脱落酸(ABA)受体研究(原创)
脱落酸ABA植物抗性研究进展
脱落酸(ABA)植物抗性研究进展摘要：脱落酸( ABA )是一种重要的植物激素，在植物对抗胁迫环境中发挥重要作用。
综述了近些年来国内外有关 ABA 生理功能抗逆性研究的一些最新进展，重点阐述了 ABA 在植物逆境胁迫中对植物生长及生理的影响。
关键词：脱落酸植物抗性研究进展由于工业生产、自然灾害频繁发生，植物生长处于逆境环境中，提高植物抗逆性成了研究的热点。
目前主要通过添加外源激素等技术来提高植物抗逆性。
ABA 是一种植物体内源激素，能够控制植物生长及促进衰老，研究发现， ABA 在干旱、高盐、低温等逆境胁迫反应中起重要作用，是植物的抗逆诱导因子，被称为植物的“胁迫激素” 。
本文主要阐述了ABA 在逆境中对植物生理生化的影响，展望该领域今后研究的重点。
1、逆境胁迫下植物体内 ABA 的积累ABA 在叶绿体中合成，然后转移积累到其他组织中。
研究发现根系在脱水的情况下能合成大量的 ABA ，植物的其他器官，如成熟的花、种子也能合成ABA有研究发现干旱胁迫下，紫花苜蓿根部水分状况的改变可引起 ABA 的增加，可能是根部 ABA 经蒸腾作用直接到达叶片，或是 ABA 快速释放引起的。
2、逆境胁迫下 ABA 对植物生长的影响、对植物生长的影响崔志青等人研究表明施用 ABA 能够优化穗部性状发育，增加作物产量。
在研究外源 ABA 对匍茎翦股颖( Agrostis stolonifera)高温休眠影响的试验中发现：高温胁迫下，添加 ABA 延迟植株枯黄时间，降低休眠期的枯黄率，提高叶片含水量。
ABA 处理甜椒后发现，不同浓度 ABA 对甜椒常温苗和驯化苗的株高、茎重均无显着影响，但显着促进驯化苗的侧根生长。
、对植物叶绿素含量的影响叶绿素含量可以反应植物光合能力，表明植物光合能力。
Cd胁迫下小麦幼苗经ABA处理10d后，叶片叶绿素含量增加。
试验证明低温胁迫下，喷洒 ABA 减缓叶绿素降低速度。
蒲高斌等人研究外源 ABA 对西瓜幼苗抗冷性影响也得到同样结论。
脱落酸文章
脱落酸文章
脱落酸（ABA）是一种植物激素，它在植物生长和发育过程中起着重要的调节作用。
以下是一篇关于脱落酸的400 字文章：
脱落酸，也被称为脱落素或离层酸，是一种植物内源性激素。
它在植物应对各种环境胁迫时发挥关键作用，如干旱、寒冷、盐碱和病原体攻击等。
当植物受到胁迫时，脱落酸会被合成并释放到植物体内。
它通过调节细胞膜的通透性，影响水分的平衡，从而帮助植物适应干旱条件。
此外，脱落酸还能促进叶片的衰老和脱落，这有助于植物节约能量和资源。
脱落酸对植物的抗逆性也起着重要作用。
它可以激活植物的防御机制，增强对病原体的抵抗力。
此外，脱落酸还参与调节种子的休眠和萌发过程。
近年来，科学家们对脱落酸的研究越来越深入。
他们发现，脱落酸在植物生长发育的各个阶段都发挥着重要作用，包括胚胎发育、根系形成、开花和结果等。
总之，脱落酸是植物体内一种关键的激素，它在植物应对环境胁迫
和生长发育调节方面具有重要作用。
对脱落酸的研究不仅有助于我们更好地理解植物的适应性和抗逆性，还为农业生产提供了潜在的应用价值。
《植物体内脱落酸的FRET-电化学检测方法研究》
《植物体内脱落酸的FRET-电化学检测方法研究》植物体内脱落酸的FRET-电化学检测方法研究一、引言植物激素在植物生长、发育和响应环境变化过程中发挥着重要作用，其中脱落酸（ABA）作为一种重要的植物激素，对植物的生命活动起着重要的调控作用。
为了深入研究ABA在植物体内的分布、代谢及其作用机制，对其精确的检测方法的需求显得尤为重要。
本文将探讨一种基于荧光共振能量转移（FRET）和电化学检测方法的联合应用，以实现对植物体内ABA的精确检测。
二、FRET/电化学检测方法原理1. 荧光共振能量转移（FRET）原理FRET是一种基于荧光分子间相互作用的技术，通过测量两个荧光分子间的能量转移效率来检测目标分子。
其原理是当供体荧光分子的激发能被受体荧光分子接受并发出荧光时，就发生了能量转移。
这种方法具有高灵敏度和高选择性的特点。
2. 电化学检测方法原理电化学检测方法是一种基于电化学反应的检测技术，通过测量电化学反应过程中产生的电流或电位变化来检测目标分子。
在ABA的电化学检测中，ABA可以作为氧化还原反应的催化剂或底物，通过测量反应过程中产生的电流变化来检测ABA的浓度。
三、FRET/电化学检测方法的联合应用在植物体内ABA的检测中，我们结合了FRET和电化学两种检测方法。
首先，利用FRET技术对ABA进行标记和定位，然后利用电化学方法对标记后的ABA进行定量检测。
这种方法具有高灵敏度、高选择性和高准确性的特点，能够实现对植物体内ABA的精确检测。
四、实验方法与步骤1. 样品制备：从植物组织中提取ABA，制备成待测样品。
2. FRET标记：利用FRET技术对ABA进行标记，使其具有荧光特性。
3. 定位：通过显微镜观察，确定ABA在植物组织中的分布和定位。
4. 电化学检测：将标记后的ABA样品进行电化学检测，测量电流或电位变化。
5. 数据处理与分析：对实验数据进行处理和分析，得出ABA 的浓度和分布情况。
五、实验结果与讨论1. 实验结果通过FRET/电化学联合检测方法，我们成功实现了对植物体内ABA的精确检测。
一种脱落酸受体
注释：Open circles, WT; filled circles, OE; triangles, RNAi.
二 实验结果
ABAR调节ABA信号
小结：ABAR是ABA信号的正调控因子。
问题：ABAR调节ABA信号的过程与CHLH调节叶绿 素合成及质体--核信号转换过程相同吗?
二 实验结果
B为结合受体，F为游离配体浓度，KD为平衡 解离常数，Bmax为配体结合部位的最大饱和 浓度。其中解离常数KD可直接反应受体与配 体之间的亲和力，KD值越小，达到饱和一半 时所需配体浓度越小，亲和力越大。
二 实验结果
ABA与ABAR特异性结合 [3H](+)-ABA结合蛋白中的[3H](+)-ABA被(+)-ABA和(－)-ABA及反式 ABA置换实验及pull-down分析实验
二 实验结果
ABAR能够广泛表达并调节ABA信号相关基因
植物不同器官转录水平及翻译水平的定量分析
注释：leaves (L), stems (St), siliques (Sl), flowers (Fl), roots (R), dry seeds (S1), and seeds kept at 20 uC for 24 h after stratification (S2)
问题:ABA作用具有时空的广泛性，ABAR/CHLH的表达只局限 于绿色部位还是无时空效应的广泛表达？ ABAR的表达会影响ABA相关基因表达量的变化吗？
二 实验结果
ABAR能够广泛表达并调节ABA信号相关基因
植物不同器官转录水平及翻译水平的定量分析 WT、 RNAi 及超表达植株不同器官中ABA信号相关基 因的定量分析
结论：影响ABA结合量的因素主要是ABAR蛋白的表达量，即受体位点的多寡， 而非配体与受体的亲和力发生了改变。
脱落酸受体PYL蛋白家族的结构生物学研究共3篇
脱落酸受体PYL蛋白家族的结构生物学研究共3篇脱落酸受体PYL蛋白家族的结构生物学研究1脱落酸受体PYL蛋白家族的结构生物学研究脱落酸受体PYL蛋白家族是植物激素脱落酸信号转导的重要参与者，能够感知脱落酸信号并介导下游效应。
鉴于PYL蛋白在植物生长发育和环境胁迫响应等方面的重要作用，研究其分子结构和功能机制对于深入认识脱落酸信号转导通路具有重要意义。
本文主要介绍了近年来对PYL蛋白家族的结构生物学研究进展。
PYL蛋白家族是一个有19个成员的蛋白质家族，其基本结构为含有七个α螺旋的顶篇结构，具有典型的假象对称性。
该蛋白家族结构的研究发现，其七个α螺旋通过双曲面弯折成“U”形，形成了一个小的腔体，且家族成员之间结构高度同源。
为了揭示PYL蛋白对脱落酸信号转导的机制，科学家们着重研究了PYL与ABA复合物结构。
ABA（Abscisic acid）是植物中的一种重要荷尔蒙，它能够增强植物对缺水、重金属等各种环境胁迫的适应性，而PYL蛋白则是脱落酸（ABA）受体。
研究表明，PYL蛋白能够通过与ABA分子形成稳定的氢键作用，使两者在细胞质内形成复合物。
ABA分子通过PYL蛋白引导后进入于钾离子通道Kir1.2的结合区域，从而激活该通道，最终使植物细胞对环境胁迫做出相应调节。
最新的研究表明，PYL蛋白通过其N端的祖酯骨架与ABA之间的相互作用，使ABA分子能够更加稳定地结合在其内部。
同时，蛋白内部序列中的关键结构域也参与了PYL与ABA之间的相互作用，从而实现对信号的转导。
此外，研究表明PYL家族中不同成员的结构差异可能与其宿主植物的生长环境及生理生化特征等有关。
例如，存在于盐生植物中的PYL家族蛋白结构中含有具有亲水性侧链的氨基酸残基，使得这些蛋白的内部结构具有更强的亲水性，有助于在盐胁迫等恶劣环境中维持其稳定性。
总体来说，PYL蛋白家族的结构生物学研究为深入探索脱落酸信号转导的分子机制提供了一个良好的基础。
脱落酸_ABA_受体的研究进展
脱落酸_ABA_受体的研究进展() 植物学通报 1998 , 15 4:36,40Chi nese B ulleti n of B ota ny脱落酸( ABA) 受体的研究进展吴忠义陈珈朱美君( ) 北京农业大学生物学院北京 100094() 摘要植物激素脱落酸 ABA在植物对逆境适应及种子发育过程中具有重要的生理功能。
尽管 ABA 作用的分子机制还不清楚 ,ABA 受体还未得到鉴定 ,但近年来对 ABA 结合蛋白的研究取得了可喜的进展 , 已在多种植物中证明存在与 ABA有高亲和力的结合蛋白。
ABA 的识别到底发生在胞外还是胞内 ,近几年随着微注射技术的应用 ,也得到不少实验证据。
ABA 信号的转导途径 ,特别是位于下游区域参与信号传递的物质的研究取得重大进展 ,其中以 ABA 调节气孔保卫细胞开关的信号传递成为研究这一领域的模式体系。
关键词 ABA 结合蛋白 ,ABA 结合位点 ,ABA 受体 ,ABA 信号转导THE PRO GRESSES OF STUD IES O N ABSCISICACID RECEPTO RSWU Zhong2Yi CHEN J ia ZHU Mei2J un ( )College of Biological Science , China Agricultural University , Beijing 100094( ) Abstract Abscisic acid ABAparticipates in the control of diverse physioogical process. Al2( ) though the molecular mechanism of ABA action is unknown , ABA receptor shave not yet been identified , high affinity of ABA binding proteins in some plants , either membrane2bound or soluble , have beendescribed. The sense of ABA lies in the outside or inside of plasma membrane , there are some evidences with the techniques of microinjection. Considerable progress has been recently made in the characterization of more downstream elements of the ABA regulatory network , especially in the control of stomatal aperture by ABA. The details of the underlying signalling pathways start to emerge .Key words ABA binding proteins , ABA binding sites , ABA receptors , ABA signal transduction植物的生长和发育由于不可避免地受到各种不利环境的干扰 ,于是演化出一套适应和对付各种逆境的机制和策略 ,很多研究表明 ABA 对于植物适应逆境起着极其重要的作 () 用 Davies ,1991,因此研究 ABA 的作用机理具有重要的理论意义和实践意义。
ABA生物代谢及对植物抗逆性研究进展
ABA生物代谢及对植物抗逆性研究进展摘要脱落酸（丙烯基乙基巴比妥酸，Abscisic Acid，ABA）是一种重要的植物激素，因能促使叶子脱落而得名。
能引起芽休眠、叶子脱落和抑制细胞延长等生理作用的植物激素。
ABA在植物遭受生物胁迫和非生物胁迫时发挥重要作用。
本文综述了近些年来国内外有关ABA生物合成和分解的路径，介绍ABA在植物干旱、低温、高盐、病虫害等逆境胁迫反应中起重要作用，对植物保护和农林业生产中的应用有重要意义。
关键词：脱落酸；生物合成；抗逆性；胁迫引言近年来，随着全球气候、土壤和水分环境的逐渐恶化、干旱、高低温胁迫、盐胁迫及虫害等问题也日趋严重，对植物保护和农林业生产构成了一定程度的威胁，这引起了各国科研工作者的重视，特别是对激素抗逆机理的探索更为深入。
对于ABA 对植物的抗性生理机制的了解从微观到不断深入，伴随着分子生物学的发展，大量科学实验已经证实其合成关键基因受环境胁迫诱导。
1 脱落酸的发现分布及生物合成分解途径脱落酸（abscisic acid，ABA)是1963年美国艾迪科特等人从棉铃中提纯了一种植物体内存在的具有倍半萜结构的植物内源激素物质，能显著促进棉苗外植体叶柄脱落，称为脱落素II。
英国韦尔林也从短日照条件下的槭树叶片中提纯一种物质，能控制落叶树木的休眠，称为休眠素。
1965年证实，脱落素II和休眠素为同一种物质，统一命名为脱落酸。
ABA主要在叶绿体及细胞质中合成，然后转移到其他组织中积累起来。
研究发现不仅植物的叶片，根尖也能合成大量的脱落酸。
进一步研究发现，植物的其他器官，特别是花、果实、种子也能合脱落酸<1>。
植物体内的脱落酸是由一种植物色素—玉米黄质（zeaxanthin）合成，玉米黄质在玉米黄质环氧酶（ZEP）的作用下氧化成紫黄质（violaxanthin）。
紫黄质经两条路径在9-顺式-环氧类胡萝卜素双加氧酶（NCED）作用下断裂形成黄氧素（Xanthoxin），NCED也是ABA 生成中的关键酶，黄氧素再经过修饰成为ABA。
脱落酸(ABA)对气孔运动的影响实验
ABA对拟南芥气孔运动的影响左【实验目的】1.了解气孔开闭对植物的意义。
2.了解气孔开闭的调控机制.3.验证脱落酸(abscisic acid，ABA)促进气孔关闭，抑制气孔开放.【实验原理】气孔（stomata），叶、茎及其他植物器官上皮上许多小的开孔之一，高等陆地植物表皮所特有的结构。
气孔通常多存在于植物体的地上部分，尤其是在叶表皮上,在幼茎、花瓣上也可见到，但多数沉水植物则没有。
狭义上常把保卫细胞之间形成的凸透镜状的小孔称为气孔。
保卫细胞区别于表皮细胞是结构中含有叶绿体，只是体积较小，数目也较少，片层结构发育不良，但能进行光合作用合成糖类物质。
有时也伴有与保卫细胞相邻的2-4个副卫细胞。
把这些细胞包括在内是广义的气孔（或气孔器）。
紧接气孔下面有宽的细胞间隙(气室）.气孔在碳同化、呼吸、蒸腾作用等气体代谢中，成为空气和水蒸汽的通路，其通过量是由保卫细胞的开闭作用来调节,在生理上具有重要的意义。
脱落酸（abscisic acid, ABA）是由P。
F。
Wareing和F.T。
Addicott于1967年命名的.ABA是异戊二烯为基本单位的倍半萜羧酸，也是一种重要的植物激素,受到生物胁迫和非生物胁迫的调控,在植物对胁迫耐受性和抗性中发挥着重要作用。
在胁迫条件下,ABA调控了气孔关闭和基因表达。
在拟南芥、豌豆等植物的保卫细胞中ABA能够诱导H2O2和NO的产生,在胁迫条件下，二者作为信号分子调控了促进气孔的关闭的生理过程。
在干旱条件下,植物体内的ABA含量增高，ABA促进了开放的气孔关闭和抑制了关闭的气孔开放，最终结果是关闭气孔，从而降低了植物水分的蒸发。
Figure 1气孔开闭的调控(S. Pandey， et al. 20007）ABA调控气孔开度的模式为：①ABA与其保卫细胞上受体相结合；②ABA调控了保卫细胞细胞质中Ca2+浓度的增加;③胞质中Ca2+浓度的增加抑制了质膜上的H+泵;抑制了控制K+内流的通道；激活了控制Cl－外流的通道，最终导致质膜的去极性化;④质膜的去极性化激活了控制外流的通道，进一步抑制了控制K+内流的通道;⑤ABA引起了胞质中pH的升高；⑥胞质中pH的升高激活了控制K+外流的通道，抑制了质膜上的H+泵；⑦K+和Cl－由液泡进入胞质中。
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脱落酸（ABA）受体研究（原创）
脱落酸(ABA)受体研究(原创)
植物激素是植物体内合成的一批微量信号分子,通过整合不断变化的外界环境
与内部发育信号,从分子、细胞、组织和器官水平上调控植物的生理生化反应和形态建成,确保植物正常的生长发育。
受体是激素初始作用发生的位点，植物激素受体是指能与植物激素专一结合，并在结合后能引起特定的激素生理生化效应的物质。
脱落酸(abscisic acid,ABA)调节种子发育、幼苗生长、叶片气孔行为和营养
生长向生殖生长转变等诸多植物生长发育过程,并在调节植物逆境适应性方面起着关键的作用。
植物细胞的ABA受体可能是多重的,在不同的条件下介导不同的生物学效应时,可能有不同的受体参与其中。
目前已经发现多个不同的
受体。
ABA
一、FCA受体
Razem等采用抗-抗ABA抗体(AB2)筛选ABA处理过的大麦糊粉层cDNA表达文库,获得一全长cDNA(aba33),进而进行体外富集表达和蛋白特性鉴定,得到体外表达的具有潜在ABA受体特征的大麦糊粉蛋白ABAP1蛋白,该蛋白可在体外结合ABA。
ABAP1与拟南芥调控植物开花时间的蛋白FCA的氨基酸序列类似。
FLC(识别、
结合并启动、调控MADS基因的表达)是一种MADS(能够编码具有调控功能的DNA结合蛋白)转录因子,是成花过渡过程中的主要抑制因子。
FCA是细胞核内一种RNA结合蛋白,通过与FLC的mRNA结合控制开花时间。
在RNA3′-末端的加工因子FY(跟染色质修饰或RNA修饰有关)参与下FCA通过mRNA前体成熟前剪切和多聚腺苷化自我调控自身的表达。
FCA是作为一种ABA受体
调控植物开花的时间,但并不参与种子萌发和气孔关闭,推测在植物体内肯定还存在其他类型的ABA受体。
二、ABAR受体
我国科学家在蚕豆中纯化了一个ABA结合蛋白ABAR,该蛋白质为镁离子螯合酶的H亚基((magnesium-chelatase H subunit,ABAR/CHLH))(Zhang et al.,2002)。
通过对拟南芥同源基因ABAR的遗传学、生化与生理学研究证明,该基因编码的蛋白为ABA的一个受体,作为ABA信号转导的正调控因子参与了调控种子萌发、植物生长发育以及气孔开闭等重要生理过程。
由于其功能的重要性,该受体基因的突变为致死性(Shenetal.,2006)。
ABA受体的研究近年来受到广泛的关注,也引起了很多的争议。
虽然拟南芥ABAR/CHLH与ABA特异性结合并作为受体的功能已经报道,但是也有人提出质疑。
清华大学张大鹏研究组通过进一步研究,提出新的证据证明ABAR/CHLH是ABA
受体(Wu et al.,2009b),并介导转录因子(WRKY)基因的调节(Shang et
al.,2010)。
他们利用新建立的ABA亲和层析法,证明ABAR/CHLH的C-末端片段能够特异结合ABA,而N-末端片段则不能。
对一系列ABA的促效物/拮抗物(agonists/antagonists)的测定结果表明它们都不能与ABAR/CHLH结合;ABAR的C-末端片段(631–999位氨基酸残基)能够结合ABA,因此可能是ABA结合的核心区域。
同时,将ABAR/CHLH的C-末端片段与GFP(绿色荧光蛋白,用于特定蛋白的标记定位,即利用DNA重组技术，将目的基因与GFP基因构成融合基因，转染合适的细胞进行表达，然后借助荧光显微镜便可对标记的蛋白质进行细胞内活体观察。
)的融合蛋白在野生型植株中表达引起主要ABA反应,表现为ABA过敏,包括种子萌发、萌发后生长和保卫细胞运动。
将该融合蛋白在表现为ABA非敏感的ABAR/CHLH突变体cch中表达能恢复突变体的所有ABA反应的敏感性。
然而ABAR/CHLH的N-末端片段与GFP的融合蛋白在野生型中表达的效果仅限于对苗的生长,而对cch突变体的恢复作用则仅限于对种子萌发。
对新获得的2个ABAR/CHLH等位基因突变体abar-2和abar-3进行了分析。
abar-2中发生点突变导致蛋白的N-端Leu-348(亮氨酸)改变为Phe(苯丙氨酸),而abar-3中发生点突变导致蛋白的N-端Ser-183(丝氨酸)改变为Phe。
这2 个突变体的种子萌发和萌发后生长中与ABA相关的表型发生变化,但气孔运动正常。
此外,通过研究叶绿素合成和质体-核信号转导相关的突变体,发现如果突变不影响ABAR/CHLH的表达,就不影响植物对ABA信号的响应。
这些研究结果提供了新的证据说明ABAR/CHLH是一个ABA受体,其介导的ABA
信号转导是一个独立于叶绿素合成和质体-核信号转导的不同的细胞信号过程,同时说明ABAR/CHLH的C-端片段是ABA信号转导的核心部位,而ABAR/CHLH的N-端片段对于该受体的功能也是需要的。
三、G蛋白相偶联的ABA受体
最近又鉴定出一种与G蛋白相偶联的ABA受体,同G-蛋白的α亚基GPA1相互作用以介导所有在拟南芥中已知的ABA应答。
过量表达该受体使植株表现出ABA超敏感表型。
这些受体以一定的生理学浓度结合ABA,且具有预期的动力学曲线和立体专一性。
在酵母中ABA结合到受体上导致受体-GPA1复合物分离,表明这种G蛋白偶联的受体是一种ABA质膜受体。
Valdis等(1992)利用蚕豆证明ABA受体结合位点处于完整细胞膜外侧，而以上研究结果说明ABA受体具有多样性，不仅具有细胞表面受体(G蛋白相偶联的ABA
受体)，也具有细胞内受体(位于质体、细胞核);既有G蛋白耦联受体，也有酶联受体(FCA、ABAR/CHLH)。
从而使ABA的功能也具有多样性和信号传导的复杂性。
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