实验一 种子活力测定
玉米种子活力测定方法
玉米种子活力测定是评估种子的萌发力和存活能力的一项重要测试。
以下是常用的玉米种子活力测定方法之一：
材料：
1. 玉米种子样品
2. 温水
3. 塑料培养皿或湿纸巾
4. 温度恒定的恒温箱或培养箱
5. 透明塑料袋或保鲜膜
步骤：
1. 准备一定数量的玉米种子样品。
2. 将玉米种子样品清洗干净，去除表面的杂质和残留物，然后用温水均匀湿润种子表面。
3. 取一张塑料培养皿或湿纸巾，在上面均匀铺开湿润的玉米种子样品。
4. 将培养皿或湿纸巾盖上，并将其放入温度恒定的恒温箱或培养箱中。
5. 在恒温箱或培养箱中将温度保持在适宜的范围，通常为25-30摄氏度。
6. 观察并记录种子的萌发情况。
每隔一定时间，打开培养皿或湿纸巾，检查种子是否有萌发出幼芽。
记录每个时间点的萌发率。
7. 继续观察并记录种子的生长情况。
如果种子开始生长出根和茎，可以将其转移到透明塑料袋或用保鲜膜封好的容器中，以提供适当的湿度和氧气。
8. 持续观察并记录种子的生长状况，直到观察期结束。
9. 计算种子的活力。
活力通常通过计算种子的发芽率、平均萌发时间和相对活力指数等参数来评估。
请注意，以上是玉米种子活力测定的一般方法，实际操作可能因实验要求和设备条件而有所不同。
在实施种子活力测定之前，建议参考相关的科学文献、标准操作规程或咨询专业人士，以确保使用合适的方法和正确的数据分析。
稻麦种子生活力的测定
3、实验步骤：
①浸种：取待测水稻或棉花种子50粒预浸，小麦种子浸2-3小 时，籼稻种子浸6-8小时，粳稻种子浸24小时。水稻种子应 剥除谷壳，并保持浸种温度在30-35℃，以增强种胚的呼吸 强度，加速种子吸水，是的染色更加迅速。 ②染色：将浸种的水稻、棉花种子，剥去种皮，用刀片沿腹沟 纵切两半，水稻种子沿胚的中心线纵切为两半（测定的一半 一定要带胚），取其中的一半置于培养皿中，培养皿要编号。 在培养皿中加入适量的0.1%T.T.C溶液，以覆盖种子为度， 然后置于40 ℃恒温箱中约0.5-1小时，然后观察结果，根据 种子胚部是否产生红色反应以鉴定其生活力。 ③计算：种子活力(%)=有活力的种子数/种子总数×100%
2、实验材料和用具
（1）实验材料：水稻、棉花久经贮藏后部分丧 失生活力的种子，新鲜的种子。
（2）实验用具：恒温箱、烧杯、培养皿、漏斗、 镊子 （3）实验试剂：5%的红墨水溶液：红墨水 5ml加水95ml即可。
3、实验步骤
①浸种：同上述TTC法。 ②染色：取经过浸泡的种子，沿胚的中心线纵切为两半， 将一半置于培养皿中，加入少量5%的红墨水（以淹没 种子为度），染色10-15分钟（如果温度高可短些）。 染色后取出洗净，至冲洗液无色为止。检查种子的死活， 凡种胚不着色或着色很浅者为活种子；凡种胚与胚乳着 色程度相同的为死种子。 （不论是活种子或死种子的胚乳均染成红色） ③计算：种胚不着色或是着色浅的种子数，算出活种子的 百分率。 种子活力(%)=有活力的种子数/种子总数×100%
（二）红墨水法快速测定种子生活力
1、实验原理
凡是有活力的种子胚细胞的原生质膜具有 半透性，选择性吸收物质的能力，一般染料 不能进入细胞内，胚部不染色。而丧失活力 的种子，其胚部细胞原生质膜会丧失选择吸 收能力，于是染料便能自由进入死细胞内而 染色，所以可根据种子胚部是否被染色来判 断种子的活力。
种子活力的测定
肇庆学院生命科学学院生物科学系植物生理学课实验报告08 年级生本班 B 组28 实验日期10.22姓名杨丹平老师评定＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿实验题目实验五种子活力的测定一、实验目的：掌握种子活力快速测定的几种方法。
二、实验原理：1、活种子的胚在呼吸作用过程中能进行氧化还原反应，而死种子则无此反应。
当TTC渗入活种子胚细胞内作为氢受体而被脱氢辅酶(NADH2或NADPH2)上的氢还原时，无色的TTC转变为红色的三苯基甲（TTF）。
2.、活种子进行呼吸作用呼吸空气中的O2，放出CO2。
CO2溶于水成为H2CO3，H2CO3解离为H+和HCO3-，使得种子周围环境的酸度增加。
BTB法通过测定酸度的变化来判断种子活性。
BTB变色范围为PH6.0—7.6,酸性呈黄色，碱性呈蓝色，中间经过绿色（变色点为PH7.1）。
色泽差异显著，易于观察。
3红墨水染色法是根据活种子细胞的原生质膜具有选择性吸收物质的透性，而死种子的胚细胞原生质膜则丧失此性质，于是染料进入死细胞而染色。
三、实验仪器及材料：1、仪器：电热恒温培养箱、培养皿、烧杯、镊子、单面刀2、试剂：3%TTC溶液、0.1%BTB溶液、1%BTB琼脂凝胶3、材料：玉米、绿豆吸胀种子四、实验步骤：1．浸种种子在30—35℃温水中浸种5h2.0.5%TTC显色实验将吸胀的玉米种子30粒用单面刀沿种子胚的中心线纵切为两半，其中一半置于培养皿中，加入0.3%TTC，以覆盖种子为宜；将吸胀的绿豆种子去皮，随机选30粒置于培养皿中，加入0.3%TTC，置于30C观察培养箱中培养30min。
观察浸种胚是否为红色。
另30半粒玉米和已去皮的30粒绿豆置于沸水中2min以杀死胚，同样加入0.5%TTC置于30C培养箱中染色处理作为对照观察。
计算活种子的百分率。
3.1%BTB染色将吸胀的玉米种子30半粒和去皮的30粒绿豆种子分别整齐地埋于1%BTB琼脂凝胶两个培养皿中，平放，间距约1cm。
种子活力测定方法
种子活力测定方法种子活力测定方法是种子品质评价的重要手段之一，其目的是评估种子的发芽力和萌发势。
种子活力与种子内蕴水分、呼吸能力、抗逆性等因素密切相关，是衡量种子质量的重要指标之一。
下面将介绍几种常用的种子活力测定方法。
1. 发芽力测定法发芽力是衡量种子活力的重要指标之一，一般指种子萌发成苗的能力。
发芽力测定是判断种子品质的主要方法之一。
其步骤如下：首先，准备一定数量的种子样品，待测种子数量应根据需要而定，但一般不少于100粒；然后，将种子样品放入适合发芽的培养介质中，如培养皿、培养箱等；接下来，将培养介质放置在适宜的温度条件下，通常在25 - 30之间；观察并记录下种子的发芽情况，一般记录发芽数、发芽率等参数；最后，根据发芽数和发芽率来判断种子的活力水平。
2. 胚乳酸测定法胚乳酸测定法是测定种子活力的一种间接方法。
其原理是在种子老化过程中，胚乳中的淀粉被分解产生酸，通过测定胚乳酸含量来评估种子的活力。
具体步骤如下：首先，准备一定数量的种子样品，通常取100粒；然后，将种子样品粉碎，并用适量的水浸泡片刻，使胚乳酸完全溶解；接下来，取一定体积的溶液，加入胚乳酸试剂；然后，用菲仪或pH计测定胚乳酸的浓度；最后，根据胚乳酸浓度来评估种子的活力水平，通常胚乳酸浓度愈高，表示种子活力愈低。
3. 电导率测定法电导率测定法是一种评估种子活力的简单、快速的方法。
其原理是测定种子浸泡液中的电导率，通过判断电导率的高低来评估种子的活力。
具体步骤如下：首先，取适量的种子样品，用一定体积的水浸泡一段时间，通常为4小时；然后，用电导计测定浸泡液中的电导率；最后，根据电导率高低来判断种子的活力水平，电导率愈高，表示种子活力愈低。
4. 呼吸强度测定法呼吸强度测定法是一种评估种子活力的方法，其原理是通过测定种子的呼吸强度来评估种子的活力。
具体步骤如下：首先，取一定数量的种子样品，并进行表面消毒处理；然后，将种子样品放入呼吸仪中，并测定呼吸强度；最后，根据呼吸强度来评估种子的活力水平，呼吸强度愈高，表示种子活力愈强。
种子活力测定
第七章 种子活力测定
一、种子活力的概念和意义
与种子活力有关的特性包括：
种子发芽和幼苗生长的速度和整齐度； 田间表现，包括出苗和生长的速度和整齐度； 贮藏和运输后的表现。
第七章 种子活力测定
第七章 种子活力测定
3、方法和步骤
① 做老化装置 ② 准备样品 250 粒种子 ③ 老化处理 ④ 标准种子发芽试验 ⑤ 结果计算和报告
第七章 种子活力测定
四、电导率测定
1、原理：
种子吸胀初期，细胞膜重建和损伤修复的能力影响电解质和可 溶性物质外渗的程度，重建膜的完整性越快，外渗物质越少，电导 率也低。高活力种子重建膜的速度和修复损伤快于和好于低活力种 子，因此，高活力种子浸泡液的电导率低于低活力的种子。
取种子100 粒，2～4 次重复； 均匀播在砖粒上，并覆盖是砖粒 3～4 cm ，加盖； 将盒置于室温（约20℃）、 黑暗条件下经 10～14 天 ； 统计顶出砖粒的正常幼苗数，并计算种子活力百分率。
第七章 种子活力测定
八、幼苗生长特性测定
（一）幼苗生长测定 (Seedling growth test )
2、特点：
适合春播喜温作物种子：玉米，大豆和棉花等，是最古 老的方法。
第七章 种子活力测定
3、方法：
（1）土壤卷法
取试样 50 粒，4 次重复； 放在预湿发芽纸上，盖上土壤，盖上发芽纸，卷成纸卷； 10℃ 暗处理 7 天； 25℃ 暗发芽 5 天； 评价幼苗。
第七章 种子活力测定
第七章 种子活力测定
（2）种子活力测定的必要性
种子生活力快速测定——教案
种子生活力快速测定------红墨水染色法一、教学目标：知识与能力熟悉红墨水染色法测定种子生活力的原理和方法及其计算过程与方法通过实验，培养学生动手操作的能力情感态度与价值观通过观察和实验等教学活动，培养学生科学的思维方法，实事求是的科学态度以及协作精神。
二、教学重点和难点显色过程既是重点又是难点三、教学准备（一）教师准备1.仪器设备、材料和试剂（1）仪器：培养皿2套；镊子1把；单面刀片1片；垫板(切种子用)1块；烧杯1个；搪瓷盘1个；（2）试剂：取市售红墨水稀释20倍（1份红墨水加19份自来水）做为染色剂。
（3）材料：玉米或小麦2.实验操作准备浸种实验组将待测种子在30～35℃温水中浸泡(大麦、小麦、籼谷6～8h , 玉米5h左右,梗谷2h), 以增强种胚的呼吸强度,使显色迅速。
对照组取充分吸胀后取出一部分种子，在沸水中煮沸3～5min，3．学生分好组（二）、学生准备学生课前认真的自学，自己查找相关资料，了解与弄清所需实验用具或用品的用途和用法，做好预习案及实验前的一切准备。
四、教学方法、教学手段：1、教学方法：实验探究。
2、教学手段：本节课以学生亲自动手实践为主，教师演示与辅导为辅的教学手段。
五、教学设计：（一）创设情景，导入新课：教师讲述：种子生活力就是种子发芽的潜在能力，通过对种子生活力的测定可以快速预测种子的发芽能力，为我们的播种选种提供理论依据，本节课我们就是学习怎样动手快速测定种子生活力。
（二）讲授新课1.将在预习过程中遇到的疑惑，带到课堂师生共同解决，师生共同回顾种子生活力的相关知识。
2.红墨水染色法测种子生活力（1）教师示范操作（同时讲解操作要点）步骤：①. 显色取吸胀的种子和死种子各50粒,用刀片沿种胚中央纵切为两半, 其中一半放入培养皿中，加适量红墨水溶液（以浸没种子为度），染色10-20min后倒去红墨水溶液,用水反复冲洗多次,至冲洗液无色为止。
②.观察对比观察冲洗后两组种子胚部着色情况。
种子活力测定
实验六种子活力测定一、原理由于指示活力特性和指标是多种多样，而且因不同作物或种子生理发芽特性不同，幼苗生长表现各异，因此活力测定的方法也是种类很多。
大致可将这些方法分为直接法和简接法两大类：所谓直接法，是利用实验室可控制的条件，模拟田间不良的因素，观察种子田间出苗能力或幼苗生长的整齐健壮的程度。
如玉米低温试验、棉花低温发芽，及大小麦砖砂试验（低温及机械抑制力）等。
间接法是在实验室中测定与田间出苗力相关的种子特性、生理生化特性指标，如酶的活性、呼吸强度、种子浸泡液的电导率等。
如何正确选用活力测定方式是很重要的，通常应该考虑以下几点：首先是所采用的方法，其测定结果能否真正反映一批种子的活力水平；其次是所用方法要简单易行，节用费用；第三是测定方法最好能快速及时；最后是测定结果要有重演性，即不同地区、不同实验室所测结果比较一致。
二、目的要求1、了解种子活力测定原理和生产意义。
2、掌握重要种子活力测定方法和评定标准。
三、材料和器具1、材料准备不同活力的大麦、小麦、玉米、大豆和豌豆等种子样品。
2、器具培养箱、老化箱、老化盒、电导仪、天平、玻璃培养皿、发芽纸或滤纸、烧杯、镊子、尺子等。
四、方法和步骤（一）幼苗生长测定本法适用于具有直立胚芽和胚根的禾谷类和蔬菜类作物种子。
其测定方法是取试样4份，各25粒种子。
取发芽纸3张（30cm×45cm），取其中1张画线，先在纸长轴中心画一条横线，距顶端15cm。
并在其上、下每隔1cm画平行线。
在中心线上平均间隔画25点，在每点上放1粒种子，胚根端朝向纸卷底部，再盖二层湿润发芽纸，纸的基部向上折叠2cm，将纸松卷成4cm直径的筒状，用橡皮筋扎好，将纸卷竖放容器内，上用塑料袋覆盖。
置于黑暗恒温箱内培养7d，温度为正常发芽所规定温度，然后统计苗长：计算每对平行线之间的胚芽或胚根尖端的数目，按下列公式求出幼苗平均长度：式中：L 胚芽平均长度（cm）；n 每对平行线之间的胚芽尖端数；x 中点至中线之间的距离（cm）。
种子活力的测定
种子活力的测定【实验目的】学习掌握TTC法和红墨水染色法快速测定种子活力的原理和方法【实验原理】TTC法：活种子的胚在呼吸作用过程中能进行氧化还原反应，而死种子则无此反应。
当TTC渗入活种子胚细胞内作为氢受体而被脱氢辅酶(NADH2或NADPH2)上的氢还原时，无色的TTC转变为红色的三苯基甲腙（TTF）；如果种胚死亡或种胚生活力衰退，则不能染色或染色较浅，因此，可以根据种胚染色的部位或染色的深浅程度来鉴定种子的生活力。
红墨水染色法：活种子细胞的原生质膜具有选择性吸收物质的透性，而死种子的胚细胞原生质膜则丧失此性质，于是染料进入死细胞而染色。
种子活力（％）＝有活力的种子数/种子总数×100%TTC法：活种子百分率（%）=（染成红色的种子粒数/实验种子的总粒数)×100%红墨水法：活种子百分率（%）=(不着色或着色很浅的种子粒数占实验种子/实验种子的总粒数) ×100%【实验材料、试剂】玉米、小麦种子0.3%(w/v)TTC5%红墨水（红墨水5ml+95ml自来水)【实验步骤】TTC法1. 将玉米、小麦种子用温水(30~35℃)浸泡3~6h，使种子充分吸胀。
2. 随机取种子30粒，沿种胚中央准确切开，其中一半置于培养皿中，加入0.3%TTC，以覆盖种子为宜，置于30 ℃观察培养箱中培养30min ；另30半粒玉米置于沸水中2min以杀死胚，同样加入0.5%TTC置于30 ℃培养箱中染色处理作为对照观察。
3. 倒出TTC溶液，再用清水将种子冲洗2次，观察种胚被染色的情况。
4.观察：种胚为红色为活种子，而不能染色或染色较浅的为死种子。
5%红墨水显色1.同样将吸胀的玉米、小麦种子30粒用单面刀沿种子胚的中心线纵切为两半；2.其中一半置于培养皿中，加入5%红墨水，以覆盖种子为宜，置于30 ℃培养箱中培养10min.染色后倒去红墨水并用水冲洗多次至冲洗液无色为止。
另30半粒玉米置于沸水中2min以杀死胚，同样加入5%红墨水置于30℃培养箱中染色处理作为对照观察；3.观察：凡种胚不着色或着色很浅的为活种子，种胚与胚乳着色程度相同的为死种子。
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高级植物生理实验报告种子生理农学院农药学东保柱20132020542013年12月27日种子活力种子活力即种子的健壮度，是种子发芽和出苗率、幼苗生长的潜势、植株抗逆能力和生产潜力的总和，是种子品质的重要指标。
长期以来都用发芽试验检验种子的质量，生产实践表明，实验室的发芽率与田间的出苗率之间往往存在很大差距。
由于种子活力是一项综合性指标，因此靠单一活力测定指标判定其总活力水平或健壮度是不科学的。
实验 1 种子活力的测定种子发芽率、发芽势和发芽指数的测定（垂直板发芽法）一 原理种子在适宜的水分、氧气、温度条件下经一段时间可以萌发。
在最适宜条件和规定天数内，发芽的种子数与供试的种子的百分比，叫发芽率。
为了表示萌发速度与整齐度，反映种子活力程度，规定在短时间内能正常萌发的种子数叫发芽率（测定发芽与发芽天数可参看下述的《种子发芽试验的技术规定》）。
发芽数与发芽相应天数之比的和叫发芽指数。
二 材料与设备1 材料 ：小麦种子。
2 设备：玻璃板 滤纸或湿沙 恒温箱 镊子3 药品： 1%次氯酸钠（NaClO ） 三 实验步骤1 选取完整健壮的种子10-15粒，三个重复，用1%次氯酸钠消毒0.5—1min,将种子均匀地排列在有滤纸的培养皿中，种子之间留有一定距离，加入适量蒸馏水，放于所需温度条件下萌发。
2 每天定时记录发芽粒数。
根据附表《种子发芽试验的技术规定》计算种子的发芽势、发芽率和发芽指数。
3 计算正常发芽的种子数 1、发芽率（%）= ×100供试种子数 2、发芽指数(∑=Dt GtGi )式中：Gi —发芽指数Gt ——在时间t 日发芽日数 Dt ——相应的发芽日数四 注意事项1 对于1—2天内全部萌发的迅速发芽类型种子，不适用上述公式计算，宜采用简化活力指数（见实验21）。
2 种子发芽试验的技术规定（附表）实验2 种子活力指数的测定一 原理萌发种子幼根的生长势是反映活力的一个较好生理指标，如将发芽指数与幼苗生长量联系起来（二者的乘机），以活力指数（Vl ）来表示，可以作为种子的活力指标。
但是，对于一些萌发迅速的种子，不必要计算活力指数，可用发芽率乘幼苗生长量的简化活力指数（G ·S ）表示。
对于具明显主根的种子如花生 大豆等，幼苗生长量可用胚根长或胚根重表示。
二．材料与设备1 材料：小麦种子。
2 设备：玻璃板 恒温箱 发芽缸（或箱）约20cm 高 尺子或天平 滤纸 细绳或橡皮筋3 药品 1% 次氯酸钠（NaOCl ） 三．实验步骤1 选取完整 健壮的10-15种子，在水中吸胀2—4小时后，采取玻璃板直立发芽法。
玻板直立发芽法： 发芽箱由塑料板制成，规格为20×15×20cm,玻板规格20×15cm ，滤纸规格42×15cm,对折滤纸，平铺在玻板，掀开上层滤纸，用蒸馏水湿润下层滤纸，将种子横向排列在滤纸中部，胚向下，保持一定粒距。
然后将上层滤纸覆盖在种子上。
如种子较大，可用细绳或橡皮筋缚扎在覆盖种子处的滤纸外面，防止种子滑落。
玻板垂直插入发芽箱中，玻板间保持一定距离。
在发芽箱中加入约2cm 深蒸馏水层，加盖，留气孔，放在所需温度条件下萌发。
2. 萌发3天（72小时）后统计发芽率及测量胚根长度和下胚轴长度（大豆 花生 棉花），如小麦 水稻，则需剪下须根称重，或测量幼苗长度。
3. 计算S DtGtvl ⨯=∑)(式中：vl ——活力指数Gt ——在时间t 日的发芽数 Dt ——相应的发芽日数S ——幼苗生长势（平均长度或干、鲜重）简化活力指数（G ·S 值）=发芽率（%）×生长量（平均长度或干量，鲜重）四 注意事项1 玻板直立发芽时应在密闭的容器中，保持饱和湿度。
2 对于根毛不多的种子，可用重量来表示生长量。
3 为了防止发霉，种子萌发前应进行消毒（用1%次氯酸钠消毒0.5-1min ）.实验 3 氯化三苯基四氮唑（TTC）法一原理有生命力的种胚在呼吸过程中产生氧化还原反应，而无生命的种胚则无此反应。
当TTC渗入种胚的活细胞内，并作为氢受体被脱氢辅酶Ⅰ或Ⅱ（NADH2或NADPH2）上的氢还原时，便由无色的氯化三苯基四氮唑（TTC）变为红色的三苯基甲（TTF）.染色后经丙酮提取，用分光光度计测出光密度值，从标准曲线查出TTC含量（µg/ml）,定量计算脱氢酶的活性。
TTC含量高即脱氢酶活性强，表示种子活力高。
二材料与设备1 材料小麦种子2 设备试管烧杯容量瓶（10ml）微量注射器或微量吸移管恒温水浴箱分光光度计研钵3 药品丙酮 0.1%TTC溶液连二亚硫酸钠NA2s2O4（保险粉）三实验步骤1 待测小麦种子浸泡至充分吸胀，取种胚（（30粒胚））或整粒种子。
将样品放入试管中，加10 ml 0.1%TTC溶液，加盖，放在38℃左右的恒温水浴中（加盖保持黑暗条件）。
反应时间长短随种子不同而异（2-3小时）。
2 反应到一定时间，清出TTC以终止反应，立刻用水冲洗样品2—3次，以粗滤纸吸取浮水，将样品倒入研钵，加少许分析纯石英砂及丙酮，充分研磨，把研磨液倒入10ml的容量瓶中，再用丙酮冲洗研钵2—3次，全部倒入容量瓶，定容10ml。
3 提取液在4000g下离心10分钟。
4 倾出红色上清液供比色用。
在490nm波长下测光密度值。
从标准曲线中查出相应的还原态TTC量。
附：标准曲线的绘制配制0.1% TTC(即1000ug/ml),取10ml容量瓶5个，用微量注射器或吸移管分别加入0.1%TTC溶液50 100 150 200 和250μl。
再往每个容量瓶中加入少许强还原剂连二亚硫酸钠（保险粉），加蒸馏水定容摇匀，配制成每毫升含TTC 5 10 15 20或25μg的标准溶液。
在490nm波长下测定光密度值。
绘出标准曲线（生成的红色不很稳定，最好是配完一个标准溶液，即进行测定；然后配第二个标准溶液测定。
）5、TTC还原量（µg·g-1或胚数量）=V·C/W式中 V—为样品定绒时体积；C—为标准曲线上查得的TTC含量（μg/ml）；W—为样品重量或胚数量实验 4 电导法测定种子活力一 原理种子细胞的膜结构，会随着种子的代谢状态而变化。
当种子发生劣变时，细胞膜受到损伤，透性增大。
在浸出液中会析出较多的电解质，因而测得的电导率较高。
种子活力高低与电导率大小一般称负相关。
二 材料与设备1 材料 花生 大豆 白菜 小麦和水稻等种子。
2 设备 电导仪 恒温水浴箱 烧杯 滤纸 重蒸馏水 三 实验步骤1 在25℃或30℃（室温或恒温水浴）中浸泡一定时间（不同种子浸泡时间不同，以种子吸胀为度），一般是4—8小时。
精选大小均匀 颗粒饱满而无机械损伤的种子。
小麦种子取30粒2份，装在烧杯中，一份在-18℃下处理30分钟，另一份在室温对照。
先用自来水洗净，再用重蒸馏水冲洗数次，然后用滤纸吸干浮水，在烧杯中，加入20ml 蒸馏水浸泡。
2 浸泡后，摇匀，用调试好的电导仪进行测试，测定初始电导率。
如果样品较少，能在短时间内完成测试，电极可直接插入溶液中上层进行测定。
若待测样品较多，则应到出浸析液（中止浸泡）,每个2个小时（0、2、4、6hr ）测一次，共测4次。
3 电导率用ms/cm/g 表示，根据种子的重量求出电导率的大小。
四 注意事项1 有的电导仪直接测出来的不是电导率，要换算成电导率。
电导率=电导度×电极常数（不同电极的电极常数不同）。
2浸种时间和电导的关系：随着浸泡时间延长，外渗电解质会有所增加，直至充分吸胀。
故浸泡的时间以种子充分吸胀的时间较稳定。
3电导率 绝对电导率及相对电导率的关系 电导率——测出的样品浸出液的电导率绝对电导率——将种子及浸出液在沸水中煮10分钟，冷却后所测得的电导率。
它表示细胞膜由半透膜变为通透膜后能透出电解质的能力。
绝对电导率随各品种的遗传特性而不同。
因此在比较各品种之间电导率的差异时应采用相对电导率。
处理电导率值-初始电导率值4、电解质渗出率（%）= ×100 对照电导率值-初始电导率值每2小时测定电导率值，绘电导率值随时间变化曲线。
5、相对电导率（%）=100 绝对电导率（浸出液的）电导率劣变过程中随着储存物质的消耗，种子的绝对电导率下降。
因此，在比较同一来源的不同劣变种子时，也应采用相对电导率。
4 活力与电导率之间的关系。
在种子发芽率变化较大的情况下，活力与电导率之间一般呈负相关。
但在发芽率变化很小的情况下，活力与电导率可能出现正相关。
实验结果统计1.1种子活力测定1.2种子活力指数测定 如下表所示：两种发芽方法对于种子的发芽率种子芽长势均有一定影响。
其中垂直平板法种子芽长势较好，简化种子活力也较强。
第二种方法用于测定种子生理活性结果可靠性稍差些。
表1种子活力测定1.3TTC 法测定种子活力吸光值随TTC 含量变化标准曲线如图：标准曲线的线性相关系数为0.9885，线性相关关系良好。
图1 标准曲线如下表所示：新种子活力较强，每颗种子还原TTC 0.200269ug ，旧种子没有活力，对于TTC 没有还原性。
表2 ttc 法测种子的活性吸光值 TTC 还原量 新种子 0.0625 0.200269旧种子0.02451.4电导法 测定种子活力新种子的电导率较强，电解质渗出率也较高，而旧种子的电导率较差。
表3电导法测种子活性种子处理方式电导率电解质渗出率（%）0 2 4 6新种子处理0.173333 0.546667 0.653333 0.946667148.72 对照0.146667 0.333333 0.466667 0.666667旧种子处理0.147333 0.464667 0.49 0.71111.54 对照0.124667 0.283333 0.35 0.5。