猪胃肠道黏膜微生物研究进展
肠道微生物对仔猪免疫能力的影响
药物。
一定要严格遵守国家的规定，科学安全地使用药物。
2.3千万不能用假药或者质量不合格的药物市场上的药物真假难辨，鱼龙混杂，在给动物选择药物的时候，一定要擦亮眼睛，避免选到那些不合格的药物。
必须选择那些经过国家认证了的药。
3结语养殖业的发展越来越繁荣，在社会经济的发展中占有很重要的一个比例，药物的使用是养殖当中必不可少的一个部分，但是当前我们国家的用药问题仍然十分不规范，一味滥用只会更加拖累养殖业的整体发展，也会给为自然环境带来严重的后果。
因此，加强安全用药势在必行。
必须采取有效措施，避免药物残留，对于规定的禁止使用的药物一定要严格遵守，不可使用假药以及质量不过关的药。
只有把用药的问题解决好，才能推动养殖业的整体健康可持续发展。
■参考文献：[1]徐伟.兽医安全用药的原则[J].中国动物保健,2016,18(8):18-19.健康养殖肠道微生物对仔猪免疫能力的影响张学武（山东省诸城市畜牧兽医管理局山东潍坊262200）摘要：仔猪消化道微生物与宿主形成相互依赖的系统。
这些肠道微生物在维持仔猪正常的生理状态，提高仔猪免疫力方面发挥重要作用。
该文对仔猪肠道微生物菌群定植规律及对仔猪免疫力的影响进行综述，以便为深入研究仔猪肠道微生物提供参考。
关键词：仔猪；肠道微生物；乳酸菌；双歧杆菌；免疫力仔猪胃肠道内微生物与宿主之间形成一种复杂的相互影响体系。
仔猪肠道微生物受诸多因素影响，比如当断奶仔猪日粮和环境发生变化时，消化道微生物菌群状态也随之显著改变，而微生物菌群变化会影响仔猪的生长性能和健康状态。
仔猪通过接触母体、周围环境、采食以及微生物与宿主之间的相互适应与选择，逐渐在肠道内建立菌群平衡系统。
研究发现，微生物对仔猪肠道黏膜的形成及免疫系统的建立具有非常重要的促进作用。
本文概述了仔猪肠道微生物区系的形成特点及肠道微生物对仔猪免疫的影响，旨在为深入研究仔猪消化道微生物提供参考。
1肠道微生物对仔猪免疫能力的影响1.1肠道微生物的定植规律仔猪胚胎时期肠道存在大肠杆菌、微球菌和葡萄球菌等，其原因可能是胚体通过胎盘和母体羊水进行营养交换得到的。
动物消化道黏膜免疫的研究进展汇总
Poultry Science成就未来自 20世纪 60年代黏膜免疫概念产生以来 , 黏膜免疫系统作为机体相对独立的免疫系统 , 就一直被国内外学者所关注。
动物机体黏膜组织是机体与外部环境进行交流的场所。
肠黏膜与肠腔内大量细菌及毒素广泛接触 , 是机体最重要的屏障 , 也是机体受威胁最大的部位 , 机体 95%以上的感染发生于黏膜或从黏膜入侵。
为了预防局部黏膜疾病的发生 , 黏膜组织形成了严密的防御体系———黏膜免疫系统 , 构成动物有机体抵抗病原微生物入侵的第一道免疫屏障[1]。
通过黏膜免疫后 , 黏膜局部的抗体比血清抗体出现的早 , 效价高 , 且维持的时间长。
研究黏膜免疫无论在理论上还是在生产实践上 , 均具有重要意义。
本文就动物消化道黏膜免疫理论及应用的研究进展做一综述。
1消化道的胃肠黏膜构成1.1消化道胃肠黏膜免疫组织黏膜免疫系统(MIS主要由黏膜结合淋巴组织构成 (MALT, 对于消化道来说 , 主要是肠黏膜结合淋巴组织 (GALT, 是由黏膜淋巴集合体和弥散黏膜淋巴组织组成的肠相关淋巴组织。
1.1.1黏膜淋巴集合体是诱导黏膜免疫的反应部位 , 包括位于肠管黏膜固有层和黏膜下层的集合淋巴小结和孤立淋巴小结。
在禽类包括腔上囊和回、盲、结肠、扁桃体。
黏膜淋巴集合体 (黏膜滤泡是“ 传入淋巴区”, 抗原由此区进入黏膜免疫系统 , 是免疫的诱导部位 , 激发免疫应答。
1.1.2弥散黏膜淋巴组织是黏膜免疫的效应部位 , 包括位于肠绒毛上皮细胞间的上皮内淋巴细胞 (IEL 和一定量 K 细胞及NK 细胞 , 二是黏膜固有层淋巴细胞 (LPL, 如 T 细胞、 B 细胞、浆细胞、巨噬细胞、嗜酸性粒细胞和肥大细胞。
弥散黏膜淋巴组织是“ 传出淋巴区”, 抗原在此区与分化细胞作用 , 导致 B 细胞分泌抗体或诱生 T 细胞的细胞毒反应。
1.2消化道胃肠黏膜组织的相关细胞 1.2.1微皱褶细胞 (M 细胞1677年 , Peyer 、 J.C.在哺乳动物肠道黏膜上发现了小肠黏膜下的淋巴集结 , 并称之为Peyer 氏淋巴结 (PP结 , PP 结具有明显的淋巴上皮及上皮下的大量淋巴组织 , 淋巴组织中有多量的淋巴滤泡 , 覆盖滤泡的成不规则的微皱折上皮细胞被称之为 M 细胞 (Micro-foldCells 或滤泡结合上皮 (FAE。
猪肠道微生物影响因素的研究进展
DOI：10.16174/j.issn.1673-4645.2023.03.012收稿日期：2023-05-04作者简介：王早一（2002-），女，汉族，湖北荆门人，本科在读，研究方向为微生物学猪肠道微生物影响因素的研究进展王早一(湖南农业大学生物科学技术学院,湖南长沙410128)摘要:猪的肠道微生物对猪的生长发育、体内平衡以及营养消化等方面具有重要意义。
同时,各种肠道微生物又受到不同因素作用的调控,影响猪体内的代谢调节。
随着生态环境的改变和各类动物疾病的频发,近年来,猪肠道微生物的研究日益增多,最初对肠道微生物的研究仅对其进行简单的分析和辨别,对其功能却不甚了解,也难以根据各种外界或内部变化做出假设和概括,主要原因在于肠道微生物的组成复杂且影响因素众多。
本文主要综述了猪的不同日龄、不同饲料配方、不同品种和不同肠道部位等因素对猪肠道微生物的影响,为预防疾病、促进猪生长发育及改善猪肠道微生物的生长环境等提供参考。
关键词:猪;肠道微生物;影响因素;研究进展中图分类号:S828;S816.4文献标识码:A文章编号:1673-4645(2023)03-0064-04开放科学(资源服务)标识码(OSID ),扫一扫,了解文章更多内容猪的肠道内含有众多微生物，包括古细菌、真菌、细菌、原生动物菌等，它们在维持猪肠道稳定和提供相应保护屏障方面发挥着重要作用。
微生物的数量对猪的消化、代谢和免疫功能产生影响。
其中，细菌、古细菌和真核微生物是3种主要微生物类型，在这些微生物中，数量最多的是乳酸菌等厌氧菌，约占99%以上，而需氧菌和兼性厌氧菌只占1%左右，主要是厌氧细菌。
动物消化道微生物菌群组成存在区域性差异，多样性和密度随着消化道从胃到后肠逐渐增加。
猪肠道中微生物的丰富度最高，特别是在盲肠内微生物种类和含量最为丰富，大约由400～500种微生物组成，微生物数量可以达到1012～1013CFU/克。
肠道微生物与猪的健康关系密切，因此，对肠道微生物的研究更有利于找到饲喂过程中出现的肠道疾病原因，但无法利用传统方法分离获取的肠道微生物高达80%。
肠道微生物区系对断奶仔猪肠道黏膜免疫功能的调节作用研究进展
肠道微生物区系对断奶仔猪肠道黏膜免疫功能的调节作用研究进展陈逸;董丽;喻礼怀【摘要】断奶仔猪肠道中定植了大量微生物,这些微生物及其代谢产物可参与断奶仔猪的肠道黏膜免疫过程.肠道微生物对断奶仔猪肠道黏膜免疫的调节机制主要是通过TLRs和NLRs通路分子分别发生作用.本文对肠道黏膜免疫的特点及断奶仔猪肠道微生物区系的组成进行了综述,并深入探讨了肠道微生物对断奶仔猪肠道黏膜免疫功能的调节作用,以及肠道微生物对肠道黏膜免疫系统调控的潜在机制,旨在为进一步利用断奶仔猪肠道黏膜免疫维持机体健康的相关研究提供参考.【期刊名称】《中国饲料》【年(卷),期】2019(000)013【总页数】4页(P9-12)【关键词】肠道微生物;猪;肠道;黏膜免疫【作者】陈逸;董丽;喻礼怀【作者单位】扬州大学动物科学与技术学院,江苏扬州 225009;扬州大学动物科学与技术学院,江苏扬州 225009;扬州大学动物科学与技术学院,江苏扬州 225009【正文语种】中文【中图分类】S811.2肠道黏膜是仔猪体内最大的黏膜免疫器官，而仔猪肠道微生物区系和肠道黏膜免疫的相互作用机制非常复杂。
断奶仔猪肠道中一些微生物的数量在发生变化，例如肠道食糜中的乳酸菌数量级从1×107～9cfu/g 下降至8.5×106～7cfu/g 左右，并且此前处于肠道中优势地位的厌氧菌群也出现不同程度的减少，同时，由饲料携带的外源菌开始入侵，使仔猪肠道内的大肠杆菌、沙门菌等致病菌数量增加；仔猪断奶后1～3周内，仔猪肠道开始适应饲料，微生物区系开始重新排列，并逐渐形成新的平衡（姜春阳等，2016；李德发，2003）。
肠道微生物刺激了肠道黏膜免疫的正常发育，实现了对断奶仔猪肠道黏膜免疫的调节作用（王文娟，2005）。
1 断奶仔猪肠道黏膜免疫的特点1.1 肠道黏膜免疫肠道黏膜免疫是动物体最重要的自身免疫行为之一，主要由肠相关淋巴组织（GALT）构成，GALT主要由诱导位点和效应位点产生效用，而正常肠道之所以能够将大量的细菌及有害物质有效地局限于肠道中，就是因为肠道黏膜免疫系统通过诱导位点和效应位点的细胞共同发挥生理效应，从而实现有效的、多层次的免疫防护功能。
益生菌调节猪肠道生理功能的研究进展
有 影 响 蜡 样芽 孢 杆菌 可 促 进 ２ ８日龄 猪肠 道 谷 氨 酰 胺 转 运 蛋 白及 相 关 离 子 的 分 泌 Ｋｍ 等 ｉ
一
（０ ７ 选 定 Ｐ Ｃ ０ ２０ ） Ｓ １ １乳 酸 菌 为 强 益 生 菌 候 选 菌 ．
由于其 耐 酸 ． 胆 汁 ， 耐 并分 泌 活性 消 化 酶 ， 淀粉 如
朱 勇文 ： 国农 业 科 学 院北 京 畜牧 兽 医研 究 所 ， 南 中 华
微 生物 分子 反应 的标 记 Ｔ Ｒ启 动 信号 级联放 大 Ｌ 作 用激 活 转 录因子 Ｎ — Ｂ． Ｆ ｋ 并上 调 活化 刺 激炎 性 细胞 因子 和趋化 因子 产生 哺乳动 物 目前 已经确 定 ｌ种 ＴＲ． ３ Ｌ ｓ 它们存 在 于不 同的细 胞类 型 ． 括 包
益 生 菌 有 许 多 重要 的 生理 功 能 ．如 屏 障 作 用， 改善 肠道功 能 ， 进消 化吸收 等 。随着 研究 的 促 深 入 ， 现 益 生 菌 还影 响先 天 性 、 发 获得 性 免 疫 及 免 疫 细胞 作 用 。 并通 过 与 其 他 细 菌互 作 ． 控肠 调 道 消化生 理 ， 最后 起 到保护 机体 的作用 。
得粉碎 。
这 些问题仅 限于全 国 ２８亿只蛋 鸡 中的 ３ ． ％～ ４ ， ％ 根据 当前 可 接 受 的说 法 ． 至少 ９ ％的企 业 可 ０ 提供 有 营养 的健 康食 品 。尽 管肠炎 沙 门氏菌很 可 能 无 法彻 底 根 除 ， 农 场 良好 的操 作规 范 ． 但 再加 上 加工 和经 销水 平 ，可把感 染水 平 降到 最低 ． 减
全 的 级 别 必 须 加 强 对 员 工 卫 生 、 鼠类 控 制 的 关
产业 产生 了不小 的震 动 。对 于生 产者 而 言 。 论 无 是 个体 养 殖 户 ， 是 他 们 参 加 的养 殖 协 会 。 还 已经 表 明 了盲 目 自满 和 自我 否定都 是不 可 取 的 ． 些 这 自满 和 否 定 都 被鸡 蛋 召 回所 产 生 的经 济 影 响 撕
在预防猪只炎症的同时改善其肠道微生物菌群
28猪业科学 SWINE INDUSTRY SCIENCE 2020年37卷第11期国际瞭望GLOBAL NEWS海外文摘在预防猪只炎症的同时改善其肠道微生物菌群猪只肠道健康是复杂的，会因环境、猪场管理、饲料和猪舍的变化而受到影响。
对于猪肉生产者来说，其会影响到猪只的生长、动物福利、经济效益等。
随着促生长用抗生素的使用受限，必须要开发一些替代品。
猪只完整的肠道屏障对于其维持肠道健康、预防组织损伤和多种疾病至关重要。
肠道屏障与肠上皮细胞紧密连接、分泌黏液和免疫因子（如组织巨噬细胞）有关。
不同类型的应激（如生理、病理、心理、药理学）可引起肠道屏障功能障碍，并可导致肠道通透性增加。
由内毒素（革兰氏阴性菌壁的一种成分）引起的通透性增加，会引起局部或全身炎症反应。
免疫反应会导致更严重的疾病。
因此，评估肠道屏障完整性至关重要。
1 平衡良好的微生物菌群肠道微生物菌群是消化系统的组成部分，消化系统由丰富的、多种微生物群落组成。
由于肠道中每种生物具有不同的代谢能力，不同种类生物体的相对比例会随着猪只年龄、饲料成分、饲养环境和可能的基因型等多种因素而产生变化。
为了避免致病菌在肠道内过度生长而导致疾病，保持良好的菌群平衡也是必不可少的。
2 断奶仔猪仔猪的密集饲养方式，会令其产生肠道健康问题，包括肠道菌群结构的改变，也会使肠道致病菌过度生长的风险更高。
断奶时，仔猪在短时间内面临多因素的应激和挑战（见图1）。
1）适应饲料摄入量：饲养人员要确保仔猪断奶后能正常进食。
断奶时仔猪不进食的时间越长，其腹泻的风险就越高。
由于断奶引起的肠绒毛高度和营养吸收面积的降低，以及脂肪和肌肉储备的调动，饲料摄入量的下降可能会导致其难以达到正常生长要求。
2）适应饲料形态改变：仔猪需要适应从母猪的乳汁转到固体饲料。
3）饲料组成成分的变化：仔猪的饲料从含有乳糖的奶变为主要含有植物性原料（如淀粉等新营养素）的饲料。
4）适应新环境：将仔猪与母猪分开，从产仔箱移到断奶后的围栏，环境中的微生物菌群可能发生变化。
仔猪肠黏膜营养与肠道修复
肠 黏 膜 屏 障 （ Ｒａｍｓａｙ， １９９４） 包 括 肠 黏 液 屏 障 （主 要 是 杯 状 细 胞 分 泌 的 黏 蛋 白）和 肠 细 胞 屏 障 （肠 上 皮 细 胞之间的紧连接）。黏液层由黏膜上皮细胞和 黏 液细 胞分泌的凝胶状糖蛋白组成， 其功能为： ①维持肠道
２
王恬等： 仔猪肠黏膜营养与肠道修复
明日粮中绝大多数谷氨酰胺和几乎所有的谷氨酸和 天冬氨酸不进入门脉循环， 从而不被肠外组织所利
尔 基体 萎 缩、初 级溶 酶 体形 成 减 少 、细 胞 内 消 化 作 用 减弱， 从而使营养吸收率显著下降。缺 Ｚｎ２＋可导致 小
用。谷氨酰胺、谷氨酸和天冬氨酸除了被分解供能外， 肠黏膜杯状细胞数量明显减少， 黏液层厚度变薄， 黏
解 可能 使 大分 子 抗原 吸 收增 加 和 微 生 物 有 机 体 的 黏 和病毒； ②增强 ＦＣ 受体细胞的吞噬活力； ③可通过封
附。黏蛋白形成保护层覆盖在绒毛上， 其分泌可能受 闭抗原而抑制免疫反应， 减轻肠道损伤。
神经和激素的双重调节。肠上皮细胞间的紧密连接可 ２ 肠黏膜营养
有效阻止大分子物质（ 如病原菌、抗原等） 进入机体。
主要含有肠上皮细胞和分散其间的杯状细胞，是仔 猪 黏膜 皱 褶、绒 毛 和微 绒毛 增 加而 增 加， 微 绒 毛 使 小 肠
消化吸收营养物质的主要场所。在胚胎时期，肠道 上 的吸收面积增加约 ２０ 倍（ 沈霞芬， ２０００） 。微绒毛被糖
皮细胞由肠黏膜下层的细胞分化，分化的细胞停留于 蛋白覆盖而形成刷状缘， 这里含有可水解碳水化合物
免疫细胞迅速转运多种微生物或大分子物质， 引发免 １９９７） 。有研究表明， 小肠黏膜细胞主要以氧化谷氨酰
疫应答的作用。固有膜淋巴细胞是免疫应答的效应场 胺 和 葡 萄 糖 获 能 。 谷 氨 酰 胺 主 要 代 谢 为 谷 氨 酸 和
猪胃肠道微生物菌群的研究现状浅析
猪胃肠道微生物菌群的研究现状浅析作者：柳尧波凌泽春来源：《山东农业科学》2011年第10期摘要：动物胃肠道微生物菌群与宿主胃肠道环境和宿主所处的外界环境密切相关，形成统一的整体。
本文对猪胃肠道微生物菌群的组成和分布、菌群的作用、影响菌群的因素以及菌群的研究手段和调控等进行了浅析，为猪胃肠道微生态区系的研究和调控提供参考。
关键词：猪；胃肠道微生物菌群中国分类号：S828.1－1文献标识号：A文章编号：1001—4942(2011)10—0090—05动物胃肠道正常微生物区系在动物营养、健康、防病、免疫等方面发挥着重要作用。
从19世纪法国微生物学家巴斯德提出正常菌群对宿主是有益的学说以来，人们对畜禽胃肠道正常微生物群的组成、定殖规律及其与宿主关系有了越来越多的了解。
畜禽胃肠道微生物在正常情况下，各种菌群处于稳定的平衡状态，保证其胃肠道正常的消化和吸收。
同时，有益菌群定殖于胃肠道内壁黏膜，形成非特异性生物保护屏障，抑制病原菌在消化道壁的定殖，维持胃肠道正常的微生态平衡。
当外界环境发生变化或饵料变更等应急状态时，这种理想的微生物区系平衡会受到冲击，消化道内的有害菌群增多，将会导致细菌性疾病的暴发。
由此可见，动物胃肠道微生物区系的理论平衡是宿主动物保持良好的健康状况和发挥正常生产性能所必须的条件。
因此，如何利用益生素、化学益生素等调控动物胃肠道微生物组成，保持动物胃肠道微生物区系平衡、维持动物健康成为国际上的研究热点。
1猪胃肠道微生物的组成和分布研究表明，动物出生前胃肠道中是无菌的，但是出生后3-4 h，肠道内开始检测出细菌。
微生物菌群在消化道内的定殖顺序首先是需氧菌，然后是兼性厌氧菌，最后是专性厌氧菌。
苏勇等(2006)研究结果显示，哺乳期仔猪胃中细菌数量较低，Pluske等(2003)认为，哺乳期仔猪胃和小肠中的优势菌群为乳酸杆菌和链球菌。
断奶仔猪胃肠道微生物环境很不稳定，断奶应急和日粮成分的变化，使胃肠道内环境发生了改变，因而胃肠道中微生物的数量及定殖位点也会随着发生改变。
黏膜免疫及其在猪病防控中的应用
摘 要：通过研究发现，很多致病微生物主要是通过感染黏膜实现对动物机体的感染，因此粘膜免疫是实现对各种致病微生物免疫的防线。
同时，黏膜免疫由于本身具有操作简单、产生的应激性较小，因此在现阶段规模化养猪场中适用性较强。
粘膜免疫已经成为现阶段生猪疾病防控研究的重点方向。
本文将就黏膜免疫及其在猪病防控中的应用进行研究。
关键词：黏膜免疫；猪病防控；应用研究0 引言随着近些年来我国生猪养殖行业出现规模化、精细化的发展趋势，这就使得在进行生猪免疫过程中采用的方法需要做出一些改变。
传统注射免疫由于需要耗费较多的人力物力财力，同时容易产生交叉感染，造成生猪出现较为强烈的应激反应，而黏膜免疫由于可以通过口服、气雾等方式实现接种，操作简单便捷，效果较好，因此较为适宜在规模化养殖场中使用。
本文将就此进行研究。
1 采用黏膜免疫实现对生猪流行性腹泻的防治生猪流行性腹泻是一种对仔猪危害较为严重的生猪疾病。
尤其是对于出生一周左右的仔猪，由于其肠道上皮细胞代谢较慢，因此更加容易出现死亡情况。
通过母乳获得的抗体是实现对仔猪对致病病毒免疫的重要方式。
在传统免疫过程中通过对母猪注射灭活疫苗，但是这种方式一般不会产生抗体。
同时这种疫苗可能会因为在肠道中增值能力较差或者同治病毒株之间无法匹配而产生的免疫效果较差。
但是通过口服疫苗的方式则可以有效的刺激母猪的乳腺产生足够的抗体，同时这种抗体在肠道中稳定性较好，因此可以为仔猪产生良好的免疫保护。
在以往的研究过程中通过对小鼠进行口服和滴鼻处理实现对血清中的抗体含量进行研究。
相关研究结果显示，和对照组相比，通过口服或者滴鼻处理的小鼠免疫效果较好，都产生了良好的免疫效果。
同时通过对小鼠的肠液和肺炎中的抗体含量进行检测可以发现均含有较高的抗体。
2 采用黏膜免疫实现对生猪传染性胃肠炎的防治生猪传染性胃肠炎病毒是一种通过肠道黏膜感染发病出现的疾病，因此黏膜免疫是抵御这种疾病的重要免疫手段。
在以往的研究过程中通过构建含TGEVM及N基因的重组杆状病毒rBac-M和rBac-N，小鼠在对这两种病毒进行口服之后对小鼠粪便中的抗体水平进行检测，同时对血清中的抗体水平进行检测可以发现对于两种重组病毒产生的免疫都会产生较好的黏膜免疫应答。
罗伊氏乳杆菌调节仔猪肠道黏膜免疫功能的研究进展
动物营养学报２０２０，３２（６）：２４５４⁃２４５９ＣｈｉｎｅｓｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｎｉｍａｌＮｕｔｒｉｔｉｏｎ㊀ｄｏｉ：１０．３９６９／ｊ．ｉｓｓｎ．１００６⁃２６７ｘ．２０２０．０６．００２罗伊氏乳杆菌调节仔猪肠道黏膜免疫功能的研究进展黄金秀１，２㊀王㊀琪１，２㊀肖㊀融１，２㊀王瑞生１∗（１．重庆市畜牧科学院，重庆４０２４６０；２．农业部养猪科学重点实验室，重庆４０２４６０）摘㊀要：罗伊氏乳杆菌是一种天然存在于人和动物肠道内的优势乳酸菌，具有较强的耐受性和黏附能力，在抑制病原菌生长㊁调节肠道微生态平衡㊁增强肠黏膜免疫力等方面具有重要的功能㊂本文将重点阐述罗伊氏乳杆菌在胃肠道内的定植及其对仔猪肠道黏膜免疫功能的调控作用，为罗伊氏乳杆菌的合理开发与科学使用提供参考㊂关键词：罗伊氏乳杆菌；肠道；黏膜免疫；仔猪中图分类号：Ｓ８２８㊀㊀㊀㊀文献标识码：Ａ㊀㊀㊀㊀文章编号：１００６⁃２６７Ｘ（２０２０）０６⁃２４５４⁃０６收稿日期：２０１９－１２－０５基金项目：国家青年科学基金项目（３１７０２１５１）；重庆市财政专项资金项目（１９５１３）；重庆市百千万工程领军人才培养计划（１９２３４）作者简介：黄金秀（１９７７ ），女，江西进贤人，研究员，博士，主要从事猪营养代谢与品质调控研究㊂Ｅ⁃ｍａｉｌ：ｓｈｏｒｔ００＠１６３．ｃｏｍ∗通信作者：王瑞生，副研究员，Ｅ⁃ｍａｉｌ：５０８５６０５４＠ｑｑ．ｃｏｍ㊀㊀动物肠道栖息着大量的微生物群体，这些微生物与宿主共同进化，形成稳定互利的共生系统，在宿主动物营养㊁生长发育㊁免疫等方面发挥着极其重要的作用㊂肠道微生物与宿主免疫系统间的协调与动物健康密切相关㊂诸多试验证实肠道菌群结构或组成的改变可以引起肠道免疫系统功能的紊乱，同时肠道免疫细胞㊁组织的改变也可以导致肠道微生态平衡的失调㊂罗伊氏乳杆菌（Ｌａｃｔｏ⁃ｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉ）是一种天然存在于人和动物肠道内的优势乳酸菌㊂目前，人们已经从人㊁豚鼠㊁大鼠㊁猪㊁肉鸡中筛选到一些特异性的罗伊氏乳杆菌菌株，这些菌株均具有益生特性，有利于宿主动物健康㊂研究表明，罗伊氏乳杆菌对猪肠黏膜和小肠上皮细胞具有很强的黏附能力［１－２］，且具有抑制病原菌生长㊁调节肠道微生态平衡㊁增强机体免疫力等重要的生理功能［３－４］，是国际上公认的新型益生菌㊂本文就罗伊氏乳杆菌在胃肠道内的定植及其对仔猪肠道免疫功能的调控作用及机制进行综述，为罗伊氏乳杆菌的合理开发与科学使用提供参考㊂１ 罗伊氏乳杆菌在胃肠道内的定植㊀㊀动物胃肠道系统是摄入食物消化和吸收的场所，某些特殊部位的微环境不利于微生物的定植，如胃酸造成的低ｐＨ及小肠前段的胆汁盐㊂因此，外源性微生物在胃肠道内定植的最关键一步就是要在这些严格的微环境中存活下来㊂比较不同乳酸菌在断奶仔猪肠道内的定植研究发现，与干酪乳杆菌Ｋ９⁃１和发酵乳杆菌Ｋ９⁃２相比，适应宿主的罗伊氏乳杆菌在仔猪肠道转运过程中存活更好［５］㊂目前，人们分离得到的多种猪源罗伊氏乳杆菌菌株对低ｐＨ和胆汁盐都具有很强的耐受力［６－７］，可能与它们形成的生物膜有关［８］㊂试验表明，定植在宿主胃肠道的罗伊氏乳杆菌能形成生物膜，但受宿主来源的影响，用来源于人㊁小鼠㊁大鼠㊁鸡和猪等不同宿主的９株罗伊氏乳杆菌处理无菌小鼠，发现不同来源的菌株在前胃内容物的数量类似，但只有鼠源罗伊氏乳杆菌能形成生物膜并黏附在前胃上皮细胞［９］㊂进一步研究发现，猪源和鼠源罗伊氏乳杆菌菌株存在一种特异性的转运路径，即ＳｅｃＡ２⁃ＳｅｃＹ２通路［１０］㊂紧邻ＳｅｃＡ２６期黄金秀等：罗伊氏乳杆菌调节仔猪肠道黏膜免疫功能的研究进展基因簇的Ｌｒ７０９０２基因表达的是罗伊氏乳杆菌１００⁃２３的一种主要细胞壁蛋白，并通过ＳｅｃＡ２系统进行分泌㊂ＳｅｃＡ２突变菌株仅缺失Ｌｒ７０９０２蛋白，体内定植试验发现Ｌｒ７０９０２蛋白的缺失使菌株无法正常形成生物膜，提示Ｌｒ７０９０２蛋白和ＳｅｃＡ２⁃ＳｅｃＹ２通路是罗伊氏乳杆菌１００⁃２３形成生物膜的关键要素［１０］㊂然而，对于罗伊氏乳杆菌形成生物膜的分子机制及与菌株和宿主肠道上皮细胞之间的黏附力的关系，迄今仍不清楚㊂最近研究发现，罗伊氏乳杆菌能形成半渗透的生物相容性聚糖酐微球体生物膜，且该特性能促进其与肠上皮细胞的黏附，提高抗菌物质和抗炎因子的产生［１１－１２］㊂㊀㊀罗伊氏乳杆菌可以与黏蛋白和肠上皮细胞黏合，且某些菌株还可附着于多种宿主动物的肠上皮细胞上［１３－１４］，其机制可能是菌体表面分子与黏液层结合，如特定簇上的同源基因编码的黏液结合蛋白（ＭＵＢｓ）和ＭＵＢ类似蛋白可作为黏附因子［１５］㊂罗伊氏乳杆菌ＭＵＢｓ多样性的研究发现，不同菌株的ＭＵＢｓ结构及在细胞表面的丰度存在明显的差异，且与其黏液结合能力密切相关［１６］㊂可见，ＭＵＢｓ识别黏液蛋白或聚合能力存在菌株差异性，导致其表面黏附功能也因菌株不同而异㊂试验还发现，菌表多糖（ｅｘｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ，ＥＰＳ）可促进罗伊氏乳杆菌１００⁃２３的定植，当突变果糖基转移酶（ｆｒｕｃｔｏｓｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ，ｆｔｆ）基因造成ＥＰＳ无法合成时，明显减少ｆｔｆ突变菌株在无乳酸菌小鼠前胃和盲肠内的定植，但不影响它们在前胃上皮细胞表面的生物膜形成［１７］㊂因此，罗伊氏乳杆菌在肠道内的定植可能涉及多种机制的共同作用，以保证其益生功能的发挥㊂２㊀罗伊氏乳杆菌对仔猪肠道黏膜免疫功能的影响㊀㊀新生期和断奶期是仔猪个体发育的关键时期，也是肠道微生物区系构建的关键时期，这２个时期仔猪肠道微生物区系非常不稳定，而且免疫功能尚未发育完全，机体防御能力不足；当面临外界环境的不良刺激时，肠道极易受到致病菌侵袭导致腹泻等疾病的发生，对仔猪生长发育造成不可逆的负面影响㊂罗伊氏乳杆菌作为一种肠道优势菌，通过外源补充的方式对仔猪肠道微生物区系稳定及肠道黏膜免疫功能均具有正向调控作用，主要途径包括：１）通过重塑肠道菌群结构，形成肠道微生物稳态平衡；２）通过提高肠道结构完整性，增强肠黏膜机械屏障功能；３）通过促进肠道免疫细胞发育及改变免疫因子的效应，提高肠黏膜免疫防御功能㊂２．１㊀重塑肠道微生物菌群㊀㊀外源补充罗伊氏乳杆菌可以重塑动物肠道菌群结构，进而影响肠道黏膜免疫功能，这已在啮齿动物㊁猪和人上得到大量证实㊂口服人源罗伊氏乳杆菌可以使肠道微生物区系失调的皮屑小鼠得到重塑，促进肠道微生物产生肌苷，再通过腺苷Ａ２Ａ受体的作用减少Ｔｈ１／Ｔｈ２细胞及相关的细胞因子，降低机体炎症［１８］㊂罗伊氏乳杆菌作为肠道中的原籍菌，在新生阶段进行干预有助于仔猪肠道微生物群落的建立，促进肠道发育成熟，增强抵御病原菌感染的能力㊂试验发现，给新生仔猪补充猪源罗伊氏乳杆菌ＫＴ２６０１７８，可促进罗伊氏乳杆菌在远端空肠和回肠的定植，同时增加盲肠内乳酸菌和双歧杆菌的总数，降低大肠杆菌和葡萄球菌的总数，改善机体抗氧化状态和免疫功能［１９］㊂在新生阶段灌服猪源罗伊氏乳杆菌Ｉ５００７可影响仔猪肠道菌群结构及形成过程，提高肠道有益菌乳酸菌和双歧杆菌的数量，减少肠道潜在致病菌肠杆菌及梭菌属的数量，降低肠道ｐＨ，增强肠道对炎症反应的抗性；而且灌服时间对肠道菌群结构及代谢过程的影响存在差异，间隔４ｄ灌服１次的作用效果优于新生早期连续４ｄ灌服［２０］㊂㊀㊀补充罗伊氏乳杆菌也会影响断奶仔猪肠道微生物区系，且因菌株不同而异㊂口服罗伊氏乳杆菌ＺＬＲ００３显著提高断奶仔猪空肠微生物多样性，改变肠道微生物组成，聚类分析表明罗伊氏杆菌组的空肠微生物组成更接近于抗生素组，而结肠和盲肠内容物微生物组成更接近于对照组［２１］㊂经罗伊氏乳杆菌发酵的饲料饲喂断奶仔猪，能明显抑制产肠毒性大肠杆菌（ＥＴＥＣ）在肠道内的定植，降低小肠及粪便中ＥＴＥＣ及其热稳定性肠毒素丰度［２２］㊂试验还发现，用２种不同的罗伊氏乳杆菌菌株分别发酵饲料，饲喂断奶仔猪后，与未发酵组相比，饲喂罗伊氏乳杆菌发酵饲料的仔猪粪便中６种不同细菌丰度发生显著改变，显著降低肠杆菌科丰度；而且，不同菌株的作用效果不同，罗伊氏乳杆菌ＴＭＷ１．６５６可以提高光冈菌属数量，降低拟杆菌门数量，但罗伊氏乳杆菌ＬＴＨ５７９４没有此５５４２㊀动㊀物㊀营㊀养㊀学㊀报３２卷作用㊂进一步试验发现，罗伊氏乳杆菌ＴＭＷ１．６５６可产生ｒｅｕｔｅｒｉｃｙｃｌｉｎ，而罗伊氏乳杆菌ＬＴＨ５７９４不能产生，说明罗伊氏乳杆菌ＴＭＷ１．６５６对仔猪肠道微生物的影响与ｒｅｕｔｅｒｉｃｙｃ⁃ｌｉｎ的产生有关［２３］，但其具体机制仍需深入研究㊂２．２㊀增强肠道黏膜机械屏障功能㊀㊀肠黏膜机械屏障是肠道黏膜免疫发挥作用的重要结构基础㊂研究表明，罗伊氏乳杆菌可以促进新生仔猪肠黏膜发育，改善肠道形态结构㊂给饲喂代乳粉的新生仔猪每日灌服罗伊氏乳杆菌Ｉ５００７，对７ｄ后的空肠绒毛高度㊁隐窝深度均无显著影响，但显著提高１４ｄ后的空肠绒毛高度，说明早期灌服罗伊氏乳杆菌Ｉ５００７对仔猪肠道形态的改善作用具有时间依赖性［２４］㊂给母猪喂养的新生仔猪每隔４ｄ灌服１次罗伊氏乳杆菌Ｉ５００７，也能提高仔猪十二指肠的绒毛高度及绒毛高度／隐窝深度㊁空肠绒毛高度／隐窝深度，且隔４ｄ灌服的效果优于前４天灌服；同时还发现，不管是隔４ｄ灌服，还是前４天灌服，回肠形态结构均未出现显著变化［２５］，提示灌服罗伊氏乳杆菌Ｉ５００７对新生仔肠道形态的影响主要体现在十二指肠和空肠上㊂在断奶仔猪的试验上也发现，饲粮中添加罗伊氏乳杆菌，使平均日增重显著提高，回肠绒毛高度显著提高，回肠隐窝深度显著降低，回肠和空肠的绒毛高度／隐窝深度也显著提高［２６－２７］㊂可见，外源补充罗伊氏乳杆菌也能改善断奶仔猪肠道形态，增强肠道黏膜屏障功能㊂㊀㊀罗伊氏乳杆菌还可通过促进紧密连接蛋白（ｔｉｇｈｔｊｕｎｃｔｉｏｎｓ，ＴＪｓ）的表达来维持上皮细胞的屏障功能㊂体内外试验表明，罗伊氏乳杆菌Ｉ５００７能促进仔猪肠上皮细胞闭锁蛋白㊁闭合蛋白和紧密连接蛋白－１（ＺＯ⁃１）等ＴＪｓ蛋白的表达，增强仔猪肠黏膜屏障功能；同时还能明显抑制脂多糖所致炎性因子表达量的升高和ＴＪｓ蛋白表达量的下降，且具有一定的时间依赖性［２６］㊂Ｗａｎｇ等［３］对猪肠上皮细胞的试验发现，罗伊氏乳杆菌ＬＲ１可阻碍肠毒性大肠杆菌诱导引起的ＺＯ⁃１表达异常，进而维持猪肠上皮细胞屏障的完整性㊂Ｙｉ等［２６］在断奶仔猪的试验上也发现，罗伊氏乳杆菌ＬＲ１显著提高空肠和回肠黏膜的ＺＯ⁃１和闭合蛋白的基因表达㊂在ＩＰＥＣ⁃１细胞感染ＥＴＥＣＫ８８前加入罗伊氏乳杆菌ＬＲ１，能降低上皮细胞通透性，减少大肠杆菌对ＩＰＥＣ⁃１细胞的黏附和入侵；同时提高ＺＯ⁃１和闭合蛋白的表达水平，其作用机制可能是通过肌球蛋白轻链激酶（ｍｙｏｓｉｎｌｉｇｈｔ⁃ｃｈａｉｎｋｉｎａｓｅ，ＭＬ⁃ＣＫ）信号通路调控，用ＭＬＣＫ抑制剂ＭＬ⁃７处理ＩＰＥＣ⁃１细胞，阻碍了罗伊氏乳杆菌ＬＲ１对感染ＥＴＥＣＫ８８的细胞ＴＪｓ蛋白表达的促进作用［２８］㊂此外，罗伊氏乳杆菌ＺＪ６１７通过抑制脂多糖诱导下ｐ３８丝裂原活化蛋白激酶（ｐ３８ｍｉｔｏｇｅｎ⁃ａｃｔｉｖａｔｅｄｐｒｏｔｅｉｎｋｉｎａｓｅｓ，ｐ３８ＭＡＰＫ）和细胞外信号调节激酶１／２（ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒｓｉｇｎａｌ⁃ｒｅｇｕｌａｔｅｄｋｉｎａｓｅｓ１／２，ＥＲＫ１／２）的磷酸化，减少肌球蛋白轻链（ｍｙｏｓｉｎｌｉｇｈｔｃｈａｉｎ，ＭＬＣ）磷酸化，从而恢复紧密连接蛋白的表达，维持紧密连接的结构［２９］㊂２．３㊀促进肠道免疫防御功能㊀㊀在仔猪新生期间间隔４ｄ灌服罗伊氏乳杆菌Ｉ５００７，对回肠ＣＤ４＋㊁ＣＤ８＋和ＩｇＡ＋阳性细胞数量的影响不显著，但有降低ＣＤ８＋阳性细胞数量的趋势，同时显著降低肠系膜淋巴结中与Ｔｈ１型相关细胞因子干扰素－γ（ＩＦＮ⁃γ）ｍＲＮＡ水平，显著提高与Ｔｒｅｇ型相关细胞因子转化生长因子－β（ＴＧＦ⁃β）ｍＲＮＡ水平，增强仔猪黏膜免疫耐受［２０］㊂断奶仔猪饲粮中添加罗伊氏乳杆菌ＬＲ１，显著提高回肠黏膜分泌型免疫球蛋白Ａ（ｓＩｇＡ）含量以及肠道黏膜抗炎因子白细胞介素－２２（ＩＬ⁃２２）和ＴＧＦ⁃β含量［２６］㊂罗伊氏乳杆菌ＬＲ１还可抑制肠毒性大肠杆菌诱导的促炎因子白细胞介素－６（ＩＬ⁃６）和肿瘤坏死因子－α（ＴＮＦ⁃α）的表达，而促进抗炎细胞因子白细胞介素－１０（ＩＬ⁃１０）的表达［３０］㊂可见，罗伊氏乳杆菌可通过改变肠道相关细胞因子的作用来影响仔猪肠道及整体免疫防御功能，但其具体机制仍不清楚㊂无菌小鼠补充罗伊氏乳杆菌可诱导小肠ＣＤ４＋ＣＤ８αα＋双阳性上皮内Ｔ淋巴细胞（ＤＰＩＥＬｓ）的生成，其机制是通过产生内源性色氨酸激活ＣＤ４＋Ｔ细胞的芳烃受体，导致ＴｈＰＯＫ下调，再将肠道上皮内ＣＤ４＋Ｔ细胞重塑为免疫调节性Ｔ细胞［３１］㊂罗伊氏乳杆菌也可诱导抗炎性Ｔｒｅｇ细胞，但其抗炎性作用并不总是由诱导抗炎性Ｔｒｅｇ细胞引起的［３２］㊂在Ｔｒｅｇ细胞缺失的小鼠，罗伊氏杆菌通过肌苷－腺苷Ａ２Ａ受体路径抑制Ｔｈ１／Ｔｈ２细胞的分化并下调促进细胞因子ＩＦＮ⁃γ和白细胞介素－４（ＩＬ⁃４）的水平，进而降低机体炎性反应［１９］㊂㊀㊀宿主内源防御肽作为机体第１道防御线，是先天性免疫系统的重要组成部分，主要由胃肠道６５４２６期黄金秀等：罗伊氏乳杆菌调节仔猪肠道黏膜免疫功能的研究进展内的肠上皮细胞和吞噬细胞产生㊂研究表明，罗伊氏乳杆菌可以通过诱导肠道内源防御肽的产生来刺激先天性免疫功能㊂用罗伊氏乳杆菌Ｉ５００７灌服新生仔猪２０ｄ，显著提高空肠β－防御素ｐＢＤ２及结肠ｐＢＤ２㊁ｐＢＤ３㊁ｐＢＤ１１４㊁ｐＢＤ１２９的ｍＲＮＡ表达，并显著增加结肠内容物中丁酸含量，显著提高结肠组织中过氧化物酶体增殖物激活受体－γ（ＰＰＡＲ⁃γ）和Ｇ蛋白偶联受体４１（Ｇｐｒｏｔｅｉｎ⁃ｃｏｕｐｌｅｄｒｅｃｅｐｔｏｒ４１，ＧＰＲ４１）的ｍＲＮＡ表达量，提示罗伊氏乳杆菌Ｉ５００７刺激新生仔猪结肠防御肽的表达，其作用机制可能是通过增加结肠丁酸含量进而上调其下游分子ＰＰＡＲ⁃γ和ＧＰＲ４１表达来发挥作用，而不是通过改变肠道菌群结构来实现［３３］㊂ＩＰＥＣ⁃Ｊ２细胞培养试验表明，与肠上皮细胞接触并不是罗伊氏乳杆菌Ｉ５００７刺激防御肽表达的必要条件［３４］㊂此外，罗伊氏乳杆菌Ｉ５００７刺激猪肠道先天性免疫防御肽表达的同时不会诱发炎症反应，并且可以通过抑制ＥＴＥＣＫ８８定植黏附㊁降低ＴＮＦ⁃α和ＩＬ⁃６的过表达以及刺激ＩＬ⁃１０的表达来缓解由ＥＴＥＣＫ８８引起的炎症反应［３４］㊂３㊀小㊀结㊀㊀罗伊氏乳杆菌在仔猪胃肠道环境中具有较强的耐受性和黏附能力，能在消化道内定植并且存活下来形成生物屏障，且存在菌株差异性特点㊂在新生期和断奶期外源补充罗伊氏乳杆菌，对仔猪肠道微生物群落的正常构建㊁肠黏膜免疫系统功能的发育与成熟具有重要的作用㊂因此，罗伊氏乳杆菌作为一种益生菌，具有较高的理论研究和应用价值，未来需要进一步探究在仔猪肠道内定植的分子机制及影响因子，深入探明其调节仔猪肠道黏膜免疫的分子信号通路，为适用于仔猪消化道内环境的新型功能性益生菌的改造和开发提供理论依据㊂参考文献：［１］㊀ＨＯＵＣＬ，ＷＡＮＧＱＷ，ＺＥＮＧＸＦ，ｅｔａｌ．ＣｏｍｐｌｅｔｅｇｅｎｏｍｅｓｅｑｕｅｎｃｅｏｆＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉＩ５００７，ａｐｒｏｂｉｏｔｉｃｓｔｒａｉｎｉｓｏｌａｔｅｄｆｒｏｍｈｅａｌｔｈｙｐｉｇｌｅｔ［Ｊ］．ＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２０１４，１７９：６３－６４．［２］㊀ＬＩＸＪ，ＹＵＥＬＹ，ＧＵＡＮＸＦ，ｅｔａｌ．Ｔｈｅａｄｈｅｓｉｏｎｏｆｐｕｔａｔｉｖｅｐｒｏｂｉｏｔｉｃｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｉｔｏｃｕｌｔｕｒｅｄｅｐｉｔｈｅｌｉａｌｃｅｌｌｓａｎｄｐｏｒｃｉｎｅｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｍｕｃｕｓ［Ｊ］．ＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｐ⁃ｐｌｉｅｄＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２００８，１０４（４）：１０８２－１０９１．［３］㊀ＷＡＮＧＺＬ，ＷＡＮＧＬ，ＣＨＥＮＺ，ｅｔａｌ．Ｉｎｖｉｔｒｏｅｖａｌｕ⁃ａｔｉｏｎｏｆｓｗｉｎｅ⁃ｄｅｒｉｖｅｄＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉ：ｐｒｏｂｉｏｔｉｃｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓａｎｄｅｆｆｅｃｔｓｏｎｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｐｏｒｃｉｎｅｅｐｉｔｈｅｌｉａｌｃｅｌｌｓｃｈａｌｌｅｎｇｅｄｗｉｔｈｅｎｔｅｒｏｔｏｘｉｇｅｎｉｃＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａｃｏｌｉＫ８８［Ｊ］．ＪｏｕｒｎａｌｏｆＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙａｎｄＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２０１６，２６（６）：１０１８－１０２５．［４］㊀ＨＯＵＣＬ，ＺＥＮＧＸＦ，ＹＡＮＧＦＪ，ｅｔａｌ．ＳｔｕｄｙａｎｄｕｓｅｏｆｔｈｅｐｒｏｂｉｏｔｉｃＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉｉｎｐｉｇｓ：ａｒｅｖｉｅｗ［Ｊ］．ＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｎｉｍａｌＳｃｉｅｎｃｅａｎｄＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２０１５，６：１４．［５］㊀ＺＨＡＯＸ，ＷＡＮＧＷ，ＢＬＡＩＮＥＡ，ｅｔａｌ．ＩｍｐａｃｔｏｆｐｒｏｂｉｏｔｉｃＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｓｐ．ｏｎａｕｔｏｃｈｔｈｏｎｏｕｓｌａｃｔｏｂａ⁃ｃｉｌｌｉｉｎｗｅａｎｅｄｐｉｇｌｅｔｓ［Ｊ］．ＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｐｐｌｉｅｄＭｉｃｒｏｂｉ⁃ｏｌｏｇｙ，２０１９，１２６（１）：２４２－２５４．［６］㊀ＹＵＴ，ＹＡＮＧＸ，ＷＡＮＧＺ，ｅｔａｌ．Ｄｒａｆｔｇｅｎｏｍｅｓｅ⁃ｑｕｅｎｃｅｏｆＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉｓｔｒａｉｎＬＲＣＧＭＣＣ１１１５４，ｉｓｏｌａｔｅｄｆｒｏｍｔｈｅｆｅｃｅｓｏｆｈｅａｌｔｈｙｗｅａｎｅｄｐｉｇ⁃ｌｅｔｓ［Ｊ］．ＭｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙＲｅｓｏｕｒｃｅＡｎｎｏｕｎｃｅｍｅｎｔｓ，２０１９，８（１０）：ｅ０００８５－１９．［７］㊀ＳＥＯＢＪ，ＭＵＮＭＲ，ＲＥＪＩＳＨＫＶＪ，ｅｔａｌ．ＢｉｌｅｔｏｌｅｒａｎｔＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉｉｓｏｌａｔｅｄｆｒｏｍｐｉｇｆｅｃｅｓｉｎｈｉｂｉｔｓｅｎｔｅｒｉｃｂａｃｔｅｒｉａｌｐａｔｈｏｇｅｎｓａｎｄｐｏｒｃｉｎｅｒｏｔａｖｉｒｕｓ［Ｊ］．ＶｅｔｅｒｉｎａｒｙＲｅｓｅａｒｃｈＣｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ，２０１０，３４（４）：３２３－３３３．［８］㊀ＳＡＬＡＳ⁃ＪＡＲＡＭＪ，ＩＬＡＢＡＣＡＡ，ＶＥＧＡＭ，ｅｔａｌ．ＢｉｏｆｉｌｍｆｏｒｍｉｎｇＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ：ｎｅｗｃｈａｌｌｅｎｇｅｓｆｏｒｔｈｅｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔｏｆｐｒｏｂｉｏｔｉｃｓ［Ｊ］．Ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ，２０１６，４（３）：３５．［９］㊀ＦＲＥＳＥＳＡ，ＭＡＣＫＥＮＺＩＥＤＡ，ＰＥＴＥＲＳＯＮＤＡ，ｅｔａｌ．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆｈｏｓｔ⁃ｓｐｅｃｉｆｉｃｂｉｏｆｉｌｍｆｏｒｍａｔｉｏｎｉｎａｖｅｒｔｅｂｒａｔｅｇｕｔｓｙｍｂｉｏｎｔ［Ｊ］．ＰＬｏＳＧｅ⁃ｎｅｔｉｃ，２０１３，９（１２）：ｅ１００４０５７．［１０］㊀ＦＲＥＳＥＳＡ，ＢＥＮＳＯＮＡＫ，ＴＡＮＮＯＣＫＧＷ，ｅｔａｌ．ＴｈｅｅｖｏｌｕｔｉｏｎｏｆｈｏｓｔｓｐｅｃｉａｌｉｚａｔｉｏｎｉｎｔｈｅｖｅｒｔｅｂｒａｔｅｇｕｔｓｙｍｂｉｏｎｔＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉ［Ｊ］．ＰＬｏＳＧｅｎｅｔｉｃ，２０１１，７（２）：ｅ１００１３１４．［１１］㊀ＯＬＳＯＮＪＫ，ＲＡＧＥＲＴＭ，ＮＡＶＡＲＲＯＪＢ，ｅｔａｌ．Ｈａｒｖｅｓｔｉｎｇｔｈｅｂｅｎｅｆｉｔｓｏｆｂｉｏｆｉｌｍｓ：ａｎｏｖｅｌｐｒｏｂｉｏｔｉｃｄｅｌｉｖｅｒｙｓｙｓｔｅｍｆｏｒｔｈｅｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎｏｆｎｅｃｒｏｔｉｚｉｎｇｅｎ⁃ｔｅｒｏｃｏｌｉｔｉｓ［Ｊ］．ＪｏｕｒｎａｌｏｆＰｅｄｉａｔｒｉｃＳｕｒｇｅｒｙ，２０１６，５１（６）：９３６－９４１．［１２］㊀ＮＡＶＡＲＲＯＪＢ，ＭＡＳＨＢＵＲＮ⁃ＷＡＲＲＥＮＬ，ＢＡＫＡＬＥＴＺＬＯ，ｅｔａｌ．ＥｎｈａｎｃｅｄｐｒｏｂｉｏｔｉｃｐｏｔｅｎｔｉａｌｏｆＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉｗｈｅｎｄｅｌｉｖｅｒｅｄａｓａｂｉｏｆｉｌｍｏｎｄｅｘｔｒａｎｏｍｅｒｍｉｃｒｏｓｐｈｅｒｅｓｔｈａｔｃｏｎｔａｉｎｂｅｎｅｆｉｃｉａｌｃａｒｇｏ［Ｊ］．ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２０１７，８：４８９．７５４２㊀动㊀物㊀营㊀养㊀学㊀报３２卷［１３］㊀ＲＯＯＳＳ，ＪＯＮＳＳＯＮＨ．Ａｈｉｇｈ⁃ｍｏｌｅｃｕｌａｒ⁃ｍａｓｓｃｅｌｌ⁃ｓｕｒｆａｃｅｐｒｏｔｅｉｎｆｒｏｍＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉ１０６３ａｄ⁃ｈｅｒｅｓｔｏｍｕｃｕｓｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ［Ｊ］．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２００２，１４８（２）：４３３－４４２．［１４］㊀ＫＬＥＥＲＥＢＥＺＥＭＭ，ＨＯＬＳＰ，ＢＥＲＮＡＲＤＥ，ｅｔａｌ．Ｔｈｅｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒｂｉｏｌｏｇｙｏｆｔｈｅｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｉ［Ｊ］．ＦＥＭＳＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙＲｅｖｉｅｗｓ，２０１０，３４（２）：１９９－２３０．［１５］㊀ＧＵＮＮＩＮＧＡＰ，ＫＡＶＡＮＡＵＧＨＤ，ＴＨＵＲＳＢＹＥ，ｅｔａｌ．Ｕｓｅｏｆａｔｏｍｉｃｆｏｒｃｅｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙｔｏｓｔｕｄｙｔｈｅｍｕｌｔｉ⁃ｍｏｄｕｌａｒｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｏｆｂａｃｔｅｒｉａｌａｄｈｅｓｉｎｓｔｏｍｕｃｉｎｓ［Ｊ］．ＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌＪｏｕｒｎａｌｏｆＭｏｌｅｃｕｌａｒＳｃｉｅｎｃｅｓ，２０１６，１７（１１）：１８５４．［１６］㊀ＭＡＣＫＥＮＺＩＥＤＡ，ＪＥＦＦＥＲＳＦ，ＰＡＲＫＥＲＭＬ，ｅｔａｌ．Ｓｔｒａｉｎ⁃ｓｐｅｃｉｆｉｃｄｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆｍｕｃｕｓ⁃ｂｉｎｄｉｎｇｐｒｏｔｅｉｎｓｉｎｔｈｅａｄｈｅｓｉｏｎａｎｄａｇｇｒｅｇａｔｉｏｎｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓｏｆＬａｃｔｏｂａｃｉｌ⁃ｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉ［Ｊ］．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２０１０，１５６（１１）：３３６８－３３７８．［１７］㊀ＳＩＭＳＩＭ，ＦＲＥＳＥＳＡ，ＷＡＬＴＥＲＪ，ｅｔａｌ．ＳｔｒｕｃｔｕｒｅａｎｄｆｕｎｃｔｉｏｎｓｏｆｅｘｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｐｒｏｄｕｃｅｄｂｙｇｕｔｃｏｍｍｅｎｓａｌＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉ１００⁃２３［Ｊ］．ＴｈｅＩＳＭＥＪｏｕｒｎａｌ，２０１１，５（７）：１１１５－１１２４．［１８］㊀ＨＥＢ，ＨＯＡＮＧＴＫ，ＷＡＮＧＴ，ｅｔａｌ．Ｒｅｓｅｔｔｉｎｇｍｉｃｒｏ⁃ｂｉｏｔａｂｙＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉｉｎｈｉｂｉｔｓＴｒｅｇｄｅｆｉｃｉｅｎ⁃ｃｙ⁃ｉｎｄｕｃｅｄａｕｔｏｉｍｍｕｎｉｔｙｖｉａａｄｅｎｏｓｉｎｅＡ２Ａｒｅｃｅｐｔｏｒｓ［Ｊ］．ＪｏｕｒｎａｌｏｆＥｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌＭｅｄｉｃｉｎｅ，２０１７，２１４（１）：１０７－１２３．［１９］㊀ＹＡＮＧＪＪ，ＷＡＮＧＣＬ，ＬＩＵＬＱ，ｅｔａｌ．ＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉＫＴ２６０１７８ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔａｔｉｏｎｒｅｄｕｃｅｄｍｏｒｂｉｄｉｔｙｏｆｐｉｇｌｅｔｓｔｈｒｏｕｇｈｉｔｓｔａｒｇｅｔｅｄｃｏｌｏｎｉｚａｔｉｏｎ，ｉｍｐｒｏｖｅ⁃ｍｅｎｔｏｆｃｅｃａｌｍｉｃｒｏｂｉｏｔａｐｒｏｆｉｌｅ，ａｎｄｉｍｍｕｎｅｆｕｎｃ⁃ｔｉｏｎｓ［Ｊ］．ＰｒｏｂｉｏｔｉｃｓａｎｄＡｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌＰｒｏｔｅｉｎｓ，２０１９，１８：１－１０．［２０］㊀刘宏．发酵乳酸杆菌Ｉ５００７干预新生仔猪产道菌群形成及黏膜免疫的研究［Ｄ］．硕士学位论文．北京：中国农业大学，２０１３：４９－５６．［２１］㊀ＺＨＡＮＧＤＹ，ＪＩＨＦ，ＬＩＵＨ，ｅｔａｌ．Ｃｈａｎｇｅｓｉｎｔｈｅｄｉ⁃ｖｅｒｓｉｔｙａｎｄｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎｏｆｇｕｔｍｉｃｒｏｂｉｏｔａｏｆｗｅａｎｅｄｐｉｇｌｅｔｓａｆｔｅｒｏｒａｌａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎｏｆＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｏｒａｎａｎｔｉｂｉｏｔｉｃ［Ｊ］．ＡｐｐｌｉｅｄＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙａｎｄＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏ⁃ｇｙ，２０１６，１００（２３）：１００８１－１００９３．［２２］㊀ＹＡＮＧＹ，ＧＡＬＬＥＳ，ＬＥＭＨＡ，ｅｔａｌ．Ｆｅｅｄｆｅｒｍｅｎｔａ⁃ｔｉｏｎｗｉｔｈｒｅｕｔｅｒａｎ⁃ａｎｄｌｅｖａｎ⁃ｐｒｏｄｕｃｉｎｇｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉｒｅｄｕｃｅｓｃｏｌｏｎｉｚａｔｉｏｎｏｆｗｅａｎｌｉｎｇｐｉｇｓｂｙＥｎｔｅｒ⁃ｏｔｏｘｉｇｅｎｉｃＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａｃｏｌｉ［Ｊ］．ＡａｐｐｌｉｅｄａｎｄＥｎｖｉｒｏｎ⁃ｍｅｎｔａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２０１５，８１（１７）：５７４３－５７５２．［２３］㊀ＹＡＮＧＹ，ＺＨＡＯＸ，ＬＥＭＨ，ｅｔａｌ．Ｒｅｕｔｅｒｉｃｙｃｌｉｎｐｒｏ⁃ｄｕｃｉｎｇＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉｍｏｄｕｌａｔｅｓｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔｏｆｆｅｃａｌｍｉｃｒｏｂｉｏｔａｉｎｗｅａｎｌｉｎｇｐｉｇｓ［Ｊ］．ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＭｉ⁃ｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２０１５，６：７６２．［２４］㊀ＬＩＵＨ，ＺＨＡＮＧＪ，ＺＨＡＮＧＳＨ，ｅｔａｌ．ＯｒａｌＡｄｍｉｎｉｓ⁃ｔｒａｔｉｏｎｏｆＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｆｅｒｍｅｎｔｕｍＩ５００７ｆａｖｏｒｓｉｎｔｅｓ⁃ｔｉｎａｌｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｎｄａｌｔｅｒｓｔｈｅｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｍｉｃｒｏｂｉｏｔａｉｎｆｏｒｍｕｌａ⁃ｆｅｄｐｉｇｌｅｔｓ［Ｊ］．ＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌａｎｄＦｏｏｄＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，２０１４，６２（４）：８６０－８６６．［２５］㊀ＹＡＮＧＦＪ，ＷＡＮＧＡＮ，ＺＥＮＧＸＦ，ｅｔａｌ．Ｌａｃｔｏｂａ⁃ｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉＩ５００７ｍｏｄｕｌａｔｅｓｔｉｇｈｔｊｕｎｃｔｉｏｎｐｒｏｔｅｉｎｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｉｎＩＰＥＣ⁃Ｊ２ｃｅｌｌｓｗｉｔｈＬＰＳｓｔｉｍｕｌａｔｉｏｎａｎｄｉｎｎｅｗｂｏｒｎｐｉｇｌｅｔｓｕｎｄｅｒｎｏｒｍａｌｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ［Ｊ］．ＢＭＣＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２０１５，１５：３２．［２６］㊀ＹＩＨＢ，ＷＡＮＧＬ，ＸＩＯＮＧＹＸ，ｅｔａｌ．ＥｆｆｅｃｔｓｏｆＬａｃ⁃ｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉＬＲ１ｏｎｔｈｅｇｒｏｗｔｈｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ，ｉｎ⁃ｔｅｓｔｉｎａｌｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ，ａｎｄｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｂａｒｒｉｅｒｆｕｎｃｔｉｏｎｉｎｗｅａｎｅｄｐｉｇｓ［Ｊ］．ＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｎｉｍａｌＳｃｉｅｎｃｅ，２０１８，９６（６）：２３４２－２３５１．［２７］㊀ＹＵＨＦ，ＷＡＮＧＡＮ，ＬＩＸＪ，ｅｔａｌ．ＥｆｆｅｃｔｏｆｖｉａｂｌｅＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｆｅｒｍｅｎｔｕｍｏｎｔｈｅｇｒｏｗｔｈｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ，ｎｕｔｒｉｅｎｔｄｉｇｅｓｔｉｂｉｌｉｔｙａｎｄｉｍｍｕｎｉｔｙｏｆｗｅａｎｅｄｐｉｇｓ［Ｊ］．ＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｎｉｍａｌａｎｄＦｅｅｄＳｃｉｅｎｃｅｓ，２００８，１７（１）：６１－６９．［２８］㊀ＹＩＨＢ，ＷＡＮＧＬ，ＸＩＯＮＧＹＸ，ｅｔａｌ．ＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉＬＲ１ｉｍｐｒｏｖｅｄｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆｇｅｎｅｓｏｆｔｉｇｈｔｊｕｎｃｔｉｏｎｐｒｏｔｅｉｎｓｖｉａｔｈｅＭＬＣＫｐａｔｈｗａｙｉｎＩＰＥＣ⁃１ＣｅｌｌｓｄｕｒｉｎｇＩｎｆｅｃｔｉｏｎｗｉｔｈＥｎｔｅｒｏｔｏｘｉｇｅｎｉｃＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉ⁃ａｃｏｌｉＫ８８［Ｊ］．ＭｅｄｉａｔｏｒｓｏｆＩｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ，２０１８，２０１８：６４３４９１０．［２９］㊀ＣＵＩＹＪ，ＬＩＵＬ，ＤＯＵＸＸ，ｅｔａｌ．ＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉＺＪ６１７ｍａｉｎｔａｉｎｓｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｉｎｔｅｇｒｉｔｙｖｉａｒｅｇｕｌａｔｉｎｇｔｉｇｈｔｊｕｎｃｔｉｏｎ，ａｕｔｏｐｈａｇｙａｎｄａｐｏｐｔｏｓｉｓｉｎｍｉｃｅｃｈａｌｌｅｎｇｅｄｗｉｔｈｌｉｐｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ［Ｊ］．Ｏｎｃｏｔａｒｇｅｔ，２０１７，８（４４）：７７４８９－７７４９９．［３０］㊀ＷＡＮＧＰＰ，ＬＩＹ，ＸＩＡＯＨ，ｅｔａｌ．ＩｓｏｌａｔｉｏｎｏｆＬａｃｔｏ⁃ｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉｆｒｏｍＰｅｙｅｒ ｓｐａｔｃｈｅｓａｎｄｔｈｅｉｒｅｆｆｅｃｔｓｏｎｓＩｇＡｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎａｎｄｇｕｔｍｉｃｒｏｂｉｏｔａｄｉｖｅｒｓｉｔｙ［Ｊ］．ＭｏｌｅｃｕｌａｒＮｕｔｒｉｔｉｏｎ＆ＦｏｏｄＲｅｓｅａｒｃｈ，２０１６，６０（９）：２０２０－２０３０．［３１］㊀ＣＥＲＶＡＮＴＥＳ⁃ＢＡＲＲＡＧＡＮＬ，ＣＨＡＩＪＮ，ＴＩＡＮＥＲＯＭＤ，ｅｔａｌ．Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉｉｎｄｕｃｅｓｇｕｔｉｎｔｒａｅｐｉ⁃ｔｈｅｌｉａｌＣＤ４＋ＣＤ８αα＋Ｔｃｅｌｌｓ［Ｊ］．Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０１７，３５７（６３５３）：８０６－８１０．［３２］㊀ＭＵＱＨ，ＴＡＶＥＬＬＡＶＪ，ＬＵＯＸＭ．ＲｏｌｅｏｆＬａｃｔｏｂａ⁃ｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉｉｎｈｕｍａｎｈｅａｌｔｈａｎｄｄｉｓｅａｓｅｓ［Ｊ］．Ｆｒｏｎ⁃ｔｉｅｒｓｉｎＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２０１８，９：７５７．［３３］㊀ＬＩＵＨＢ，ＨＯＵＣＬ，ＷＡＮＧＧ，ｅｔａｌ．ＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉＩ５００７ｍｏｄｕｌａｔｅｓｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｈｏｓｔｄｅｆｅｎｓｅｐｅｐｔｉｄｅ８５４２６期黄金秀等：罗伊氏乳杆菌调节仔猪肠道黏膜免疫功能的研究进展ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｉｎｔｈｅｍｏｄｅｌｏｆＩＰＥＣ⁃Ｊ２ｃｅｌｌｓａｎｄｎｅｏｎａｔａｌｐｉｇｌｅｔｓ［Ｊ］．Ｎｕｔｒｉｅｎｔｓ，２０１７，９（６）：Ｅ５５９．［３４］㊀侯成立．罗伊氏乳杆菌全基因组序列分析及其调节仔猪肠黏膜免疫功能的研究［Ｄ］．博士学位论文．北京：中国农业大学，２０１５：８５－９５．∗Ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｉｎｇａｕｔｈｏｒ，ａｓｓｏｃｉａｔｅｐｒｏｆｅｓｓｏｒ，Ｅ⁃ｍａｉｌ：５０８５６０５４＠ｑｑ．ｃｏｍ（责任编辑㊀陈㊀鑫）ＲｅｓｅａｒｃｈＡｄｖａｎｃｅｉｎＲｅｇｕｌａｔｉｏｎｏｆＩｎｔｅｓｔｉｎａｌＭｕｃｏｓａｌＩｍｍｕｎｅｉｎＰｉｇｌｅｔｓｂｙＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉＨＵＡＮＧＪｉｎｘｉｕ１，２㊀ＷＡＮＧＱｉ１，２㊀ＸＩＡＯＲｏｎｇ１㊀ＷＡＮＧＲｕｉｓｈｅｎｇ１∗（１．ＣｈｏｎｇｑｉｎｇＣｏｌｌｅｇｅｏｆＡｎｉｍａｌＳｃｉｅｎｃｅ，Ｃｈｏｎｇｑｉｎｇ４０２４６０，Ｃｈｉｎａ；２．ＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＰｉｇＩｎｄｕｓｔｒｙＳｃｉｅｎｃｅｓ，ＭｉｎｉｓｔｒｙｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ，Ｃｈｏｎｇｑｉｎｇ４０２４６０，Ｃｈｉｎａ）Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉ（Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ）ｉｓａｄｏｍｉｎａｎｔｌａｃｔｉｃａｃｉｄｂａｃｔｅｒｉａｎａｔｕｒａｌｌｙｅｘｉｓｔｉｎｔｈｅｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｔｒａｃｔｏｆｈｕｍａｎｓａｎｄａｎｉｍａｌｓ．Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉｈａｓｓｔｒｏｎｇｔｏｌｅｒａｎｃｅａｎｄａｄｈｅｓｉｏｎａｂｉｌｉｔｙ，ａｎｄｉｔｅｘｅｒｔｓｉｍｐｏｒｔａｎｔｆｕｎｃ⁃ｔｉｏｎｓｓｕｃｈａｓ：ｉｎｈｉｂｉｔｔｈｅｇｒｏｗｔｈｏｆｐａｔｈｏｇｅｎｓ，ｒｅｇｕｌａｔｅｂａｌａｎｃｅｏｆｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｍｉｃｒｏｆｌｏｒａａｎｄｅｎｈａｎｃｅｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｍｕｃｏｓａｌｉｍｍｕｎｉｔｙ．ＴｈｉｓｒｅｖｉｅｗｗｉｌｌｆｏｃｕｓｏｎｔｈｅｃｏｌｏｎｉｚａｔｉｏｎｏｆＬ．ｒｅｕｔｅｒｉｉｎｔｈｅｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｔｒａｃｔａｎｄｔｈｅｒｅｇｕｌａｔｉｏｎｏｆｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｍｕｃｏｓａｌｉｍｍｕｎｅｆｕｎｃｔｉｏｎｉｎｐｉｇｌｅｔｓｂｙＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ，ｗｉｔｈｔｈｅａｉｍｏｆｐｒｏｖｉｄｉｎｇａｒｅｆｅｒｅｎｃｅｆｏｒｔｈｅｐｒｏｐｅｒｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｎｄｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃｕｓｅｏｆＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ．［ＣｈｉｎｅｓｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｎｉｍａｌＮｕｔｒｉｔｉｏｎ，２０２０，３２（６）：２４５４⁃２４５９］Ｋｅｙｗｏｒｄｓ：Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｅｕｔｅｒｉ；ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｔｒａｃｔ；ｍｕｃｏｓａｌｉｍｍｕｎｅ；ｐｉｇｌｅｔｓ９５４２。
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增 加 ， ｎ ｅｏ ａｔ ， ｐｒｃｔ ｅ ｉｍ， ｓｉｉａｔ 和 Ａ ａｒｂｃｅ Ｓ ｏａｅｉ ｎｕ Ｏ ｃ ｌ ｃ ｒ ｒ ｇ ｌｂ ｅ
［ 金项 目】 基 广东省农业攻关项目（０９ ００００１ ２０Ｂ ２３７０ ）
★通 迅 作 者 。
Ａｎａ ｒ ｂ ｃｅ ，Ｓｔｅ ｏ ｏ ｃ ，Ｌ ｃｏ ａ ｉｌ ｓ ｅｏ ａ ｔ ｒ ｒ ｐｔｃ ｃ ｕｓ ａ ｔｂ ｃｌｕ ，Ｃｏ ｒ ｃ ｃ ｐｏｏ－ ｅｌ ，Ｓ ｒ ｃ ｔｇ ｎ ｕ ｌＳ ｐｏ ａ ｅｉ ｅ ｉ ｍ，Ｍｅ ａ ｐ ａ ｒ ｕ ｄ ｌｇ ａ ｌ ｇ ｓ ｈ ｅ ａ Ｓ ｂ ｏ ｉｒ ｎｕｕｍ， Ｂｌｕｔ ， Ｏｓ ｉｌｂ ｃｅ ， Ｆａ ｃ ｌｂ ｃ ｅ ｉ ｍ， Ｐｓ ｕ ｏ — ａ ｉ ａ ｃｌｉ ａ ｔｒ ｅ ａ ｉ ａ ｔｒｕ ｅ ｄ ｂｕ
塘水 正常 的雨 天夜 间也要 注 意做这 个工作 。 以上是关 于高 温季节南 美 白对虾养殖 管理 的一 些个人看 法 ， 希望可 以对养 殖从业者提供一些 参考 。
・
③改底 ： 净水后 ２ ３ ～ 小时后使用分解性或者生
物底 改 分解 死 藻 以及 有 机质 ， 防止 虾摄 食死 藻 继发
浆水 （ ２ ， 图 ）这在 放苗 前期 更容 易 出现 。
６１处 理 措 施 ．
肠炎 。
④ 进 水肥 水 ： 第二 天 引 入水 色 好 的塘 水 ， 同时
①解毒 ： 第一天上午使用有机酸类产品如粤海
有 机酸解 毒灵 解毒 ， 少水体 以及 死藻 毒性 。 减
使用肥水产品如粤海氨基酸肥水素（ 氨基酸肥水素 ＋粤 海利 生素 提前一 天 泡过夜 次 日使 用 ） 。
Ｓｒｉ ａｃ ａ属 细 菌 增 加 ， 而 Ｐｅｏ ｌ， ａｔ ａｉｕ， ｎ ｒｖｔ ｌ Ｌｃ ｂｃｌｓ ｅａ ｏ ｌ Ｍｅａｐ ａｒ， ａｃｌ ａｔｉｍ 和 Ｄａｓ ｒ 下 降 。 ｇｓｈ ｅ Ｆ ｅａｂｃ ｒ ａ ｉ ｅｕ ｉｉｅ 属 ｌｔ
容 易导致 倒藻 池水 变清 （ １严 重 的话甚 至 出现 泥 图 ）
广东饲料 第 ２ 卷第 ７ ｌ 期 ２１ ７ ０２年 月
猪 胃肠厘 黏膜 微生 物研 究进 展
林海丹 温 小鹿 陈 庄 ★
（ 广东省兽药与饲料监察总所 ， ５０３ ；－ 广州 １ ０ Ｆ东省农业科学学院畜牧研究所， ５０２ ） ２ 广州 １６０
［ ￣ 中图 ］ ８ ８１ Ｓ２ ． 【 献 标 识 码】 文 Ａ ［ 章 编 ￣］ｏ ５ ８ １ （０ ２ ０ — ０ ７ ０ 文 － ｏ — ６ ３ ２ １ ）７ ０ ３ —４ １
得进 展 ， 促进 了通 过 益生 素调 节 胃肠 道微 生物 丛 动 态平 衡 ， 防疾病 的有 关 应用 。本 文 综述 近期 在猪 预
猪 胃肠 道 中含 有 约 ４ ０ ００个 不 同微 生 物 物 种 ， ０ １０
胃肠道黏膜微生物丛结构和功能研究 以及益生素 在养 猪生 产上 的应用 研究 进展 。 １猪 胃肠 道微 生物 丛组 成
哺乳 动物 宿 主 （ 、 等 ） 人 猪 与栖 居其 身 体 的全部
微生 物共 同构 成 了一 个超 级 有机 体 （ ． ． ｈｓａ ＦＫＧｉ ｎ ｈ
约 １Ｈ ０ 个细胞。 ｉ Ｋｍ等（ｏ １分析 了猪粪便微生物 ２ｌ） 丛 的组 成 和 随 日龄 变 化 情 况 ， 果 显 示 ， 门水 平 结 在
上 ，微 生 物 丛 主 要 由厚 壁 菌 门和拟 杆 菌 门细 菌组 成。 在属 水平 上 ， 猪 胃肠道 中共 鉴定 出 １ １ 从 ７ 个属 ， 其中 １ ５个 细 菌 属 的 特 征 性 Ｄ Ａ 序 列 占 总 序 列 Ｎ ５％以上 ，４个 属 于厚 壁 菌 门 。它们 是 ：ｒｖｔｌ， ９ １ Ｐｅｏ ｌ ｅａ
近年 来 ， 胃肠 道微 生物 丛 （ ｉ ｏ ｉ ａ 组成 及 其 ｍ ｃ ｂｏ ） ｒ ｔ 与 宿 主营 养 （ 长 ） 免 疫 （ 病 ） 系研 究 不 断 取 生 和 抗 关
更新 中。 应用 传统 培养 物丛 组成 进 行 了大量 研究 （ １ 。 表 ）
⑤ 倒 藻后 因为 水 体 藻 类 大 量死 亡所 以水 体 溶
②净水 ： 第一天下午使用聚合铝类 的絮凝剂产 品将 水 体 中死 藻和 颗粒 物沉 到水 底 ， 高水 体 透 明 提
度， 为藻类 生 长提供 前 提条件 。
氧较低所 以要注意夜 间增氧 ， 可在晚上选择使用化 学增 氧剂 如 ： 海 富力氧 防止 夜 间缺 氧 。高 温季 节 粤
［ 摘要】 ：胃肠道微生物丛（ ｒｂ０ａ组成及其与宿主营养（ 蚵ｃ０ ｉｔ） 生长 ） 和免疫（ 抗病 ） 系息息相关。本文总结近年来猪 胃肠 关 道黏 膜微 生物 丛组成 以及宿主 一黏膜微生物丛互作研 究的新进展 ， 简要 总结分析益生素在养猪 生产上应用现状与不足 。
【 键词】 猪 ； 关 ： 胃肠 道 ； 膜 微 生 物 丛 ； 生 素 黏 益
等 ，０ １ ， ２ １ ）它们 作 为整体 共 同进 化 和共 同适 应 。 胃 肠道 微 生物丛 是 一个 具有 新 陈代谢 活 性 的 “ 官 ” 器
（ ． ０Ｈ ｒ Ａ Ｍ． ’ａａ等 ，０ ６ ， 于 不 断 的适 应 ， 化 和 ２０ ）处 变
ｔ ｉ ｂｉ Ｄ ａ ｓ ｒＳ ｒｉａ和 Ｒ ｓｂ ｒ ｏ随 着 日龄 ｙ ｖ ｒ ， ｉ ｉｅ， ａ ｎ ｒｉ ｏ ｌｔ ｃ ｏｅ ｕｉ ａ
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广东饲料 第 ２ 卷第 ７ １ 期 ２１ 年 ７ ０２ 月
值 得 注 意 的是 ，大肠 杆 菌 所 属 的 一变 形杆 菌 纲 （ ｐｏｅｂｃｅｉ） 菌 数 量 并 不 多 ， 占 ０１％。 Ｔ— ｒｔ ａｔ ａ细 ｏ ｒ 只 ．２ Ｌ ｍ ｎｅａ等 （０ １研 究 了大 约 克 猪 粪 便 微 生 物 ａ ｅｄｌ ｌ ２１ ） 组成 ， 同样 发 现厚 壁菌 门和拟杆 菌 门是猪 粪便 的优 势 菌群 ，在 细菌 属 的种 系发 生 型 上 ，普 雷 沃 菌 属 （ ｒｖｔｌｓｐ） 猪粪便 中 占优势 。 Ｐｅｏｅａｐ ． ｌ 在