河南省小麦新品种对茎基腐病的抗性鉴定与评价
西北地区冬小麦茎基腐病原假禾谷镰刀菌的鉴定及种质资源抗性筛选

西北地区冬小麦茎基腐病原假禾谷镰刀菌的鉴定及种质资源抗性筛选郭炜;李雪萍;漆永红;郭成;李潇;沈瑞清;雷斌;李敏权【摘要】[Objective]To be clear whether Fusarium pseudograminearumis the pathogen of crown rot of winter wheat in Northwest of China, and to screen the resistance of different winter wheat cultivars.[Method]16 pure Fusarium strains similar to F.pseudograminearum were isolated from winter wheat plants displaying crown rot, which were sampled from Shanxi, Gansu, Ningxia, and Xinjiang provinces from2015 to 2016.Pathogenicity was tested in 25 mL beakers in the laboratory.Species was identified based on phylogenetic analysis of translation elongation factor 1-α (tef1-α) gene and morphological characteristics.38 wheat cultivars were used to screen resistance against F.pseudograminearum.[Result]16tested strains were pathogenic to winter wheat, with disease incidence over than 70% and disease index varying from 18.3to 93.3.Phylogenetic analysis of tef1-αgene showed that our representative strain HYZ1.3b andF.pseudograminearumsequences from GenBank formed a subclade with 100%bootstrap value.Colony on PDA medium were pink to dark pink, macroconidia 5~6septate, size 43~90×2.7~5.4μm, which were identical to F.pseudograminearum.Therefore, these 16 strains were identified asF.pseudograminearumphylogenetically and morphologically.Neither immune nor high resistant cultivars were found from the 38 tested wheat cultivars.Six cultivars showed modest resistance;23 cultivars weresusceptible and 9 cultivars were highlysusceptible.[Conclusion]F.pseudograminearumis the pathogen causing crown rot on winter wheat in Northwest of China.And its pathogenicity is stronger, the disease incidence of winter wheat seedlings is over 70%.At present, there is no winter wheat resistant germplasm resource toF.pseudograminearum, and the breeding should be strengthened.%[目的]明确西北地区冬小麦茎基腐病原是否存在假禾谷镰刀菌 (Fusarium pseudograminearum) , 并筛选出抗病种质资源.[方法]2015年和2016年从陕西、甘肃、宁夏、新疆冬小麦茎基腐病病株上分离得到了16株疑似假禾谷镰刀菌的纯菌株, 对这些菌株采用小烧杯法测定致病性, 结合翻译延长因子 (translation elongation factor1-α, tef1-α) 基因序列系统发育分析结果和形态学特征对这些菌株进行了物种鉴定, 并以38个小麦品种为供试品种进行抗病种质资源的筛选.[结果]16株纯菌株对冬小麦幼苗都有致病性, 发病率大于70%, 病情指数18.3~92.3.tef1-α基因序列的系统发育树中代表性菌株HYZ.3b和GenBank中的假禾谷镰刀菌序列以100%的支持率聚为一个分支;PDA培养基上菌落红色至深红色,大型分生孢子5~7个隔膜, 孢子大小为43~90μm×2.7~5.4μm, 与假禾谷镰刀菌的形态一致.因此将这些菌株鉴定为假禾谷镰刀菌.在38个供试小麦品种中未发现免疫及高抗品种, '兰15'等6个小麦品种表现为中抗, 占供试品种总数的15.79%;'兰航选122'等23个小麦品种表现为感病, 占供试品种总数的60.53%;其余23.68%的小麦品种均表现为高感.[结论]假禾谷镰刀菌是引起西北地区冬小麦茎基腐病的病原菌, 其致病性强, 导致冬小麦幼苗的发病率达70%以上.目前缺乏对假禾谷镰刀菌有抗性的冬小麦品种, 应加强对抗病种质资源的选育工作.【期刊名称】《甘肃农业大学学报》【年(卷),期】2018(053)006【总页数】7页(P164-170)【关键词】冬小麦;茎基腐病;假禾谷镰刀菌;致病性;抗病品种筛选【作者】郭炜;李雪萍;漆永红;郭成;李潇;沈瑞清;雷斌;李敏权【作者单位】甘肃农业大学植物保护学院,甘肃兰州 730070;甘肃省农业科学院植物保护研究所,甘肃兰州 730070;甘肃省农业科学院植物保护研究所,甘肃兰州730070;甘肃省农业科学院植物保护研究所,甘肃兰州 730070;甘肃农业大学植物保护学院,甘肃兰州 730070;宁夏农林科学院植物保护研究所,宁夏银川 750002;新疆农业科学院核技术生物技术研究所,新疆乌鲁木齐 830091;甘肃农业大学植物保护学院,甘肃兰州 730070;甘肃省农业科学院植物保护研究所,甘肃兰州 730070【正文语种】中文【中图分类】S435.181小麦茎基腐病(crown rot of wheat)是一种世界性的小麦重要根部病害,最早于1951年在澳大利亚昆士兰州被发现[1],随后遍及至澳洲、北美、南美、非洲、欧洲及亚洲等地的小麦主产区[2-3],导致小麦减产并对其生产安全构成了极大的威胁[4].我国最早在1996年由陈厚德等[5]首次报道了发生在江苏省的小麦茎基腐病,其后在河南、河北、山东、安徽等省陆续都有报道[6-7].假禾谷镰刀菌(Fusarium pseudograminearum)在国外许多地区被报道是小麦茎基腐病的优势病原菌,澳大利亚在20世纪50年代就报道了该病原菌[1],南非[3]、加拿大[8]等国也相继发现了假禾谷镰刀菌.2012年李洪连等[9]报道在我国河南省假禾谷镰刀菌是引起小麦茎基腐病的优势病原菌,田间发病率达70%以上.目前我国西北地区小麦种植区尚未有假禾谷镰刀菌引起小麦茎基腐病的报道.2015和2016年笔者所在研究团队在对西北地区小麦茎基腐病的研究中,从陕西省、甘肃省、宁夏回族自治区和新疆维吾尔自治区的小麦茎基腐病株上分离得到了16株镰刀菌,菌落形态与假禾谷镰刀菌(F.pseudograminearum)相似,为确定这些镰刀菌是否是假禾谷镰刀菌,并明确其致病性,本研究进一步对这些菌株进行了致病性测定,结合翻译延长因子(translation elongation factor 1-α,tef1-α)基因序列系统发育分析和形态学特征进行了鉴定,并对38份小麦品种筛选了其对假禾谷镰刀菌(F.pseudograminearum)的抗性.1 材料与方法1.1 试验材料1.1.1 供试菌株 2015年和2016年分离自陕西省、甘肃省、宁夏回族自治区和新疆维吾尔自治区小麦茎基腐病株的镰刀菌纯菌株16株(表1),以HYZ1.3b作为代表性菌株进行物种鉴定和种质资源抗性筛选.1.1.2 供试培养基马铃薯葡萄糖琼脂培养基(potato dextrose agar,PDA):马铃薯200 g、葡萄糖(分析纯)18 g、琼脂(进口)9 g,蒸馏水1 L.WA培养基:琼脂(进口)9 g,蒸馏水1 L.CLA培养基:琼脂(进口)9 g,蒸馏水1 L,康乃馨叶片适量.1.2 致病性测定供试小麦品种为‘陇鉴107’,由甘肃省农业科学院小麦研究所提供.采用小烧杯法[10-11]测定16株菌株对小麦幼苗的致病性.种子催芽:将55 ℃温水倒入盛有种子的烧杯中,恒温连续搅拌10 min后倒水,清水冲洗两遍,浸种8 h,浸种完毕后将种子均匀铺放于托盘中的湿润毛巾上保湿48 h,25 ℃光照培养箱催芽,一般2 d出芽.待测菌株在PDA平板上活化培养7 d后打取菌饼(d=5mm).25 mL无菌小烧杯中倒入20 mL的无菌WA培养基,凝固后将菌饼接于烧杯中央,3 d后将发芽种子围绕菌饼均匀插入WA培养基中,用无菌锡箔纸封口,25 ℃培养3 d后去除锡箔纸,于25 ℃光照培养箱中继续培养5 d观察并统计发病情况,以只接种空白无菌WA琼脂块为对照.试验设3个重复,每重复15株.采用Altier病害分级标准[12].0级:无病变;1级:根系稍有变色;2级:根系明显变褐,变色根系占总根系10%~30%;3级:植株变黄,变色根系占总根系30%~50%;4级:种子腐烂不能发芽.1.3 病原菌鉴定1.3.1 形态学鉴定将代表性菌株HYZ1.3b在PDA平板上活化后,用直径5 mm的打孔器打取菌饼,分别接于PDA平板和CLA平板,各重复3皿.PDA平板25 ℃黑暗培养3 d后,观察记录菌落形态特征及培养皿背面着色情况,用十字交叉法测量菌落直径,计算生长速率.CLA平板25 ℃黑暗培养15 d后,观察其大型分生孢子、小型分生孢子和厚垣孢子的产生情况,并测量大小.形态鉴定参考Leslie和Summerell[13]的镰刀菌分类系统.1.3.2 tef1-α序列系统发育分析将代表性菌株HYZ1.3在PDA平板上培养7 d后刮取菌丝体和孢子,采用改良CTAB法提取基因组DNA[14].使用引物EF-1(5′-ATGGGTAAGGARGACAAGAC-3′)和EF-2(5′-GGARGTACCAGTSATCATGTT-3′)对tef1-α序列进行扩增[15];扩增体系为:模板DNA 1 μL,上游引物(10μmol/L)和下游引物(10 μmol/L)各1 μL,PCR TaqMix(Taq polymerase、dNTP、2×PCR buffer)13 μL,ddH2O 9 μL;扩增程序为:94 ℃预变性3 min;94 ℃变性30 s,52 ℃复性30 s,72 ℃延伸30 s为一个循环,扩增35个循环;最后72 ℃延伸10 min.扩增产物使用1%的琼脂糖凝胶电泳检测.PCR 扩增产物中目的片段的回收和测序由西安擎科生物技术有限公司进行.所得序列先进行校对和拼接,再在Fusarium ID数据库[16]中用BLAST功能搜索相似度高的tef1-α序列,再从GenBank中下载,用CLUSTAL X软件进行序列比对后用PAUP* (Phylogenetic Analysis Using Parsimony) v.4.0b10软件采用最大简约法(Maximum Parsimony)构建系统发育树[17].1.4 种质资源抗性筛选1.4.1 供试小麦品种共38种,包括‘兰选64’‘兰选68’‘兰航选121’‘兰航选122’‘中梁34’‘兰天653’‘兰天132’‘兰天131’‘兰天26’‘兰天575’‘兰天134’‘兰天538’‘兰大211’‘兰15’‘铜麦6号’‘太1305’‘陇鉴9288’‘陇鉴111’‘陇鉴112’‘陇鉴113’‘陇鉴301’‘陇鉴110’‘陇鉴109’‘陇鉴108’‘陇鉴107’‘陇鉴103’‘陇鉴101’‘陇中1号’‘陇中2号’‘陇中3号’‘冬育4号’‘冬育5号’‘宁冬10号’‘宁冬11号’‘陇春13J6’‘陇春23号’‘陇春27号’‘陇春13J103’.所有品种均由甘肃省农业科学院小麦研究所提供.1.4.2 种质资源抗性筛选所用方法同1.2部分.采用Excel软件按公式(1)计算发病率,按公式(2)计算病情指数,并采用SPSS 19.0统计软件进行数据分析,采用Duncan氏新复极差法进行差异显著性检验.发病率(1)病情指数(2)抗性评价标准参考杨云等的指标[18],即利用平均病情指数进行抗性评价.免疫(I):平均病情指数为0;高抗(HR):平均病情指数为0.01~10.00;中抗(MR):平均病情指数为10.01~20.00;感病(S):平均病情指数为20.01~30.00;高感(HS),平均病情指数大于30.01.2 结果与分析2.1 致病性测定对16株镰刀菌纯菌株的致病性测定结果见表1.由表1可知,16株菌株对小麦都有致病力.接种小麦幼苗的发病率都很高,均在70%以上,其中HYZ1.2b、HYZ1.3b、NX4.1a、NX4.1b、LT3.1c、LT3.1d、BX2.6a、EM5.1a这8个株菌发病率为100%,2C3.1b、KT3.2b、QT18.5a、HTB4.2b菌株的发病率大于90%,KT2.8a、JC2.1、HTB2.1b菌株的发病率大于80%,BX2.2b菌株的发病率大于70%;不同菌株接种发病的病情指数差异也较大,其中,HYZ1.2b菌株的病情指数最高,为92.32;EM5.1a菌株的病情指数大于80,HYZ1.3b菌株的病情指数大于70,LT3.1c、LT3.1d菌株的病情指数大于50,KT3.2b、QT18.5a菌株的病情指数大于40,NX4.1a、NX4.1b、2C3.1b、KT2.8a、JC2.1、BX2.6a、HTB2.1b、HTB4.2b菌株的病情指数大于30,BX2.2b菌株的病情指数最低,为18.26.表1 16株镰刀菌菌株对‘陇鉴107’的致病性(发病率及病情指数)Table 1 Pathogenicity of 16 Fusarium strains to ‘Longjian 107’ (disease incidence and disease index)采集地Collection sites菌株编号Strain number接种株数Number of inoculated wheat plants发病株数Number of diseased wheat plants发病率/%Disease incidence病情指数Disease index 甘肃武威凉州区HYZ1.2b4545100.00±0.00a92.32±0.42aHYZ1.3b4545100.00±0.00a76.12±1. 16c甘肃庆阳宁县NX4.1a4545100.00±0.00a35.45±0.46iNX4.1b4545100.00±0.00a38.03±0.38h甘肃定西安定区2C3.1b454293.00±0.28c35.75±0.82i甘肃平凉崆峒区KT2.8a453885.14±0.68de34.39±0.76iKT3.2b454395.02±0.80b47.14±0.46f甘肃平凉泾川县JC2.1453884.47±0.43e38.88±0.59h宁夏吴忠利通区LT3.1c4545100.00±0.00a57.41±0.30dLT3.1d4545100.00±0.00a53.24±0.39e 陕西咸阳彬县BX2.2b453373.10±1.00f18.26±0.38jBX2.6a4545100.00±0.00a39.30±0.35gh 新疆塔城额敏县EM5.1a4545100.00±0.00a83.81±0.92b新疆奇台县QT18.5a454292.64±0.86c40.93±0.64g新疆呼图壁县HTB2.1b453986.36±1.19d38.14±0.59hHTB4.2b454192.00±1.15c38.83±0.50 hCK45000.00±0.00g0.00±0.00k表中数据为小写字母为不同小麦品种间发病率及病情指数差异显著性分析(新复极差法Duncan’s,P<0.05).The data in table are lower cases in the table stand for significance of incidence and disease index of different wheat varieties in Duncan’s method (P<0.05).2.2 病原菌鉴定2.2.1 形态学鉴定 PDA平板上的菌落特征及CLA培养基上的产孢特征与Leslie和Summerell[19]对假禾谷镰刀菌的描述很相似,主要特征如下:PDA培养基上25 ℃暗培养3 d菌落直径为4.2~5.5 cm.气生菌丝发达,白色或粉红色,绒状,能产生深红色的色素.菌落背面可见桃红色至深红色的着色,有时可见不规则纹路(图1-A).CLA培养基生长7 d,挑取康乃馨叶片周围菌落观察,显微镜下可见大量大分生孢子,不产生小孢子.典型的大分生孢子相对较直,通常有5~7个隔膜(图1-B),孢子大小为43~90 μm×2.7~5.4 μm,孢子中间隔膜处最宽,顶细胞弯曲.随着培养时间的增加有厚垣孢子产生,但由于菌株、培养条件等因素变异较大,不作为鉴别依据(图1-C).2.2.2 tef1-α序列系统发育分析镰刀菌属(Fusarium)一株代表性菌株的EF-1α基因序列系统发育树见图2.由图2可知,本研究1株代表性菌株聚为两个大的分支.AF212442等8个序列与菌株HYZ1.3b等3个序列以100%的支持率聚在一起,其中,AF212442、AF212441、EF428645、KM437633这4个序列以100%的支持率聚为一个子分支,KU198297、KT855186、AF212465、AF212467这4个序列以95%的支持率聚为一个子分支,菌株HYZ1.3b与假禾谷镰刀菌(F.pseudograminearum)的序列以100%的支持率聚在一起,此菌株与AF212471、DQ382163、DQ382139这3个序列以100%的支持率聚为一个子分支.KM679358等3个序列与GQ505592等两个序列以100%的支持率聚在一起,其中,KM679358、GQ505593、JF740828这3个序列以97%的支持率聚为一个子分支,GQ505592与GQ505601这2个序列以100%的支持率聚为一个子分支.A:菌落;B:大型分生孢子;C:厚垣孢子;标尺=10 μm.A:The colony morphology;B:Macroconidia;C:Chlamydospores;scalebar=10 μm.图1 假禾谷镰刀菌形态特征Figure 1 The morphological characterisitics of Fusarium pseudograminearum2.3 种质资源抗性筛选供试38个小麦品种对假禾谷镰刀菌菌株HYZ1.3b的抗性鉴定结果见表2.由表2可知,在供试38个小麦品种中未发现免疫和高抗品种.‘兰15’‘兰大211’‘兰天131’‘兰天132’‘兰天575’‘兰天653’这6个小麦品种表现为中抗,病情指数为13.52~19.88;‘兰航选122’‘兰天26’‘兰天134’‘兰天538’‘太1305’‘铜麦6号’‘陇鉴103’‘陇鉴108’‘陇鉴109’‘陇鉴110’‘陇鉴111’‘陇鉴112’‘陇鉴113’‘陇鉴301’‘陇鉴9288’‘陇中1号’‘陇中3号’‘冬育5号’‘宁冬10号’‘宁冬11号’‘陇春23号’‘陇春27号’‘陇春13J103’这23个小麦品种表现感病,病情指数为20.26~26.73;‘兰选64’‘兰选68’‘兰航选121’‘中梁34’‘陇鉴101’‘陇鉴107’‘陇中2号’‘冬育4号’‘陇春13J6’这9个小麦品种表现为高感,病情指数为30.70~85.45.图2 tef1-α序列系统发育树Figure 2 Phylogenetic tree of tef1-α gene sequences表2 38个小麦品种接种假禾谷镰刀菌HYZ1.3b菌株的发病率、病情指数及抗性评价Table 2 The incidence and disease index about 38 wheat varieties of Fusarium pseudograminearum HYZ1.3b品种Cultivar发病率/%Incidence病情指数Disease index抗性分级Resistance classification兰选6470.82±1.49jk40.40±1.53eHS兰选6886.47±1.67bcde59.22±0.65cHS兰航选121100.00±0.00a85.45±0.36aHS 兰航选12278.98±1.54fghi26.61±0.34fgS兰1577.10±1.92ghij19.88±1.57ijMR兰大21154.36±1.58l13.72±0.38kMR兰天2672.72±1.31ijk20.26±2.13ijS兰天13153.70±1.51l14.45±0.27kMR兰天13252.94±0.32l13.52±0.57kMR兰天13491.16±0.47bc26.73±0.88fgS续表2品种Cultivar发病率/%Incidence病情指数Disease index抗性分级Resistance classification兰天53875.06±2.56hijk20.32±1.78ijS兰天57570.61±1.03jk18.83±0.12jMR兰天65374.48±2.21hijk19.95±0.29ijMR中梁34100.00±0.00a54.96±1.74dHS太130587.83±0.75bcd26.07±2.07ghS铜麦6号86.78±1.67bcde23.59±2.26ghijS陇鉴10191.30±0.42bc30.83±1.96fHS陇鉴10387.79±1.80bcd23.43±1.67ghijS陇鉴107100.00±0.00a75.25±2.09bHS陇鉴10883.75±1.66defg21.85±1.37ghijS陇鉴10985.71±2.24bcdef22.97±1.56ghijS陇鉴11085.07±2.53cdef23.54±0.61ghijS陇鉴11184.60±0.41cdef21.17±0.59hijS 陇鉴11288.43±0.57bcd24.24±1.41ghiS陇鉴11383.23±1.42bcd22.94±1.68ghijS陇鉴30183.23±2.01defg21.97±1.28ghijS陇鉴928883.77±3.51defg24.44±1.53ghiS陇中1号82.61±3.18defg22.70±1.71gh ijS陇中2号100.00±0.00a39.42±1.75eHS陇中3号70.00±1.84k20.59±2.39ijS冬育4号87.07±1.85bcde36.78±0.70eHS冬育5号77.18±4.91ghij21.72±1.59ghijS宁冬10号80.11±2.76efgh24.86±1.27ghiS宁冬11号85.72±2.95bcdef24.78±1.31ghiS 陇春23号79.28±0.95fghi22.18±2.51ghijS陇春27号77.15±4.89ghij23.82±0.85gh ijS陇春13J692.51±0.41b30.70±1.58fHS陇春13J10385.53±2.93cdef23.86±0.66ghiS3 讨论本研究结果表明,在陕西、甘肃、宁夏、新疆等西北地区假禾谷镰刀菌(F.pseudograminearum)也能引起冬小麦茎基腐病,这是该病原菌在西北地区的首次报道.自上世纪50年代以来,假禾谷镰刀菌(F.pseudograminearum)在澳大利亚[1],南非[3]、加拿大[8]等国外许多地区已被报道是小麦茎基腐病的优势病原菌.继2012年李洪连等[9]在我国河南省首次发现假禾谷镰刀菌是引起小麦茎基腐病的优势病原菌之后,2016年周颖等[20]报道了在河北省发现假禾谷镰刀菌为害小麦引起茎基腐病,并指出其在分离的8种小麦茎基腐病病原中致病力最强.2017年王恒等[21]报道了在山东省28地区采集的小麦茎基腐病样所分离真菌中,分离到的假禾谷镰刀菌占镰刀菌总数的71.3%,经致病性测定,发现假禾谷镰刀菌的致病性最强.2018年吴斌等[22]报道,在山东省发现了假禾谷镰刀菌为导致小麦茎基腐病的优势病原菌,分离频率达68.18%且致病力最强.本研究在对陕西、宁夏、新疆及甘肃的小麦茎基腐病样分离后,均分离得到了假禾谷镰刀菌,并发现此菌具强致病性,这与上述几位研究者的研究结果均一致.国外对小麦抗茎基腐病的品种筛选及利用做了不少研究[23],并建立了相关鉴定方法及标准,已筛选出了如 2-49、Gala、SUNCO 等抗性品种及种质资源.但目前国内对小麦茎基腐病的研究相对较少,其抗病品种的筛选和利用还处于初步研究的阶段,对生产实践的指导作用甚少[24].虽在河南、河北及山东三省都发现了假禾谷镰刀菌,但只有在河南省对此强致病性病原菌的抗病种质资源筛选有相关的研究报道[18,24],其余地区均未报道关于该菌的抗病种质资源.本研究以小麦茎基腐病的优势病原菌假禾谷镰刀菌为接种物,对38个小麦品种进行了抗性筛选试验.发现这些小麦品种对茎基腐病的优势病原菌假禾谷镰刀菌的抗性整体较差,没有抗病品种,只有6个中抗品种.本试验结果表明,假禾谷镰刀菌(F.pseudograminearum)在我国西北地区广泛存在,引起冬小麦茎基腐病;丰富了我国对小麦茎基腐病抗病种质资源的筛选和利用的内容,为生产实践提供了科学依据.目前大多数品种表现感病,故还需加强该病的综合防治研究工作.参考文献【相关文献】[1] Smiley R W,Patterson L M.Pathogenic fungi associated with Fusarium foot rot of winter wheat in the semiarid Pacific Northwest[J].Plant Disease,1996,80(7):944-949.[2] Chakraborty S,Liu C J,Mitter V,et al.Pathogen population structure and epidemiology are a key to wheat crown rot and Fusarium head blight management[J].Australian Plant Pathology,2006,(35):643-655.[3] Lamprecht S C,Marasas W F O,Hardy M B,et al.Effect of crop rotation on crown rot and the incidence of Fusarium pseudograminearum in wheat in the Western Cape,SouthAfrica[J].Australasian Plant Pathology,2006,35:419-426.[4] 李乾坤,王生荣.甘肃省春小麦根病病原的初步研究[J].甘肃农业大学学报,1991,26(3):295-301.[5] 陈厚德,王彰明,李清铣,等.江苏小麦茎基褐腐病的初步研究[J].江苏农学院学报,1996,17(2):47-50.[6] 周海峰.黄淮麦区小麦茎基腐病病原鉴定及其致病性研究[D].郑州:河南农业大学,2014.[7] 张鹏,霍燕,周淼平,等.由禾谷镰刀菌引起的小麦茎基腐病鉴定及抗性评价[J].植物遗传资源学报,2009,10(3):431-435.[8] Paulitz T C,Smiley R W,Cook,R J.Insights into the prevalence and management of soilborne cereal pathogens under direct seeding in the Pacific Northwest,USA[J].Canadian Journal of Plant Pathology,2002,24(4):416-428.[9] Li H L,Yuan H X,Fu B,et al.First report of Fusarium pseudograminearum as pathogen of wheat crown rot in China[J].Plant Disease,2012,96(7):1065.[10] 樊少华,李敏权.定西地区小麦根部镰刀菌及其致病性研究[J].甘肃农业大学学报,2007,42(4):71-74.[11] 霍燕,张鹏,任丽娟,等.小麦茎基腐病苗期快速接种鉴定方法研究[J].江西农业学报,2010,22(8):93-96.[12] Altier N A,Thies J A.Identification of resistance to Pythium seedling diseases in alfalfa using a culture plate method.[J].Plant Disease,1995,79(4):341-350.[13] John F.Leslie,Brett A.Summerell.The Fusarium Laboratory Manual[M].Blackwell publishing,2006.[14] 刘丹,李焕宇,付婷婷,等.基于正交试验设计优化真菌DNA提取的CTAB法[J].甘肃农业大学学报,2017,52(2):139-145.[15] O'Donnell K,Kistler H C,Cigelnik E,et al.Multiple evolutionary origins of the fungus causing Panama disease of banana:concordant evidence from nuclear and mitochondrial gene genealogies[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,1998,95:2044-2049.[16] Geiser D M,Jim nez-Gasco M M,Kang S,et al.FUSARIUM-ID v.1.0:A DNA sequence database for identifying Fusarium[J].European Journal of Plant Pathology,2004,110:473-479.[17] Swofford D L.PAUP*:Phylogenetic analysis using parsimony (* and other methods).Version 4.0[R].Sinauer Associates,Massachusetts,2003.[18] 杨云,贺小伦,胡艳峰,等.黄淮麦区主推小麦品种对假禾谷镰刀菌所致茎基腐病的抗性[J].麦类作物学报,2015,35(3):339-345.[19] Lester W.Burgess,Brett boratory manual for Fusarium research[M].Summerell:University of Sydney and Royal Botanic gardens press,1994.[20] 周颖,杨文香,张毓妹,等.河北省小麦茎基腐病发生及防治[C]∥中国植物病理学会.中国植物病理学会2016年学术年会论文集.北京:中国农业科学技术出版社,2016:471.[21] 王恒.山东省小麦茎基腐病病原鉴定[C]∥中国植物保护学会.绿色生态可持续发展与植物保护—中国植物保护学会第十二次全国会员代表大会暨学术年会论文集.北京:中国农业科学技术出版社,2017:22.[22] 吴斌,郭霞,张眉,等.鲁西南地区小麦茎基腐病病原菌鉴定及其致病力分析.麦类作物学报,2018,38(3):358-365.[23] Mitter V,Zhang M C,Liu C J,et al.A high-throughtput glass house bioassay to detect crown rot resistance in wheat germplasm[J].Plant Pathology,2006,55:433-441.[24] 杨云.小麦品种及种质资源对镰刀菌茎基腐病的抗性鉴定[D].郑州:河南农业大学,2015.。
国家小麦记载标准

第一节国家小麦品种试验记载标准本试验的记载项目与标准力求简明扼要,避免繁琐。
抗逆性与抗病性可因地制宜进行必要的记载。
其中耐湿性、落粒性、穗发芽、黑胚率、赤霉病为长江上游麦区、长江中下游麦区、黄淮南片麦区记载项目;越冬百分率为黄淮北片麦区、北部冬麦区记载项目。
其他麦区如有上述问题时,亦应记载,未包括在记载项目内的特殊情况,也要补充记载。
除穗型、芒、壳色、粒色、饱满度、粒质外,其余性状应有两个重复的数据,并以其平均值或综合评价填入汇总表内。
为便于应用计算机储存、分析试验资料,全部记载均需要数量化。
一般采用五级制(1、2、3、4、5级),沿用三级制的一些性状,为了记载的标准化,以1、3、5级表示。
记载级别由小值到大值,表示幼苗习性由匍匐到直立;芒由短到长;抗逆、抗病性由强到弱;熟相由好到差;壳色、粒色由白到红;种子由饱到瘪。
生育期、株高、生育动态、每穗粒数、千粒重、容重以及病害的普遍率、严重度等已按数值或百分率记载的项目不予分级。
株高、有效分蘖和越冬百分率,统一略去小数点后的数字。
一、田间记载(一)物候期1.出苗期:全区的50%以上的植株幼芽鞘露出地面1厘米时为出苗期(以日/月表示,以下均同)。
2.抽穗期:全区有50%以上顶部小穗(不含芒)露出剑叶,或棍棒型在叶鞘中上部裂开见小穗即为抽穗期。
3.成熟期:大多数麦穗的籽粒变硬,大小及颜色接近本品种正常状态,用指甲不易划破时为成熟的日期。
4.全生育期:冬麦区为播种至成熟的日数(播后造墒的注明出苗期),春麦区为出苗至成熟的日数。
(二)形态特征1.幼苗习性:分蘖盛期观察,分三级。
(1)匍匐。
(3)半匍匐。
(5)直立。
2.株高:从地面至穗的顶端,不连芒,以厘米计算。
3.芒:分五级。
(1)无芒完全无芒或芒极短。
(2)顶芒穗顶部有芒,芒长5毫米以下,下部无芒。
(3)曲芒芒的基部膨大弯曲。
(4)短芒穗的上下均有芒,芒长40毫米以下。
(5)长芒芒长40毫米以上。
4.穗型:分五级(1)纺锤型穗子两头尖,中部稍大。
茎基腐病-根腐病-全蚀病区别

小麦病害区分小麦茎基腐病的罪魁祸首小麦茎基腐病的病原种类比较复杂,主要包括假禾谷镰孢(Fusarium pseud ograminearum)、禾谷镰孢(F. graminearum)、黄色镰孢(F. culmorum)、燕麦镶孢(F. avenaceum)等,以假禾谷镰孢为优势病原菌。
但不同的研究者有着不同的研究结果。
张向向等(2014)报道,我国冬小麦主产省小麦茎孢菌基腐的主要病原种类是禾谷孢菌复合种,包括亚洲镰刀孢F. asiaticum和F. graminearum),另外还有少数F. acuminatum、F. pseudograminearun和F. avenaceum。
赵琴等(2017)报道,亚洲镰孢菌(F. asiaticum)是我国部分冬小麦产区茎基腐病的优势病原菌。
近年研究发现,河南、河北、山西及山东等地区小麦茎基腐病病原菌以假禾谷镰孢为优势种,而安徽、江苏等地以禾谷镰孢复合种为主。
可见,不同麦区引起该病害的病原存在差异。
病原菌通常从小麦植株根部、茎基部侵入,与不同田块土壤中病原菌的分布情况有直接关系。
在免耕田块,病原菌多存在于土表或地面,以茎基部及以下位置为侵染点;在小麦植株残体密集地块,病原菌主要从根茎部入侵。
小麦茎基腐病(引自网络)小麦茎基腐病(引自网络)小麦茎基腐病引起秆腐,茎节有粉红色霉层(刘太国供图)4典型症状小麦茎基腐病,属于真菌性病害,是一种土传病害。
前期危害后的明显特征就是根部发生褐变,根部1-2节呈褐色,严重的时候变成深褐色,开始死亡,而且湿度大或中后期的小麦根部可能会出现红色或白色霉层。
典型的症状有3 种:(1)死苗、烂种。
此情况多发于种子萌发前受到病原菌侵染,而导致苗期枯萎,茎基部叶鞘、茎秆变成褐色,也表现为小麦根部出现腐烂。
(2)茎基部变褐色。
该类情况多发于小麦生长期,茎基部 1~2 个茎节出现褐变,严重时延伸至第 6 茎节,但不会影响到穗部。
在雨水潮湿条件下,茎节处可见红色或白色霉层。
国审小麦新品种鲁研128的特征特性及高产栽培技术

粮食作物2021.4国审小麦新品种鲁研128的特征特性及高产栽培技术田玉红(齐河县农业技术推广站山东齐河251100)摘要:鲁研128是山东省农科院原子能农业应用研究所和山东鲁研农业良种有限公司以鲁原102为母本、06Q1933为父本有性杂交,采用田间系谱法筛选育成的高产、抗病、优质小麦新品种,2020年通过国家审定。
本文作者主要介绍了鲁研128的特征特性、产量表现及配套高产栽培技术,为其推广应用提供指导和帮助。
关键词:小麦;鲁研128;特征特性;栽培技术在我国,小麦作为三大谷物之一,种植面积仅次于玉米和水稻,约占全国粮食总面积的1/4,因此培育高产、抗病、优质、抗倒的小麦品种至关重要。
山东省是我国重要的小麦种植区之一,地处暖温带,气候半湿润,光热资源较为丰富,水资源情况基本能满足生产需要。
鲁研128的育种目标:引进国外先进的小作者简介:田玉红(1970-),女,本科,高级农艺师,从事农业技术推广工作。
表2连粳20号中间试验产量结果试验类别年份产量(kg/亩)较CK士(%)增产点比例(%)2017641.1 6.5100江苏省区域试验2018660.5 5.31002年平均650.8 5.9江苏省生产试验2019692.6 5.0100相当于田间最大持水量的75%~80%,如果过干可以灌一次跑马水,如果阴雨,则应开挖田间排水沟。
经多次轻搁田方可控制过多无效分蘖的发生。
灌浆成熟期干湿交替灌溉,以干为主,直至收割前10d左右断水。
4.3综合防治病虫害播种前种子应浸种,防治种传病害;苗期要注意防治灰飞虱、稻蓟马、一代二化螟;生育中期,要注意防治纹枯病、白叶枯病、二代二化螟、纵卷叶螟等;抽穗期要注意防治稻瘟病、稻曲病;抽穗后期要警惕褐飞虱的侵害。
参考文献[1]张璐,何瑞银,沈有柏,等.江苏省主要水稻种植模式技术对比分析[J].中国农机化学报,2017,38(7):106-111.[2]徐波,卢百关,王宝祥,等.适于轻简栽培水稻新品种连粳17号的选育[J].中国种业,2020(1):73-75.[3]卢百关,樊宁声,樊继伟,等.中粳稻新品种连粳6号的选育及特征特性[J].江苏农业科学,2010(2):99-100.[4]袁生堂,袁彩勇,王健,等.中粳稻新品种淮稻9号的特征特性及高产栽培技术[J].江苏农业科学,2006(2):37-38.[5]方兆伟,卢百关,樊继伟,等.抗条纹叶枯病粳稻新品种连粳4号的选育[J].江苏农业科学,2007(5):60-61.[6]卢百关,秦德荣,樊继伟,等.水稻新品种中稻1号的选育、特征特性及栽培技术[J].中国稻米2012,18(2):71-72.[7]卢百关,王宝祥,杨波,等.优质中粳稻新品种连粳16号的选育及栽培技术要点[J].农业科技通讯,2019(3):186-189.-235-麦优质基础材料,培育适合国内种植的具有高抗性(抗倒伏、抗病害、抗寒、抗干热风)、优质、高产的小麦新品种。
阳谷县小麦茎基腐病的发生及防治措施

阳谷县小麦茎基腐病的发生及防治措施李少芹(阳谷县农业农村局,山东阳谷252300)摘要小麦茎基腐病是小麦生产中常发的一类病害,可导致小麦长势低矮,减少穗粒数,降低千粒重,导致减产。
该病害在山东等地区小麦生产中发生程度日益加重,不利于山东省粮食安全生产。
本文结合阳谷县小麦种植实际,总结了小麦茎基腐病的发生特点,分析了小麦茎基腐病的发生原因,并针对性提出了具体综合防治措施,包括科学选择抗性良种、合理安排播期和控制播种量、提高防控认识、改进耕作及种植方法、加强肥水管理以及针对性开展药剂防治等方面内容,以期为做好该病害的全面防控工作提供参考。
关键词小麦茎基腐病;发生特点;原因;防治措施;山东阳谷中图分类号S435.121.4+9文献标识码B文章编号1007-5739(2023)13-0107-03DOI:10.3969/j.issn.1007-5739.2023.13.028开放科学(资源服务)标识码(OSID):小麦是我国的主要粮食作物之一,在粮食安全生产中占据重要的地位。
小麦茎基腐病是小麦常发的一类病害,属于真菌病害,由禾谷镰孢菌、假禾谷镰孢菌等病菌的综合侵染作用导致。
小麦茎基腐病发生后,小麦植株低矮、分蘖数及穗粒数均减少、千粒重降低、生育后期枯白穗等易发,导致严重减产[1]。
该病害的病原菌可在土壤内存活,随着流水、田间操作管理等传播。
阳谷县地处鲁西平原,境内土地肥沃,是国家商品粮基地、全国优质小麦基地、山东省小麦主产区,有着“绿色农业县”之称。
小麦是该县主要种植的粮食作物之一,种植面积常年在5.33万hm2左右。
近些年,随着耕作制度及方式的变化,农业生产中大量秸秆还田,有利于茎基腐病的病原菌越夏、越冬,大大增加了田间病原菌基数。
小麦茎基腐病在山东省首次发现于2015年,当时为零星危害,之后病害快速加重。
2021年该病害在山东省小麦生产中发生面积超过80万hm2,阳谷县发生面积约1.03万hm2。
该病害已成为山东省小麦生产中重大病害之一,威胁到阳谷县粮食生产安全和小麦可持续发展。
强筋小麦新品种万丰269优质高产抗逆栽培技术

河南农业2021年第31期(三)对作物的直接影响(见表咯菌腈悬浮种衣剂对花生根腐病有较好防64.97/62.5/61.83/26.9923.0317.19/b /b /bc /b /B /BC /AB /BC /45均防效进行统计分析。
(二)防治效果(见表4)分析在花生出苗后10 d 对根腐病的防治效果,处理3和处理1、对照药剂差异极显著,处理3和处理2差异显著,其他处理无显著性差异;在花生出苗后30 d 对根腐病的防治效果,处理3与处理1、对照药剂差异极显著,处理2与处理1差异极显著,处理1与对照药剂差异显著,处理2与处理3、对照药剂无显著性差异;在花生出苗后60 d 对根腐病的防治效果,处理3与处理1差异极显著,处理3与对照药剂差异显著,处理2与处理1差异显著,处理3与处理2无显著性差异,处理2与对照药剂无显著性差异,处理1与对照药剂无显著性差异。
(三)增产效果(见表4)分析处理3与处理1、对照药剂差异极显著,处理2与处理1差异极显著,处理3与处理2差异显著,处理1与对照药剂差异显著处理2与对照药剂无显著性差异。
(四)对小麦出苗的影响(见表4)分析试验各处理对花生出苗率无明显影响。
六、小结2.5%咯菌腈悬浮种衣剂对花生根腐病有较好防效。
每100 kg 种子最佳有效成分用药量是20 g (处理3)。
花生根腐病重在预防,在花生播种前对种子进行包衣处理效果更好。
优质强筋小20200012),于作物品种审定委员会审定,该品种是先由西农济麦20杂交选而成的,为半冬性高产优质抗逆新品种。
该品种参加2018—2019年度583.7 kg,相比对照品种周麦南省大部分地区种植,尤其是高中水肥地块早中茬种为优质强筋小麦,尤其适合河南省豫北麦区和豫中东部的中高肥力麦田种植,以土层深厚肥提前评估播种前地下害虫发生程度,如有地下害河南农业2021年第31期LIANGZHONG LIANGFA良种良法虫严重发生的情况,可用杀虫剂拌种备播。
特用玉米品种抗茎腐病鉴定与评价

鉴 定地 点设在 山西省农 科 院玉米 研究所 试验 农
收 稿 日期 :2 1 .90 0 10 -8 .
基金项 目:山西省科技攻关计划项 目 ( 0 93 0 2—3 ;山西省农科 院科技攻关项 目 ( G 9 7 2 00 110 ) YG 0 2 ) 作者简介 :王建军 ( 97一) 17 ,男 ,助理研究员
抗病种质 的筛选。大多数研究表 明,茎腐病 的抗性 属 于微效多基因控制的数量遗传性状 , 加性 效应 占主导
地位 ,存在部分显性和上位性效应 ,所 以抗病材料 的选择将成为抗病育种的关 键 ,而对材料 的抗病性 鉴 定则是抗病育种 的重要环节 。在 自交 系和品种 的抗病 性鉴定 中 ,要考 虑 病原 菌 种类 、发 病 条 件 、接 种 方
供试 品种 为 2 0 0 1—2 1 0 0年 参 加 山西 省 玉 米 区
域 试验 的青 贮 、糯 、甜 、高油等 特用 玉米 品种 ,由
山 西省农作 物 品种审定 办公 室提供 。供 试茎腐 病 菌
种从 病株 上分离 获得 ,接种 用腐 霉菌在 玉米碎 粒 培
养基 上扩繁 。
1 2 田 间设 计 与 接 种 方 法 .
在鉴 定 的 2 8份 材料 中 ,对 玉米茎 腐病 表现 高 3
抗 的有青 试 8 5 、中青 1号 、饲 O —、青 贮 1号 、 61 81
科饲 9号 、甜糯 1 — 、大 丰糯 2号 、汾糯 1号 、瑞 33 得 1 、加 甜 6号 ,大 丰甜 1号 、绿 北超 甜 、真 甜 号 美 8号 、超 甜 2号 、大 丰 高 油 2 9 2 、同 油 1号 等
3 小 结 与 讨 论
3 1 品 种 抗 病 性 .
采用 土壤接 种方法 对 2 8份次特 用玉 米品 种进 3
四种拌种剂对小麦茎基腐病的田间防效

6 日、
2018 年 10 月 16 日、
2018 年 10 月 26 日.
所有小麦 种 子 统 一 用 27% 苯 醚咯噻 虫 悬 浮 种
衣剂包衣供种.
1.
3.
2 测定项目及方法 采用 5 点取样法,在小
71
黑 龙 江 农 业 科 学
麦扬花期 (
2019 年 5 月 9 日)调 查 各 处 理 区 内 病
基腐病的防治试验.结果表明:
32% 戊唑吡虫啉悬浮 种 衣 剂、
10 亿 芽 孢gG1 枯 草 芽 孢 杆 菌 可 湿 性 粉 剂、
27%
苯醚咯噻虫悬浮种衣剂3个药剂对控制 小 麦 茎 基 腐 病 效 果 较 好,扬 花 期 防 效 达 57.
46% ~70.
47% . 此 外,
27% 苯醚咯噻虫悬浮种衣剂处理对小麦成 熟 期 防 效 最 高,达 67.
研究表明,不良的 田 间 环 境 会 影 响 病 害 的 发 展 和
的药剂用 量 分 别 为 27% 苯 醚咯噻 虫 悬 浮 种 衣
鞘变 褐 色,无 云 纹 状 斑 块,茎 秆 基 部 第 一、二 节 变
褐、腐烂;潮湿时,发病部位有白色或红色粉状物,
基本正常,严重者腐烂,对小麦产量影响很大 [4G5].
照.晾晒 1h 后,使 用 小 型 播 种 机 播 种. 播 种 时
间为 2018 年 10 月 6 日.
不同播期对小麦茎基腐病的防治.试验共设
收稿日期:
2019
G
09
G
09
基金项 目:潍 坊 市 小 麦 茎 基 腐 病 发 生 规 律 与 研 究 开 发 项
目(潍植保函字[
2018]
1 号).
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
河南省小麦新品种对茎基腐病的抗性鉴定与评价作者:陆宁海吴利民郎剑锋杨蕊李营营周文敏秦琦来源:《江苏农业科学》2016年第04期摘要:近年来,随着耕作制度的改变和品种的变化,茎基腐病成为河南省麦区生产上的新问题,对小麦生产威胁很大,且呈现不断加重的趋势。
通过室内盆栽接种试验和田间试验,对河南省19个小麦新品种抗茎基腐病性能进行鉴定和评价。
结果表明,品种间存在明显的抗性差异,但整体抗性较差,无免疫和高抗品种。
室内苗期鉴定表明:中抗品种只有1份,是华育198,占总数的5.0%;中感品种有3份,占总数的15.0%,包括开麦18、百农207和平安8号;高感品种有16份,占总数的80.0%。
田间成株期抗病性鉴定表明:中抗品种有5份,占总数的25.0%,包括华育198、开麦18、百农207、平安8号和偃展410;中感品种有4份,占总数的20.0%,包括洛麦24、许科718、豫农416、怀川916;高感品种有11份,占总数的55.0%。
关键词:河南省;小麦;新品种;茎基腐病;抗病性;鉴定中图分类号:S435.121.4文献标志码: A文章编号:1002-1302(2016)04-0190-03小麦茎基腐病(crown rot,CR)是由多种病菌引起的一种世界性土传病害。
在澳大利亚,茎基腐病每年造成减产所导致的直接经济损失约为7 900万澳元,间接损失大约为4.34亿澳元 [1-2]。
近年来,茎基腐病在南非、意大利、埃及、土耳其、叙利亚、摩洛哥和阿根廷等麦类作物种植区也呈现越来越严重的趋势,受到各国科研工作者的广泛关注[3-6]。
由于常年实施秸秆还田,造成土壤中菌源积累,加上品种抗性较差、水浇田面积扩大等因素,该病害在我国黄淮小麦主产区的河南、河北、山东、安徽等省份普遍发生,特别是河南省焦作市、许昌市、商丘市、新乡市等部分麦田发生严重,而且呈现不断加重和蔓延趋势[7]。
2014年新乡市小麦茎基腐病发病严重,一般田发病率为10%~15%,个别田块白穗率高达20%~30%,成为小麦减产最主要的因素。
茎基腐病是一种典型的土传病害,化学药剂防治效果逐渐下降,而且大规模使用化学药剂对生态环境造成危害,对农业的可持续发展产生影响。
筛选茎基腐病抗源,选育和使用抗茎基腐病小麦新品种无疑是解决这一问题最有效、最经济的途径。
本研究对河南省主要的20个小麦新品种进行茎基腐病抗性鉴定和分析,旨在了解目前河南省小麦品种的抗病现状,从而为全省小麦抗病育种和品种的合理利用及病害控制提供科学依据。
1 材料与方法1.1 供试小麦品种供试品种有20个,分别为华育198、开麦18、百农207、平安8号、偃展410、洛麦24、许科718、豫农416、开麦21、怀川916、豫教5号、兰考198、花培8号、漯麦18、先麦10号、中育9398、焦麦266、中麦78、新麦26和良星66,对照品种周麦18,由河南科技学院小麦研究中心提供。
1.2 供试病原菌小麦茎基腐菌为镰刀菌群,由河南科技学院植物病理实验室分离、鉴定、保存。
1.3 接种体的准备取清水浸泡2 d后的小麦粒置于250 mL三角瓶中,每瓶 50 g,高压灭菌(121 ℃,1 h),接入在PDA 培养基上培养4 d的病菌菌株,25 ℃静置培养10 d,每天振摇三角瓶以打碎结块的麦粒[8]。
1.4 室内苗期抗性鉴定方法将供试小麦的种子表面消毒(1%次氯酸钠溶液),后播于塑料盆钵中(口径为10 cm),每盆20粒,盖上灭菌土,每个品种种植3盆,正常栽培管理,待小麦长到1叶1心期接入带菌病麦粒,35 d后调查病情。
病害严重度分级标准为:0级,无症状;1级,第1叶鞘褐枯小于叶鞘长度50%,第1张叶褪绿黄化不明显;2级,第1叶鞘褐枯大于叶鞘长度50%,第1张叶明显褪绿黄化,但没有完全枯死;3级,第1张叶完全枯死,第2叶鞘有明显褐枯,第2张叶叶尖开始褪绿黄化枯死;4级,第2张叶有明显褐枯,枯死斑占叶片长度的50%以下;5级,第2张叶有明显褐枯,枯死斑占叶片长度的50%以上;6级,第2张叶完全枯死,第3张叶叶尖开始褪绿黄化枯死;7级,第3张叶有明显褐枯,枯死斑占叶片长度的50%以下;8级,第3张叶有明显褐枯,枯死斑占叶片长度的50%以上;根据下列公式计算病情指数:病情指数=∑(各病级株数×各病级代表值)/(总株数×最高级代表值)×100。
1.5 田间抗病性鉴定方法试验于2013—2014年在河南省新乡市洪门镇桥谢村进行,该区常年种植小麦,茎基腐病发生严重。
品种随机排列,分20个小区,每小区面积为10~15 m2,于2013年10月8日种植,田间管理同当地大田。
小麦灌浆期采用5点取样法调查病情,病害严重度分级标准为:0级,无症状;1级,第1茎节变为褐色;2级,第2茎节变为褐色;3级,第3茎节变为褐色,但没有形成白穗;4级,穗部的50%以下形成了白穗;5级,穗部50%~100%形成了白穗;6级,茎基部腐烂,整株死亡。
1.6 抗性评价采用相对抗病指数(I)对不同小麦品种抗病性进行评价[9]。
采用相对抗病性方法评价品种的抗病程度,抗病类型分为免疫(I)、高抗(HR)、中抗(MR)、中感(MS)、高感(HS)5类。
I=1.00时为免疫;0.80≤I2 结果与分析2.1 小麦品种对茎基腐病在苗期的抗性评价由表1可知,供试小麦品种中没有免疫和高抗品种,0.60≤I2.2 小麦品种对茎基腐病在田间成株期的抗性评价由表2可知,供试小麦品种中没有免疫和高抗品种,0.60≤I2.3 小麦品种对茎基腐病在苗期和成株期的抗病性比较由表3可知,小麦品种对茎基腐病在苗期和成株期抗病性有一定的相关性,但也有一定的差异,苗期和成株期鉴定都没有发现免疫或高抗品种,成株期中抗品种比例明显上升,而高感品种明显减少,中感品种比例差异不明显。
苗期鉴定只有1个中抗品种,比例为5.0%,而成株期鉴定有4个中抗品种,比例为25.0%;高感品种在成株期占比明显减少,苗期鉴定有20个高感品种,比例为80.0%,而成株期鉴定有11个高感品种,比例为55.0%。
3 结论与讨论本研究鉴定了河南省主要小麦新品种对茎基腐病的抗性,没有发现免疫和高抗品种。
室内盆栽试验表明,各供试小麦品种间的确存在抗病性差异,5.0%的品种表现为中抗,15.0% 的品种表现为中感,80.0%的品种表现为高感。
田间成株期鉴定有4个中抗品种,比例为25.0%;中感品种有4个,占总数的20.0%;有11个高感品种,比例为55.0%。
因此,河南省目前生产上大面积种植的品种大部分表现为感病,这也是小麦茎基腐病近几年普遍发生的主要原因之一。
在没有免疫和高抗品种的背景下,在茎基腐病发生严重的地区种植中抗品种,在病害发生较轻的地区种植中感品种,并结合药剂拌种或包衣,合理管理水肥是目前防治小麦茎基腐病的关键措施。
对同一种品种来说,室内苗期比田间成株期发病严重,病情指数高,造成这种差异的原因很多,一方面室内苗期鉴定的病原菌数量比较充足,温度相对稳定,湿度较高,有利于病害发生;而田间是自然发病,土壤中初侵染病菌数量有限,病菌侵染还要受到外界气候条件的影响,特别是温湿度的影响显著;另外,田间土壤性质、类型、施肥、种植方式和微生物数量也可能影响到茎基腐病的发生和流行。
在田间没有进行苗期茎基腐的抗病性调查,主要是因为病害苗期症状首先表现为叶尖发黄,叶片黄化褪绿,逐渐枯死,这些症状特点也有可能是病毒病、缺微量元素或其他原因导致,后期茎基部叶鞘和茎秆变褐,有时可引起根部变褐腐烂,严重时麦苗发黄死亡,可能是小麦普通根腐病(Bipolaris sorokiniana)或小麦纹枯病(Rhizoctonia cerealia)导致的,也可能是这些病害混合发生。
因此,仅根据田间苗期的症状特点无法确定是否为茎基腐病。
国外试验表明,小麦茎基腐病苗期鉴定结果与田间鉴定结果具有较高的相关性[10-11]。
虽然苗期鉴定茎基腐病是有效的方法而且相对易于控制,但苗期抗性鉴定与评价结果还需要通过田间试验验证,抗性评价可能存在有误差。
本研究也证明了小麦品种与茎基腐病苗期和成株期抗病性有一定的相关性,但也有一定的差异,成株期中抗品种比例明显上升,而高感品种明显减少。
因为田间发病受到多种因素影响,为了客观评价小麦品种对茎基腐病的抗性,在苗期抗病性鉴定的基础上,田间应进行多年抗性鉴定。
但是田间鉴定受到气候条件的影响,1年只能进行1次,如果要快速多次鉴定筛选抗源材料和鉴定品种抗病性,苗期抗病性也是一种有效的方法。
小麦茎基腐病是由多种土传真菌引起的一种小麦病害,国外研究表明,黄色镰刀菌(F.culmorum)、燕麦镰刀菌(F.avenaceum)、禾谷镰刀菌(F.graminearum)也能引起小麦茎基腐病,其中以禾谷镰刀菌致病性最强[12]。
在我国,李伟等报道小麦茎基褐腐病的危害,但其病原以小麦根腐离蠕孢(Bipolari sorokiniana)和镰刀菌(Fusarium spp.)为主[8]。
张向向等报道我国小麦茎基腐病的镰刀菌主要由ticum和F.graminearum组成,且以ticum 种群分布为主[13]。
Li等报道了引起我国茎基腐病的镰刀菌除了禾谷镰刀菌外,还有假禾谷镰刀菌(F.pseudograminearum)[14]。
国内外学者研究病菌的致病性和品种抗性时,多数以禾谷镰刀菌为靶标[15-16],但本研究采用镰刀菌群为靶标鉴定品种的抗性,因为小麦茎基腐病就是由多种病菌复合侵染,以多种镰刀菌为主。
因此,研究品种的抗性或抗源的筛选,以镰刀菌群为靶标,更接近实际情况。
参考文献:[1]Chakraborty S,Liu C J,Mitter V,et al. Pathogen population structure and epidemiology are a key to wheat crown rot and Fusarium head blight management[J]. Australasian Plant Pathology,2006,35(6):643-655.[2]Mitter V,Francl L J,Ali S,et al.Ascosporic and conidial inoculum of Gibberella zeae play different roles in Fusarium head blight and crown rot of wheat in Australia and the USA[J]. Australasian Plant Pathology,2006,35(4):441-452.[3]Dyer A T,Johnston R H,Hogg A C,et parison of pathogenicity of the Fusarium crown rot(FCR) complex(F.culmorum,F.pseudograminearum and F.graminearum) on hard red spring and durum wheat[J]. European Journal of Plant Pathology,2009,125(3):387-395.[4]Williams K J,Dennis J I,Smy I C,et al. The application of species-specific assays based on the polymerase chain reaction to analyse Fusarium crown rot of durum wheat[J]. Australasian Plant Pathology,2002,31:119-127.[5]Bentley A R,Cromey M G,Farrokhi-Nlejad R,et al.Fusarium crown and root rot pathogens associated with wheat and grass stem bases on the South Island of New Zealand[J]. Australasian Plant Pathology,2006,35(5):495-502.[6]Sukumar C,Friday O,Rhyannyn W,et al.Wheat crown rot pathogens Fusarium graminearum and F.pseudograminearum lack specialization[J]. Phytopathology,2010,100(10):1057-1065.[7]周海峰,杨云,牛亚娟,等. 小麦茎基腐病的发生动态与防治技术[J]. 河南农业科学,2014,43(5):114-117.[8]李伟,陈莹,张晓祥,等. 小麦茎基褐腐病病原菌组成及其致病力研究[J]. 麦类作物学报,2011,31(1):170-175.[9]孙虎,李洪连,袁虹霞,等. 不同小麦品种(系)对全蚀病的抗性鉴定和评价[J]. 河南农业科学,2004(8):52-54.[10]Wallwork H,Bunutt M,Cheong J P E,et al. Resistance to crown rot in wheat identified through an improved method for screening adult plants[J]. Australasian Plant Pathology,2004,33(1):1-7.[11]Wildemuth G B,Mc Namara R B.Testing wheat seedlings for resistance to crown rot caused by Fusarium graminearum group 1 [J]. Plant Disease,1994,78(10):949-953.[12]Akinsanmi O A,Mitter V,Sinpfendorfer S,et al. Identity and pathogenicity of Fusarium spp. isolated from wheat fields in Queensland and Northern New South Wales[J]. Crop & Pasture Science,2004,55(1):97-107.[13]张向向,孙海燕,李伟,等. 我国冬小麦主产省小麦茎基腐镰孢菌的组成及其致病力[J]. 麦类作物学报,2014,34(2):272-278.[14]Li H L,Yuan H X,Fu B,et al.First report of Fusarium pseudograminearum causing crown rot of wheat in Henan,China[J]. Plant Disease,2012,96(7):1065.[15]张鹏,霍燕,周淼平,等. 小麦禾谷镰孢菌茎基腐病抗源的筛选与评价[J]. 植物遗传资源学报2009,10(3):431-435.[16]Wildemuth G B,Mc Namata R B,Quick J S.Crown depth and susceptibility to crown rot in wheat [J]. Euphytica,2001,122(2):397-405. 严萍,郭斐斐,宋雪飞,等. 京尼平苷对青菜光合反应及生理指标的影响[J]. 江苏农业科学,2016,44(4):193-195,526.。