细胞生长曲线
细胞培养生长曲线
细胞培养生长曲线细胞培养生长曲线是描述细胞数量随时间变化的关系曲线，是研究细胞生长规律和评估细胞活力的重要手段。
通过生长曲线，我们可以了解细胞的生长速率、倍增时间、细胞周期等相关参数，进而揭示细胞的生长规律。
一、细胞培养生长曲线的绘制绘制细胞培养生长曲线需要记录不同时间点细胞数量的变化。
通常采用以下步骤：细胞种板：将一定数量的细胞接种到培养板中，确保细胞密度适宜，能够满足后续实验需求。
细胞培养：按照设定的时间间隔（如24小时、48小时、72小时等）对细胞进行计数，记录每个时间点的细胞数量。
细胞计数：采用细胞计数器或显微镜对细胞进行计数，注意选择合适的计数方法，避免误差。
数据记录：将每个时间点的细胞数量记录在表格中，并绘制成细胞培养生长曲线。
二、细胞培养生长曲线的解析根据绘制的生长曲线，我们可以从以下几个方面解析细胞的生长规律：细胞增殖速率：通过观察生长曲线，可以了解细胞的增殖速率。
在生长曲线上，会出现一个明显的指数增长期，这个时期的细胞增殖速率较快，通常出现在细胞接种后的初期。
随着时间的推移，增殖速率会逐渐降低，这是由于营养物质和空间限制等因素的影响。
倍增时间：倍增时间是细胞培养过程中一个重要的指标，它表示细胞数量需要经过多少时间才能增加一倍。
通过生长曲线，可以计算每个时间点的倍增时间，从而了解细胞的生长速度。
细胞周期：细胞周期是指一个细胞从分裂开始到下一次分裂结束所经历的时间。
在生长曲线上，可以观察到细胞的周期性增殖现象，通过计算不同时间点的细胞数量和倍增时间，可以估算细胞的周期长度。
细胞死亡率：在细胞培养过程中，可能会出现细胞死亡的情况。
在生长曲线上，可以观察到细胞的死亡率变化情况。
如果死亡率较高，可能意味着培养条件不适宜或者细胞质量存在问题。
三、细胞培养生长曲线的影响因素细胞培养生长曲线受到多种因素的影响，包括以下几个方面：培养条件：培养条件对细胞的生长具有重要影响。
例如，培养液的成分、pH值、氧气浓度、温度等条件都会影响细胞的生长。
细胞生长曲线 统计方法
细胞生长曲线统计方法细胞生长曲线是研究细胞生长特征的重要工具，它可以描述细胞在不同环境条件下的生长模式和速率。
统计方法在分析细胞生长曲线时起着至关重要的作用，它们能够帮助我们从大量的实验数据中提取有用的信息和结论。
本文将从简单到复杂，由浅入深地介绍一些常用的统计方法，以便读者全面、深入地了解细胞生长曲线的分析过程。
1. 平均值与标准差分析细胞生长曲线实验中，我们通常会测量一系列时间点上的细胞数量，并计算平均值和标准差。
平均值能够反映细胞数量的整体趋势，而标准差则表示细胞数量的离散程度。
通过对不同条件下的平均值和标准差进行比较，可以初步了解细胞生长的差异性。
2. 生长速率与斜率分析细胞生长曲线通常呈现出不同的生长阶段，包括指数生长期、稳态生长期和平台期。
为了定量评估生长速率，我们可以计算细胞数量关于时间的斜率。
斜率越大，说明细胞生长速率越快；斜率越小，说明细胞生长速率越慢。
通过比较不同条件下的斜率，我们可以判断细胞对环境的适应能力和生长潜力。
3. 峰值分析细胞生长曲线的峰值表示细胞生长的最大值，它对于了解细胞生长的极限和饱和程度非常重要。
通过对不同条件下的峰值进行比较，我们可以评估细胞所处环境的适宜程度，并确定最佳的生长条件。
4. 方差分析与T检验当我们需要比较三个及以上条件下的细胞生长曲线时，可以使用方差分析（ANOVA）来评估差异的显著性。
方差分析能够判断不同条件下的细胞生长是否存在显著差异，并找出主要的影响因素。
而当我们只需要比较两个条件时，可以使用T检验来判断差异是否显著。
5. 线性回归分析在某些情况下，我们希望找到适合细胞生长曲线的数学模型，以便预测和优化细胞生长的过程。
线性回归分析可以帮助我们建立细胞生长曲线与其他因素之间的数学关系，从而实现对细胞生长的精准控制。
总结回顾：细胞生长曲线的分析是研究细胞生长特征的重要方法之一。
在本文中，我们从简单到复杂地介绍了一些常用的统计方法，并通过这些方法对细胞生长曲线进行全面评估。
细胞生长曲线实验步骤
细胞生长曲线实验步骤一、准备细胞与培养基1.选择适宜于实验的细胞系，并确保细胞状态良好，无污染。
2.准备所需的培养基，按照说明书进行配制，并在使用前进行无菌过滤处理。
3.准备所需的无菌器械、吸管、离心管等。
二、接种细胞至培养板1.在无菌操作台上，用无菌吸管吸取适量的细胞悬液。
2.将细胞悬液均匀接种至培养板中，每个孔内的细胞数量应保持一致。
3.将接种好的培养板放入培养箱中，设置适宜的温度、湿度和二氧化碳浓度。
三、定时观察与计数1.在接种后的不同时间点（如每天或每24小时）观察细胞的生长情况。
2.使用倒置显微镜观察细胞的贴壁生长和形态变化，以及细胞数量的变化。
3.在特定时间点，使用血细胞计数板或自动细胞计数器对细胞进行计数。
四、记录数据1.将每次观察和计数的结果详细记录下来，包括细胞数量、形态变化等。
2.记录实验过程中的温度、湿度、二氧化碳浓度等环境参数。
五、绘制生长曲线1.根据记录的数据，以时间为横轴，细胞数量为纵轴，绘制细胞生长曲线图。
2.生长曲线应反映出细胞数量随时间的变化趋势。
六、数据分析1.分析生长曲线，计算细胞的倍增时间、生长速率等参数。
2.比较不同条件下的细胞生长情况，分析影响细胞生长的因素。
七、清洗与消毒1.实验结束后，将使用过的器械、培养板等进行清洗和消毒处理。
2.清洗可使用去离子水或清洗剂，消毒可使用75%酒精或紫外线照射等方法。
八、实验总结1.总结实验过程中的经验教训，分析可能存在的误差来源。
2.根据实验结果，提出改进实验方法的建议或对未来研究方向的展望。
请注意，以上步骤仅为一般性的细胞生长曲线实验步骤，具体实验过程可能因细胞类型、实验条件等因素而有所不同。
在实际操作中，请遵循实验室的安全规定和操作规程，确保实验结果的准确性和可靠性。
细胞生长曲线实验
细胞生长曲线实验细胞生长曲线是测定细胞绝对生长数的常用方法，也是判定细胞活力的重要指标，是培养细胞生物学特性的基本参数之一。
一般细胞传代之后，经过短暂的悬浮然后贴壁，随后度过长短不同的潜伏期，即进入大量分裂的指数生长期。
在细胞达到饱和密度后，停止生长，进入平顶期，然后退化衰亡。
为了准确描述整个过程中细胞数目的动态变化，典型的生长曲线可分为生长缓慢的潜伏期，斜率较大的指数生长期，呈平台状的平顶期及退化衰亡4个部分。
以存活细胞数(万/mL)对培养时间(h或d)作图，即得生长曲线。
实验方法原理细胞生长曲线是测定细胞绝对生长数的常用方法，是判定细胞活力的重要指标。
一般细胞传代之后，经过短暂的悬浮然后贴壁，随后度过长短不同的潜伏期，即进入大量分裂的指数生长期。
为了准确描述整个过程中细胞数目的动态变化，典型的生长曲线可分为生长缓慢的潜伏期，斜率较大的指数生长期，呈平台状的平顶期及退化衰亡4个部细胞生长曲线是测定细胞绝对生长数的常用方法，是判定细胞活力的重要指标。
一般细胞传代之后，经过短暂的悬浮然后贴壁，随后度过长短不同的潜伏期，即进入大量分裂的指数生长期。
为了准确描述整个过程中细胞数目的动态变化，典型的生长曲线可分为生长缓慢的潜伏期，斜率较大的指数生长期，呈平台状的平顶期及退化衰亡4个部分。
细胞生长曲线的测定一般可利用细胞计数法进行。
实验材料细胞试剂、试剂盒D-Hanks液牛血清 RPMI1640 双抗 0.08%胰酶仪器、耗材净化工作台离心机恒温水浴箱冰箱倒置相差显微镜培养箱吸管培养瓶吸头枪头 24培养板胶塞微量加样枪红血球计数板实验步骤1. 取生长状态良好的细胞，采用一般传代方法进行消化，制成细胞悬液。
分。
细胞生长曲线的测定一般可利用细胞计数法进行。
实验材料细胞试剂、试剂盒D-Hanks液牛血清 RPMI1640 双抗 0.08%胰酶仪器、耗材净化工作台离心机恒温水浴箱冰箱倒置相差显微镜培养箱吸管培养瓶吸头枪头 24培养板胶塞微量加样枪红血球计数板实验材料细胞试剂、试剂盒D-Hanks液牛血清 RPMI1640 双抗 0.08%胰酶仪器、耗材净化工作台离心机恒温水浴箱冰箱倒置相差显微镜培养箱吸管培养瓶吸头枪头 24培养板胶塞微量加样枪红血球计数板细胞试剂、试剂盒D-Hanks液牛血清 RPMI1640 双抗 0.08%胰酶仪器、耗材净化工作台离心机恒温水浴箱冰箱倒置相差显微镜培养箱吸管培养瓶吸头枪头 24培养板胶塞微量加样枪红血球计数板实验步骤1. 取生长状态良好的细胞，采用一般传代方法进行消化，制成细胞悬液。
细胞生长曲线模型及应用研究
细胞生长曲线模型及应用研究细胞生长是细胞增殖和繁殖的基本过程，而细胞生长曲线则是描述细胞生长过程的数学模型。
生长曲线的研究既是对细胞增殖规律的探索，也是对生物系统的分析与应用。
目前，细胞生长曲线的模型及应用有着广泛的研究和应用价值。
本文将从细胞生长曲线模型的类型、构建方法和应用研究等方面加以探讨。
一、细胞生长曲线模型的类型关于细胞生长曲线的模型，几十年来形成了许多不同的类型。
根据干细胞系统分离的三大局限性：生长、分化和凋亡，细胞生长曲线模型可分为单增长曲线模型(SGF)、双增长曲线模型(DBF)、多项式增长曲线模型(MPF)、递归增长曲线模型(AGF)和决策增长曲线模型(DEC)等五种。
单增长曲线模型(SGF)是最简单、最基本的细胞生长曲线模型。
它假设细胞在特定条件下以一定速率、一定倍数不断地增长，时间的函数关系为S（t）=S0ekt，其中S（t）是时间为t时的微生物细胞密度，S0是初始细胞密度，k是生长速率常数。
双增长曲线模型(DBF)是指细胞生长和死亡的对称关系。
在细胞分裂且密度正常的情况下，细胞的生长速率高于死亡速率，所以其细胞密度不断增加。
但在高密度、无营养和受到重金属等压力下，细胞死亡的速率高于细胞分裂速率，细胞密度会不断降低。
多项式增长曲线模型(MPF)是目前应用最广泛的模型之一。
它根据研究对象的不同，考虑复杂的细胞生长和繁殖之间的关系，将生长曲线表示为t时细胞密度的多项式表达式。
递归增长曲线模型(AGF)是一种带有i.i.d.假设的指数过程，可以模拟细胞生长的时间依赖性和再生的长期规律，较好地描述了细胞生长的复杂性。
恒定的生长速率可能不适用于复杂的分子机制和稳态，例如不稳定的细胞组织。
决策增长曲线模型(DEC)是对细胞生长的量化分析的一种方法。
在多种生物学条件下研究由细胞生长产生的功能物质和基因表达变化，分析形成的决策策略和现象。
DEC将量化的细胞生长和传统的细胞分析结合起来，是一种新兴的模型。
MRC-5体外培养细胞生长曲线测定 - 详细
MRC-5体外培养细胞生长曲线测定一．实验目的认识细胞接种和传代培养中细胞生长增殖规律。
二．实验原理在培养接种或每一次传代培养过程中，培养物都要经历相似的恢复和生长过程。
细胞生长曲线反映的是培养细胞从接种到传代之前的生长状况，也是判定细胞活力的重要指标。
一般细胞传代之后，经过短暂的悬浮然后贴壁，随后度过长短不同的潜伏期，紧接着进入大量分裂的指数生长期。
在细胞达到饱和密度后，停止生长，进入平台期，然后退化衰亡。
为了准确描述整个过程中细胞数目的动态变化，典型的生长曲线可分为生长缓慢的潜伏期，斜率较大的指数生长期，呈平台状的平台期及退化衰亡4个部分。
以培养时间为横坐标、细胞密度为纵坐标绘制细胞的生长曲线坐标图。
三．实验准备3.1实验人员用品工作服、帽子、口罩、手套、肥皂、医用手臂消毒桶、0.1%新洁尔灭消毒液；3.2消毒和灭菌用品电炉、高压蒸汽灭菌锅、铝盒、24孔细胞培养板、移液管、枪头、洗耳球、离心管（规格：1.5mL/5mL/10mL）；3.3药品和试剂DMEM细胞培养液（10%血清）、0.25%胰蛋白酶-0.53Mm EDTA、PBS(-)；3.4 细胞MRC-5人二倍体细胞；3.5设备与器材CO2培养箱、离心机、移液枪（规格：1000uL、200uL）、二级生物安全柜、血细胞计数板、显微镜、记号笔、废液瓶；四．实验步骤4.1细胞接种4.1.1选择生长良好的MRC-5人二倍体细胞，移液管移除原细胞培养液至废液瓶中；4.1.2 DPBS润洗三次，每次5mL；4.1.3 吸管吸取1mL胰蛋白酶溶液浸润培养层细胞，37℃恒温消化2～10min；4.1.4用含10%血清的DMEM培养液4mL终止消化；4.1.5将终止消化后的细胞悬液用移液管转移至离心管中，1000r/min离心8min，弃上清；4.1.6吸管吸取2mL DMEM细胞培养液悬浮细胞；4.1.7对细胞悬浮液进行细胞计数；4.1.8调整悬浮液的细胞浓度分别为5×103个/mL(A) 、2×104个/mL(B)、 5×104个/mL(C)3种不同的细胞浓度（细胞理论数：1.575×104个）；4.2 细胞培养4.2.1依次将浓度为5×103个/mL(A) 、2×104个/mL(B)、 5×104个/mL(C)的细胞悬液分装于3个有盖的24孔细胞培养板，分别按每孔接种1mL，每种浓度各接21孔，进行细胞的悬浮培养；4.3 细胞换液细胞接种培养后，分别按照每间隔3d和5d换液一次。
生长曲线不同阶段细胞生长特征
生长曲线不同阶段细胞生长特征生长曲线是指在培养细胞的过程中，通过定期测量细胞数量或其他指标随时间的变化而绘制的曲线。
生长曲线可以分为潜伏期、指数生长期、平台期和衰退期四个阶段，不同阶段细胞生长特征如下：1.潜伏期：潜伏期是指细胞接种后到开始分裂增殖前的一段时间。
在潜伏期，细胞适应新环境，合成必要的生物大分子和代谢物质，为后续的增殖做准备。
此阶段细胞数量基本不变。
2.指数生长期：指数生长期是细胞生长最快的阶段，细胞数量呈指
数级增长。
在这个阶段，细胞代谢旺盛，合成大量的蛋白质、核酸等生物大分子，细胞体积逐渐增大。
这个阶段的细胞生长特征是：细胞数量快速增加，倍增时间短，活力强。
3.平台期：平台期是指细胞数量增长缓慢或停止的阶段。
在这个阶
段，细胞数量趋于稳定，细胞代谢减缓，细胞体积增大。
这个阶段的细胞生长特征是：细胞数量基本不变，活力降低。
4.衰退期：衰退期是指细胞开始死亡或衰退的阶段。
在这个阶段，
细胞数量逐渐减少，细胞形态发生变化，细胞活力降低。
这个阶段的细胞生长特征是：细胞数量减少，活力丧失。
不同类型的细胞在生长曲线上的表现可能会有所不同，但是这四个阶段是大多数细胞生长过程中都会经历的。
了解生长曲线不同阶段的细胞生长特征，可以帮助我们更好地理解细胞的生长和代谢过程，以及优化细胞培养条件。
单细胞微生物生长曲线的四个阶段
单细胞微生物生长曲线的四个阶段单细胞微生物生长曲线是表征微生物生长趋势的重要报告曲线，它是将微生物在特定培养基、特定同行条件下的生长曲线式表示的。
单细胞微生物生长曲线一般可以分为四个阶段比如启动阶段、持续生长阶段、竞争生长阶段和衰退生长阶段。
启动阶段是指当微生物开始繁殖、生长的阶段，此阶段，微生物需要利用培养基中提供的营养，在良好的环境条件和合适的温度下开始生长，此时每单位体积中单位质量的微生物数get量较小，因此，在营养成分较多、环境条件最佳的情况下，这一阶段就是微生物开始繁殖生长，体积数量增加阶段，这一阶段称为启动阶段。
持续生长阶段是指微生物体积数量稳定增加的阶段，在此阶段，微生物开始大量的繁殖，利用培养基中的营养物质，每单位体积的微生物数量逐渐增加，体积数量也在稳定增加，此时，微生物在培养基中的数量达到最高，培养基的存活率这时也是最高的。
因此，持续生长阶段称为高点阶段，即体积数量增加的高潮阶段。
竞争生长阶段是指微生物在培养基中存活率越来越低、体积数量逐渐减少的阶段。
此时，在微生物体积数量因竞争反而逐渐减少，除了环境不佳、营养缺乏的裹挟，还有微生物互相媾和的竞争，此时，微生物体积数量已经到达了相对低点，这一阶段，称为竞争生长阶段。
衰退生长阶段是指微生物体积数量极其缓慢减少，甚至停止增长的阶段。
此时，微生物在因营养缺乏，培养基污染或被抑制剂抑制等原因逐渐减少，而且体积数量也随之减少，此时微生物体积数量已经降至很低，这一阶段称为衰退生长阶段。
总之，单细胞微生物生长曲线一般可以分为四个阶段，即启动阶段、持续生长阶段、竞争生长阶段和衰退生长阶段，它们规划了微生物在培养基中的生长趋势，揭示了微生物在生命活动中所处的不同阶段。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
一细胞生长曲线：
A、目的：学习细胞生长曲线的测定方法，观察细胞生长基本规律。
B、背景知识
细胞生长曲线是观察细胞生长基本规律的重要方法。
只有具备自身稳定生长特性的细胞才适合在观察细胞生长变化的实验中应用。
因而在细胞系细胞和非建系细胞生长特性观察中，生长曲线的测定是最为基本的指标。
原理（选填项目）：
细胞生长曲线的测定一般可利用细胞计数法进行。
C、材料
（一）仪器
1. 净化工作台
2. 离心机
3. 恒温水浴箱
4. 冰箱（4℃、-20℃）
5. 倒置相差显微镜
6. 培养箱（37℃、5%CO2、饱和湿度）
（二）玻璃器皿
1. 吸管（弯头）
2. 培养瓶
3. 玻璃瓶（250ml、100ml）
4. 废液缸
（三）塑料器皿
1. 吸头
2. 枪头
3. 24培养板
4. 胶塞
（四）其他物品
1. 微量加样枪
2. 红血球计数板
（五）试剂
1. D-Hanks液
2. 小牛血清
3. RPMI1640
4. 双抗（青霉素、链霉素）
5. 0.08%胰酶
（四）、操作步骤
1. 取生长状态良好的细胞，采用一般传代方法进行消化，制成细胞悬液；
2. 计数，精确地将细胞分别接种于21～30个大小一致的培养瓶内或培养孔（以24孔培养板为宜），每瓶或孔细胞总数要求一致，加入培养液的量也要一致。
3. 每天或每隔一天取出3瓶（孔）细胞进行计数，计算均值。
培养3～5d常要给未计数的细胞换液。
4. 以培养时间为横轴，细胞数为纵轴（对数），描绘在半对数座标纸上，连接成曲线后即成该细胞的生长曲线。
9
（五）、注意事项
1．细胞生长曲线虽然最为常用，但有时其反映数值不够精确，可有20～30%的误差，需结合其它指标进行分析。
2．现在很多实验室利用培养板采用MTT法进行生长曲线测定，较为简便。
3．标准的细胞生长曲线近似“S”形，一般在传代后第一天细胞数有所减少，再经过几天的潜伏适应期，然后进入对数生长期，达到平台期后生长稳定，最后到达衰老。
4．在生长曲线上细胞数量增加1倍时间称为细胞倍增时间，可以从曲线上换算出。
二、四唑盐试验（MTT）比色试验
（一）、目的
学习四唑盐比色试验，检测细胞存活和生长情况。
（二）、原理和背景。
四唑盐是一种能接受氢原子的染料，简称MTT。
活细胞的线粒体中的琥珀脱氢酶能使外源性的MTT还原为难溶性的蓝紫色结晶物并沉积在细胞中，而死细胞无此功能。
二甲基亚砜能溶解细胞中的紫色结晶物，用酶联免疫检测仪在490nm波长处测定其光吸收值，可间接反映细胞数量。
在一定细胞数范围内，MTT结晶物形成的量与细胞数成正比。
（三）、材料
A、仪器
1. 净化工作台
2. 离心机
3. 恒温水浴箱
4. 冰箱（4℃）
5. 倒置相差显微镜
6. CO2培养箱
7. 振荡混合仪
8. 酶联免疫检测仪
9. 移液枪
10. 电磁力搅拌机
11. 微孔滤器
B、玻璃器皿
1. 吸管
2. 小烧杯（100ml）
3. 废液缸
C、塑料器皿
1. 吸头
2. 枪头
3. 96孔培养板
4. 15ml离心管
5. 50ml离心管
6. 胶塞
D、其他物品
1. 微量加样枪
2. 红血球计数板
F、试剂
1. D-Hanks液
2. 小牛血清
3. RPMI1640
4. 双抗（青霉素、链霉素）
5. 0.08%胰酶
6. 二甲基亚砜（DMSO）
7. MTT溶液：称取250mgMTT，放入小烧杯中，加50ml培养液或平衡盐溶液在电磁力搅拌机上搅拌30min，用0.22um的微孔滤器除菌，分装，4℃保存备用，两周内有效。
（四）、操作步骤
1. 接种细胞：用0.08%胰蛋白酶消化单层培养细胞，用含10%胎牛血清的RPMI1640培养液配成单个细胞悬液，以每孔103～104个细胞接种于96孔培养板中，每孔体积200ul。
2. 培养细胞：将培养板移入CO2孵箱中，在37℃、5% CO2及饱和湿度条件下培养。
（培养时间取决于实验目的和要求）
3. 呈色：每孔加入MTT溶液（5mg/ml）20ul，37℃孵箱中继续孵育4h，终止培养，小心吸弃孔内培养上清液。
对于悬浮生长的细胞，需离心（1000rpm，5min），然后弃去孔内培养液。
每孔加入150ul DMSO，振荡10min，使结晶物充分溶解。
4. 比色：选择490nm波长，在酶联免疫检测仪上测定各孔光吸收值，记录结果。
以时间为横轴，光吸收值为终轴绘制细胞生长曲线。
（五）、注意事项
1．选择适当的细胞接种浓度。
在进行MTT试验前，对每一种细胞都应测其贴壁率、倍增时间以及不同接种细胞数条件下的生长曲线，然后确定试验中每孔的接种细胞数和培养时间。
2．避免血清干扰，一般选小于10%胎牛血清的培养液进行试验。
3．设空白对照，与试验平行设不加细胞只加培养液的空白对照孔。
最后比色时，以空白孔调零。
四唑蓝(MTT)法测定细胞生长曲线及生长速度：MTT法绘制3组细胞的生长曲线，分别将细胞用无血清培养液配制成单细胞悬液,计数后接种于96孔板(1×104)/孔，设立空白组培养7 d,每天每组细胞各取6孔,每孔加入MTT溶液0.5 g/L,37℃继续培养4 h,弃去培养上清液,每孔加入二甲基亚砜(DMSO)150 μl,振荡使结晶物充分溶解,选择492 nm波长,在酶联免疫检测仪上测定各孔波长吸光度(A)值的差值,以时间为横轴, A值为纵轴绘制生长曲线。