无性繁殖系的建立
将种子进行表面消毒,在无菌条件下进行无菌萌 发,待根伸长后从根尖一段切取长1.0cm的根尖,接种 培养基中。
(二)根、块茎、鳞茎的灭菌
生长在土中,灭菌困难,以受损伤。 灭菌前仔细清洗,加大灭菌剂浓度或延长灭菌时间。
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8
无菌外植体的获得
(三)花蕾的灭菌
未开放的花蕾中的花药为花被包裹,处于无菌状态, 采摘后可直接灭菌。 70%酒精浸泡10-30s—0.1-0.2%氯 化汞浸泡3-10min,(或1%次氯酸钠浸泡10-20min)—灭 菌水冲洗3-5次—无菌滤纸吸干—分割—接种。
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⑵腋芽增殖的原理
高等植物的每个叶腋中都有腋芽存在,通常由于 顶芽的存在,顶端优势阻止腋芽的生长,但在一定的 条件下可以使它生长,如除去顶芽或使用生长激素, 可以解除顶端优势,腋芽便不断分化和生长,逐渐形 成芽丛。
若反复切割这些腋芽和移植到新的培养基中继代 培养,就可在短期内得到大量的芽。
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⑶影响增殖成功的关键因素
A、细胞分裂素 在腋芽增殖上的主要措施是用细胞分裂素抑制
顶端优势,促进腋芽生长发育,所以在这一阶段培 养基中添加细胞分裂素是必须的。
实践证实,除个别的例子外,加入细胞分裂素 是行之有效的。6-BA对促进腋芽增殖是最有效,依 次为KIN和2ip。一般浓度在0.25mg/l以上,少数用 1.0mg/L,个别的用5mg/L。
器官发生 体细胞胚胎发生

科学·技术·社会植物的组织培养

科学·技术·社会植物的组织培养
离体
再分化 脱分化
分化状态
2、植物组织培养的流程:
脱分化 愈伤组织 再分化 根、芽 移栽
(试管苗)
植物体
愈伤组织:高度液泡化的呈无定形状态的薄壁细胞 (细胞排列疏松而无规则)
脱分化:高度分化的植物组织或细胞产生愈伤组织的 过程。
再分化:愈伤组织分化出芽、根等器官的过程。
3、实验——胡萝卜的组织培养

脱分化避光,再分化需光照:
(光抑制愈伤组织的形成,但能促进芽的分化, 再分化阶段叶绿体的脱分化 愈伤组织 再分化 根、芽 移栽
(试管苗)
培养条件:
植物体
组织培养的概念:
植物组织培养就是在 无菌 和 人工控制 条件下,

,培养在人工配制的培养基 上,
给予适宜的培养条件,诱导其产生 愈伤组织、丛芽 ,
最终形成完整的植株。
【练习】要将胡萝卜韧皮部细胞培养成完整植株,不需
要( )
B
A.具有完整细胞核的细胞
B. 导入外源基
C.离体状态
D.一定的营养物质和激素
【练习】下面是植物组织培养的简略表示。请据此回答。
① 脱分化 ② 再分化 ③

(1)①表示 离体的植物组织,器官或细胞 ,它能被培养成 为④的理论基础是 生物细胞的全能性 。
(2)②表示 愈伤组织 ,它与①相比分化程度 低 ,全能 性高 。
(3)若①是花药,则④是 单倍体植株 在 单倍体育种 上。
,这项技术可用
(4)若①是胡萝卜根尖细胞,则培养成的④的叶片的颜色 是 绿色 ,这说明根尖细胞 含有表达叶绿体的基因 。
•谢谢观看
如何设计实验:探究光照条件对细胞分化 方向的影响?
愈伤组织
试管苗

植物的组织培养技术(共27张PPT)

植物的组织培养技术(共27张PPT)

➢按培养方法分为
固体培养 液体培养
看护培养 微室培养
按培养过程分为
初代培养
继代培养
离体的植物器官、组织、细胞 将植物的器官如胚、胚乳、珠心、子房、根、茎、叶、花和幼果的部分组织接种在无菌培养基上进行培养。
初代培养 继代培养 运用组织培养的途径,一个单株一年可以繁殖几万到几百万个植株,而且均来自一单一的个体,遗传性状一致。
再分化:经脱分化的组织或细胞在一定的培养条件 下可有转变为各种不同细胞类型的能力。
4.植物组织培养分类
➢按材料的类别分
愈伤组织培养 细 胞 培养
器 官 培养
原生质体培养
最为常见的组织培养
悬浮细胞培养 单细胞培养
胚、胚乳、珠心、子房、根、茎、叶、 花和幼果的部分组织的培养
⑴愈伤组织培养
将外植体接种在人工培养基上,由于植物生长调节剂的存 在,而其细胞脱分化形成愈伤组织,然后通过再分化形成再 生植株。它是最为常见的。
1.组织培养定义
组织培养是指用
无菌方法使植 物体的离体器
官、组织和细胞 在人为提供的条 件下生长和发育 的所有培养技术 的总称,也称之 为离体培养。
(二)奠基阶段(从20世纪30
年代末到50年代中):
1934年,White 用番茄根尖 建立起第一个活跃生长的无性繁 殖系,从而使非胚器官的培养首 先获得成功。
脱 分 化
离体的植物器官、 组织、细胞
愈伤组织
植物全能性 的表达
根、芽
胚状体 再生植株
游离单细胞 或原生质体
人工种子
培养条件:基 本培养基和适 宜的植物生长 调节物质,适 宜的温度、空 气、无菌环境、 适合的PH、 适时光照等。
脱分化:将分化组织的已停止分裂的细胞从植物体 部分的抑制性影响下解脱出来,恢复细胞的分裂活性。
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植物组织培养简介
在无菌条件下,将离体的植物器官(如根尖、茎尖、叶、花、未成熟的果实、种子等)、组织(如形成层、花药组织、胚乳、皮层等)、细胞(如体细胞、生殖细胞等)、胚胎(如成熟和未成熟的胚)、原生质体(如脱壁后仍具有生活力的原生质体),培养在人工配制的培养基上,给予适宜的培养条件,长成完整的植株,统称为植物组织培养。

植物组织培养的原理是细胞全能性。

也就是说每个植物细胞里都含有一整套遗传物质,只不过在特定条件下才会表达。

组织培养基于此原理就可以将已处于分化终端或正在分化的植物组织脱分化,诱导形成愈伤组织,再在愈伤组织上形成新的丛生芽。

一个完整的植物组织培养过程一般包括以下几个步骤:
(1)准备阶段
查阅相关文献,根据已成功培养的相近植物资料,结合实际制订出切实可行的培养方案。

然后根据实验方案配制适当的化学消毒剂以及不同培养阶段所需的培养基,并经高压灭菌或过滤除菌后备用。

(2)外植体选择与消毒
选择合适的部位作为外植体,采回后经过适当的预处理,然后进行消毒处理。

将消毒后的外植体在无菌条件下切割成一定大小的小块,或剥离出茎尖,挑出花药,接种到初代培养基上。

(3)初代培养
接种后的材料置于培养室或光照培养箱中培养,促使外植体中已分化的细胞脱分化形成愈伤组织,或顶芽、腋芽直接萌发形成芽。

然后将愈伤组织转移到分化培养基分化成不同的器官原基或形成胚状体,最后发育形成再生植株。

(4)继代培养
分化形成的芽、原球茎数量有限,采用适当的继代培养基经多次切割转接。

当芽苗繁殖到一定数量后,再将一部分用于壮苗生根,另一部分保存或继续扩繁。

进行脱毒苗培养的需提前进行病毒检测。

(5)生根培养
刚形成的芽苗往往比较弱小,多数无根,此时可降低细胞分裂素浓度或不加,提高生长素浓度,促进小苗生根,提高其健壮度。

(6)炼苗移栽
选择生长健壮的生根苗进行室外炼苗,待苗适应外部环境后,再移栽到疏松透气的基质中,注意保温、保湿、遮荫,防止病虫危害。

当组培苗完全成活并生长一定大小后,即可移向大田用于生产。

如:茎尖→表面消毒→接种诱导培养基→茎尖生长→病毒检测鉴定→培养无根小植株→培养生根→完整小植株→炼苗20-25天→移栽成活。

常规情况下详细的生产流程图如下:。

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