微波水解衍生高效液相色谱法测定西洋参中的氨基酸_渠琛玲
微波水解全自动氨基酸分析法测定黄精中的氨基酸含量

微波水解全自动氨基酸分析法测定黄精中的氨基酸含量
孙紫薇;宋超;崔丽丽;毕融冰;王玉方;刘继永;赵卉
【期刊名称】《特产研究》
【年(卷),期】2023(45)1
【摘要】比较微波水解与常规水解对黄精中17种氨基酸检出量的差异,并优化得
出最佳测定条件,结果表明,两种水解方法所得结果之间并无明显差异,当水解功率为1 200 W、温度170℃、时间14 min时,其检出量最高;微波水解法具有操作简便、安全性高、耗时短和检测成本低等优点,对于黄精中17种氨基酸的检测,其准确度、重现性和稳定性都较好,可用于黄精中氨基酸的检测。
【总页数】5页(P127-130)
【作者】孙紫薇;宋超;崔丽丽;毕融冰;王玉方;刘继永;赵卉
【作者单位】中国农业科学院特产研究所
【正文语种】中文
【中图分类】R284.2
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含量
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液相色谱-串联质谱法测定水产品中酰胺醇类药物及其代谢物残留

液相色谱-串联质谱法测定水产品中酰胺醇类药物及其代谢物残留目的:基于标准GB31658.20-2022,优化液质测定水产品中酰胺醇类药物的前处理步骤,补充该标准的适用范围。
方法:搅碎混匀的鱼肉试样,经过不同提取液、净化液以及定容液,得到18组实验结果,内标法定量,确定最佳组合,进行方法验证。
结果:在优化前处理条件后氯霉素、甲砜霉素、氟苯尼考和氟苯尼考胺的线性范围为0.10~100ng/mL,相关系数均大于0.998,方法的回收率为83.1%~103.6%,相对标准偏差在0.66%~4.89%。
结论:本方法可为标准GB31658.20-2022的适用范围补充提供参考依据,适用于水产品中酰胺醇类药物及其代谢物残留量的测定。
关键词:酰胺醇类药物;液相色谱串联质谱;水产品;前处理优化酰胺醇类药物又称氯霉素类抗生素,是一类在兽医临床上用于治疗畜禽以及水产动物细菌性疾病的广谱抗生素,主要包括氯霉素、甲砜霉素、氟苯尼考。
氯霉素和甲砜霉素在兽医临床抗感染的治疗中发挥了重要作用,但近年来,随着公众对其潜在毒性,残留和耐药性的广泛关注,许多国家陆续禁止了它们在兽医临床上的使用,以及禁用于食源性动物,氟苯尼考逐渐成为氯霉素和甲砜霉素的替代品[1,2]。
酰胺醇类药物常见的检验方法有ELISA,HPLC,GC,GC-MS[3],LC-MS/MS等等,ELISA具有半定量,假阳性概率,LC,GC无法提供结构确证,干扰物质较多,定性不够准确,GC-MS,GC-MS/MS需衍生,前处理较繁琐,进样时间长,定量不够准确,LC-MS/MS快速,简便,定性定量准确,灵敏度高。
氟苯尼考在动物体内有多种代谢产物,但大部分以氟苯尼考和氟苯尼考胺的形式存在,因此部分国家规定氟苯尼考的标志残留物为氟苯尼考和氟苯尼考胺之和[4,5]。
氟苯尼考胺是氟苯尼考在动物体内的代谢物,农业部235号公告将氟苯尼考胺作为标志残留物计算氟苯尼考残留量,氟苯尼考残留量是以氟苯尼考胺和氟苯尼考残留总量计在欧盟(EU)No37/2010号法规中也有规定,另外,氟苯尼考残留标志物在GB31650中规定为氟苯尼考和氟苯尼考胺之和。
柱前衍生高效液相色谱法测定灵芝孢子粉中氨基酸的含量

柱前衍生高效液相色谱法测定灵芝孢子粉中氨基酸的含量殷娇阳1,阎 姝2,田书霞2摘要 目的:建立用于测定灵芝孢子粉中氨基酸含量的柱前衍生化高效液相色谱方法。
方法:采用邻苯二甲醛(OPA)和9-氯甲酸芴甲酯(FMOC)联用对灵芝孢子粉中的氨基酸进行衍生,色谱条件为:Advance Bio AAA(100 mm×4.6 mm,2.7 μm)色谱柱,流动相A为0.01 mol/L磷酸氢二钠和0.01 mol/L硼酸钠溶液,pH值为8.2±0.1,流动相B为甲醇︰乙腈︰水(45︰45︰10)。
流速:0.8 mL/min,柱温:45 ℃,进样量:10 μL,检测波长:338 nm和262 nm。
结果:灵芝孢子粉中检测的17种氨基酸在60 min内分离良好;在一定范围内线性关系良好(r≥0.999,n=6);加样回收率为95.42%~99.38%,实验方法的精密度、重复性和稳定性的相对标准偏差(RSD)均小于3.0%。
结论:经方法学验证显示,本研究所建立的实验方法适用于灵芝孢子粉中17种氨基酸的含量测定。
关键词:灵芝孢子粉;高效液相色谱法;氨基酸;衍生化中图分类号:R282 文献标识码:A 文章编号:1007-6948(2021)02-0182-07doi:10.3969/j.issn.1007-6948.2021.02.004Assay of Amino Acids in Ganoderma Lucidum Spore Powder by Pre-column Derivatization HPLC YIN Jiao-yang, YAN Shu, TIAN Shu-xia School of Pharmacy, Tianjin Medical University, Tianjin (300070), China Abstract: Objective To establish a pre-column derivatization-high performance liquid chromatography method for the determination of amino acids in ganoderma lucidum spore powder. Methods The amino acids in ganoderma lucidum spore powder were derivatized with o-phthalaldehyde (OPA) and 9-fluorenylmethoxycarbonyl chloride(FMOC). The chromatographic conditions were Advance Bio AAA (100 mm×4.6 mm, 2.7μm) column, and Mobile phase A was 0.01 mol/L disodium hydrogen phosphate and 0.01 mol/L sodium borate solution (pH: 8.2±0.1). Mobile phase B was methanol: acetonitrile: water (45:45:10), flow rate was 0.8 mL/min, the column temperature was 45 ℃, the injection volume was 10 μL and the detection wavelength was fixed at 338 nm and 262 nm. Results 17 amino acids in Ganoderma lucidum spore powder were separated satisfactorily in 60 minutes. All the components exhibited good linear correlation in the given concentration range (r≥0.999, n=6). The recovery rate of the sample was between 95.42% and 99.38%. The RSD of the precision, repeatability and stability of the experimental method were all less than 3.0%. Conclusion The methodological verification shows that the established experimental method is suitable for the determination of 17 amino acids in ganoderma spore powder.Key words: Ganoderma lucidum spore powder; HPLC; amino acid; derivatization灵芝为多孔菌科真菌赤芝或紫芝的干燥子实体,灵芝药用在我国已有几千年的历史,被历代医药家视为滋补强壮、扶正固本的神奇珍品[1]。
HPLC-PAD法测定西洋参类保健食品中10种皂苷的含量

HPLC-PAD法测定西洋参类保健食品中10种皂苷的含量吴晓云ꎬ刁飞燕ꎬ李秀慧ꎬ刘春霖ꎬ李启艳(山东省食品药品检验研究院ꎬ山东济南250101)摘要:目的㊀建立同时测定西洋参类保健食品中人参皂苷Rg1㊁Rg2㊁Rg3㊁Rb1㊁Rb2㊁Rb3㊁Rc㊁Rd㊁Re㊁Rf含量的高效液相色谱-二极管阵列检测法(HPLC-PAD)ꎮ方法㊀采用KromasilC18(4.6mmˑ250mmꎬ5μm)色谱柱ꎻ以乙腈(A)-水(B)为流动相进行梯度洗脱ꎻ流速1.0mL min-1ꎻ检测波长203nmꎻ柱温35ħꎮ结果㊀10种人参皂苷的浓度在其各自线性范围内ꎬ与峰面积呈良好的线性关系ꎬr值均ȡ0.99ꎮ该方法平均回收率为93.0%~101.8%ꎬRSD均小于4.0%(n=6)ꎮ结论㊀本法准确可靠㊁灵敏度高㊁重现性好ꎬ可作为西洋参类保健食品的质量控制方法ꎮ关键词:高效液相色谱-二极管阵列检测法ꎻ保健食品ꎻ西洋参ꎻ人参皂苷中图分类号:R927.2㊀文献标识码:A㊀文章编号:2095-5375(2020)06-0336-005doi:10.13506/j.cnki.jpr.2020.06.006Simultaneousdeterminationof10ginsenosidesinhealthfoodofPanaxQuinquefoliumbyHPLC-PADWUXiaoyunꎬDIAOFeiyanꎬLIXiuhuiꎬLIUChunlinꎬLIQiyan(ShandongInstituteforFoodandDrugControlꎬJinan250101ꎬChina)Abstract:Objective㊀ToestablishanHPLC-PADmethodforthedeterminationof10ginsenosides(ginsenosideRg1ꎬRg2ꎬRg3ꎬRb1ꎬRb2ꎬRb3ꎬRcꎬRdꎬReandRf)inhealthfoodofPanaxquinquefolium.Methods㊀TheanalysiswascarriedoutonananalyticalcolumnKromasilC18(4.6mmˑ250mmꎬ5μm)withgradientelutionbyacetonitrile(A)-water(B)ꎬatthedetectionwavelengthof203nmandaflowrateof1.0mL min-1.Thecolumntemperaturewas35ħ.Results㊀Allcali ̄brationcurvesshowedgoodlinearitywithintheirlinearranges(rȡ0.99).Theaveragerecoverieswerebetween93.0%~101.8%ꎬRSD<4.0%(n=6).Conclution㊀ThismethodwasaccurateꎬhighlysensitiveandreproducibleꎬandcanbeusedtocontrolthequalityofhealthfoodofPanaxQuinquefolium.Keywords:HPLC-PADꎻHealthfoodꎻPanaxQuinquefoliumꎻGinsenoside㊀㊀西洋参为五加科人参属植物ꎬ是名贵的中药材ꎬ人参皂苷是其主要活性成分ꎬ主要有人参皂苷Rg1㊁Rb1㊁Rb2㊁Rc㊁Rd和Re等ꎮ以西洋参为原料的保健食品具有缓解体力疲劳ꎬ增强免疫力㊁抗氧化和抗肿瘤等作用[1]ꎮ目前ꎬ西洋参类保健食品的剂型有硬胶囊㊁软胶囊㊁片剂和口服溶液等ꎬ主要以总皂苷作为标志性成分ꎬ总皂苷的测定主要采用香草醛-高氯酸或硫酸显色后用紫外分光光度法测定[2]ꎬ该方法存在专属性差ꎬ操作复杂和干扰因素多等缺点ꎮ为此ꎬ徐灿辉等[3]改进了西洋参类保健食品中人参皂苷测定方法ꎬ建立了西洋参类保健食品中7种参皂苷含量高效液相色谱(HPLC)测定的方法ꎮ此外ꎬ人参皂苷测定方法还有超高效液相色谱(UP ̄LC)[4]㊁高效液相色谱-质谱联用法(HPLC-MS)[5-6]等ꎮ在众多资料中ꎬ主要研究西洋参根茎叶提取物中人参皂苷含量ꎬ但对西洋参类保健食品中10种人参皂苷含量测定的报道较少ꎮ本试验通过参考西洋参药材中皂苷测定的有关文献[7-9]ꎬ建立高效液相色谱法同时测定多种剂型西洋参类保健食品中10种人参皂苷ꎬ为质量标准的提升提供依据ꎮ1㊀试验部分1.1㊀仪器㊀液相色谱仪(Agilent1260高效液相色谱仪ꎬ美国安捷伦公司)ꎬ配二极管阵列检测器㊀作者简介:吴晓云ꎬ女ꎬ主管药师ꎬ研究方向:保健食品化妆品检验ꎬE-mail:wuxiaoyun823@126.com㊀通信作者:李启艳ꎬ女ꎬ博士研究生ꎬ副主任药师ꎬ研究方向:保健食品化妆品检验ꎬTel:0531-81216708ꎬE-mail:152****8118@163.com(PAD)ꎻ电子天平(MettlerToledoMSꎬ梅特勒-托利多)ꎻ数控超声波清洗器(KQ-500DE型ꎬ昆山市超声仪器有限公司)ꎻ恒温水浴锅(北京永光明)ꎮ1.2㊀试药与供试品㊀乙腈(色谱纯ꎬHoneywell)ꎻ甲醇(色谱纯ꎬHoneywell)ꎻ超纯水ꎻ正丁醇(分析纯ꎬ国药集团)ꎻ氨水(分析纯ꎬ国药集团)ꎮ标准品:人参皂苷Rb1㊁Rb2㊁Rb3㊁Rg1㊁Rg3㊁Rd㊁Re由中国食品药品检定研究院提供ꎬ含量分别为95.9%㊁93.8%㊁97.0%㊁96.3%㊁100%㊁94.4%㊁97.4%ꎬ人参皂苷Rg2㊁Rc㊁Rf由上海甄准生物科技有限公司提供ꎬ含量分别为98.02%㊁99.11%㊁99.62%ꎮ供试品均由市场购得ꎬ名称与剂型见表1ꎮ表1㊀12种供试品的名称和剂型名称剂型S01康富来牌西洋参口服液口服溶液S02金日牌西洋参口服液口服溶液S03新光牌西洋参口服液口服溶液S04日圣牌西洋参氨基酸口服液口服溶液S05无限能牌西洋参胶囊硬胶囊S06雪佳牌西洋参珍珠胶囊硬胶囊S07康富丽牌洋参淫羊藿软胶囊软胶囊S08福来了牌西洋参含片片剂S09喜之源牌西洋参含片片剂S10金日牌西洋参含片片剂S11康富来牌洋参含片片剂S12百合康牌螺旋藻洋参片片剂2 方法与结果2.1㊀色谱条件㊀色谱柱:KromasilC18(4.6mmˑ250mmꎬ5μm)ꎻ流动相:乙腈(A)-水(B)ꎬ梯度洗脱(0~40minꎬ17%Aң19%Aꎻ40~60minꎬ19%Aң29%Aꎻ60~75minꎬ29%Aꎻ75~100minꎬ29%Aң40%Aꎻ100~105minꎬ40%Aң17%A)ꎻ流速1.0mL min-1ꎻ检测波长203nmꎻ柱温35ħꎻ进样量:10μLꎮ2.2㊀对照品储备液及对照品混合工作液配制㊀分别精密称定人参皂苷Rg1㊁Rg2㊁Rg3㊁Rb1㊁Rb2㊁Rb3㊁Rc㊁Rd㊁Re㊁Rf对照品适量ꎬ置于25mL量瓶中ꎬ用甲醇溶解并定容ꎬ制成人参皂苷单体浓度分别为2.409㊁2.141㊁0.04712㊁1.947㊁1.758㊁2.138㊁2.250㊁2.062㊁2.077㊁2.008mg mL-1的对照品储备液ꎮ分别取10种人参皂苷对照品储备液适量ꎬ加甲醇稀释制成6个浓度的混合对照品工作液ꎮ2.3㊀供试品溶液的制备2.3.1㊀片剂㊁胶囊剂供试品溶液的制备㊀片剂㊁胶囊剂ꎬ取内容物研磨混匀后ꎬ片剂2gꎬ胶囊剂1gꎬ精密称定ꎬ置于100mL锥形瓶中ꎬ精密加水饱和正丁醇50mLꎬ密塞ꎬ放置过夜ꎬ超声处理(功率250Wꎬ频率50kHz)30minꎬ滤过ꎬ弃去初滤液ꎬ精密量取续滤液20mLꎬ用氨试液洗涤两次ꎬ每次20mLꎬ正丁醇提取液蒸干后ꎬ残渣加甲醇适量使溶解ꎬ作为供试品溶液ꎮ2.3.2㊀口服溶液供试品溶液的制备㊀口服溶液ꎬ精密量取8.0mL供试品至分液漏斗中ꎬ用水饱和正丁醇振摇提取3次ꎬ每次10mLꎬ合并正丁醇提取液ꎬ用氨试液洗涤2次ꎬ每次10mLꎬ正丁醇提取液蒸干后ꎬ残渣加甲醇适量使溶解ꎬ作为供试品溶液ꎮ2.4㊀线性关系考察㊀分别取6个浓度的混合对照品工作液ꎬ进样10μLꎬ记录峰面积ꎬ以对照品浓度X(μg mL-1)为横坐标ꎬ对照品的峰面积Y为纵坐标ꎬ绘制标准曲线ꎬ求得回归方程ꎮ得到10种人参皂苷在相应线性范围内均具有良好的线性ꎬ相关系数都在0.99以上ꎬ结果见表2ꎮ表2㊀标准曲线方程的结果成分标准曲线方程相关系数(r)线性范围/μg mL-1Rg1Rg2Rg3Rb1Rb2Rb3RcRdReRfY=1.770X+4.613Y=3.084X+2.021Y=2.381X-0.3584Y=2.377X+29.67Y=2.433X+1.319Y=2.520X+2.210Y=2.806X+3.629Y=2.303X-12.93Y=2.856X+6.063Y=3.982X+2.2570.99990.99990.99990.99980.99990.99990.99990.99980.99990.99994.818~240.94.282~214.11.178~47.123.894~194.73.516~175.84.276~213.84.500~225.04.124~206.24.154~207.74.016~200.82.5㊀试样重复性试验㊀准确量取6份口服溶液供试品(S01)8.0mL至分液漏斗中ꎬ以下按 2.3.2 项下方法操作ꎬ制备供试品溶液ꎮ准确称取6份胶囊剂供试品(S05)1gꎬ6份片剂供试品(S08)2gꎬ置于100mL锥形瓶中ꎬ以下按 2.3.1 项下方法操作ꎬ制备供试品溶液ꎮ分别取3种剂型供试品溶液10μL注入液相色谱仪ꎬ以保留时间定性ꎬ测定峰面积ꎬ计算供试品中10种人参皂苷的含量ꎮ3种剂型供试品中人参皂苷含量RSD(n=6)均小于3%ꎬ结果表明方法重复性良好ꎬ结果见表3ꎮ2.6㊀系统适应性考察㊀取10种人参皂苷混合对照品工作液10μL进样ꎬ计算10种人参皂苷的理论板数ꎮ得到人参皂苷Rg3㊁Rg1㊁Re㊁Rf㊁Rg2㊁Rb1㊁Rc㊁Rb2㊁Rb3㊁Rd的理论板数分别为103427㊁50732㊁104490㊁157284㊁120457㊁82876㊁253440㊁260991㊁410628㊁239554ꎬ分离度分别为5.4㊁1.6㊁32.6㊁15.1㊁2.2㊁4.0㊁4.8㊁1.6㊁8.0ꎮ对于供试品ꎬ虽然存在基质干扰影响分离度ꎬ但是3种剂型供试品中10种人参皂苷均能达到基线分离ꎬ分离度均能达到1.5以上ꎮ表3㊀重复性试验结果剂型口服溶液(S01)胶囊剂(S05)片剂(S08)含量平均值/mg mL-1RSD(%)含量平均值/mg g-1RSD(%)含量平均值/mg g-1RSD(%)Rg30.0202.60.9352.40.2112.3Rg10.0402.04.6731.90.1222.5Re0.0511.719.3252.10.2341.7Rf0.0212.9----Rg20.2960.62.6521.30.2171.4Rb10.4350.648.6260.70.4241.2Rc0.1591.011.8421.11.7461.7Rb20.1201.22.1611.61.4711.5Rb30.0542.63.6542.33.0302.5Rd0.4810.821.5001.30.8291.8㊀注: - 表示未检出或低于定量限2.7㊀精密度试验㊀取10种人参皂苷混合对照品工作液10μL连续进样5次ꎬ以测得的峰面积响应值作评价标准ꎬ得到10种人参皂苷的RSD(n=5)均小于3.0%ꎬ表明在本方法仪器条件下ꎬ仪器精密度良好ꎮ2.8㊀稳定性试验㊀分别取供试品S01㊁S05㊁S08ꎬ按 2.3 项下方法操作ꎬ得到供试品溶液ꎬ室温下放置24hꎬ分别在0㊁2㊁4㊁8㊁12㊁24h取10μL进样ꎬ得到10种人参皂苷峰面积RSD(n=6)都在3.0%以内ꎬ表明供试品溶液在24h内稳定ꎮ2.9㊀回收率试验㊀准确量取6份已知含量的供试品(S01)4.0mL至分液漏斗中ꎬ分别精密加入人参皂苷对照品储备液适量(对照品加入量与供试品中各人参皂苷含量之比为1ʒ1)ꎬ以下按 2.3.2 项下方法操作ꎬ即可得到加标溶液ꎮ准确称取已知含量的供试品(S05)0.5gꎬ供试品(S08)1gꎬ各6份ꎬ分别精密加入人参皂苷对照品储备液适量(对照品加入量与供试品中各人参皂苷含量之比为1ʒ1)ꎬ置于100mL锥形瓶中ꎬ以下按 2.3.1 项下方法操作ꎬ即可得到加标溶液ꎮ取10μL注入液相色谱仪ꎬ以保留时间定性ꎬ测定峰面积ꎬ得到10种人参皂苷的平均加样回收率(n=6)ꎬRSD均小于4.0%ꎬ结果见表4ꎮ表4㊀回收率结果剂型成分口服溶液(S01)胶囊剂(S05)片剂(S08)试样平均含量/mg平均回收率(%)RSD(%)试样平均含量/mg平均回收率(%)RSD(%)试样平均含量/mg平均回收率(%)RSD(%)Rg30.08096.32.10.46893.31.90.21197.92.5Rg10.16098.23.32.33799.12.80.12295.02.6Re0.20496.63.29.666100.33.10.234101.83.6Rf0.08498.81.0-101.21.5-101.33.4Rg21.18494.41.01.32793.71.70.217100.42.1Rb11.74096.41.524.32396.51.40.42595.52.4Rc0.63694.41.35.92398.22.51.75096.22.6Rb20.48096.02.31.08193.92.41.47497.52.8Rb30.21693.02.51.828100.12.63.036101.23.2Rd1.92493.31.510.75498.62.20.83194.02.4㊀注: - 表示未检出或低于定量限2.10㊀检出限与定量限㊀S/N=3时ꎬ得到检出限LODꎬ人参皂苷Rg1㊁Rg2㊁Rg3㊁Rb1㊁Rb2㊁Rb3㊁Rc㊁Rd㊁Re㊁Rf检出限分别为0.0024㊁0.0021㊁0.0029㊁0.0019㊁0.0018㊁0.0021㊁0.0022㊁0.0021㊁0.0021㊁0.0020μgꎻS/N=10时ꎬ得到定量限LOQꎬ定量限分别为0.0060㊁0.0054㊁0.0074㊁0.0050㊁0.0044㊁0.0053㊁0.0056㊁0.0052㊁0.0052㊁0.0050μgꎮ2.11㊀供试品的测定㊀取12批供试品ꎬ按照按 2.3 制备供试品溶液ꎬ每批平行处理2份ꎬ按上述色谱条件进行测定ꎬ将峰面积代入 2.4 线性回归方程计算含量ꎬ结果见图1~2及表5ꎮ表5㊀供试品中10种成分含量测定结果含量/mg mL-1或mg g-1编号S01S02S03S04S05S06S07S08S09S10S11S12Rg30.0200.0090.0100.0780.9350.1690.4940.2110.2120.2750.4170.489Rg10.0400.0710.015-4.6730.7671.7220.1220.2090.6740.8930.436Re0.0510.2400.066-19.3251.4184.1270.2340.7093.0853.8091.350Rf0.021--0.019-0.025----0.016-Rg20.2960.0620.147-2.6520.5451.0240.2170.1130.0840.2390.261Rb10.4350.6650.631-48.6261.3540.4070.4240.1026.7778.633-Rc0.1590.1200.083-11.8420.6560.6751.7460.6372.0662.7660.093Rb20.1200.0390.019-2.1610.3611.9871.4710.3820.3390.4870.536Rb30.0540.0950.023-3.6540.3696.7583.0301.5650.5900.8342.229Rd0.4810.2730.238-21.5001.4986.0160.8290.9763.2033.7523.154合计1.681.571.230.10115.377.1623.218.284.9117.0921.858.55㊀注: - 表示未检出或低于定量限㊀1.Rg3(20.0min)ꎻ2.Rg1(45.0min)ꎻ3.Re(45.8min)ꎻ4.Rf(65.9min)ꎻ5.Rg2(77.6min)ꎻ6.Rb1(80.0min)ꎻ7.Rc(83.6min)ꎻ8.Rb2(86.9min)ꎻ9.Rb3(87.8min)ꎻ10.Rd(93.0min)图1㊀10种人参皂苷对照品图谱㊀1.Rg3(20.0min)ꎻ2.Rg1(45.0min)ꎻ3.Re(45.8min)ꎻ4.Rf(65.9min)ꎻ5.Rg2(77.6min)ꎻ6.Rb1(80.0min)ꎻ7.Rc(83.6min)ꎻ8.Rb2(86.9min)ꎻ9.Rb3(87.8min)ꎻ10.Rd(93.0min)图2㊀供试品S01中10种人参皂苷图谱3 讨论3.1㊀前处理考察㊀由于保健食品剂型种类多ꎬ而每种剂型的基质比较复杂ꎬ导致10种人参皂苷更难同时分离ꎮ首先ꎬ通过比较3种不同的提取试剂ꎬ水饱和正丁醇㊁甲醇和乙醇ꎬ最终得到水饱和正丁醇提取效率最高ꎮ其次ꎬ选用水饱和正丁醇分别采用回流提取㊁液-液萃取㊁浸泡放置过夜超声提取和直接超声提取4种提取方式进行比较ꎬ结果表明:对于片剂和胶囊剂ꎬ浸泡过夜超声提取与回流提取得到皂苷含量最高ꎬ又因为前者操作简单ꎬ且提取的多糖等杂质较少ꎬ最终采用浸泡过夜超声提取ꎻ对于口服溶液ꎬ回流提取与液-液萃取都能得到较高总皂苷含量ꎬ优先选取重现性好且操作较简单的处理方法ꎬ因此采用水饱和正丁醇振摇多次萃取ꎮ3.2㊀流动相及梯度的选择㊀本文对甲醇-水ꎬ乙腈-水和乙腈-0.1%磷酸溶液3种不同流动相进行比较ꎬ结果表明ꎬ人参皂苷在低波长范围内检测时ꎬ乙腈比甲醇背景噪音低ꎬ可获得较好的分离效果ꎬ并且乙腈与水混合黏度小ꎬ可以有效降低系统压力ꎬ而加入磷酸对整体分离情况没有明显改善且磷酸盐对色谱柱损耗大ꎬ最终选择乙腈-水作为最佳流动相ꎮ10种人参皂苷中Rg1和ReꎬRb2和Rb3较难分离ꎮ人参皂苷Rg1和Re极性非常相似ꎬ较难分离ꎬ且供试品在人参皂苷Rg1和Re附近有杂质干扰ꎬ最终选择合适梯度ꎬ在45min左右达到基线分离ꎮRb2和Rb3是同分异构体ꎬ并且两者含量很低ꎬ容易包裹在杂质峰中ꎬ本试验在保证峰形和柱效的前提下完成了两种皂苷的基线分离ꎮ故最终采用梯度洗脱使每种皂苷达到较好分离效果ꎮ3.3㊀样品测定结果分析㊀由表5可见ꎬ12批供试品10种皂苷含量之和差异很大ꎬ含量最高的为硬胶囊ꎬ片剂和软胶囊次之ꎬ口服溶液最低ꎮ每批供试品中ꎬ单种人参皂苷占10种皂苷比例各不相同ꎬ经过分析发现ꎬRb1㊁Rc㊁Rd㊁Re4种所占比例最大ꎬ7批供试品含这4种皂苷比例为67.0%~88.5%ꎬ4批供试品的比例为39.0%~53.8%ꎬ1种供试品(S04)比例为0ꎮ对于供试品(S04)ꎬ根据«保健食品检验与评价技术规范»(2003年版)中规定的紫外分光光度法进行总皂苷检测ꎬ得到总皂苷含量为80mg 100mL-1ꎮ本文建立的HPLC-PAD法可对西洋参类保健食品中皂苷成分进行初步鉴定ꎬ最终用紫外分光光度法进行总皂苷检测ꎮ4 结论本文共收集口服溶液㊁片剂和胶囊剂12批西洋参类保健食品ꎬ通过测定其线性范围㊁系统适用性㊁重复性㊁精密度㊁稳定性㊁检出限㊁定量限和回收率试验ꎬ结果令人满意ꎮ试验表明ꎬ在本文供试品制备方法和色谱条件下ꎬ人参皂苷Rg3㊁Rg1㊁Re㊁Rf㊁Rg2㊁Rb1㊁Rc㊁Rb2㊁Rb3㊁Rd能够达到完全分离ꎬ所建立的方法操作简便ꎬ重复性好ꎬ可以用来对以西洋参为原料的保健食品进行质量控制ꎮ参考文献:[1]㊀尚金燕ꎬ李桂荣ꎬ邵明辉ꎬ等.西洋参的药理作用研究进展[J].人参研究ꎬ2016ꎬ28(6):49-51.[2]杜金凤ꎬ宋鉴达ꎬ朱传翔ꎬ等.比色法测定人参保健饮料中人参总皂苷含量[J].现代食品ꎬ2017ꎬ6(11):79-80. [3]徐灿辉ꎬ何维为.西洋参保健食品中7种人参皂苷的高效液相色谱法测定[J].食品与药品ꎬ2015ꎬ17(4):273-277.[4]崔勇ꎬ李青ꎬ刘思洁ꎬ等.固相萃取-超高效液相色谱法同时测定人参中11种人参皂苷的含量[J].中国卫生检验杂志ꎬ2012ꎬ22(3):475-477.[5]黄艳菲ꎬ刘永恒ꎬ李艳丹ꎬ等.HPLC-MSn法测定加拿大原产地西洋参不同入药部位的人参皂苷含量[J].中国实验方剂学杂志ꎬ2013ꎬ19(11):86-91.[6]张海江ꎬ蔡小军ꎬ程翼宇.高效液相色谱-电喷雾质谱法鉴别人参㊁西洋参和三七的皂苷提取物[J].中国药学杂志ꎬ2006ꎬ41(5):391-394.[7]毕福钧ꎬ钟顺好ꎬ顾利红.RRLC法与HPLC法在红参和西洋参人参皂苷含量测定中的分析比较[J].药物分析杂志ꎬ2010ꎬ30(9):1720-1724.[8]张崇禧ꎬ鲍建才ꎬ李向高ꎬ等.HPLC法测定人参㊁西洋参和三七不同部位中人参皂苷的含量[J].药物分析杂志ꎬ2005ꎬ25(10):1190-1194.[9]薛燕ꎬ闻莉.西洋参根及茎叶皂苷提取物中12种主要皂苷成分的分析研究[J].药物分析杂志ꎬ2009ꎬ29(1):79-81.(上接第335页)参考文献:[1]㊀DUMORTIERGꎬGROSSIORDJLꎬAGNELYFꎬetal.AReviewofPoloxamer407PharmaceuticalandPharmaco ̄logicalCharacteristics[J].PharmResꎬ2006ꎬ23(12):2709-2728.[2]国家药典委员会.中华人民共和国药典2015年版(四部)[S].北京:中国医药科技出版社ꎬ2015:530. 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食品中那非类物质的测定(BJS 201805)

附件食品中那非类物质的测定(BJS 201805)1 范围本标准规定了食品(含保健食品)基质中90种那非类物质的超高效液相色谱-串联质谱测定方法。
标准中方法一超高效液相色谱-三重四极杆串联质谱法,适用于饮料、果冻、蛋白粉、牡蛎粉、饼干、糖果、酒类及咖啡等食品(含与上述基质相同的保健食品及片剂、胶囊、软胶囊等剂型)中90种那非类物质的定性和定量测定。
标准中方法二超高效液相色谱-串联高分辨质谱法,适用于饮料、果冻、蛋白粉、牡蛎粉、饼干、糖果、酒类及咖啡等食品(含与上述基质相同的保健食品及片剂、胶囊、软胶囊等剂型)中90种那非类物质的筛查和定性确证。
方法一超高效液相色谱-三重四极杆串联质谱法2原理试样经甲醇超声提取,过滤后,滤液供超高效液相色谱—三重四极杆串联质谱仪测定,外标法定量。
3试剂和材料注:水为GB/T 6682规定的一级水。
3.1 试剂3.1.1 甲醇(CH3OH):质谱级。
3.1.2 甲酸(HCOOH):质谱级。
3.1.3 乙酸乙酯(C4H8O2):分析纯。
3.1.4 盐酸(HCl):分析纯。
3.2 试剂配制3.2.1 0.1%甲酸水溶液:取甲酸1mL用水稀释至1000mL,用滤膜(4.3)过滤后备用。
3.2.2 盐酸甲醇溶液(1+99):取盐酸1mL用甲醇稀释至100mL。
3.2.3 甲醇水溶液(1+1):将甲醇与水等体积混合。
3.3 标准品西地那非等90种物质标准品的中文名称、英文名称、CAS登录号、分子式、相对分子量见附录A表A.1,纯度≥98%。
3.4 标准溶液配制—1 —3.4.1标准储备液(200 μg/mL):分别精密称取Lodenafil carbonate(46罗地那非碳酸酯)、Sildenafil dimer impurity(63西地那非二聚体杂质)、Vardenafil dimer(69伐地那非二聚体)标准品(3.3)各10mg,用盐酸甲醇溶液(1+99)溶解并稀释至50mL,摇匀;分别精密称取其余87种标准品(3.3)各10 mg,用甲醇溶解并稀释至50mL,摇匀,制成浓度为200 μg/mL标准储备液。
高效液相色谱法检测玉米浆中的氨基酸

样品中氨基酸含量的计算方法 本法采用外标标准曲线法计算样品中氨基酸含
, 国内也开展了这
R$S
, 但未见有玉米中氨基酸检测方法的报 ,
告。作者参考了国家关于饲料中氨基酸检测标准
摸索出玉米中氨基酸的检测方法。本方法具有检测灵 敏度高、样品处理简单、 分析时间短、分析结果稳定、 重复性好等特点,而且本方法还具有经济实用的优 点。 以前外检一批样品约需 ! ### 多元人民币, 应用本 法后, 检测一批样品只需不到 $## 元, 既提高了效率,
样品色谱图
8 !。流速为 $ 1- Q 1(),检测波长为 !8K )1,柱温为 #P X 。梯度程序为:
时间 D&J7& "B "$ " $PB " #K $PB "$ $"" !"B " $"" !"B "$ " !PB " @HJA
作者简介: 王绍萍 ( , 女, 实验师。 $=P! L ) 作 者 单 位 : $B 哈 尔 滨 医 科 大 学 大 骨 节 病 研 究 所 ( 哈尔滨 ; $8""%P ) !B 哈尔滨药业集团制药厂总厂质量保证部
标准品色谱图
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中国地方病防治杂志
!##$ 年
第 %& 卷
第 % 期 ’()* + ’,-. /*012 3)4 56.7 %& 867 % !##$
样品中可检出 %! 种氨基酸,分别是:94:、;.<、 分离效 =1-、 9-@、 A>-、 5B.、 D1,、 ’>4、 E.1、 F1<、 C(1 和 F>4。
高效液相色谱法测定发芽麦粒中γ-氨基丁酸(GABA)含量
硝 基氟 苯 ( F D N B) 、 异硫 氰酸苯酯 ( P I T C) [ 5 3 和A Q C ( 6一氨基 喹啉 基 一N一羟 基琥 珀酰 亚 氨基 氨 基 甲酸 酯) , 但 往往 会 因样 品类 型 不 同而 有所 差异 。本 研 究 拟 采用 2 , 4二硝 基氟 苯 ( F D N B) 作 为 柱 前衍 生 剂 , 在
著, 在 萌发 的 0—1 2 h内 , G A B A含 量 呈现 先上 升后 下降 的趋 势 , 在8 h时含 量 达到 最 高。
关键 词 发 芽 麦粒 一氨基 丁 酸 ( G A B A) 高效液相 色谱 法 文献标 识码 : A 文 章编 号 : 1 0 0 3— 0 1 7 4 ( 2 0 1 5 ) 1 1 — 0 1 3 5— 0 5 中图分 类号 : T S 2 1 0
且有化学物质的残留 ; 微生物法效率较高 , 但高产菌
株 难 以获得 。有 学 者报 道 可 通 过基 因工 程 的办 法 来
重 组高 产 的大肠 埃希 氏菌 富集 G A B A, 但 其 能 力仍 不 及 通过 植 物 富 集 的方 法 。 。 。相 比而 言 , 植 物 富 集 方
蛋 白酶水解 后 生成 大 量 谷 氨 酸 , 在 一 定 条 件 下 可 被 谷 氨酸 脱羧 酶催 化转 化生 成 G A B A, 同时可 以通过 补
充 谷 氨酸 钠 等 方 法 使 谷 物 中 G A B A 的 含 量 大 大 提 高 。麦粒 在萌 发 的过程 中 , 各 种 酶 被 活化 , 谷 氨 酸 在谷 氨酸脱 羧 酶 的作 用 下不 断转化 为 G A B A, 加 之麦 粒本身 就 含有一 定 的 G A B A, 通过 发 芽富集 能 显 著提
超高效液相色谱-串联质谱法-非衍生化-QuEchERS快速测定奶酪中8种生物胺
分析检测超高效液相色谱-串联质谱法-非衍生化- QuEchERS快速测定奶酪中8种生物胺杜 磊1,桑柳波2,孙家豪1*,阮小娟1,黄坤颖1,贾智刚1(1.中科检测技术服务(广州)股份有限公司,广东广州 510650;2.中科检测技术服务(重庆)有限公司,重庆 400714)摘 要:目的:建立奶酪中组胺、腐胺、酪胺、尸胺、色胺、β-苯乙胺、精胺和亚精胺的超高效液相色谱-串联质谱检测方法。
方法:样品经水提取后,经ODS-H C18色谱柱分离,0.1%甲酸-水、0.1%甲酸-乙腈溶液作为流动相体系梯度洗脱,ESI源电喷雾正离子扫描,多反应监测模式下获得质谱数据,外标法定量。
结果:15 min内8种生物胺分离良好,10~2 000 ng·mL-1线性良好,相关系数R均≥0.995;检出限为0.05 mg·kg-1;定量限为0.15 mg·kg-1;奶酪样品中生物胺的回收率为76%~106%,相对标准偏差<10%。
结论:该方法操作便捷、快速高效、测定结果可靠,适用于实验室批量样品的检测。
关键词:奶酪;生物胺;QuEchERS;超高效液相色谱-串联质谱检测方法Rapid Determination of Eight Biogenic Amines in Cheese by Ultra-High-Performance Liquid Chromatography-Tandem Mass Spectrometry-Non-Derivatization-QuEchERSDU Lei1, SANG Liubo2, SUN Jiahao1*, RUAN Xiaojuan1, HUANG Kunying1, JIA Zhigang1(1.CAS Testing Technical Services (GuangZhou) Co., Ltd., Guangzhou 510650, China;2.CAS Testing Technical Services (ChongQing) Co., Ltd., Chongqing 400714, China)Abstract: Objective: To develop a ultra-high-performance liquid chromatography tandem mass spectrometric method for the determination of histamine, putrescine, tyramine, cadaverine, tryptamine, β-phenylethylamine, spermine and spermidine in cheese. Method: The samples were extracted with water, separated by ODS-H C18 chromatographic column, eluted with 0.1% formic acid-water and 0.1% formic acid-acetonitrile solution as mobile phase system, ESI source electrospray positive ion scanning, mass spectrometry data obtained in multiple reaction monitoring mode, and quantified by external standard method. Result: 8 biogenic amines were well separated within 15 min, and the linearity was good in the range of 10~2 000 ng·mL-1, with the correlation coefficients R≥0.995. The detection limit was 0.05 mg·kg-1. The limit of quantitation was 0.15 mg·kg-1. The recovery of biogenic amines in cheese samples was 76%~106%, and the relative standard deviation was less than 10%. Conclusion: This method is easy to operate, fast and efficient, with reliable measurement results, and is suitable for the detection of laboratory batch samples.Keywords: cheese; biogenic amines; QuEchERS; ultra-high-performance liquid chromatography tandem mass spectrometric method生物胺广泛存在于生物体和多种食品中,是一类具有生物活性含氮的低分子量有机化合物的总称,主要由微生物氨基酸脱羧酶作用于氨基酸脱羧而生成。
高效液相色谱法测定西洋参萃取物及_省略_蓟草胶囊中人参皂苷Rb_1的含量_刘幸平
同。
在含量测定方面,本文采用了文献报道中最常用的方法之一,即改良苯酚-硫酸法,但对于反映的温度和时间却不一样,本文通过实验确定了反映温度、时间。
此法简便,显色稳定灵敏,效果较好。
本试验较为成功地提取了白参菌多糖,为进一步的研究打下一定的基础。
参考文献:[1] 张惟杰.复合多糖生化研究技术[M ].上海:上海科学技术出版社,1987:6.[2] Dub ois M ,Gilles KA,Hamilton J K,et al.Colo rimetric m ethod fo rdetermination of sugars and related s ubstances [J ].Anal Ch en,1956,28:35.[3] Dubois M ,Gilles KA ,Hamilton JK ,et al .A colorim etric methodfor determination of sug ars [J].Nature,1951,168:167.[4] Saha SK ,Brew er EF .Determination of the concentrations ofoligosaccharides ,complex type carboh ydrates and glycoproteins us-ing th e phenol-s ulrfuric acid meth od [J].Carboh ydr Res,1994,254:157.[5] 董 群,郑丽伊,方积年.改良的苯酚-硫酸法测定多糖和寡糖含量的研究[J ].中国药学杂志,1996,31(9):550.收稿日期:2001-08-28; 修订日期:2001-10-21作者简介:刘幸平(1955-),女(汉族),湖南湘潭人,南京中医药大学药学院副教授,学士学位,主要从事化学教学.高效液相色谱法测定西洋参萃取物及许氏保肝奶蓟草胶囊中人参皂苷Rb 1的含量刘幸平1,杨荣庆2,魏 国2,郭 戎1,王渭成2(1.南京中医药大学药学院,江苏南京 210029; 2.许氏食品药品研发中心,江苏南京 210041)摘要:目的:测定西洋参萃取物及许氏保肝奶蓟草胶囊中人参皂苷Rb 1的含量。
HPLC法测定西洋参类保健食品中人参皂苷成分的含量
J o u r n a l o f An h u i S c i e n c e a n d T e c h n o l o g y Un i v e r s i t y
H P L C法测 定 西洋 参 类保 健 食 品 中人 参 皂苷 成分 的含 量
主要原 料 的保健 食 品的质 量控制 。
关键词 : 西洋参 ; 保健食品 ; 人参皂苷 ; H P L C 中图分类 号 : R 2 8 4 . 2 ; R 9 2 7 . 2 文献标 识码 : A
文章编 号 : 1 6 7 3— 8 7 7 2 ( 2 0 1 3 ) 0 1— 0 0 6 8— 0 4
=0 . 9 9 9 9 )f o r g i n s e n o s i d e R e a n d 0 . 6 7 4 9 8— 6 . 7 4 9 8  ̄ g( r = 0 . 9 9 9 9 )f o r  ̄n s e n o s i d e R b 1 .T h e a v e r a g e r e c o v —
高效液相 色谱法测 定。 色谱柱 : 岛津 C 1 8柱, 流动相 : 乙腈 一水 ( 梯度 ) , 流速 : 1 . 0 m I . / m i n , 检测 波长: 2 0 3 n m。结果 人参皂苷 R g 1 在3 6 . 1 8—3 6 1 . 8 n g ( r = 0 . 9 9 9 ) , 人参 皂苷 R e 在0 . 2 2 5 4— 2 . 2 5 4  ̄ g ( r = 0 . 9 9 9 9 ) , 人参皂苷 R b 在0 . 6 7 4 9 8— 6 . 7 4 9 8 i x g ( r = 0 . 9 9 9 9 ) 之 间线性关系良好 ; 人参皂苷 R g 1 的平均 回收率 为9 9 . 3 %, R S D= 4 . 6 2 %; 人参皂苷 R e的平均回收率 1 0 1 . 7 %, R S D= 1 . 6 3 %; 人参皂苷 R b 1 的平均回收率 1 0 0 . 3 %, R S D=1 . 4 9 % 。结论 试验 表 明 , 该 方 法操 作 简单 , 分 离效 果 好 , 灵敏度高, 可 以用 于 以西 洋 参 为
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图 1 氨基 酸与衍生剂比例对衍生反应的影响 F ig . 1 E ffec ts o f ratio o f a m ino ac ids to 2, 4 din itrofluorobenzene( DNFB) on de rivation reaction
a . 微波衍生 ( m icrow ave derivat ion ) ; b . 加热衍生 ( heat ing derivation ) 。
表 1 16 种氨基酸的标准曲线 , 浓度范围和检出限 T able 1 Ca libration curve , concentra tion range and LOD fo r 16 am ino ac ids
氨基酸 Am ino acids A spart ic acid( A sp) G lutam ic acid( G lu) S erin e( Ser) H istid in e( H is) G lycine( G ly) Pro line( Pro) A lan ine( A la) V alin e( V al) M eth ion in e( M et) Cysteine( Cys) Isoleucin e( Ile) Leu cine( Leu ) Tryptophan ( T rp) Phenylalan in e( Phe) Lysine( Lys) Tyrosine( Tyr) 标准曲线 Standard curve A = 10168 . 36c- 837 . 08 A = 10534 . 89c- 1190. 86 A = 14337 . 87c- 703 . 10 A = 5272. 65c- 138 . 62 A = 20233 . 51c- 610 . 11 A = 12279 . 66c- 543 . 07 A = 16664 . 08c- 1032. 16 A = 11945 . 95c- 379 . 46 A = 10670 . 88c- 899 . 52 A = 12463 . 77c- 979 . 17 A = 10870 . 46c- 387 . 83 A = 11972 . 26c- 731 . 6729 A = 8342. 03c- 126 . 33 A = 9295. 139c- 402 . 16 A = 11670 . 98c- 127 . 86 A = 12242 . 64c- 149 . 40 相关系数 ( r) 0 . 9991 0 . 9992 0 . 9962 0 . 9996 0 . 9982 0 . 9983 0 . 9977 0 . 9986 0 . 9970 0 . 9984 0 . 9982 0 . 9973 0 . 9947 0 . 9977 0 . 9950 0 . 9994 浓度范围 Con cent ration range ( g /L ) 0. 033~ 2 .1 0. 03~ 1 . 9 0. 015~ 0 . 98 0. 043~ 2 .6 0. 022~ 0 .7 0. 030~ 1 .9 0. 020~ 1 .3 0. 014~ 0 . 88 0. 026~ 1 .7 0. 015~ 0 . 98 0. 015~ 0 . 97 0. 021~ 1 . 33 0. 016~ 0 . 99 0. 018~ 1 . 14 0. 023~ 1 . 45 0. 015~ 0 . 95 检出限 LOD ( g /L ) 0 . 0021 0 . 0020 0 . 0015 0 . 0040 0 . 0010 0 . 0017 0 . 0013 0 . 0018 0 . 0020 0 . 0017 0 . 0019 0 . 0018 0 . 0025 0 . 0023 0 . 0018 0 . 0017
2008 08 15收稿 ; 2008 12 04接收 * E m ai: l analchem@ jlu . edu. cn686Βιβλιοθήκη 分析化学第 37 卷
( T yr) 购于 Sigm a 公司; DNFB 购自武汉福鑫化工有限公司。实验中所用的乙腈为 H PLC 级, 水经过 M illi Q 系统纯化。其它试剂均为分析纯。向 0 . 03 m o l/L 乙酸钠溶液 ( 含 0 . 15 % 三乙胺 )中加入乙酸, 调至 p H 为 5 . 1 , 配制成乙酸 乙酸钠缓冲溶液。称取 9 . 535 g Na3 BO 3 10 H 2O, 并用水定容至 250 mL, 得到 p H为 9 . 0的 H 3 BO3 N a3 BO3 缓冲溶液。用乙腈配制 0 . 1 m o l/L DNFB 溶液。西洋参采自吉林省靖宇县。 2 . 2 实验方法 2 . 2 . 1 标准溶液的配制 分别称取适量的 18种氨基酸的标准品, 用 0 . 05 mo l /L HC l定容于 10 mL 容 量瓶中。得到浓度分别为 4 . 261 g /L A sp 、 3 . 881 g /L G lu 、 1. 954 g /L Ser 、 5 . 157 g /L H is 、 1 . 420 g /L G ly 、 3 . 875 g /L P ro 、 2 . 592 g /L A la 、 1 . 758 g /L Va 、 l3 . 356 g /L M et 、 1 . 950 g /L Cys 、 1 . 936 g /L Ile 、 2 . 669 g /L L eu 、 1 . 988 g /L T rp 、 2 . 290 g /L Phe 、 2 . 899 g /L Lys、 1 . 902 g /L T yr的混合标准溶液。 2 . 2 . 2 微波提取和水解 准确称取 0 . 5 g 西洋参根粉末 ( 过 0 . 45 mm 孔径 ) 于微波罐中, 并加入 20 mL 含 1% 苯酚 (作为一种抗氧化剂可防止蛋氨酸等氨基酸氧化 ) 的 6 m ol /L H C l溶液。通氮气除氧后 , 旋 紧盖子 , 放入微波炉中。控制时间和温度进行提取和水解。水解完毕后, 冷却至室温, 打开罐, 抽滤, 旋转蒸发浓缩样品, 并用 0. 05 m o l /L HC l定容至 5 mL。用 0 . 45 m 滤膜过滤。 2 . 2 . 3 加热提取 和水解 准确称 取 0 . 5 g 西 洋参根粉 末于微 波罐中 , 加 入 20 m L 含 1 % 苯 酚的 6 m ol /L H C l溶液。通氮气除氧后, 旋紧盖子, 放入 110 烘箱水解 24 h 。水解完毕后 , 冷却至室温, 打开罐 , 抽滤, 旋转蒸发浓缩样品, 并用 0 . 05 m o l/L HC l定容至 5 mL。用 0 . 45 m 滤膜过滤。 2 . 2 . 4 微波衍生 取经过滤膜的样品 50 L, 加入 650 L H 3 BO 3 Na3 BO3 缓冲溶液。最后加入 150 L 0 . 1 m o l/L DNFB 衍生溶液, 在固定微波功率 260W, 衍生时间 50 s的条件下放入微波中衍生。衍生后 直接进样。 2 . 2 . 5 色谱 条件 P revail C18 色 谱柱 ( 250 mm 4 . 6 mm I . D. , 5 m ), 柱 温: 40 ; 流 速: 1 . 0 mL /m in ; 进样体积 20 L。检测波长 : 360 n m。流动相为乙腈 ( A ) 和乙酸 乙酸钠缓冲溶液 ( B ), 按以下梯度洗脱 , 0 ~ 5 m in , 19 % ~ 12 % A; 5 ~ 15 m in , 12 % ~ 18 % A; 15 ~ 20 m in , 18 % ~ 28 % A; 20~ 39 m in , 28 % A; 39~ 46 m in , 28 % ~ 60 % A; 46~ 50 m in, 60 % A。
行测定。对微波衍生条件和微波 水解的条件进行了优化。研究结果表明 , 190 酸的产率与传统加热水解 ( 110
氨基酸在微波衍生时间大于 20 s 时, 衍生反应基本完全 ; 而传统 DNFB 衍生需在 60
衍生法明显缩短了氨基酸分析时间。用高效 液相色谱法对西洋参根中的氨基酸进行了测定 , 结 果令人满意。 关键词 微波水解 , 微波衍生 , 氨 基酸 , 高效液相色谱 , 西洋参 , 2, 4 二硝基氟 苯
第 5期
渠琛玲等 : 微波水解衍生高效液相色谱法测定西洋参中的氨基酸
687
3 . 1 . 2 微波衍生时间
固定氨基酸与衍生剂的摩尔比为 1 5 , 微波功率为 260 W。改变衍生时间。由
图 2 可见, 20 s即衍生完全。 3 . 1 . 3 微波衍生功率 固定氨基酸与衍生剂的摩 尔比为 1 5 , 衍生时间 30 s。考察了微波功率的影 响。结果表明, 130 W 即可保证衍生完全。 综上可 知, 固 定氨 基酸 与衍 生剂 的 摩尔 比为 1 5 , 衍生功率为 130 W 时 , 30 s 即可以完成反应; 固定氨基酸与衍生剂的摩尔比为 1 5, 衍生功率为 260W 时 , 20 s完成衍生反应。在后续定量实验中, 为了保证氨基酸衍生完全 , 衍生功率选取 260W, 衍 生时间 50 s 。 3 . 2 标准曲线的绘制 取不同浓度的氨基酸混标
2 实验部分
2 . 1 仪器与试剂 1100高效液相色谱仪 ( 美国 A ilgent公司 ) , WR C 微波样品处理系统 ( 北京美诚科技有限公司 ); H e id olph 旋转蒸发仪。 18种氨基酸 ( 纯度均为 99 % ) , 天冬氨酸 ( A sp)、 谷氨酸 ( G lu) 、 丝氨酸 ( Ser)、 组 氨酸 ( H is) 、 精氨酸 ( Arg)、 苏氨酸 ( T hr)、 甘氨酸 ( G ly)、 脯氨酸 ( P ro) 、 丙氨酸 ( A la) 、 缬氨酸 ( Val)、 蛋氨酸 (M et)、 胱氨酸 ( Cys)、 异亮氨酸 ( Ile)、 亮氨酸 ( L eu)、 色氨酸 ( T rp)、 苯丙氨酸 ( Phe)、 赖氨酸 ( L ys)和酪氨酸
[ 6]
、
采用正交
实验方法以 H 2 SO 4 为水解介质, 选用微波功率、 H 2 SO4 浓度、 水解时间作为 3 个考察因素研究蛋白质的 水解。文献 [ 7]综述了不同介质的蛋白质微波水解以及氨基酸的损失情况。 柱前衍生高效液相色谱法测定氨基酸由于具有分析时间较短、 灵敏度高等优点, 近年来被越来越 多地用于氨基酸分析 , 而衍生剂的选择是这种方法的关键。常用的衍生剂有邻苯二甲醛 ( OPA ) 、 萘 2 , 3 二甲醛 ( NDA )、 9 芴甲基氯甲酸酯 ( FMOC )、 异硫氰酸苯酯 ( P ITC) 、 丹酰氯 ( Dansyl C l) 、 4 , 4 二甲胺基 [ 8~ 12 ] 偶氮苯 4 磺酰氯 ( DABS C l)和 6 氨基奎啉 N 羟基琥珀酰亚胺碳酸盐 ( AQC )等 。不同的衍生剂都 有各自的不足, 如 OPA 不能与仲氨酸反应 , FMOC 需用戊烷萃取衍生完成后过剩的 FMOC, 使操作繁 琐。而 2, 4 二硝基氟苯 ( DNFB) 作为衍生 剂具有成本低、 衍生产物 稳定、 操作简便 等优点 , 常 规的 DNFB 衍生是在 60 水浴加热的条件下进行 1 h 。 [ 13 ] 微波衍生气相色谱分析近年来逐渐增多。朱丹等 用动态液相微萃取 微波衍生化 气相色谱 选 择离子检测 质谱法测定了毛发中的苯丙胺类毒品。而侯俊红等 波衍生 ) 进行了分析。刘冬娴等 分析却少见报道。