植物激素脱落酸ABA受体的研究报告
植物激素ABA对水稻种子萌发的影响研究
植物激素ABA对水稻种子萌发的影响研究植物激素ABA，或称脱落酸，是一种广泛存在于植物体内，对整个植物生长与发育都发挥重要作用的植物内源激素。
除了调控植物的开花、营养物质的合成和维持生物节律等诸多方面外，植物激素ABA在种子发育和萌发中也发挥着重要的作用。
在本文中，我们将讨论植物激素ABA对水稻种子萌发的影响，以及与ABA 相关的一些基因和信号通路。
ABA是一种化学结构简单的植物激素，可由植物体内的脱落酸前体合成而来。
植物体内的ABA含量受到许多生物和非生物因素的影响，如温度、光照、水分等环境因素，以及植物生长过程中的内部调节。
ABA的存在与否对植物种子在萌发过程中的速度和成功率都有着至关重要的影响。
在水稻的种子萌发过程中，ABA是一个重要的调节因素。
ABA通过影响胚乳乳化酶和α-淀粉酶等酶途径，来抑制水稻种子的发芽。
ABA对胚乳乳化酶的抑制使得种子向内部的营养物质供应减少，从而影响种子发育和萌发；同时，ABA还能抑制α-淀粉酶的活性，使得淀粉转化为可滴定糖的速率降低，从而减少能源的供应。
这样，ABA在水稻种子的萌发过程中发挥了重要的抑制作用，从而使得水稻种子在不适宜的环境下能够“蛰伏”。
除了对种子萌发的抑制作用，ABA还在其他植物生长发育过程中扮演着重要的角色。
ABA通常被认为是一种“压抑型激素”，它能抑制植物的生长和发育，以应对不同的生长和环境压力。
例如，ABA可在植物遭受水分胁迫等逆境时诱导根系生长，并促进植物对逆境的适应；ABA还可调控植物的开花时间、植物生长节律以及干旱时的耐受性等等。
ABA的这些特性为我们提供了一个研究植物耐逆性、调控种子萌发的机会。
通过探索ABA在水稻种子萌发中的生化机制、信号转导通路、ABA响应元件等方面的研究，不仅可以进一步深化我们对植物生长发育和逆境响应的理解，还能为未来植物遗传改良提供有益的参考。
研究表明，除了ABA以外，许多与ABA信号转导通路相关的基因和蛋白也能影响水稻种子的萌发。
冷胁迫下植物激素ABA信号通路的研究进展
调控基因:直接参与非生物胁迫反应，调控下游 基因的表达和信号转导。包括在信号转导通路中 参与信号转导途径的转录因子；感应和参与传递 胁迫信号的蛋白激酶，如有丝裂原活化蛋白激酶 （mitogen-activated protein kinase(MAPK)）、钙依 赖而不依赖钙调素的蛋白激酶（calcium-dependent and calmodulin-independent protein kinase(CDPK)）、 转录调控蛋白激酶（transcription-regulate）、在调 控胁迫信号转导和基因表达中，起重要作用的蛋 白磷酸化酶和蛋白酶。
AP2 domain
This 60 amino acid residue domain can bind to DNA and is found in transcription factor proteins.
NCBI PSSM-Id:250173
张梅等.遗传,2009,31(3):236-244.
植物在非生物逆境胁迫下诱导的基因表 达及产物
通过基因转录组（transcriptome）的转录分析和基 因产物的不同作用，将这些基因分为两大类： 功能基因:基因编码的产物直接保护植物细胞免 受胁迫，如甜菜碱、脯氨酸、糖类等；免受胁迫 伤害的功能蛋白，晚期胚胎发育蛋白（LEA）、 热应激蛋白（HSPs）、蛋白分子伴侣、渗调蛋白、 抗冻蛋白；参与水分和离子吸收转运的蛋白，如 水通道蛋白和离子转运蛋白；保护细胞免受ROS 伤害的毒性降解酶，如谷胱甘肽S -转移酶，过氧 化氢酶，超氧化物歧化酶，抗坏血酸过氧化物酶 等。
ABA
MDA含量 H2O2含量 可溶性糖或 蛋白含量
SOD活性 CAT活性 APX活性
细胞膜通透 性（相对电导率) 叶绿素含量
脱落酸ABA植物抗性研究进展
脱落酸(ABA)植物抗性研究进展摘要：脱落酸( ABA )是一种重要的植物激素，在植物对抗胁迫环境中发挥重要作用。
综述了近些年来国内外有关 ABA 生理功能抗逆性研究的一些最新进展，重点阐述了 ABA 在植物逆境胁迫中对植物生长及生理的影响。
关键词：脱落酸植物抗性研究进展由于工业生产、自然灾害频繁发生，植物生长处于逆境环境中，提高植物抗逆性成了研究的热点。
目前主要通过添加外源激素等技术来提高植物抗逆性。
ABA 是一种植物体内源激素，能够控制植物生长及促进衰老，研究发现， ABA 在干旱、高盐、低温等逆境胁迫反应中起重要作用，是植物的抗逆诱导因子，被称为植物的“胁迫激素” 。
本文主要阐述了ABA 在逆境中对植物生理生化的影响，展望该领域今后研究的重点。
1、逆境胁迫下植物体内 ABA 的积累ABA 在叶绿体中合成，然后转移积累到其他组织中。
研究发现根系在脱水的情况下能合成大量的 ABA ，植物的其他器官，如成熟的花、种子也能合成ABA有研究发现干旱胁迫下，紫花苜蓿根部水分状况的改变可引起 ABA 的增加，可能是根部 ABA 经蒸腾作用直接到达叶片，或是 ABA 快速释放引起的。
2、逆境胁迫下 ABA 对植物生长的影响、对植物生长的影响崔志青等人研究表明施用 ABA 能够优化穗部性状发育，增加作物产量。
在研究外源 ABA 对匍茎翦股颖( Agrostis stolonifera)高温休眠影响的试验中发现：高温胁迫下，添加 ABA 延迟植株枯黄时间，降低休眠期的枯黄率，提高叶片含水量。
ABA 处理甜椒后发现，不同浓度 ABA 对甜椒常温苗和驯化苗的株高、茎重均无显着影响，但显着促进驯化苗的侧根生长。
、对植物叶绿素含量的影响叶绿素含量可以反应植物光合能力，表明植物光合能力。
Cd胁迫下小麦幼苗经ABA处理10d后，叶片叶绿素含量增加。
试验证明低温胁迫下，喷洒 ABA 减缓叶绿素降低速度。
蒲高斌等人研究外源 ABA 对西瓜幼苗抗冷性影响也得到同样结论。
脱落酸_ABA_受体的研究进展
脱落酸_ABA_受体的研究进展() 植物学通报 1998 , 15 4:36,40Chi nese B ulleti n of B ota ny脱落酸( ABA) 受体的研究进展吴忠义陈珈朱美君( ) 北京农业大学生物学院北京 100094() 摘要植物激素脱落酸 ABA在植物对逆境适应及种子发育过程中具有重要的生理功能。
尽管 ABA 作用的分子机制还不清楚 ,ABA 受体还未得到鉴定 ,但近年来对 ABA 结合蛋白的研究取得了可喜的进展 , 已在多种植物中证明存在与 ABA有高亲和力的结合蛋白。
ABA 的识别到底发生在胞外还是胞内 ,近几年随着微注射技术的应用 ,也得到不少实验证据。
ABA 信号的转导途径 ,特别是位于下游区域参与信号传递的物质的研究取得重大进展 ,其中以 ABA 调节气孔保卫细胞开关的信号传递成为研究这一领域的模式体系。
关键词 ABA 结合蛋白 ,ABA 结合位点 ,ABA 受体 ,ABA 信号转导THE PRO GRESSES OF STUD IES O N ABSCISICACID RECEPTO RSWU Zhong2Yi CHEN J ia ZHU Mei2J un ( )College of Biological Science , China Agricultural University , Beijing 100094( ) Abstract Abscisic acid ABAparticipates in the control of diverse physioogical process. Al2( ) though the molecular mechanism of ABA action is unknown , ABA receptor shave not yet been identified , high affinity of ABA binding proteins in some plants , either membrane2bound or soluble , have beendescribed. The sense of ABA lies in the outside or inside of plasma membrane , there are some evidences with the techniques of microinjection. Considerable progress has been recently made in the characterization of more downstream elements of the ABA regulatory network , especially in the control of stomatal aperture by ABA. The details of the underlying signalling pathways start to emerge .Key words ABA binding proteins , ABA binding sites , ABA receptors , ABA signal transduction植物的生长和发育由于不可避免地受到各种不利环境的干扰 ,于是演化出一套适应和对付各种逆境的机制和策略 ,很多研究表明 ABA 对于植物适应逆境起着极其重要的作 () 用 Davies ,1991,因此研究 ABA 的作用机理具有重要的理论意义和实践意义。
ABA对木樨科植物抗冻性影响的研究
ＡＢＡ对木樨科植物抗冻性影响的研究摘要通过电导法测定经不同浓度脱落酸（ABA）水培的3种木樨科植物在3种低温条件下受伤害的程度，研究脱落酸对植物抗冻性的影响。
结果表明：在其他条件相同时，冰冻时间越长，植物受伤害程度越大；在适合范围内，脱落酸浓度越大，植物受伤害程度越小，抗逆性越强；水培时间越长，伤害度越大。
关键词脱落酸；木樨科植物；低温；抗冻性环境胁迫如低温是限制植物生长发育的重要因素。
近年来的研究表明，脱落酸（ABA）作为一种胁迫激素的观点已广被人们接受。
脱落酸是一种具有倍半萜结构的植物激素。
在植物体内，ABA不仅存在多种抑制效应，还有多种促进效应，在各种试验系统中，它的最适浓度可跨4个数量级，对于不同的组织，它可以产生相反的效应。
本试验选取3种木犀科的植物，水腊（Ligustrum obtusifolium sieb.et zucc）、暴马丁香（S.amurensis）、雪柳（Fontanesia）作为试验材料，研究其对木樨科植物抗冻性的影响。
1材料与方法1.1材料水腊叶片，暴马丁香叶片，雪柳叶片。
1.2试剂脱落酸。
1.3仪器DDS-307型电导仪，电炉，冰箱，移液管，量筒，培养皿，烧杯，打孔器。
1.4方法先将3种植物枝条浸泡在不同浓度的脱落酸中，水培时间不同。
再将植物叶片放在冰箱中冷冻不同的时间，最后用电导法测出叶片受伤害程度，根据其受伤害程度的不同，分析脱落酸对植物抗低温的影响。
2试验步骤（1）配置50μmoL/L、150μmoL/L、300μmoL/L的脱落酸溶液各100mL于清洗干净的大矿泉水瓶中，将3种植物枝条放入水培，水培时间为2h、4h、8h。
（2）水培结束，取同一叶位的功能叶若干片，分成3份，一份为对照，一份放入冰箱-4℃冰冻1h，一份放入冰箱-4℃冰冻3h，具体操作见图1。
（3）从冰箱中取出后，将处理组叶片与对照组叶片用蒸馏水冲洗2次，再用洁净滤纸吸净表面水分，用打孔器避开主脉打取叶圆片放入烧杯中，每杯放20片。
植物激素评测实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本实验旨在通过体外培养和观察不同植物激素对植物组织生长和发育的影响，评估植物激素在植物生长调节中的作用，并探讨不同激素之间的相互作用。
二、实验原理植物激素是植物体内的一类化学物质，能够调节植物的生长发育过程。
常见的植物激素包括生长素（IAA）、细胞分裂素（CTK）、赤霉素（GA）、脱落酸（ABA）和乙烯（ETH）等。
这些激素在植物的生长、分化、开花、结实等过程中起着至关重要的作用。
本实验通过比较不同激素对植物组织生长和发育的影响，评估其作用效果。
三、实验材料与仪器材料：1. 植物外植体：取自健康植株的叶片、茎段或愈伤组织。
2. 植物激素：生长素（IAA）、细胞分裂素（CTK）、赤霉素（GA）、脱落酸（ABA）和乙烯（ETH）。
3. MS培养基：含有各种营养成分的植物组织培养基。
4. 其他试剂：琼脂、蔗糖、乙醇、次氯酸钠等。
仪器：1. 培养室2. 高压灭菌锅3. 水浴锅4. 解剖刀5. 三角烧瓶（100mL）6. 烧杯7. 量筒8. 培养皿9. 超净工作台10. 分析天平11. 长镊子12. 剪刀13. 橡皮筋四、实验步骤1. 外植体消毒：将植物外植体用70%乙醇消毒30秒，然后用无菌水清洗3次，再用1%次氯酸钠消毒10分钟，最后用无菌水清洗5次。
2. 培养基制备：按照实验要求配制不同激素浓度的MS培养基，并加入适量的琼脂和蔗糖。
3. 外植体接种：将消毒后的外植体接种到不同激素浓度的培养基上，每个处理重复3次。
4. 培养：将接种后的培养皿放入培养室，在适宜的温度和光照条件下培养。
5. 观察与记录：定期观察外植体的生长情况，包括生长速度、愈伤组织形成、芽和根的形成等，并记录数据。
五、实验结果与分析1. 生长素（IAA）的影响：在低浓度IAA处理的培养基上，外植体生长速度较快，愈伤组织形成较好；而在高浓度IAA处理的培养基上，外植体生长速度明显减慢，愈伤组织形成不良。
2. 细胞分裂素（CTK）的影响：在低浓度CTK处理的培养基上，外植体生长速度较快，芽的形成较多；而在高浓度CTK处理的培养基上，外植体生长速度减慢，芽的形成减少。
植物ABA信号转导途径的研究进展
植物ABA信号转导途径的研究进展随着现代分子生物学和基因工程技术的快速发展，对于植物ABA信号转导途径的研究也得到了很大的提升。
ABA信号转导途径是植物对于外部胁迫的反应途径之一，也是目前植物生理学研究的前沿课题之一。
本文将对植物ABA信号转导途径的研究进展进行探讨。
1. ABA在植物中的作用机制ABA即脱落酸，是一种天然存在于植物中的一种激素，对于植物的生长和胁迫适应性具有重要作用。
ABA通过激活和抑制植物中一系列的基因来进而影响植物的生长发育和应对胁迫的能力。
ABA与植物中许多相互作用的信号途径有关，例如水分平衡、渗透压和离子的调节，以及ABA与其他几种植物激素之间的相互作用。
2. 植物ABA信号转导途径的分子机制ABA信号转导途径的分子机制非常复杂。
目前已经证实，ABA信号转导可以通过两种不同的途径：ABA信号转导路径和ABA非信号转导途径。
其中，ABA 信号转导途径主要依赖于核酸酸酶C（NAC）转录因子。
NAC转录因子是一类调节植物生长和应对胁迫的基因家族，通过直接激活或抑制植物中的不同基因，进而控制植物生长和应对胁迫的能力。
细胞膜受体（PYR/PYL/RCAR），C型哺前减数分裂激活蛋白激酶和ABA响应元件（ABRE）是ABA信号转导途径的重要组成部分。
另外，还发现植物中ABA的非信号转导途径也可以有效促进植物的生长和应对胁迫的能力，其主要信号转导分子为SnRK2蛋白。
3. 植物ABA信号转导途径与胁迫适应性的关系植物ABA信号转导途径的研究不仅可以深入了解ABA在植物中的作用机制，同时也能进一步探讨植物的胁迫适应性。
植物在受到内外部胁迫时会通过ABA信号转导途径的 DNA 转录和转录后调控，调整植物生长发育方面的基因表达，以应对来自环境的挑战。
例如，当植物受到水分胁迫时，ABA信号通路能够在众多下游基因中启动蓝光谱（blue light spectrum）、水分不足和生物逆境抵抗的基因表达。
植物生长素脱落酸的合成途径及其调控研究
植物生长素脱落酸的合成途径及其调控研究自从植物生长素被发现以来，它一直是植物生长发育的重要调节因子。
植物生长素脱落酸（ABA）是一种重要的植物激素，它参与了许多植物生长发育过程的调控，如种子萌发、根系生长、干旱、盐碱胁迫等。
本文主要介绍ABA的合成途径及其调控研究。
一、ABA的合成途径ABA的合成途径相对复杂，目前已经发现了多种ABA的合成途径。
下面介绍两种主要的途径。
（一）脱落酸合成途径脱落酸（OPDA）是ABA的前体分子之一。
OPDA是一种脂肪酸衍生物，它由脂肪酸代谢途径合成，然后通过有机酸代谢途径合成ABA。
在脱落酸的合成途径中，蛋白质激酶OST1（open stomata 1）扮演了重要的角色。
OST1是ABA信号转导途径中的一个重要组分，它能够感知细胞内外的干旱信号等。
当细胞遭受干旱等胁迫时，ABA的浓度会增加，OST1激活，然后调控下游ABA合成相关蛋白基因的表达和活性，从而促进ABA的合成。
（二）萜类合成途径萜类化合物是一类长链异戊二烯化合物，包括半萜、萜和双萜等。
生物体内可以通过萜类合成途径合成ABA。
在萜类合成途径中，萜类物质首先合成了茉莉酸（JA）、莽草酸和众多其他类似物质，然后通过复杂的代谢途径将它们转化成ABA。
萜类合成途径合成ABA的过程是一个复杂的生物合成过程，目前对于这方面的研究还需要深入探索。
二、ABA的调控研究ABA的生物合成与其生物学功能密切相关，了解ABA的生物合成机制对ABA生物学功能的研究有着重要的意义。
下面介绍ABA的调控研究。
（一）ABA反应蛋白ABA反应蛋白是ABA信号转导途径中的重要组分。
ABA反应蛋白可以感知植物内部的ABA浓度变化，并将信号传递到下游的基因表达调控过程中，从而发挥ABA在植物生长发育过程中的重要作用。
目前已经鉴定出了多个ABA反应蛋白，如ABA反应转录因子（ABF）、ABA受体蛋白（PYR）、ABA感受蛋白KINASE （SnRK）和ABA感受蛋白（PYL）等。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
植物激素脱落酸ABA受体的研究摘要脱落酸ABA(abscisic acid, ABA)是一种重要的植物激素，参与高等植物生长发育、抗逆等诸多生理过程。
近些年发现的能与ABA结合并发挥受体功能的有FCA （Flowering Control Locus A）、ABAR/CHLH(Mg离子螯合酶H亚基)、GCR2（G蛋白偶联受体）、GTG1/2（GPCR-type G protein 1/2）和PYR/PYL/RCAR(pyrabactinresistant ／PYR-like／regulatory ponent of ABA)，其中PYR/PYL/RCAR被普遍认为是真正的ABA受体蛋白。
目前ABA受体的研究主要集中在拟南芥和水稻等几个模式植物中。
本文概述了以上几种ABA受体的研究进展，重点介绍以PYR/PYL/RCAR为受体在ABA信号传导途径中的作用模式，旨在为ABA受体及其信号转导通路的相关研究提供参考。
关键词脱落酸；ABA受体；信号转导Research on Abscisic Acid（ABA）Receptor in plantsAbstract Abscisic acid (ABA) is a key plant stress hormone，which involved in many important processes of growth and development in higher plants. Recent years, FCA （Flowering Control Locus A）, ABAR/CHLH(H subunit of the chloroplast Mg2+-chelatase), GCR2（G-protein Coupled Receptor）、GTG1/2（GPCR-type G protein 1/2），PYR/PYL/RCAR(pyrabactin resistant／PYR-like／regulatory ponent of ABA) was found cound bond with ABA and function as ABA Receptor.PYR/ PYL/ RCAR is considered to be the most widely studied ABA receptor .Currently, most research focuses on several model plants such as Arabidopsis and rice.This paper describes the research progressof several kind of ABA receptor above, highlighting the PYR / PYL /RCAR as ABA receptors in the mode of action of the ABA signal transduction pathway,To research for the ABA receptor and its signal transduction pathway.Key words abscisic acid, ABA receptor, signal transduction.1 ABA激素的发现ABA广泛产生于自然界的真菌，植物以及一些后生动物中[1,2]，在被子植物中首次被发现并被很好地被阐述[3]。
1963年F.T.addincontt等于棉铃中提纯了一种能显著促进棉苗外植体叶柄脱落的物质[4]，后证实该物质即为脱落酸（abscisic acid, ABA），它是一种含15个碳原子的倍半萜类化合物植物激素。
ABA在植物体的天然形式是2–顺-4–反–(+) ABA，构型见图1。
图1 植物体ABA的构型ABA是一种非常重要的植物激素，参与高等植物生长发育的多个重要过程，如胚胎发生、种子发育、贮藏蛋白合成、种子休眠的诱导和维持、种子萌发、侧根发生、叶片脱落、器官衰老、气孔关闭等[5-10]。
此外，当植物遭受各种非生物和生物胁迫，如干旱、寒冷、盐胁迫、渗透压胁迫、病原物侵染等，ABA的含量会迅速增加，导致气孔关闭，减少水分蒸腾，激活编码可溶性渗透保护物质等基因降低胁迫伤害，减少胁迫诱导的乙烯、活性氧对植物生长的影响[11-14]，因此ABA常被称作胁迫激素。
随着胁迫因素的消失，ABA含量又恢复到胁迫前的水平。
由此可见，植物体ABA含量和信号对调节植物逆境反应以及生长发育有着重要的意义。
ABA信号转导作用机制的研究一直是植物逆境生物学的重要课题，根据拟南芥基因组的研究，特别启用了已鉴定出的介导ABA信号转导的关键元件，包括蛋白激酶，磷酸酶，转录因子，RNA加工因子，蛋白酶，染色质重组蛋白和介导表观遗传调控的组蛋白去乙酰化酶等[15-17]。
然而，ABA信号转导还依然存在许多的问题。
2 ABA受体的研究1983年Hartung的一个开创性的研究报告为ABA的结合以及其在野苣细胞表面的结合位点的存在提供了初步证据。
作者得出质子化的ABA可以通过质膜扩散，而非质子化的ABA则不能，两种形式的ABA都能促进气孔关闭。
这些结果表明，通过质膜扩散可能不是ABA激发应答所必需的。
后来以质膜研究独立的ABA 结合蛋白，为ABA结合蛋白的存在进一步提供了证据[18-19]，应该指出的是最近发现一些ABA膜结合蛋白在早期居然可以作为ABA转运蛋白行使功能[20-21]。
研究发现，膜感受位点足以引发水稻[22]和拟南芥悬浮细胞[23-24]中ABA应答基因的表达，并改变拟南芥悬浮细胞中阴离子和K+的流通[23]。
后来，Yamazaki等人利用生物素-ABA 共轭结合荧光标记的抗生素蛋白以及利用荧光显微技术直观的展示了膜表面ABA的结合。
这些研究都指出质膜上存在着ABA感受位点。
与此同时，一些调查显示细胞质中也存在ABA感受位点，例如，显微注射到鸭跖草保卫细胞的ABA被发现足以引起气孔关闭[26,27]，然而另一个研究组则在类似的研究中得出了相反的结论[28]。
Levechenko等发现，虽然外施ABA能激活保卫细胞阴离子通道，但将ABA 注射进入细胞质激活阴离子通道更快，更加明显，这表明存在一个在的ABA感应位点[29]。
按照这些早期的研究结果，最新的研究已经确定存在两种类型的质膜ABA 受体[30-31]，叶绿体ABA受体[32]，细胞质/细胞核ABA受体[33]。
自2006年FCA被报道为ABA受体以来[35]，相继报道了ABAR/CHLH、GCR2、GTGl/2和PYR/PYL/RCAR是ABA 的受体蛋白，为植物中ABA信号转导通路的阐明奠定了重要基础[32-34]。
本文将重点介绍各个受体的研究情况。
2.1 FCA在ABA处理过的大麦糊粉中发现一个能够结合ABA的蛋白是ABAP1，该蛋白是第一个被鉴定出来的能够结合ABA的抗体蛋白[36]。
FCA是其在拟南芥中的同源基因，参与ABA信号接收并调控植物开花时间和根的形成过程，但并不参与种子萌发和气孔关闭等典型的ABA反应[35]。
此后Risk等利用3H-ABA与FCA的体外结合实验证明，FCA并不能结合ABA，之前的实验结果不能重复出来[37]。
这些证据导致关于FCA是ABA受体的结论被质疑。
2.2ABAR，CHLHCHLH是第二个被发现的ABA结合蛋白，最初是在蚕豆的表皮过亲和层析被分离出来的[38]，CHLH是叶绿体镁离子螯合酶的H亚基。
拟南芥中与该蛋白同源的基因被命名为ABAR[39]。
ChlH/ABAR可与（+）-ABA特异结合并具有高亲和力，它具有调解ABA应答的重要作用，包括种子萌发，早期幼苗生长发育和气孔运动等[32]。
ABAR编码定位于质体的参与催化叶绿素合成的镁离子螯合酶H亚基CHLH （Mg-chelatase H subunit）[32]。
离子螯合酶催化Mg离子进入原卟啉Ⅸ中形成镁离子-原卟啉Ⅸ，镁离子-原卟啉Ⅸ是叶绿素前体。
此酶由CHLH、CHLD和CHLI 3种亚基组成，亚基CHLH具有结合卟啉的功能,它不但可催化细胞叶绿素的合成，而且在应激条件下能够参与质体/叶绿体与细胞核之间的信号反向传递[39,40]。
然而，2009年Muller和Hansson发现大麦中与拟南芥CHLH同源的基因XanF的突变体在种子萌发、幼苗早期生长和气孔运动中都没有表现出相应的ABA相关表型，且XanF 的ABA结合活性并没有被检测到，因此他们对至少在大麦中ABAR/CHLH是否为ABA受体提出了质疑[41]。
2009年Wu等又提出了ABAR/CHLH作为ABA受体的新证据，ABAR/CHLH可以通过C末端与ABA特异结合，过表达ABAR/CHLH的C末端蛋白的转基因株系在萌发、幼苗生长和气孔运动中对ABA表现出超敏现象，在ABA不敏感突变体cch中表达该C末端蛋白可以恢复cch所有的ABA表型。
他们还鉴定了ABAR/CHLH的两个新的点突变体：abar-2和abar-3，两个突变体在种子萌发和幼苗生长中表现出ABA不敏感表型[42]。
最近有研究表明WRKY（WRKYGQK-containing）转录因子（WRKY40，WRKY18和WRKY60）[43]可能参与了传递ABAR/CHLH的ABA 信号。
研究证明：在低浓度的ABA水平，WRKY40通过W-BOX的顺式元件结合，抑制一些转录因子ABI5和DREB2A激活ABA应答[43,44]，另一方面，当ABA浓度高时则促进转录因子的表达，反过来他们可以激活ABA应答基因的表达。
2.3 GCR2G蛋白偶联受体(GPCR)是一类能与G蛋白相互作用而形成复合物的蛋白。
根据药理学的结果表明植株中可能存在着G蛋白介导的ABA信号转导路径[45]。
研究表明G蛋白偶联受体（GCR1）可能参与ABA信号转导路径，过表达G蛋白偶联受体（GCR1）会使种子的休眠减弱[46]，然而通过遗传分析GCR1功能缺失突变体发现GCR1基因并不直接参与ABA激素的感应。
gcr1缺失突变体对ABA敏感，数据同时表明GCR1基因具有多重效应能够参与到其他的信号路径[47]。
近来发现，在拟南芥基因组中有一种GPCR位于细胞膜上并对ABA具有很高的亲合力，有一个ABA结合位点并具有饱和性，称之为GCR2 (G-protein Coupled Receptor 2) ，GCR2作为ABA受体的鉴定始于对GCR2蛋白生物信息学分析，预测其含有7个跨膜结构域，哺乳动物细胞中也具有这一结构特征[37]。
第三个可能的ABA受体被分离出来，这个蛋白可能是G蛋白偶联受体[30]。