乳鼠窦房结细胞 、心房肌细胞及心室肌细胞动作电位比较
心肌细胞生物电
(If)，激活慢，但依时间推移而增强，-100mV时充分 激活。(超极化最大激活)， 去极达到-50mV时关闭。
不同于0期负载的钠通道，可为铯（Cs+ ）阻断。
进行性衰减的 Ik电流——去极化时开放，平台期增
强，复极至-60 mV时K＋通道开始关闭。
都很快叫做“快钠通道”。
快反应细胞和快反应动作电位。
复极1期
Ito
(transient outward current)：
去极-40mV激活，开放
5-10ms。主要由一过性
K+外流形成。
复极2期（平台期）
ICa,L
（Long-lasting
type Ca2+-channel）
电压依从性：去极-40mV时激活， 激活与失活速度均慢，对离子的特
复极化 ：
1期复极（初期）：+30 mV 下降至 0 mV，历时
10ms;
0期和1期合称为锋电位。
2期复极（平台期）：0mV左右，持续100－150ms; 3期复极（末期）：0mV至–90 mV，历时100－150ms; 4期（静息期）：电位稳定在－90mV
AP形成机制
去极0期
Na+通道： 电压依从性 ，阈电位:-70mV，激活和失活
心肌生物电活动
心肌不同部位的生物电
心肌细胞的跨膜电位及其形成机制
工作心肌：
静息电位 动作电位
静息电位
心肌细胞膜内外几种主要离子的浓度及平衡电位值
离子 细胞内液 细胞外 液 145 4 2 104 膜内/外比 例 1：14.5 35：1 1：20000 1：11.5 平衡电位
心脏的电生理学及生理特性
最大区别： 心室肌细胞与窦房结细胞动作电位比较
窦房结细胞动作电位 4期发生了自动去极， 在自动去极基础上产生 新的动作电位！
-40mV
-70mV
心室肌细胞动作电位
窦房结P细胞动作电位
P细胞动作电位形成的离子基础
0期：Ca2+内流，速度慢、时程长、幅度小
3期：Ca2+内流停止，K+外流增强
4期：a. K+外流进行性衰减 b. Na+内流进行性加强 c. Ca2+内流增强
（2）影响传导性的因素
1) 结构因素：心肌细胞的直径。心肌细胞的直径房室交界结区 的细胞直径最小，传导速度最慢；普肯耶纤维的直径最大，传 导速度最快 2) 生理因素： ●动作电位0期去极化的速度和幅度： 0期去极化的幅度愈 大，兴奋部位与未兴奋部位间的电位差也愈大．形成的局部 电流也越愈强，对未兴奋部位的影响也愈强，传导也愈快。 0期去极化的速度愈快，局部电流的形成也愈快，对未兴奋 部位的影响也愈快，传导也愈快。
心脏的电生理及生理特性
（一）根据组织学与电生理学的特点分为： 工作细胞（执行收缩功能） 心房肌细胞 心室肌细胞 自律细胞（产生和传导兴奋） 窦房结细胞 浦肯野纤维细胞 （二）根据心肌细胞动作电位去极化的快慢分为： 快反应细胞（去极化速度和幅度大） 心房、心室肌、浦肯野细胞 慢反应细胞（去极化速度和幅度小） 窦房结和房室结细胞
●邻近未兴奋部位膜的兴奋：邻近膜的静息电位与阈电位之 间的差距增大．去极化达阈电位所需时间延长，则兴奋性降 低．兴奋传导速度减慢
3、自动节律性（心肌细胞在没有外来刺激的条件下，自动地
产生节律性兴奋的特性）
1）心脏的起搏点 ●心 内特殊传导系统中的自律细胞均具有自律性。其中窦房结 细胞的自律性最高(100次/min)，房室交界次之(50次/min)，普肯 耶纤维最低(25次/min)。 ●正常起搏点：窦房结控制着整个心脏兴奋和收缩。以窦房结为 起搏点的心脏节律性活动称为窦性节律。 ●窦房结以外的自律细 胞在正常情况下，其自律性得不到表现， 因此称为潜在起搏点。潜在起搏点的自律性升高或窦房结的兴奋 传导阻滞时，潜在起搏点可取代窦房结成为异位起搏点，控 制 心脏的活动。由异位起搏点引起的心脏节律称为异位节律
成年大鼠心室和窦房结细胞急性分离方法和动作电位比较
成年大鼠心室和窦房结细胞急性分离方法和动作电位比较范茁【期刊名称】《《实验技术与管理》》【年(卷),期】2019(036)010【总页数】3页(P86-88)【关键词】心室肌细胞; 窦房结细胞; 动作电位; 动作电位时程; 静息电位【作者】范茁【作者单位】华南理工大学生物科学与工程学院广东广州 510006【正文语种】中文【中图分类】R-332心脏是人及动物重要的供血器官，它靠有规律的博动向周围器官和组织运输新鲜血液，供应氧气和各种养分，使其维持正常的代谢功能[1]。
心脏规律性搏动的本质是动作电位的产生和传导引起的心肌细胞的扩布性舒缩[2-3]。
窦房结（sinoatrial node，SAN）位于上腔静脉和右心房交界处的界沟上端，其作为心脏的起搏点，控制心脏正常的节律性活动，窦房结的起搏细胞（P细胞）产生自发兴奋性动作电位，并将冲动传至新房肌细胞、房室结，进而由房室束传至心室肌细胞，引起心室收缩[4-6]。
在细胞水平研究心脏生理及病理条件下的功能、信号转导机制及药物作用机制在基础研究和临床应用领域都有很重要的作用。
酶解法是获得成年大鼠心肌细胞的主要方法[7-9]，膜片钳实验方法则是研究心肌细胞电生理的主要技术手段[10-12]。
本文介绍成年大鼠心室肌细胞和窦房结细胞的急性酶解分离方法，通过膜片钳技术手段记录二者的动作电位波形，并对二者动作电位形态、时程、静息电位等参数进行分析和比较。
（1）台式液（Tyrode, in mM）：NaCl(120), KCl(5.4), HEPES(25), MgCl2 (0.5), NaH2PO4(0.33), Taurine(10), Glucose(20). 室温调节PH值至7.2。
（2）KB液（in mM）：KOH(80), KCl(40), NaH2PO4(25), MgSO4(3), L-glutanic acid(50), Taurine(20), EGTA(1), HEPES(10), Glucose(10). 室温调节PH值至7.2。
心脏各部心肌细胞动作电位与传导速度
运动生理学
第二节 血管生理
运动生理学
运动生理学
运动生理学
运动生理学
运动生理学
一、动脉血压和动脉脉搏
血压是指血管内的血液对于单位面积血管 壁的侧压力，也即压强。 （一）动脉血压形成的条件 血液充盈血管是动脉血压形成的前提条件； 心脏的射血和血液流动过程中所遇到的外周阻 力是形成血压的基本条件。 安静状态下，血管前的小动脉和微动脉处 血压降幅最大，说明外周阻力主要来自口径较 小的动脉和微动脉。
运动生理学
运动生理学
（二）心脏的泵血过程
心房的初级泵血功能 心室收缩与射血过程
等容收缩期和射血期（快速射血期和减慢 射血期） 心室舒张与血液充盈 等容舒张期和充盈期（快速充盈期和减慢 充盈期） 在一个心动周期中，心室的收缩与舒张对 心脏泵血意义重大；心房提高了心室泵血的能 力。
运动生理学
运动生理学
（二）动脉血压的正常值
心室收缩时，主动脉压急剧升高，在收缩中期 动脉血压达到最大，称收缩压。 心室舒张时，主动脉压下降，在心舒末期主动 脉内压力最低，称舒张压。 收缩压和舒张压的差值称脉搏压，简称脉压。 我国健康青年人在安静状态下收缩压为 100~120毫米汞柱，舒张压为60~80毫米汞柱。 如果安静时血压持续超过160/95毫米汞柱者为高 血压；在140/90~160/95毫米汞柱之间为临界高 血压；血压持续低于90/50毫米汞柱者为低血压。
运动生理学
兴奋在心脏的不同部位传导速度不同，心 房肌和心室肌传导速度较快，因此，左右心房 几乎同时收缩，左右心室也几乎同时收缩。而 兴奋在房室交界处的传导速度较慢，约需0.1秒。 房—室延搁的生理意义：它能使心房兴奋 收缩结束后，心室再开始兴奋，保证了心房初 级泵的作用，有利于心室的充盈。
心脏各部心肌细胞动作电位与传导速度
浦肯野纤维
• 浦肯野纤维从房室结 向心室传导冲动。
• 这是心室收缩的关键 步骤。
传导速度受细胞间连接 的稠密程度和方式影响。
电解质浓度的变化可以 影响离子通道的打开和 关闭，从而影响传导速 度。
3 自律性细胞
自律性细胞会发放电冲 动，影响传导速度。
心肌细胞动作电位与心室收缩的关系
1
1. 心室细胞兴奋
心室细胞发放动作电位。
2
2. 离子通道打开
电位变化导致离子通道的打开，离子在细胞间流动。
3
3. 心室肌肉收缩
离子流动导致心室肌肉收缩。
心肌细胞动作电位与心房收缩的关系
1
1. 心房细胞兴奋
心房细胞发放动作电位。
2
2. 离子通道打开
电位变化导致离子通道的打开，离子在细胞间流动。
3
3. 心房肌肉收缩
离子流动导致心房肌肉收缩。
心脏各部心肌细胞传导速度差异的原 因
1 细胞间连接
心室细胞间连接较为稠密，导致其传 导速度较快。
心肌细胞动作电位的变化与心脏肌肉收缩 和放松的过程密切相关，是心脏正常运行 的基础。
心脏各部心肌细胞动作电位特点
心室细胞
特点：动作电位持续时间较长 影响：控制心室肌肉的收缩和舒张
心房细胞
特点：动作电位持续时间较短 影响：控制心房肌肉的收缩和舒张
心肌细胞传导速度的影响因素
1 细胞间连接
2 电解质浓度
2 细胞类型
心室细胞和心房细胞有不同的特征， 导致其传导速度有所差异。
3 离子通道
细胞膜上的离子通道类型和数量也影响传导速度。
心肌细胞动作电位与心脏节律调控的关 系
心肌细胞的生物电现象
5
—心传导系， 主要包括窦 房结P细胞和 哺肯野细胞。 —普通心肌 细胞，不具 自动节律性。
一、工作细胞的跨 膜电位
一．静息电位 静息电位-90mV。 K+平衡电位。 一．动作电位 常用0、1、2、3、4期
代表心室肌细胞动作电 位的各个时期。
K+的一过性外 向电流。
（1）除极过程 又称0期，占1-2ms。 Na+快速内流 （2）复极过程 包括三个阶段： 1期复极 膜内电位由+30mV迅速下降到0mV左右，习
4期又称为静息期。
肌膜上Na+-K+泵从细胞内排出多余的 Na+和Ca2+，并摄入K+。
二、自律细胞的跨膜电位
心室肌（A）与窦房结（B）细胞跨膜电位的比较
一．窦房结细胞 动作电位复极后出现明显的
4期自动除极。 窦房结细胞的最大复极电位
（-70mV）和阈电位（40mV）。
0期除极结束时，膜内 电位为0mV左右
惯上常把这两部分合称为锋电位。
3期复极是快速K+外流。
2期复极 非常缓慢，又称为平台期，持续约100-150ms。 同时有Ca2+内向电流和K+外向电流。 3期复极 细胞膜复极速度加快，膜内电位由0mV左右较快地下降到-
90mV，完成复极化过程，占时约100-150ms 。
4期：
4期是膜复极完毕、膜电位恢复后的时 期。
1
下次课讨论：
心传系、自主神经与心肌工作细胞的结合
复极初期，K+通道被激活， 出现K+外流。
Ca2+内流的逐渐减少和 K+外流的逐渐增加，膜便 逐渐复极。
由“慢”通道所控制、由 Ca2+内流所引起的0期除 极，是窦房结细胞动作电 位的主要特征。
心室肌细胞和窦房结细胞的跨膜电位及其形成的离子基础
心室肌细胞和窦房结细胞的跨膜电位及其形成的离子基础本文主要介绍了心室肌细胞和窦房结细胞的跨膜电位及其形成
的离子基础。
心室肌细胞是心肌的主要构成部分，具有自主收缩和传导心电信号的功能。
而窦房结细胞则是心脏起搏器，能够产生自主的心电信号。
两者的跨膜电位是心电信号传导和心肌收缩的关键环节，其形成主要依赖于离子通道的开放和关闭。
文章详细介绍了钠通道、钾通道、钙通道等离子通道在心肌细胞中的作用，以及它们在心肌细胞和窦房结细胞中的表达和调节机制。
同时，文章还探讨了心肌细胞和窦房结细胞跨膜电位的变化对心脏功能和心血管疾病的影响，为心血管疾病的预防和治疗提供了一定的科学依据。
- 1 -。
第二节 心肌细胞的生物电现象
最大舒张电位：-60mv -40mv 缓慢 0mv（不出现反极化） 约70mv 不稳定（自动去极化） 0，3，4
7
心电图（electrocardiogram）
Einthoven, Willem (1860-1927)
1901年研制成功心电图机，于1924年获诺贝尔生理 学或医学奖。
8
1、心电图的导联
窦房结细胞的最大舒张电位（-50~-60）
4
心室肌细胞动作电位：
0期：去极化过程，Na+内流 , 1~2ms。
1期：快速复极化初期， K+外流， 10ms。
2期：缓慢复极化期（平台期） Ca 2+内流， K+外流。 100~150ms. 3期：快速复极化末期 K+外流。100~150+泵出，泵入K+ 。
10
PR间期：心房去极化开始至心室去极化开始的时间 ST段：代表心室各部分心肌均已处于动作电位的平台
期，各部分之间没有电位差存在
QT 间期：心室去极化和复极化所需的时间
11
(1)标准导联 Ⅰ导联 左手→右手 Ⅱ导联 左足→右手 Ⅲ导联 左足→左手 (2)加压单极肢体导联 aVR aVL aVF (3)单极胸导联
V1、V2 、V3 、V4 、V5 、V6
9
2、正常心电图波形及其生理意义 P波：反映左右两心房的去极化过程 QRS波群：反映左右两心室去极化过程的电位变化
T波：反映心室复极过程中的电位变化
5
窦房结细胞动作电位
0期： Ca 2+内流 3期： Ca 2+内流 K+外流 4期： K+外流， Na+内流 Ca 2+内流
6
心室肌细胞与窦房结细胞跨膜电位比较
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乳鼠窦房结细胞、心房肌细胞及心室肌细胞动作电位比较陈茜;王容;项国剑;李泱;林风辉;张建成【摘要】目的研究乳鼠窦房结细胞、心房肌细胞及心室肌细胞的动作电位.方法选12只新生24 h内的Wistar大鼠乳鼠,分离培养窦房结细胞、心房肌细胞和心室肌细胞,运用全细胞膜片钳技术记录动作电位.结果窦房结细胞体积小,细而长,呈长梭形,搏动频率为(152.1±10.9)min-1;心房肌细胞体积亦较小,梭形或三角形,搏动频率为(116.3±8.6)min-1;心室肌细胞体积较大,可伸出伪足并交织成网,呈短梭形、多角形或不规则形,搏动频率为(92.4±9.3)min-1,3种细胞的搏动频率差别均有统计学意义(P<0.01).3种细胞的静息电位分别为(-41.3±4.0),(-50.7±2.9)及(-59.8±2.1)mV,差别无统计学意义(P>0.05).心室肌细胞的APD20,APD50和APD90均较心房肌细胞延长,差别具有统计学意义(P<0.05).结论 3 种细胞形态各异 ,窦房结细胞具有自发性搏动 ,心室肌细胞动作电位时程较心房肌细胞长 .【期刊名称】《福建医科大学学报》【年(卷),期】2018(052)004【总页数】5页(P220-224)【关键词】窦房结;肌细胞,心脏;动作电位;电生理学【作者】陈茜;王容;项国剑;李泱;林风辉;张建成【作者单位】福建省立医院,福建医科大学省立临床医学院重症医学四科,福州350001;福建省立医院,福建医科大学省立临床医学院干部特诊一科,福州350001;福建省立医院,福建医科大学省立临床医学院心内科,福州350001;中国人民解放军总医院心内科,北京100853;福建省立医院,福建医科大学省立临床医学院重症医学四科,福州350001;福建省立医院,福建医科大学省立临床医学院心内科,福州350001【正文语种】中文【中图分类】R-332;R322.11;R329.25;R337.5;R341心脏实现泵血功能是以心肌的收缩和舒张为基础的，心脏之所以能不停地进行有序的、协调的收缩与舒张交替的活动，归根结底都是由心肌细胞动作电位(action potential, AP)的规律性发生与扩布引起的。
窦房结是心脏正常窦性节律的起搏点，窦房结细胞具有强大的自律性，可以自发、有节律地搏动。
心脏的正常搏动由窦房结组织产生，并按传导组织的顺序依次通过结间束抵达房室结及心房肌，后通过希氏束、浦肯野纤维使全部心室肌几乎同时被激动，从而引起心肌细胞有节律地收缩和舒张。
已知心肌细胞主要由4类细胞组成，包括心室肌细胞(ventricular cell, VC)、心房肌细胞(atrial cell, AC)、窦房结细胞(sino-atrial node cell, SNC)[包括移行细胞(T-细胞)和起搏细胞(P-细胞)]和浦肯野纤维。
前二者是工作细胞，具有稳定的静息电位，主要执行收缩功能，在4相的静息期无自动去极化功能。
而窦房结细胞是自律性细胞，它们组成心内特殊传导系统，这类细胞大多没有稳定的静息电位，在4相的最大舒张期可以发生缓慢自动去极化，并可自动产生节律性兴奋。
目前，乳鼠和成年大鼠心肌细胞被用于药物干预、缺氧复氧损伤、疾病模型离子通道改变等方面的研究，但成年大鼠心肌细胞分离后无法传代和长时间培养，只能用于即时及短时间研究，限制了干预[1-3]，而乳鼠心肌细胞由分离培养后获得，数量多，对乳鼠心肌细胞膜AP的认识有利于今后进行模型构建、药物干预等较长时间的研究。
为此，本研究采用全细胞膜片钳技术，观察乳鼠窦房结细胞、心房肌细胞及心室肌细胞的AP，并进行比较。
1 材料与方法1.1 材料1.1.1 动物新生24 h内Wistar大鼠15只，清洁级，雌雄不拘，SPF级[斯贝福(北京)实验动物科技有限公司，许可证号：SCXK(京)2011-0004]，质量检测单位：中国食品药品检定研究院。
1.1.2 试剂与溶液 DMEM细胞培养基、PBS磷酸盐缓冲液(美国Thermo公司)；FBS胎牛血清(美国Invitrogen公司)；HEPES缓冲液(美国Amresco公司)；青链霉素混合液(北京索莱宝科技有限公司)；Trypsin(中国Hotaibio公司)；NaCl，KCl，NaHCO3，MgCl2·6H2O，Na2ATP，K-aspartate，CaCl2，Na2ATP及葡萄糖(美国Sigma公司)。
记录单细胞AP的细胞外液(mmol/L)配方：NaCl 140，KCl 4，MgCl2·6H2O 1.0，HEPES 10，Glucose 5，CaCl2 1.0；pH值用NaOH调至7.36。
记录单细胞AP 的电极内液(mmol/L)配方：K-aspartate 120，KCl 20，MgCl2·6H2O 1.0，Na2ATP 4，HEPES 10，Glucose 10；pH值用KOH调至7.30。
1.2 方法1.2.1 乳鼠心肌细胞的急性分离与培养方法 (1)取材：乳鼠体表用75%酒精反复浸泡数秒后，呈仰卧位固定四肢于泡沫上，消毒胸腹部皮肤，沿胸骨右缘剪开并去除前胸壁，暴露心脏，置于解剖显微镜下分离心包膜，将心脏向右下方轻轻牵拉，轻移右心耳，看清上腔静脉，于界嵴中部静脉窦侧、前腔静脉根部取0.7 mm×0.7 mm×0.7 mm的组织块，同时剪取心房组织及心室中下1/3处，立即置于预冷的不含血清的DMEM培养液；(2)冲洗：将组织培养皿置于超净台中，用滴管反复轻柔吹打组织，洗去部分残留血液后，再次将组织块移入PBS液中反复吹打冲洗，直至洗净；(3)消化：将清洗后的组织块移入消毒过的青霉素小瓶内，用眼科剪将组织块剪碎成0.5～1.0 mm3的乳糜状小块，加入体积为组织块30～50倍的0.08%的胰酶，用吸管轻柔吹打0.5 min，自然沉淀后弃上清液。
再加入0.08%的胰酶(体积同上)，置于37 ℃水浴中轻轻振荡3～5 min，吹打0.5 min，自然沉淀，吸取上清液，加入等体积的10% FBS培养基终止消化，重复消化3～5次，至基本消化成单细胞为止；(4)过滤、离心：将细胞悬液用400目金属滤网过滤后分装于15 mL的离心管中离心，940 r/min下离心6 min，弃上清液；(5)接种培养：每根15 mL离心管用含10% FBS培养基重悬后，将单细胞悬液接种于60 mm的培养皿内，置于37 ℃、体积分数为0.05的CO2孵箱中孵育90 min；(6)采用差速贴壁法分离技术，因成纤维细胞贴壁快，培养皿中的细胞悬液即为较纯化的心肌细胞，轻轻吸出培养皿内的细胞悬液，分装于6个35 mm的培养皿内，放回培养箱继续孵育，每天换液1次，以备膜片钳记录用。
1.2.2 膜片钳记录方法及刺激参数的设置选取细胞膜完整、表面光滑、横纹清晰的心肌细胞检测AP。
采用全细胞膜片钳记录的方法，将膜片钳放大器(Axonpatch 700B，美国Axon公司)与计算机连接，应用数模转换器(Digidata 1440A，美国Axon公司)采集刺激信号及电压输入信号，此过程由Clampfit-9.2软件控制调节。
GG-17玻璃毛坯经微电极拉制仪(pp-83，日本Narishige公司)经两步法拉制成电阻为3.0～5.0 MΩ的微电极，常规安装电极并调整方向，调节三维微操纵器，使微电极头端进入细胞外液，在显微镜下观察电极的位置，缓慢移动，使其与细胞膜进行封接，电极电阻上升0.5～1 MΩ时停止移动，通过注射器给电极施加负压，使封接电阻达1 GΩ或以上，吸破细胞膜成为全细胞记录模式，信号经截止频率为1 kHz的四阶贝塞尔低通滤波器，采样频率为5 kHz。
将膜片钳设定为电流钳模式，记录窦房结细胞AP时不给予刺激，记录心房肌及心室肌细胞膜AP时给予2.5 ms、1 000 pA、1.0 Hz的外向电流，诱导并记录心室肌单细胞AP。
1.3 统计学处理数据以表示，采用pCLAMP 9.2进行图形采集和Origin软件进行处理。
采用SPSS 17.0软件进行统计学处理，2组间比较采用t检验。
P<0.05为差别有统计学意义。
2 结果2.1 窦房结细胞、心房肌细胞及心室肌细胞分离培养后的生长状况于倒置显微镜下观察分离培养后的细胞：接种培养后，视野下见大小不等、圆形、清亮的单细胞悬浮于培养基中，4 h后，3种细胞均开始贴壁生长，16 h后可见部分散在细胞开始搏动；48 h后各类细胞胞体不断增大，搏动的细胞渐增多，偶可见融合成片状的细胞同步搏动。
培养24 h后，可见窦房结细胞体积小，细而长，呈长梭形(图1A)，心房肌细胞体积亦较小，呈梭形或三角形(图1B)，而心室肌细胞体积较大，可伸出伪足并交织成网，呈短梭形、多角形或不规则形(图1C)。
A：窦房结细胞(×100)； B：心房肌细胞(×100)；C：心室肌细胞(×40).图1 倒置显微镜下观察分离培养后的细胞Fig 1 Observation of cells isolated and cultured under inverted microscope2.2 窦房结细胞、心房肌细胞及心室肌细胞培养后搏动频率比较随机选取窦房结细胞、心房肌细胞和心室肌细胞各10个计算搏动频率，3种细胞的搏动频率分别为(152.1±10.9)，(116.3±8.6)，(92.4±9.3)min-1，组间两两比较，差别均有统计学意义(P<0.01，图2)。
VC：心室肌细胞；AC：心房肌细胞；SNC：窦房结细胞.图2 窦房结细胞、心房肌细胞及心室肌细胞搏动频率比较Fig 2 Comparison of beating rates in sino-atrial node cells, atrial cells and ventricular cells2.3 窦房结细胞、心房肌细胞、心室肌细胞膜AP 在膜片钳实验电流钳模式下记录3种细胞的AP，在不给予任何电流的刺激下，窦房结细胞可记录到自发性AP(图3A)，给予2.5 ms、1 000 pA、1 Hz的电流刺激后，可诱发出心房肌和心室肌细胞AP(图3B，3C)。
心房肌细胞AP形状呈三角形，而心室肌细胞的AP形状则更像矩形。
A：窦房结细胞； B：心房肌细胞； C：心室肌细胞.图3 窦房结细胞、心房肌细胞及心室肌细胞动作电位Fig 3 Action potential of sino-atrial node cells, atrial cells and ventricular cells2.4 窦房结细胞最大舒张电位(maximum depolarization potential, MDP)及心房肌细胞、心室肌细胞膜AP静息电位(resting membrane potential, RMP)的比较窦房结细胞没有稳定的静息电位，其MDP为(-41.3±4.0)mV(n=16)，而心房肌细胞、心室肌细胞的RMP分别为(-50.7±2.9)mV(n=11)，(-59.8±2.1)mV(n=13)，差别无统计学意义(P>0.05，图4)。