抗体的提取与纯化
抗体纯化方法
抗体纯化方法1. 引言抗体是一类免疫蛋白，具有识别和结合特定抗原的能力。
在生物医学研究和临床应用中，纯化高质量的抗体是非常重要的。
抗体纯化方法可以去除杂质，提高抗体的纯度和活性，从而提高其应用效果。
本文将介绍几种常见的抗体纯化方法。
2. 凝胶过滤层析法凝胶过滤层析法是一种基于分子大小的纯化方法。
该方法利用不同孔径的凝胶过滤介质，将目标分子（如抗体）与较大分子（如蛋白质杂质）分离开来。
具体操作步骤如下：1.将含有目标抗体的混合物加入到预先平衡好的凝胶柱中。
2.使用缓冲液进行洗脱，使较大分子无法通过凝胶柱而流出。
3.目标抗体由于分子大小适中，能够通过凝胶柱被保留下来。
4.最后使用洗脱缓冲液将目标抗体从凝胶柱中洗脱出来，得到纯化的抗体。
凝胶过滤层析法的优点是简单易行，不需要特殊设备，且适用于各种规模的实验室。
但其缺点是分离效率较低，只能实现较为粗略的纯化。
3. 亲和层析法亲和层析法是一种基于生物分子之间特异性相互作用的纯化方法。
该方法利用抗体与抗原之间的特异性结合来实现目标抗体的纯化。
具体操作步骤如下：1.将含有目标抗体的混合物加入到预先包含特异性结合配体（如蛋白A、蛋白G等）的亲和层析柱中。
2.目标抗体与配体之间发生特异性结合。
3.使用洗脱缓冲液将非特异结合的组分洗脱掉。
4.最后使用洗脱缓冲液将目标抗体从亲和层析柱中洗脱出来，得到纯化的抗体。
亲和层析法具有高选择性和高效率的优点，能够得到高纯度的抗体。
但其缺点是需要特定的亲和剂和配体，成本较高。
4. 离子交换层析法离子交换层析法是一种基于生物分子表面电荷的纯化方法。
该方法利用目标抗体与离子交换柱中固定的离子之间的相互作用来实现纯化。
具体操作步骤如下：1.将含有目标抗体的混合物加入到预先平衡好的离子交换柱中。
2.使用缓冲液进行洗脱，使与固定离子相同电荷的分子无法通过离子交换柱而流出。
3.目标抗体由于表面电荷不同，能够通过离子交换柱被保留下来。
4.最后使用洗脱缓冲液改变pH或盐浓度等条件，将目标抗体从离子交换柱中洗脱出来，得到纯化的抗体。
抗体纯化的基本流程
抗体纯化的基本流程引言抗体纯化是生物技术领域中的重要工作之一，其目的是从复杂的混合物中分离和纯化抗体。
抗体纯化的基本流程涉及到多种技术和步骤，本文将全面、详细、完整地探讨这些内容。
什么是抗体在开始探讨抗体纯化的基本流程之前，我们先来了解一下什么是抗体。
抗体是一种由免疫系统产生的蛋白质分子，可以识别并结合到体内外的抗原分子上，从而协助免疫系统抵御病原体侵袭。
抗体具有高度的特异性和亲和力，因此被广泛应用于医学诊断、药物研发和生物科学研究等领域。
抗体纯化的重要性抗体的纯化是从生物样品中分离和富集抗体的关键步骤，对于保证后续实验的可靠性和有效性至关重要。
纯化后的抗体可以用于分析抗原-抗体相互作用、制备单克隆抗体或用于治疗等多个方面。
抗体纯化的基本流程步骤一：产生抗体抗体在纯化之前需要首先通过免疫方法产生。
这通常包括以下步骤：1.抗原选择：选择与目标抗体结合的抗原，并合成或提取得到纯化的抗原。
2.免疫动物选择：选择合适的动物（如小鼠、兔子等）作为免疫动物。
3.免疫过程：将抗原注射到免疫动物体内，激发其产生特异性抗体。
4.收集免疫血清：从免疫动物的血液中收集含有抗体的免疫血清。
步骤二：预处理样品在开始抗体纯化之前，通常需要对样品进行一些预处理步骤，以去除杂质和提高纯化效果：1.样品收集：收集包含抗体的样品，如免疫动物的血清或细胞培养上清液。
2.去除大分子杂质：通过使用滤器或超速离心的方法，去除样品中的大分子杂质，如胶原蛋白、细胞碎片等。
步骤三：亲和层析亲和层析是抗体纯化中最常用的方法之一，它基于抗体与特定配体（如抗原或蛋白A/G）的高亲和性实现抗体的分离和富集。
1.根据抗体的特性选择合适的配体：根据抗体的免疫来源和特性，选择能够与之高亲和结合的配体。
2.固定配体：将配体固定在固相支持材料上，如琼脂糖、琼脂糖糖胶等。
3.样品加载：将预处理后的样品加入到亲和层析柱中。
4.洗脱：通过改变洗脱缓冲液的条件，如改变pH值、离子强度等，洗脱不结合的杂质。
4种常用抗体分离纯化工艺介绍
4种常用抗体分离纯化工艺介绍抗体分离纯化的主要目的是将抗体与工艺相关杂质和产品相关杂质分离，最终获得高纯度、低潜在危害的抗体药物。
纯化过程中需要去除的工艺相关杂质包括细胞、细胞碎片、宿主细胞蛋白、宿主细胞核酸及培养基与加料液成分，需去除的产品相关杂质主要包括抗体片段和聚集体。
纯化过程还需具备足够的病毒灭活去除能力，以去除宿主细胞自身表达的内源病毒样颗粒和未及时发现的外源病毒。
大多数工艺利用ProteinA来捕获抗体，并利用了至少1个离子交换层析作为精纯步骤，仅少数工艺使用了疏水、羟基磷灰石和分子筛层析等步骤。
下图中显示了一个常见的抗体纯化工艺。
反应器收获液首先经过离心和过滤，去除细胞和细胞碎片，然后经过ProteinA层析捕获抗体,捕获后的抗体经低pH孵育后，通过两个离子交换层析进行精纯,然后进行病毒过滤，最后换液并调整抗体浓度，得到抗体原液。
工艺中的低pH孵育和病毒过滤是两个正交的专属病毒去除灭活步骤。
这两个专属步骤与层析步骤一起，可大大降低原液中可能存在的病毒数目。
工艺中的低pH孵育和病毒过滤是两个正交的专属病毒去除灭活步骤。
这两个专属步骤与层析步骤一起，可大大降低原液中可能存在的病毒数目。
抗体分离纯化工艺其中最常用的四种纯化方法，也就是今天的主角“四大名捕”。
我们接着往下看吧。
1、Protein A从原核金黄色葡萄球菌细胞壁分离的结合受体Protein A(~56kDa)与不同免疫球蛋白同型的Fc区以及人VH3家族的Fab区具有高度的亲缘关系。
进一步研究表明，Protein A仅限于与IgG亚类IgG1、IgG2和IgG4结合，与IgG3的反应性很低，约占总IgG的8%。
天然的Protein A有5个IgG结合结构域和未知功能的非Fc结合域，结构示意图如下：Protein A的结构域示意图此结构的Protein A大量结合IgG的同时，其非Fc结合域能结合部分杂蛋白，导致洗脱下来的IgG纯度不够，因此科学家利用基因工程的方法克隆Protein A 的基因并进行改造，得到重组型Protein A，其非特异性结合明显降低。
卵黄抗体的分离提取和纯化方法
卵黄抗体的分离提取和纯化方法
卵黄抗体的分离提取和纯化是一种重要的实验技术，用于从蛋黄中获取纯化的抗体。
以下是一种常见的卵黄抗体分离提取和纯化的方法。
首先，收集需要提取卵黄抗体的鸡蛋，并分离出蛋黄。
接下来，利用一种物理方法，如离心或冷冻解冻循环，将蛋黄细胞破裂开放，使得抗体被释放到溶液中。
然后，使用晶体胶过滤或离心的方法，去除残留的细胞碎片和大分子物质。
接下来，使用一种亲和层析技术，例如蛋白A/G层析，选择性地吸附卵黄抗体在固定相上，在此过程中可以选择不同的缓冲条件和负载材料，以便优化抗体与固定相之间的亲和性。
随后，通过洗脱步骤，用适当的洗脱缓冲溶解固定相上的抗体，使其从固定相上脱落，得到纯化的卵黄抗体。
最后，通过浓缩和纯化步骤，使得卵黄抗体的浓度得到提高，并去除可能的污染物。
综上所述，卵黄抗体的分离提取和纯化方法包括蛋黄细胞破裂、去除残留物、亲和层析、洗脱、浓缩和纯化等步骤。
这些方法可以有效地提取和纯化卵黄抗体，为后续的实验研究和应用提供优质的抗体材料。
抗体的提取与纯化
抗体的提取与纯化精制免疫球蛋白的方法很多。
一般采用综合技术，避免蛋白变性。
如分离IgG时，多结合使用盐析法与离子交换法，以求纯化。
提取IgM的方法也很多，如应用凝胶过滤与制备电泳法，或离子交换与凝胶过滤等。
一、盐析法1 取x ml血清加x ml生理盐水，于搅拌下逐滴加入2xml饱和硫酸铵，硫酸铵的终饱和度为50%。
2置4℃，3h以上，使其充分沉淀离心（3000rpm）,20min,充上清，以xml生理盐水溶解沉淀，再逐滴加饱和硫酸铵x/2ml。
3 置4℃3h以上，[此时，（NH4）2SO4的饱和度为33%]重复上述第二步过程1～2次。
4 末次离心后所得沉淀物为γ-球蛋白，以0.02mol/L pH7.4 PBS溶解至xml装入透析袋。
对PBS 充分透析、换液3次，至萘氏试剂测透析外液无黄色，即无NH4+为止。
5 取透析袋内样品少许作适当倍数稀释后，以751型紫外分光光度计测定蛋白含量。
影响盐析的因素很多，如蛋白质的浓度，盐的浓度，饱和度和pH，温度等都可影响盐析的结果，操作时要充分注意（参阅本章第二节）。
二、冷酒精沉淀法分离过程如下。
血清加3倍体积的蒸馏水，调节pH至7.7(±)冷却到0℃。
在激烈搅拌的条件下，加预冷的酒精（-20℃）到最终浓度为20%，保持在-5℃。
产生的沉淀（A），含有大多数种类的免疫球蛋白。
沉淀A悬浮于25倍体积的0.15～20mol/L NaCl溶液（冷）中，加有0.05mol/L醋酸调节pH到5.1，产生的沉淀（B），包括大部分的IgA和IgM，IgG留在上清液内。
调节上清液的pH到7.4，加冷酒精（-20℃～-30℃）到最终浓度为25%，维持在-5℃。
所得到的沉淀（C）含有90%～98%IgG。
不同动物，IgG分离的条件和产量略有不同。
见表2-5。
从沉淀（B）可按下述方法进一步分离出IgA和IgM的混合物：将沉淀（B）悬浮在0℃水中，调节pH到5.1，离心去除不溶的蛋白。
抗体的提纯实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握抗体提纯的基本原理和方法。
2. 学习并掌握利用亲和层析法、盐析法等方法对抗体进行提纯。
3. 评估提纯效果，确保抗体纯度。
二、实验原理抗体是一种具有特异性的蛋白质，主要存在于血清、组织液等体液中。
抗体提纯的目的是去除抗体中的杂质，提高其纯度和活性。
常用的抗体提纯方法有亲和层析法、盐析法、离子交换层析法等。
亲和层析法：利用抗体与抗原之间的高亲和力，将抗体吸附在特异性抗原上，通过洗脱剂洗脱抗原，实现抗体与抗原的分离。
盐析法：利用盐离子对蛋白质溶解度的影响，通过调节溶液中的盐浓度，使抗体沉淀出来。
三、实验材料1. 实验试剂：抗体溶液、抗原溶液、亲和层析柱、盐析剂、离子交换层析柱、缓冲液等。
2. 实验仪器：离心机、分光光度计、移液器、培养箱、冰箱等。
四、实验步骤1. 亲和层析法（1）将抗体溶液过柱，用缓冲液平衡亲和层析柱。
（2）将抗原溶液加入亲和层析柱，使抗体与抗原结合。
（3）用洗脱剂洗脱未结合的抗原，收集抗体洗脱液。
（4）将抗体洗脱液离心，收集上清液。
2. 盐析法（1）将抗体溶液加入适量的盐析剂，调节盐浓度至抗体沉淀的适宜范围。
（2）静置一段时间，使抗体沉淀。
（3）离心收集抗体沉淀，用缓冲液溶解沉淀。
（4）检测抗体溶液的浓度和活性。
3. 离子交换层析法（1）将抗体溶液过柱，用缓冲液平衡离子交换层析柱。
（2）根据抗体带电荷性质，选择合适的离子交换层析柱。
（3）通过改变缓冲液的离子强度，使抗体吸附在层析柱上。
（4）用梯度洗脱剂洗脱抗体，收集抗体洗脱液。
（5）离心收集抗体洗脱液。
五、实验结果与分析1. 亲和层析法通过亲和层析法提纯抗体，得到纯度较高的抗体溶液。
通过SDS-PAGE电泳检测，抗体分子量与预期相符。
2. 盐析法通过盐析法提纯抗体，得到纯度较高的抗体溶液。
通过SDS-PAGE电泳检测，抗体分子量与预期相符。
3. 离子交换层析法通过离子交换层析法提纯抗体，得到纯度较高的抗体溶液。
抗体的检测和纯化(4)
• Protein A/G亲和层析 • 亲和层析是一种快速有效的生物活 性物质的纯化方法,它通过偶联蛋白对 目的蛋白选择性的吸收和分离,可取得 较高的纯化效果,且操作简便,广泛地应 用于实验室抗体纯化。由于产品价格昂 贵,使用成本较高,限制了它的运用
• Protein A • A 蛋白是金黄色葡萄球菌的表面蛋白,分 子量为42 KD ,有6 个不同的IgG结合位点。其 中有5 个位点对IgG的Fc 片段显示很强的特异 性亲和力,不同的位点独立地与抗体结合。但 IgA , IgM , IgE 也可能结合在配体上,当达到饱 和时,一个A 蛋白分子至少可以结合两个IgG分 子。A 蛋白对IgG有高亲和力和特异性,这一特 点使之非常适合用于纯化腹水或细胞培养上 清中的单克隆抗体
精度纯化
• 目的：保证最终抗体产品纯度，能有效对 潜在的污染物，如宿主细胞蛋白 (HCP)、免 疫球蛋白、宿主DNA； • 对用于腹水生产抗体的刺激物、内毒素、 其它热原物质、培养液成分、层析凝胶析 出成分 (脱落的蛋白A配基) 进行去除；并能 有效的去除/灭活病毒。
建议的工艺
• 首先采用0.2-0.45 m的中空纤维膜技术进行 澄清 (Cell removal)； • 然后用protein-A或protein-B捕获，酸性条件 洗脱后直接pH 4.0病毒灭活； • 澄清过滤后再穿透方式上Capto Adhere； • 这一步离子交换之前或之后会有一步20nm 纳滤去病毒；最后50K膜超滤浓缩和洗滤进 行缓冲液置换。 • 有些抗体如果通过优化结果不甚满意，通 过增加一步Capto Q也基本上可以达到要求
目的：去除特定的杂质，如HCP、DNA、聚集 体和变体等。 常用的层析技术：CaptoAdhere、离子交换、 疏水层析等。
抗体纯化应用的原理
抗体纯化应用的原理1. 引言在生物医学研究中，抗体纯化是一项非常重要的技术，它可以用来提取纯化抗体样品，以便用于研究和临床应用。
抗体纯化的原理通常涉及选择性地结合目标抗体并除去其他混杂物质，从而得到高纯度的抗体样品。
2. 抗体纯化的方法抗体纯化可以通过多种方法实现，以下是常用的几种方法：2.1. 蛋白A/G层析蛋白A/G是两种常用的蛋白质结合剂，它们能够选择性地结合免疫球蛋白IgG。
在蛋白A/G层析中，将抗体样品与蛋白A/G结合，然后经过洗脱，可以得到纯化的抗体。
2.2. 亲和层析亲和层析是一种基于抗原与抗体的专一亲和性结合原理的纯化方法。
在亲和层析中，将抗原结合在固定基质上，再将抗体样品加入，经过洗脱，可以得到纯化的抗体。
2.3. 高效液相色谱法高效液相色谱法（HPLC）是一种高效、高分辨率的色谱技术，可以用于抗体的纯化。
在HPLC中，通过调节流动相和固定相的性质，可以实现对目标抗体的选择性保留和纯化。
2.4. 过滤纯化法过滤纯化法是一种简单而有效的抗体纯化方法。
通过选择性膜过滤技术，可以除去混杂物质，从而得到纯化的抗体样品。
3. 抗体纯化的原理抗体纯化的原理基于抗体与其他分子之间的特异性相互作用。
通过利用抗体与抗原结合的专一性，可以选择性地捕获目标抗体并除去其他成分。
抗体纯化的过程通常包括以下几个步骤：1.样品预处理：通常需要对样品进行预处理，去除干扰物质和杂质。
这可以通过离心、过滤、稀释等方法实现。
2.抗体捕获：根据纯化方法的选择，将样品与相应的固定基质或结合剂接触，以捕获目标抗体。
3.洗脱：通过适当的洗脱缓冲液，洗去非特异性结合的物质，从而除去杂质。
4.分离：将洗脱后的溶液进行分离，可以通过离心、过滤、纯化柱等方法分离目标抗体。
5.浓缩和纯化：最后，对目标抗体进行浓缩和纯化处理，以获得高纯度的抗体样品。
4. 抗体纯化的应用抗体纯化在生物医学研究和临床应用中有广泛的应用。
以下是一些常见的抗体纯化应用：•生物学研究：纯化的抗体用于生物学研究，如免疫组化、免疫印迹、流式细胞术等。
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(关键词：抗体；抗体的提取与纯化；盐析法；冷酒精沉淀法；DEAE-SephadexA-50柱层析纯化免疫球蛋白；SPA-SepharoseCL-4B 亲合层析纯化IgG；离子交换层析)精制免疫球蛋白的方法很多。
一般采用综合技术，避免蛋白变性。
如分离IgG时，多结合使用盐析法与离子交换法，以求纯化。
提取IgM的方法也很多，如应用凝胶过滤与制备电泳法，或离子交换与凝胶过滤等。
一、盐析法取x ml血清加x ml生理盐水，于搅拌下逐滴加入2xml饱和硫酸铵，硫酸铵的终饱和度为50%。
↓4℃，3h以上，使其充分沉淀离心（3000rpm）,20min,充上清，以xml生理盐水溶解沉淀，再逐滴加饱和硫酸铵x/2ml。
↓置4℃3h以上，[此时，（NH4）2SO4的饱和度为33%]重复上述第二步过程1～2次。
末次离心后所得沉淀物为γ-球蛋白，以0.02%mol/L pH7.4PBS溶解至xml装入透析袋。
↓对PBS充分透析、换液3次，至萘氏试剂测透析外液无黄色，即无NH4+为止。
取透析袋内样品少许作适当倍数稀释后，以751型紫外分光光度计测定蛋白含量。
影响盐析的因素很多，如蛋白质的浓度，盐的浓度，饱和度和pH，温度等都可影响盐析的结果，操作时要充分注意（参阅本章第二节）。
二、冷酒精沉淀法分离过程如下。
血清加3倍体积的蒸馏水，调节pH至7.7(±)冷却到0℃。
在激烈搅拌的条件下，加预冷的酒精（-20℃）到最终浓度为20%，保持在-5℃。
产生的沉淀（A），含有大多数种类的免疫球蛋白。
沉淀A悬浮于25倍体积的0.15～20mol/L NaCl溶液（冷）中，加有0.05mol/L醋酸调节pH到5.1，产生的沉淀（B），包括大部分的IgA 和IgM，IgG留在上清液内。
调节上清液的pH到7.4，加冷酒精（-20℃～-30℃）到最终浓度为25%，维持在-5℃。
所得到的沉淀（C）含有90%～98%IgG。
不同动物，IgG分离的条件和产量略有不同。
见表2-5。
从沉淀（B）可按下述方法进一步分离出IgA和IgM的混合物：将沉淀（B）悬浮在0℃水中，调节pH到5.1，离心去除不溶的蛋白。
调节上清液离子强度到0.01～0.0075,pH5.5。
然后加冷酒精到最终浓度为10%，保持在–2℃或-3℃低温，所得的沉淀（B-B）主要含IgA和IgM。
表2-5 从几种动物和人血清沉淀A分离IgM的条件物种 pH 沉淀条件 IgG产量酒精浓度（%）离子强度人 5.1 15. 0.01 65山羊 5.2 0 0.01 65家兔 5.2 10 0.01 70大鼠 5.0 15 0.01 50豚鼠 5.1 15 0.01 70三、DEAE-Sephadex A-50 柱层析纯化免疫球蛋白原理：DEAE-Sephadex A-50（二乙氨基—乙基-葡萄糖凝胶A-50）为弱碱性阳离子交换剂。
用NaOH将Cl-型转变为OH-型后，可吸附酸性蛋白。
血清中的γ球蛋白属于中性蛋白（等电点为pH6.85～7.5），其余均属酸性蛋白。
PH7.2～7.4的环境中，酸性蛋白均被DEAE- Sephadex A-50吸附，只有γ球蛋白不被吸附。
因此，通过柱层析，γ球蛋白便可在洗脱中先流出，而其他蛋白则被吸附在柱上，从而便可分离获得纯化的IgG.（一）操作步骤1．DEAE-SephadexA-50预处理称DEAE-SephadexA-50（下称A-50）5g，悬于500ml 蒸馏水内，1h后倾去上层细粒。
按每克A-50加0.5mol/LNaOH 15ml 的比例，将A-50浸泡于0.5mol/LNaOH液中，搅匀，静置30min，装入布氏漏斗（垫有2层滤纸）中抽滤，并反复用蒸馏水抽洗至pH 呈中性；再以0.5mol/LHCl同上操作过程处理，最后以0.5mol/LNaOH 再处理一次。
处理完后，将A-50浸泡于0.1mol/LpH7.4PB中过夜。
2．装柱（1）将层析柱垂直固定于滴定架上，柱底垫一圆形尼龙纱，出水口接一乳胶或塑料管并关闭开关。
（2）将0.1mol/L,pH7.4PB沿玻璃棒倒入柱中至1/4高度，再倒入经预处理并以同上缓冲液调成稀糊状的A-50。
等A-50。
等A-50凝胶沉降2～3cm高时，开启出水口螺旋夹，控制流速1ml/min，同时连续倒入糊状A-50凝胶至所需高度。
（3）关闭出水口，待A-50凝胶完全沉降后，柱面放一圆形滤纸片，以橡皮塞塞紧柱上口。
通过插入橡皮塞之针头及所连接的乳胶或塑料管与洗脱液瓶相连接。
3．平衡启开出水口螺旋夹，控制流速12～14滴/min。
使约2倍床体积的洗脱液流出。
并以pH计与电导仪分别测定洗脱液及流出液之pH值与离子强度，两者达到一致时关闭出水口，停止平衡。
4．加样及洗脱启开上口橡皮塞入下口螺旋夹，使柱中液体缓慢滴出，当柱面液体与柱面相切时，立即关闭出水口，以毛细滴管沿柱壁加入样品（体积应<床体积2%，蛋白浓度以<100mg为宜）。
松开出水口螺旋夹使面样品缓慢进入柱内，至与柱面相切时，立即关闭下口，以少量洗脱液洗柱壁2～3次；再放开出水口，使洗液进入床柱，随后立即于柱面上加入数毫升洗脱液，紧塞柱上口，使整个洗脱过程成一密闭系统。
并控制流速12～14滴/min。
5．收集开始洗脱的同时就以试管进行收集。
每管收集3～5ml。
共收集10～15管。
6．测蛋白以751型紫外分光光度计分别测定每管OD280nm, 与OD260nm,按公式计算各管蛋白含量。
并以OD280nm为纵座标，以试管编号为横座标，绘制洗脱曲线。
7．合并、浓缩将洗锐峰的上坡段与下坡段各管收集液分别进行合并，以PEG （MW6000）浓缩至所需体积，加入0.02%NaN3防腐，于4℃保存备用。
长期保存时应贮于-40℃冰箱。
8．A-50凝胶的再生在柱上先以2mol/LNaCl洗脱蛋白至流出液的OD280nm<0.02，再以蒸馏水洗去柱中盐。
然后按预处理过程将A-50再处理一遍即达到再生。
近期用时泡于洗脱缓冲液中4℃保存；近期不用时，以无水酒精洗2次，再置50℃温箱烘干，装瓶内保存。
（二）注意事项（1）柱的选择：从理论上说，只要柱足够长，就能获得理想的分辨率，但由于层析柱流速同压力梯度有关，柱长增加使流速减慢，峰变宽，分辨率降低。
柱的直径增加，使流体流动的不均匀性增加，分辨率明显下降。
（2）纯化过程必须严格控制缓冲液的pH及离子强度。
样品与A-50凝胶必须用洗脱缓冲液彻底平衡后，才能进行柱层析。
（3）所装的柱床必须表面平整，无沟流及气泡，否则应重装。
（4）洗脱过程中应严格控制流速，切勿过快。
（5）上样的体积要小，浓度不宜过高。
（6）加样及整个洗脱过程中，严防柱面变干。
四、SPA-Sepharose CL-4B 亲合层析纯化IgG及IgG亚类（一）原理葡萄球菌A蛋白（SPA）具有与多种哺乳动物IgG分子Fc段结合的能力，并与不同IgG亚类的结合力有所差别。
改变pH及离子强度可洗脱结合于SPA-SepharoseCL-4B 柱上的IgG或不同的IgG 亚类，可直接纯化血清或小鼠腹水中的IgG抗体。
（二）操作步骤用0.1mol/L pH8.0磷酸缓冲液浸泡SPA-SepharoseCL-4B凝胶，15min。
按1g干胶200ml上述缓冲液充分洗涤凝胶，（用玻璃漏斗过滤或置烧杯中洗涤）。
↓装柱后用0.1mol/L pH8.0磷酸缓冲液平衡。
标本可用硫酸铵粗提物，先10000g离心除去杂质，必要时用0.22μm滤膜过滤，上样前用1mol/L pH9.0 Tris 液调整标本液pH至8.1或对平衡液透析过夜。
↓加样，一般按25～30mg IgG/g湿胶比例加样，室温作用15min，用0.1mol/LpH8.0磷酸缓冲液充分淋洗，到淋洗液OD值为<0.02。
↓用不同pH的枸橼酸洗脱液洗脱，流速20ml/h。
如纯化小鼠IgG1一般用pH6.0;纯IgG2a用pH4.0；纯化IgG2b用0.1mol/LpH3.0醋酸盐缓冲液0.1mol/LpH3.0glycine-HCl缓冲液洗脱。
↓用pH3.0或4.0洗脱液洗脱时，用适量固体Tris直接中和含有IgG的洗脱液。
↓收集洗脱液测OD值，根据实验需要透析除盐后进行浓度、纯度和活性测定。
（三）试剂器材（1）SPA-Sepharose L-4B （pharmacia）（2）磷酸缓冲液0.1mol/L pH8.0+0.02% NaN3（3）枸橼酸缓冲液0.1mol/LpH6.0 0.1mol/LpH4.0 +0.02% NaN30.1mol/LpH3.0（4）1mol/L pH9.0 Tris溶液（5）再生缓冲液：①0.1mol/L Tris含0.5mol/L NaCl调整pH至8.5+0.02% NaN3;②0.1mol/L 醋酸钠含0.5mol/L NaCl调整pH至4.5+0.02%NaN3。
（四）注意事项（1）SPA-Sepharose CL-4B凝胶价格昂贵，可再生后反复使用10～20次左右。
方法：先用10倍柱体积0.1mol/L pH8.5 Tris含0.5mol/L NaCl溶液洗脱柱上的残存杂蛋白；再用10倍柱体积0.1mol/L pH4.5醋酸钠缓冲液含0.5mol/L NaCl溶液洗脱柱上的残存杂蛋白；0.1mol/L pH8.0磷酸缓冲液平衡，4℃贮存。
(2)SPA-Sepharose CL-4B亲合层析法还可用于：①除去抗体液中IgG,检测非IgG抗体（如IgM）的生物学活性；②除去木瓜蛋白酶或胃蛋白酶水解IgG后的Fc段；③吸收或纯化免疫复合物。
（3）狗、猫的多克隆IgM和IgA以及单克隆IgA和IgM也具有与SPA结合的能力。
金黄色葡萄球菌A蛋白（staphylococcal protein A，SPA）可与IC中IgG的Fc段结合。
将待测血清用低浓度PEG沉淀后加至SPA包被的固相载体上，再以酶标记的SPA与之反应，即可检测样本中有无IC。
1、试剂（1）5%与2.5%PEG用0.02mol/LpH7.4PBS配制；（2）牛血清白蛋白（BSA）缓冲液：用0.05mol/L pH 7.4PBS配制。
含0.01mol/L EDT A、0.1%硫柳汞、0.05%Tween 20及4%BSA；（3）HRP-SPA用改良过碘酸钠法将SPA与辣根过氧化物酶（HRP）制成结合物，最适工作浓度以方阵法滴定；（4）热聚合人IgG：人IgG 10mg/ml，63℃加热20min制成。
2、操作步骤（1）用PBS稀释SPA成5Ps/ml，包被聚苯乙烯反应板微孔，每孔0.1ml（对照孔不包被），置4℃过夜后洗涤3次备用；（2）待测血清0.05ml加PBS0.15ml和5%PEG0.2ml混匀，4℃过夜后1600r/min离心2 0min，弃上清，沉淀用2.5%PEG洗2次，加入PBS0.2ml和BSA缓冲液0.2ml，混匀，置37℃水浴30min，摇动，使完全溶解；（3）将已溶解的待测血清沉淀物加至上述包被孔和对照孔中，置37℃60min，洗3次；各孔加底物溶液（OPD—H202）0.1ml，37℃20min使呈色。