小鼠小肠粘膜上皮细胞使用说明
小鼠小肠粘膜上皮细胞
小鼠小肠粘膜上皮细胞产品介绍:
为使能尽快开展实验，派瑞金发货的原代细胞均处于对数生长期，且每次发货为汇合率达到70%的细胞，收到细胞后即可开展实验。
派瑞金提供的小鼠小肠粘膜上皮细胞取自新鲜的组织，按照标准操作流程分离培养。研发的小鼠小肠粘膜上皮细胞完全培养基能提供细胞最佳的生长条件，降低杂细胞污染，保证不同批次间细胞质量的稳定。
同时，派瑞金还建立了严格的细胞鉴定流程，所提供的原代细胞均需经过细胞类型特异性标记物、细胞形态学等检测，保证细胞纯度在90%以上；同时也需经过微生物检测，保证不含有HIV、HBV、HCV、支原体、真菌及其他类型的细菌。
小鼠小肠粘膜上皮细胞注意事项：
1. 收到细胞后首先观察细胞瓶是否完好，培养液是否有漏液、浑浊等现象，若有上述现象发生请及时和我们联系。
2. 仔细阅读细胞说明书，了解细胞相关信息，如细胞形态、所用培养基、血清比例、所需细胞因子等。
3. 请用相同条件的培养基用于细胞培养。培养瓶内多余的培养基可收集备用，细胞传代时可以一定比例和自备的培养基混合，使细胞逐渐适应培养条件;建议使用派瑞金的完全培养基。
4. 建议收到细胞后前3天各拍几张细胞照片，记录细胞状态。
5. 该细胞只能用于科研，不得用于临床应用。
小鼠小肠粘膜上皮细胞其他相关小鼠原代细胞：
小鼠小肠粘膜上皮细胞小鼠大隐静脉平滑肌细胞
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小鼠小肠粘膜中的退变暗细胞
电子显微学报980438 科技期刊 电子显微学报 Journal of Chinese Electron Microscopy Society 1998年 第17卷 第4期 No.4Vol.17 1998 梁 平 周琳瑛 陈莲云 钟秀容 (福建医科大学电镜室，福州 350004) 电镜下的暗细胞早就被描述，但其本质众说纷纭。近年来有些作者在肿瘤和其他病理组织内见到伴有线粒 体肿胀的暗细胞，认为是有别于凋亡、坏死的另一种细胞死亡方式，称之为B型暗细胞［1］、退变暗细胞［2］ 或木乃伊细胞［3］。我们在正常小鼠和雷公藤内酯醇作用后小鼠小肠粘膜中均见到退变暗细胞，报告如下。 小鼠15只，分5组。实验组腹腔内注射雷公藤内酯醇(0.1r/克体重)，于1/2、1、3和5h后各处死1组。对照组 一次腹腔内注射生理盐水。取小肠行常规超薄切片，除超微结构观察外，以连接于EM-208电镜的SIS图像分析系 统在4400倍放大下获取图像。在注射药物后3h组小鼠的同一张超薄切片中，选陷窝正常柱状细胞(亮细胞)及暗 细胞各10个，测量细胞面积、核面积、浆面积、细胞周长、核周长、核/浆面积比、细胞形状因子和核形状因 子。此外，对亮细胞及暗细胞各17个，测量核的灰度值，绘成直方图。所有数据用均数±标准差表示，核灰度 值进行秩和检验，其他用t检验，以P＜0.01为显著差异。 超微结构观察 对照组及1/2、1h实验组柱状细胞内偶见凋亡小体。3h组凋亡小体增多，5h组大量出现。早期凋 亡细胞少见，其体积缩小，胞浆突起消失，外形趋于圆形或有泡状隆起，胞浆基质深浅不一(图1、2)。对照组 及实验组均见暗细胞，多单个散在，也可小群聚集，胞质性突起尚存但变细，染色质分布无明显改变，主要特 征是胞浆及核基质均变深。有的暗细胞发生退变，线粒体肿胀，甚至内质网、核周隙扩张，此种细胞常位于小 肠绒毛表面(图3、4)。暗细胞和凋亡细胞间无移行，偶可摄取凋亡小体或含数个凋亡小体(图2、5)。 图像分析 暗细胞平均面积、平均核面积、核形状因子、细胞形状因子、核平均灰度值均显著小于亮细胞者(P ＜0.01)。直方图显示暗细胞核的灰度值明显变低，分布范围亦变小，灰度值121—136的核区占总面积71%。 讨论 Johannisson［4］根据其线粒体、内质网有否扩张，把暗细胞分为A、B两型，认为B型暗细胞极可能是濒 死细胞。本研究看到的暗细胞与文献报导相符，部分明显退变，即所谓B型暗细胞，它和A型暗细胞存在着移 行。根据图像分析，暗细胞和正常柱状细胞的差异是多方面的，也是客观存在的，难用固定不良或仅仅脱水来 解释其出现。从细胞外形、核形态及胞浆电子密度等方面，暗细胞均有别于凋亡细胞，而且二者可以并存，即 暗细胞可以摄取凋亡小体于其胞浆内。Benharroch［3］用原位DNA末端标记法发现暗细胞极少呈阳性，进一步 证实它和凋亡的区别。 小肠粘膜上皮不断进行更新，陷窝内细胞增殖，绒毛顶部衰老细胞脱落。小鼠小肠未见暗细胞破碎或被吞 噬，退变暗细胞多位于绒毛处，最终结局可能是脱落进入肠腔。暗细胞和小肠上皮更新或许有关，但不能把二 者等同，因绒毛尖部并非均为暗细胞。无论如何，由暗细胞到退变暗细胞最终脱落，应属于程序性细胞死亡范 畴，其生理病理意义有待深入探讨。 参考文献 ［1］Harmon B V. J.Pathol.,1987,153∶345. ［2］Honma T,Bang D,Lee S. Human Pathol.,1993,24∶384. ［3］Benharroch D,Prinsloo I,Goldstein J et al.Ultrastruct.Pathol.,1996,20∶497. ［4］Johannisson E. Acta Endocrinol.(Supple 30),1968,58∶7. file:///E|/qk/dzxwxb/980438.htm（第 1／2 页）2010-3-22 18:37:00
动物小肠粘膜上皮细胞的能量营养
动物小肠粘膜上皮细胞的能量营养 摘要小肠粘膜承担着动物体多种重要生理功能，粘膜上皮细胞的损伤及其功能的紊乱关系到消化系统自身稳定和动物体的健康。小肠粘膜上皮细胞的自身更新、高度有序结构的维持和各种生理功能的进行需要能量，饲粮谷氨酰胺、谷氨酸、天冬氨酸和动脉谷氨酰胺是上皮细胞的主要燃料。本文对小肠粘膜结构及上皮细胞迁移、粘膜上皮细胞能量流向、能量来源以及小肠粘膜营养对断奶仔猪肠道发育的影响进行了综述。 关键词小肠粘膜；上皮细胞；能量营养；谷氨酰胺 动物在生命活动中，必须经常从外界环境摄取营养物质，作为机体活动和组织生长的物质和能量来源。食物中的营养物质大多不能被动物直接吸收利用，必须经消化道内加工，转变成结构简单的可溶性小分子物质，才能透过消化道上皮进入血液和淋巴，供机体组织利用。因而，营养的首要过程是消化吸收，肠道是动物消化吸收的主场所，肠道的正常发育和健康关系到动物整体健康和良好生产性能，意义甚大。 肠道不仅是营养物质消化和吸收的重要场所，而且是营养物质代谢的主要器官（张军民，2000）。肠道局部营养尤其是小肠粘膜细胞的能量营养是营养学的重要组成部分，它不仅是小肠自身正常发育所必需的，也是消化、吸收等诸多生理过程能够正常进行所必需的。重视小肠本身的营养，强调小肠粘膜营养在动物营养中的作用，尽量减少肠道结构和形态的变化，从而为动物正常生存和发育提供良好的物质基础。 1 小肠粘膜结构和细胞迁移 小肠壁的结构可分为四层，自内向外依次为粘膜层、粘膜下层、肌层和外膜。粘膜层是由上皮、固有膜和粘膜肌层组成。小肠粘膜主要由肠上皮细胞和分散其间的杯状细胞组成。 小肠粘膜层的表面形成指状突起??小肠绒毛，在绒毛底部有成单管状的隐窝，两者的上皮互相连接。在胚胎时期，小肠上皮细胞由肠粘膜下层的细胞分化，分化的细胞停留于隐窝。隐窝底部的上皮细胞不断进行有丝分裂，完成有丝分裂的细胞在其它细胞的推动下逐渐从隐窝向绒毛移行，最后到达小肠绒毛顶端并脱落，脱落的肠道上皮细胞进入肠腔并随粪便排出体外，成为内源性物质的一部分。通过不断分裂和脱落，小肠上皮细胞处于一种动态平衡，这种动态平衡持续于动物的一生。这个过程称为粘膜细胞的迁移，迁移所需的时间称为细胞周转（向土寿，1990）。 粘膜上皮细胞间连接紧密，成熟的肠上皮细胞突出在绒毛的顶部，不断被更新，在所有的组织中其周转率最高。正常情况下，成年动物小肠粘膜上皮细胞大约2~4天全部更新一次，在新生动物，细胞周转大约需7~10天（向土寿，1990），如果幼龄动物的肠粘膜上皮细胞被损害则其比成年动物更难恢复。 小肠的功能单位是绒毛，作为绒毛的功能细胞??肠上皮细胞起源于不同的隐窝细胞，在隐窝处肠上皮细胞是分泌性的，当它移行到绒毛的一侧，成熟为吸收的绒毛细胞，微绒毛变长、细胞数目增多且消化酶发育，如果绒毛顶端被损害，成熟的吸收细胞丢失产生消化酶净分泌的能力；选择损伤不成熟的隐窝细胞，理论上应该产生有利的影响，但实际上造成严重
小鼠小肠粘膜上皮细胞使用说明
小鼠小肠粘膜上皮细胞 小鼠小肠粘膜上皮细胞产品介绍: 为使能尽快开展实验，派瑞金发货的原代细胞均处于对数生长期，且每次发货为汇合率达到70%的细胞，收到细胞后即可开展实验。 派瑞金提供的小鼠小肠粘膜上皮细胞取自新鲜的组织，按照标准操作流程分离培养。研发的小鼠小肠粘膜上皮细胞完全培养基能提供细胞最佳的生长条件，降低杂细胞污染，保证不同批次间细胞质量的稳定。 同时，派瑞金还建立了严格的细胞鉴定流程，所提供的原代细胞均需经过细胞类型特异性标记物、细胞形态学等检测，保证细胞纯度在90%以上；同时也需经过微生物检测，保证不含有HIV、HBV、HCV、支原体、真菌及其他类型的细菌。 小鼠小肠粘膜上皮细胞注意事项： 1. 收到细胞后首先观察细胞瓶是否完好，培养液是否有漏液、浑浊等现象，若有上述现象发生请及时和我们联系。 2. 仔细阅读细胞说明书，了解细胞相关信息，如细胞形态、所用培养基、血清比例、所需细胞因子等。 3. 请用相同条件的培养基用于细胞培养。培养瓶内多余的培养基可收集备用，细胞传代时可以一定比例和自备的培养基混合，使细胞逐渐适应培养条件;建议使用派瑞金的完全培养基。 4. 建议收到细胞后前3天各拍几张细胞照片，记录细胞状态。 5. 该细胞只能用于科研，不得用于临床应用。 小鼠小肠粘膜上皮细胞其他相关小鼠原代细胞： 小鼠小肠粘膜上皮细胞小鼠大隐静脉平滑肌细胞 小鼠肺微血管内皮细胞小鼠冠状动脉平滑肌细胞 小鼠肺血管平滑肌细胞小鼠大隐静脉内皮细胞 小鼠Ⅱ型肺泡上皮细胞小鼠冠状动脉内皮细胞 小鼠气管上皮细胞小鼠骨细胞 小鼠气管平滑肌细胞小鼠滑膜细胞 小鼠肺成纤维细胞小鼠骨骼肌细胞 小鼠支气管上皮细胞小鼠表皮细胞 小鼠支气管成纤维细胞小鼠真皮成纤维细胞 小鼠肺大静脉平滑肌细胞小鼠破骨细胞 小鼠肺大动脉平滑肌细胞小鼠皮肤肥大细胞
脱细胞猪小肠粘膜下层基质材料中生长因子的 定量检测
Material Sciences 材料科学, 2018, 8(5), 595-602 Published Online May 2018 in Hans. https://www.360docs.net/doc/7611608293.html,/journal/ms https://https://www.360docs.net/doc/7611608293.html,/10.12677/ms.2018.85070 Quantitative Detection of Growth Factors in Porcine Small Intestinal Submucosa Matrix Materials Yang Zhang1, Leilei Xia1, Jianping Gao2, Fumin Men1, Xiaolong Zheng1, Jinhui Zhang1, Yi Chen1*, Bo Zhao1* 1Beijing Biosis Healing Biological Technology Co., Ltd., Beijing 2State Key Laboratory of Biochemical Engineering, Institute of Process Engineering, CAS, Beijing Received: May 4th, 2018; accepted: May 20th, 2018; published: May 28th, 2018 Abstract In this study, three growth factors including basic fibroblast growth factor (FGF2), transforming growth factor β1 (TGFβ1) and vascular endothelial growth factor (VEGF) in two SIS products (VIDASIS TM and Biodesign?) were quantified by enzyme linked immune sorbent assay (ELISA) kit through the preliminary treatment of liquid nitrogen freezing and grinding technology which was aimed to release the growth factors from the tissue. Results showed that contents of TGFβ1, VEGF and FGF2 in VIDASIS TM were 8375 ± 2125 pg/g, 5486 ± 1043 pg/g and 3990 ± 1372 pg/g respec-tively; while the corresponding contents in Biodesign? were 11517 ± 1331 pg/g, 5432 ± 272 pg/g and 5417 ± 947 pg/g. Keywords Porcine Small Intestinal Submucosa, Acellular Matrix, Transforming Growth Factor, Basic Fibroblast Growth Factor, Vascular Endothelial Growth Factor 脱细胞猪小肠粘膜下层基质材料中生长因子的定量检测 张扬1，夏磊磊1，高建萍2，门福民1，郑晓龙1，张晋辉1，陈毅1*，赵博1* 1北京博辉瑞进生物科技有限公司，北京 2中国科学院过程工程研究所生化工程国家重点实验室，北京 *通讯作者。