替尼泊苷长循环阳离子脂质体的制备
可电离阳离子脂质体

可电离阳离子脂质体一、电离阳离子脂质体的制备方法电离阳离子脂质体的制备方法主要包括薄膜溶解法、溶媒蒸发法、脂质膜法和逆向微乳液法等。
其中,薄膜溶解法是一种常用的制备方法。
首先,将含有阳离子的药物与脂质体组分在有机溶剂中混合搅拌,形成药物-脂质体复合物。
然后,通过旋转蒸发或溶剂挥发的方式将有机溶剂去除,形成薄膜。
最后,加入适量的缓冲液并用超声波或振荡器将薄膜重悬成脂质体悬浮液。
另外,溶媒蒸发法是一种将药物和脂质体溶解在有机溶剂中,然后将有机溶剂挥发的方法。
这种方法制备的电离阳离子脂质体具有较高的稳定性和药物载荷量。
脂质膜法是将药物和脂质体混合悬浮于适当的溶剂中,用超声波或机械搅拌使其形成脂质体悬浮液。
然后,通过旋转蒸发或溶剂挥发的方式去除有机溶剂,最终得到电离阳离子脂质体。
逆向微乳液法是一种利用微乳液的逆向相转换过程来制备电离阳离子脂质体的方法,该方法的优点是可以制备具有较高粒径和均匀分布的脂质体。
二、电离阳离子脂质体的特性电离阳离子脂质体具有以下特性:一是高稳定性。
电离阳离子的加入可以增加脂质体的阳离子交换能力,提高脂质体的稳定性,延长其在体内的循环寿命。
二是良好的生物相容性。
脂质体主要由生物相容性的磷脂分子组成,加入电离阳离子后,可以增强与细胞膜的结合,提高药物的细胞吸收率。
三是优良的药物载荷能力。
电离阳离子可以与阴离子药物形成结合,增加药物在脂质体内的溶解度和稳定性,提高药物的载荷量和释放速度。
四是粒径和分布较为均匀。
电离阳离子的加入可以调控脂质体的粒径和粒径分布,使其具有较好的生物利用度和渗透性。
三、电离阳离子脂质体在药物传递中的应用电离阳离子脂质体在药物传递中具有广泛的应用前景。
首先,它可以提高药物的溶解度和稳定性,增加药物的口服吸收率。
其次,它可以改善药物的生物利用度,提高药物的靶向性,减少药物的毒副作用。
再次,它可以实现药物的定向传递和控释,提高药效,延长药物的血浆半衰期,降低治疗频次,提高患者的依从性。
枸橼酸托法替尼脂质体的制备与初步

第22卷第1期2023年1月杭州师范大学学报(自然科学版)JournalofHangzhouNormalUniversity(NaturalScienceEdition)Vol.22No.1Jan.2023收稿日期:2022 06 17 修回日期:2022 10 19基金项目:浙江省卫生健康科技计划青年人才项目(2022RC241);2022年杭州师范大学“星光计划”项目;杭州师范大学2022—2023学年“本科生创新能力提升工程”项目.通信作者:沈奇英(1981—),女,副教授,主要从事纳米给药系统研究.E mail:qyshen718@hotmail.com犱狅犻:10.19926/j.cnki.issn.1674 232X.2023.01.004枸橼酸托法替尼脂质体的制备与初步评价钱洋伟,舒 幻,方宇镱,沈奇英(杭州师范大学药学院,浙江杭州311121)摘 要:枸橼酸托法替尼(tofacitinibcitrate,TOF)能够对中至重度活动性类风湿性关节炎(RheumatoidArthritis,RA)产生较好的疗效,但因缺乏靶向性而易产生胃肠道等不良反应.为了增加其靶向性,减少不良反应,实验通过pH梯度法制备TOF脂质体,以包封率为评价指标,通过单因素法探究包封率的影响因素,确定优势处方.由体外释放结果可知,TOF脂质体在正常生理条件下的释药速度较慢.细胞活性实验结果表明,空白脂质体对巨噬细胞的活性几乎无影响.荧光成像实验结果可知,脂质体组关节部位的荧光强度明显强于游离组,说明脂质体可以增加药物在RA部位的富集,有利于药物靶向治疗RA.初步药效学结果显示,TOF脂质体能够更好地减轻RA足掌肿胀.综上所述,TOF脂质体具有良好的生物相容性和炎性关节部位的靶向性且抗RA效果良好.关键词:枸橼酸托法替尼;脂质体;包封率;制备;评价中图分类号:R94 文献标志码:A文章编号:1674 232X(2023)01 0022 060 引言类风湿性关节炎(RheumatoidArthritis,RA)是一种全身性的自身免疫性疾病,具有病因不明、持续反复发作的特点[1 3],严重影响患者的运动和生活质量.RA高发于30~50岁,全球发病率为1%,我国发病率约3%~5%[4 5].目前临床上治疗RA以药物治疗为主,在降低全身及局部炎症水平、缓解症状、延缓疾病进展等方面取得了一定效果,但仍有患者无应答,或因发生不良反应而不能应用[6].枸橼酸托法替尼(tofacitinibcitrate,TOF)适用于中至重度的活动性RA患者[7].目前TOF的上市剂型为片剂,缺乏病变部位的特异性靶向作用,导致用药后往往出现胃肠道反应、上呼吸道感染等不良反应,因而有必要改变其剂型以弥补以上缺点.脂质体制备方法简单,生物相容性好.因此,我们将TOF制成脂质体,一方面解决了TOF口服带来的不良反应,另一方面提高了TOF靶向RA病变部位的能力,有利于RA的药物靶向治疗.Copyright ©博看网. All Rights Reserved.1 实验材料与仪器1.1 实验材料枸橼酸托法替尼(上海博氏医药科技有限公司),磷脂(LipoidGMBH),胆固醇(国药集团化学试剂有限公司),DMEM高糖培养液(杭州启真湖生物科技有限公司),胎牛血清(浙江天杭生物科技有限公司),弗氏完全佐剂(Sigma),噻唑蓝溴化四唑(阿拉丁).1.2 实验仪器旋转蒸发仪(RE 52AA,上海亚容生化仪器厂),Antonpaarlitesizer500型Zeta电位粒径分析仪(奥地利安东帕中国有限公司),全自动酶标仪(BiotekInstruments,美国伯腾仪器有限公司北京代表处),透射电子显微镜TEM(JEM2100,日本电子株式会社),高效液相色谱仪(HighPerformanceLiquidChro matography,HPLC).2 TOF脂质体的工艺研究与评价2.1 犜犗犉脂质体的工艺研究HPLC色谱条件:色谱柱为Technologies,Diamonsil(钻石)C18(200mm×4.6mm,5μm)柱;流动相为乙腈 水(体积比为30∶70);流速为1.0mL/min,检测波长为285nm;柱温为25℃;进样量为20μL.选用pH梯度法制备载药脂质体.首先采用薄膜分散法制备空白脂质体,在茄形瓶中放置一定比例的卵磷脂和胆固醇,加入适量无水乙醇溶解,经旋蒸形成薄膜,加入pH3.5柠檬酸柠檬酸盐缓冲液水化,冰浴下探头超声20min(600W,工作3s/间隔3s),得到空白脂质体.然后用Na2CO3溶液调至一定pH后加入TOF溶液,于60℃水浴中孵育10min,得到TOF脂质体(TOFL).在单因素的基础下,探究药脂比、膜材比、外水相pH对TOFL的包封率的影响,采用HPLC法测定药物峰面积,从而筛选优势处方.包封率与载药量计算公式如下:EE%=(1-犃超滤后犃超滤前)×100%LE%=包封于脂质体内的药物量脂质材料总质量×100%其中犃超滤前:超滤前超滤管内管液体的峰面积;犃超滤后:超滤后滤下的液体的峰面积.2.2 犜犗犉脂质体的评价2.2.1 粒径分布及其电位、电镜按优势处方制备TOFL,使用电位粒径分析仪测定其粒径、多分散性指数和Zeta电位;取少量脂质体滴于覆有碳膜的铜网上,滤纸吸干后,再用醋酸双氧铀负染30s,自然晾干后于透射电镜下观察其形貌特征.2.2.2 体外释放根据优势处方制备TOFL,采用透析袋法评价该脂质体的体外释药性能.释放条件:释放介质pH7.4和pH5.5的磷酸盐缓冲液(PhosphateBufferedSaline,PBS),温度(37±0.5)℃,速度100r/min.在预定时间取样,取样量为1mL,每次取样后补充等量新鲜释放介质,样品离心后取上清进样,采用HPLC法测定,并记录峰面积(犃),计算实际浓度(犆),计算累计释放百分率.2.2.3 细胞活性评价巨噬细胞(RAW264.7)培养在含有体积分数10%的胎牛血清的DMEM培养基中(含青霉素、链霉素质量浓度各为0.1mg/mL),孵育条件为37℃,体积分数为5%CO2.采用四甲基偶氮唑蓝(MethylThiazolylTetrazolium,MTT)法检测细胞活性[8].将对数生长期的RAW264.7细胞以5000每孔的密度接种于96孔板上,孵育过夜贴壁,不同浓度空白脂质体处理48h后,32 第1期钱洋伟,等:枸橼酸托法替尼脂质体的制备与初步评价Copyright ©博看网. All Rights Reserved.于各孔内加入质量浓度为5mg/mL的MTT33μL并放置于培养箱内继续培养4h后倒出孔内液体,每孔内分别加入200μL二甲亚砜(Dimethylsulfoxide,DMSO),采用酶标仪在570nm处测量各孔吸光度,并计算细胞存活率.2.2.4 RA部位初步靶向性考察为了较直观地观察脂质体在RA小鼠关节部位的分布情况,选用整体器官荧光成像方法进行评价.以ICR小鼠为实验对象,将0.1mL弗氏完全佐剂皮下注射至小鼠右后爪中,构建类风湿关节炎小鼠模型[9].以近红外荧光染料吲哚菁绿(Indocyaninegreen,ICG)替代TOF制备脂质体,设立游离ICG和ICG脂质体组,经尾静脉注射6h后处死(ICG剂量为1mg/kg),收集其关节,比较不同制剂给药后关节处的荧光强度.2.2.5 小鼠体内初步药效学评价将15只RA小鼠随机分成3组,每组5只,设立PBS组、游离TOF组、TOFL组,经小鼠尾静脉注射给药(TOF剂量为1.8mg/kg),每2天给药1次,连续给药7次,并以正常组为对照.治疗结束后,采用游标卡尺测量各组后爪足掌的厚度,评估其肿胀程度,以初步评价治疗效果.3 结果3.1 膜材比对包封率的影响图1 膜材比对包封率的影响犉犻犵.1 犜犺犲犲犳犳犲犮狋狅犳犿犲犿犫狉犪狀犲犿犪狋犲狉犻犪犾狉犪狋犻狅狅狀犈犈 膜材比(卵磷脂∶胆固醇)对包封率影响如图1所示,由图可知,当膜材比为1∶1和2∶1时包封率相对较高,达到50%以上,膜材比为2∶1时的载药量比1∶1时高,且膜材比1∶1时旋蒸成膜后极难振荡脱落,细胞粉碎机超声脂质体几乎没有乳光,且外观形态较差,所以选择卵磷脂∶胆固醇比为2∶1作为最优膜材比.3.2 外水相狆犎对包封率的影响外水相对包封率的影响结果见图2,由图可看出,在外水相pH为8时有较高包封率达到75.78%.所以选择外水相pH为8作为最优外水相pH.图2 外水相狆犎对托法替尼脂质体包封率的影响犉犻犵.2 犜犺犲犲犳犳犲犮狋狅犳犲狓狋犲狉犻狅狉狆犎狅狀犈犈狅犳犜犗犉犔图3 药脂比对包封率的影响犉犻犵.3 犜犺犲犲犳犳犲犮狋狅犳犱狉狌犵狋狅犾犻狆犻犱狉犪狋犻狅狅狀犈犈3.3 药脂比对包封率的影响药脂比对包封率影响结果如图3所示,可见在TOF∶SPC比例为4∶100时有较高包封率达到88.40%,所以选择药脂比为4∶100作为最优药脂比.综上所述,我们得出的最优条件为:脂质体的内水相为柠檬酸 柠檬酸钠水溶液(pH3.5)时,药物与磷脂的质量比为4∶100,胆固醇与磷脂质量比为1∶2,外水相用Na2CO3最终调至pH8.0.42杭州师范大学学报(自然科学版)2023年 Copyright ©博看网. All Rights Reserved.3.4 粒径分布电位、电镜脂质体粒径分布图及透射电子显微镜下的结果见图4.由粒径分布图(图4A)可知,TOF脂质体的平均粒径56nm,多分散指数20.1%,说明脂质体粒径分布均匀.由透射电镜图4B可见TOF脂质体粒径50nm左右,外观接近球形,分布较为均匀,与粒径分布结果相吻合.图4 托法替尼脂质体的粒径分布图(犃)及电镜图(犅)犉犻犵.4 (犃)犜犺犲狊犻狕犲犱犻狊狋狉犻犫狌狋犻狅狀犪狀犱(犅)犜犈犕狅犳犜犗犉犔3.5 体外释放TOF的累积释放百分率如图5所示,由实验结果可知,托法替尼在pH5.5PBS中释放速度较快,可见TOF脂质体更倾向于在较低pH值下释药.TOF脂质体在生理条件下显示出一定的缓释效果,有利于其在体循环中保持相对稳定,靶向至弱酸性的RA部位再释药.图5 托法替尼脂质体在狆犎7.4和狆犎5.5磷酸盐缓冲液中的累积释放百分率犉犻犵.5 犆狌犿狌犾犪狋犻狏犲狆犲狉犮犲狀狋犪犵犲狅犳犜犗犉犔狉犲犾犲犪狊犲犱犻狀犘犅犛狆犎7.4犪狀犱狆犎5.5图6 不同浓度空白脂质体对犚犃犠264.7细胞作用48犺后的细胞活性犉犻犵.6 犆犲犾犾犪犮狋犻狏犻狋狔狅犳犚犃犠264.7狋狉犲犪狋犲犱狑犻狋犺犱犻犳犳犲狉犲狀狋犮狅狀犮犲狀狋狉犪狋犻狅狀狊狅犳犫犾犪狀犽犾犻狆狅狊狅犿犲狊犳狅狉48犺3.6 细胞活性评价MTT实验结果如图6所示,由结果可知,空白脂质体在质量浓度不超过500μg/mL条件下,细胞活性接近90%,说明空白脂质体对细胞活性基本无影响,毒性小,有利于利用其来载药.3.7 犚犃部位初步靶向性考察图7 犚犃小鼠分别注射游离吲哚菁绿、吲哚菁绿脂质体6犺离体关节荧光分布图片犉犻犵.7 犉犾狌狅狉犲狊犮犲狀犮犲犱犻狊狋狉犻犫狌狋犻狅狀狅犳犻狊狅犾犪狋犲犱犼狅犻狀狋狊狅犳犚犃犿犻犮犲6犺犪犳狋犲狉犻狀犼犲犮狋犻狅狀狅犳犐犆犌狅狉犐犆犌犔 采用整体器官荧光成像方法初步考察游离ICG(FreeICG)和ICG脂质体(ICGL)在RA部位的靶向分布,实验结果如图7所示,在给药6h时,与FreeICG比较,ICGL组小鼠RA关节部位的荧光信号更强,说明经脂质体载药后可以增加药物在RA部位的富集,有利于RA的药物靶向治疗.3.8 小鼠体内初步药效学评价治疗结束后,各组小鼠足掌厚度情况如图8所示.由图8可知,与正常组相比,PBS模型组的52 第1期钱洋伟,等:枸橼酸托法替尼脂质体的制备与初步评价Copyright ©博看网. All Rights Reserved.足掌厚度显著增加;与PBS模型组相比,经FreeTOF和TOFL治疗后小鼠的足掌厚度有不同程度减少,尤其是TOFL组的减少程度更明显.这可能是TOFL被动靶向至RA部位后,在炎性关节部位释放TOF实现其靶向治疗,因此显示出比FreeTOF更好的缓解足掌肿胀的效果.图8 治疗结束后各组小鼠的足掌厚度( 犘<0.01, 犘<0.05)犉犻犵.8 犘犪狑狋犺犻犮犽狀犲狊狊狅犳犿犻犮犲犻狀犲犪犮犺犵狉狅狌狆犪犳狋犲狉狋狉犲犪狋犿犲狀狋4 讨论RA引起关节肿胀、多关节受累、关节畸形以及关节周围和全身的骨质疏松等病状,严重影响患者生活质量和运动能力.RA发病机制较为复杂,世界卫生组织将RA列为疑难症之一.目前临床上RA治疗的药物有改变病情药、糖皮质激素和非甾体抗炎药,主要用于控制RA的进展[10].与传统抗RA药物相比,TOF不仅能够缓解症状,还能缓解或直接停止RA的损害.但是,口服TOF治疗RA的患者大多出现胃肠道反应,易引起上呼吸道感染等不良反应,因而有必要改变其剂型以弥补以上缺点.基于纳米技术和医学交叉研究的纳米医学近年来迅猛发展,为重大疾病的诊疗提供了新的机遇[11].研究表明,纳米微粒在类风湿性关节炎的诊断、预防及治疗等方面具有一定优势[12].类风湿关节炎发生部位具有类似肿瘤血管的EPR效应,且血管新生伴随着RA的整个病程[12 13].这些病理特征为纳米微粒系统被动靶向RA病变部位提供了可能性.用于药物递送的纳米载体种类繁多,其中脂质体是纳米制剂中一种常用载体,自莱门等人[14]在1971年开始将脂质体用作药物载体以来,该载体系统得到了广泛的研究与应用.实验采用pH梯度法制备TOF脂质体,并采用单因素法筛选出TOF脂质体的优势处方.体外释放实验表明,TOF脂质体在pH7.4PBS释放介质中具有一定的缓释作用,有利于将药物递送至RA部位再释放药物.细胞活性实验可看出,空白脂质体在实验浓度范围内对细胞活性几乎没有影响,有利于作为载体进行给药.由整体器官荧光成像结果可知,ICG脂质体组小鼠RA部位的荧光信号显著强于游离ICG组,说明脂质体可以增加药物在RA部位的富集.初步药效研究表明,与FreeTOF相比,TOFL减少足掌厚度的能力更强,可能是TOFL具有靶向治疗RA的作用,因此显示出更好的抗RA效果.综上所述,优势处方制得的TOFL能较好减轻RA小鼠的足掌肿胀程度.参考文献:[1]MAGYARIL,VARSZEGID,KOVESDIE,etal.Interleukinsandinterleukinreceptorsinrheumatoidarthritis:research,diagnosticsandclinicalimplications[J].WorldJournalofOrthopedics,2014,5(4):516 536.[2]TANAKAY,OHIRAT.Mechanismsandtherapeutictargetsforbonedamageinrheumatoidarthritis,inparticulartheRANK RANKLsystem[J].CurrentOpinioninPharmacology,2018,40:110 119.[3]池里群,周彬,高文远,等.治疗类风湿性关节炎常用药物的研究进展[J].中国中药杂志,2014,39(15):2851 2858.[4]黄淑晖,刘淮.妊娠合并类风湿性关节炎的药物治疗研究进展[J].中国妇幼保健,2017,32(9):2041 2044.[5]常晓天,郑亚冰.类风湿性关节炎瓜氨酸化反应研究的最新进展[J].中国免疫学杂志,2016,32(2):279 283.[6]KLARESKOGL,CATRINAAI,PAGETS.Rheumatoidarthritis[J].TheLancet,2009,373(9664):659 672.[7]MITRAGOTRIS,YOOJW.Designingmicro andnano particlesfortreatingrheumatoidarthritis[J].ArchivesofPharmacalResearch,2011,34(11):1887 1897.62杭州师范大学学报(自然科学版)2023年 Copyright ©博看网. 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脂质体的制备概要

实验十五脂质体的制备一实验目的1.了解脂质体(liposome)在细胞工程技术中的应用及其制备方法。
2.掌握采用超声波法、冰冻干燥法和冻融法三种不同的方法制备脂质体的方法并了解该技术在细胞工程中的应用。
二实验原理脂质体(liposome)的制备技术,一般采用超声波法、振荡法、乙醚蒸发法、去污剂透析法、冰冻干燥法和冻融法等。
制备方法不同,所得脂质体结构、大小不同,性质和用途也就不同(表15-1)。
种类制备方法大小(m) 特性多层大脂质体(MLV) 乙醚蒸发法、醇醚水法、振荡法、液相快速混合振荡法0.1~50 易制备,包被物释放速度慢单层小脂质体(SUV) 直接超声波法、溶剂超声波法、乙醚注射法0.02~0.05 体积小,适合包被离子、小分子药物等单层大脂质体(LUV) 递相蒸发法、去污剂(胆酸纳等)透析法、冰冻干燥法0.05~0.5 适合包被蛋白质、RNA、DNA片段、大分子药物及细胞融合单层巨大脂质体(GUV) 冻融法5~30 适合包被蛋白质、RNA、DNA片段,除菌处理较难本实验采用超声波法、冻融法、冰冻干燥法三种不同类型的方法,超声波法的原理是:在超声波作用下,磷脂类双亲媒性分子被打碎为分子或分子团,并自动重新排布成类似生物膜的双分子层囊泡。
冻融法是在超声波法形成的小脂质体基础上,通过冷冻和融解过程使其破裂,重组为大体积脂质体,在通过透析时膜内外渗透压的变化而膨胀为更大体积的脂质体。
冰冻干燥法语原理与冻融法基本一致,只在处理条件上有所不同。
三实验用品1.器材超声波清洗机、光学显微镜、荧光显微镜、荧光分光光度计、漩涡混合器、核酸蛋白检测仪、柱层析装置、冰冻干燥机。
2.试剂1)磷脂液:100mg经丙酮-乙醚法纯化的卵磷脂,57.2mg胆固醇,溶于1ml氯仿。
2)荧光液:钙黄绿素(calcein)47mg溶于100ml Tris缓冲液。
3)Tris 缓冲液:称取Tris 0.12g,EDTA0.288mg,溶于80ml去离子水中,用0.1 mol/L盐酸调Ph7.2,再加水至100ml。
实验10脂质体的制备

理不同,可分为“主动载药” 与“被动载药”
两大类。所谓“主动载药”,即通过脂质体内
外水相的不同离子或化合物梯度进行载药,主
要有K+-Na+梯度和H+梯度(即pH梯度)等。传统上,
人们采用最多的方法是“被动载药”法。所谓
“被动载药”,即首先将药物溶于水相或有机
相(脂溶性药物)中,然后按所选择的脂质体制
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• (4)取预热的PBS 30ml,加至含有磷脂膜的烧 瓶 中 , 65-70℃ 水 浴 中 搅 拌 水 化 10-20min 。 取 出 脂质体液体于烧杯中,置于磁力搅拌器上,室温 下,搅拌30-60min,如果溶液体积减少,可补加 水至30m1,混匀,即得。(整个过程也可在旋转 蒸发仪上完成,其它的脂质体制备也可在旋转蒸 发仪上完成。)
按柱分离度考察项下②进行操作,另一份
置于分离柱顶部,按 “柱分离度考察” 项下③进行操作,所得溶液于345nm波长
处测定吸收度,按下式计算包封率。
• 包封率(%)=( Al /At )×100%
• 式中,Al—通过分离柱后收集脂质体中盐
酸小檗碱的吸收度;At—盐酸小檗碱脂质
体中总的药物吸收度, 2.5为稀释倍数。
整理课件
•
脂质体的制备方法有多种,根据药物的性质或研究
需要来进行选择。
• (1)薄膜分散法 这是一种经典的制备方法,它可形成多 室脂质体,经超声处理后得到小单室脂质体。此法优点
是操作简便,脂质体结构典型,但包封率较低。
• (2)注入法 有乙醚注入法和乙醇注入法等。“乙醇注入
法”是将磷脂等膜材料溶于乙醇中,在搅拌下慢慢滴于 55-65℃含药或不含药的水性介质中,蒸去乙醇,继续搅 拌1—2h,即可形成脂质体。
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替尼泊苷长循环阳离子脂质体的制备钟琳;楼兴法【摘要】目的优化薄膜分散法制备替尼泊苷长循环阳离子脂质体的最佳处方.方法薄膜分散法制备脂质体,以粒径和包封率为考察指标,用单因素考察和正交设计等方法优化脂质体的处方.结果优化后的最佳处方为:磷脂DSPC和PEG 5000-DOT-MA比为4:1,药物和磷脂比为1:4,磷脂与胆固醇比为2:1,乳化剂为卵磷脂.优化的脂质体平均粒径为115.45nm,平均Zeta电位为25.54 mV,平均包封率为91.32%,5±3℃放置180 d和25±2℃放置30 d各项指标变化不显著.结论制备的替尼泊苷长循环阳离子脂质体包封率高,粒径小,释放缓慢,稳定性和安全性好.%Objective To optimize the formulation of long-circulating cationic teniposide-containing liposomes .Methods The long-cir-culating cationic teniposide-containing liposomes were prepared by thin film dispersion method .Single factor experiment and or-thogonal design were adopted to screen the formulation .Results The ideal combination of formulation was as follows :DSPC-PEG 5000-DOTMA (4:1);teniposide-phospholipid(1:4);phospholipid-cholesterol (2:1);lecithin as an emulsifier with purity of 80% .The average particle size of the optimized long-circulating cationic teniposide-containing liposomes was 115 .45 nm (n=3) , and the average Zeta potential was 25 .54 mV (n=3) ,and the average encapsulation efficiency was 91 .32% (n=3) .The tenipo-side-containing liposomes were quite stable after being stored in 5 ± 3 ℃ for 180 d and 25 ± 2 ℃ for 30d .Conclusion The opti-mized ,sustained release long-circulating cationicteniposide-containing liposomes with satisfied size and high entrapment efficiency were obtained ,which was safe and stable .【期刊名称】《西北药学杂志》【年(卷),期】2017(032)006【总页数】4页(P771-774)【关键词】替尼泊苷;长循环阳离子脂质体;薄膜分散法;磷脂;卵磷脂;胆固醇【作者】钟琳;楼兴法【作者单位】杭州市萧山中医院药剂科,杭州 311200;杭州市萧山中医院药剂科,杭州 311200【正文语种】中文【中图分类】R944替尼泊苷具有较强的广谱抗肿瘤活性,用于治疗白血病、恶性淋巴瘤、中枢神经系统肿瘤等,具有脂溶性大、易透过血脑屏障和毒性低等特点[1]。
但其溶解性极差,生物利用度低,大大限制了其在临床上的应用。
目前上市的有注射液,但其处方中用到的表面活性剂聚氧乙烯蓖麻油致敏性极高;该注射液使用时需要根据不同的治疗周期配制多个不同浓度的稀释溶液,且静脉输注频繁,周期长,配制的稀释静脉输注液还易产生沉淀,存在的这些安全隐患既给医护人员带来心理压力,也给患者带来意外的危险[2]。
长循环脂质体[2-4]可有效减少不良反应,能提高药物的靶向性、生物利用度和治疗指数。
本文采用薄膜分散法[5-6],通过考察磷脂种类、不同的磷脂比、乳化剂种类和投入量、药脂比、磷脂与胆固醇比等因素,筛选出最优处方。
1.1 仪器 RV8旋转蒸发仪(IKA®);JY92-ⅡN超声波细胞粉碎仪(宁波新芝生物科技股份有限公司);Nano ZS90纳米粒度及Zeta电位仪(英国马尔文公司);Optima XPN-100 Uitracentrifuge(美国贝克曼库尔特公司);德国Dionex-U3000液相色谱系统(DionexChemeleon色谱工作站,DAD检测器,美国戴安公司);224-1CN电子天平(德国赛多利斯科学仪器有限公司);α1900S紫外分光光度计(上海谱元仪器有限公司);TGL-16M台式高速冷冻离心机(上海卢湘仪离心机仪器有限公司)。
1.2 试药替尼泊苷(江苏亚邦药物研发有限公司,批号140719,质量分数98%以上);二油酰磷脂酰胆碱DOPC,二硬脂酰基卵磷脂DSPC,聚乙二醇5 000-N-[1-(2,3-二油酰氯)丙基]-N,N,N-氯化三甲胺PEG5 000-DOTMA,聚乙二醇5 000-二肉豆蔻甘油丝氨酸PEG5 000-DMGS,卵磷脂(质量分数80%)和胆固醇(均为上海艾韦特医药科技有限公司惠赠);聚氧乙烯蓖麻油,波洛沙姆188(GATTEFOSSE公司惠赠);色谱纯:三氯甲烷、乙醇(天津市富起化工有限公司);水为纯化水;其余药品、试剂均为分析纯。
2.1 脂质体的制备称取处方量的替尼泊苷、磷脂和胆固醇,用三氯甲烷10 mL溶解,转移至250 mL圆底烧瓶中,在提前准备好的50 ℃的恒温水浴锅中减压蒸去三氯甲烷,得到一层均匀薄膜,加入含有乳化剂的PBS缓冲液(pH值为7.40) 5 mL,恒温水浴锅中振荡水化30 min,形成乳白色溶液,探头超声(功率为30%),超声10 min(超声10 s停10 s)[7-9],得到粒径较小的纳米脂质体溶液。
2.2 脂质体包封率的测定文献主要采用HPLC或HPLC-MS/MS等方法测定的替尼泊苷的质量浓度[10-11],为了实验操作方法的适用性和方便性,本文采用UV 法测定替尼泊苷的质量浓度[12]。
2.2.1 检测波长的选择分别精密量取适量空白脂质体和替尼泊苷各50 mg,分别置于50 mL量瓶中,用氯仿溶解,吸取1 mL,置于10 mL 量瓶中,用乙醇定容待用。
以乙醇为参比,扫描显示在波长220 nm 处有紫外吸收,空白脂质体无干扰。
2.2.2 标准曲线的建立精密称取替尼泊苷100 mg,加适量氯仿超声溶解并定容至50 mL,作为储备液,精密量取一定量储备液,用甲醇稀释并分别配制质量浓度为1,10,20,50,100和150 μg·mL-1的标准溶液,分别测吸光度值,以吸光度值对质量浓度作图,得标准曲线方程,结果表明,质量浓度在1~150 μg·mL-1范围内,吸光度值和质量浓度线性关系良好。
2.2.3 精密度精密称取原药50 mg,加适量氯仿超声溶解并定容至50 mL,作为储备液,精密量取一定量储备液,用乙醇稀释并分别配制成质量浓度为80,100和120 μg·mL-1的溶液,各质量浓度平行3个样品,各样品测3次。
测得平均质量浓度分别为80.25(RSD值为0.125%,n=9),100.14(RSD值为0.153%,n=9)和120.04 μg·mL-1(RSD值为0.160%,n=9)。
2.2.4 回收率精密称取原药50 mg,用空白脂质体溶液定容至50 mL,混匀,取1 mL,3份,用适量氯仿溶解,加乙醇定容至20 mL量瓶中,测吸光度值,平均回收率为96.38%,RSD值为0.52%(n=9),表明空白脂质体无干扰。
2.2.5 超滤离心法精密称取载药脂质体溶液适量,以15 000 r·min-1离心20 min,弃去上清液,用少量氯仿溶解离心沉淀物[13-14],用乙醇定容,测吸光度值,用标准曲线方程计算药物质量浓度,计算公式为:包封率=(1-M1/M2)×100%(M1为沉淀物游离药物的量,M2为载药脂质体总药物量)。
2.3 体外释放实验将半透膜在水中浸泡过夜,取游离药物的PBS缓冲液或脂质体溶液各1 mL,分别加入2个透析袋中,两端夹紧,置于100 mL PBS (pH值为7.40) 缓冲液中,37 ℃恒温水浴,转速为50 r·min -1,分别于0,2,4,8,12,24,36,48和72 h取样0.5 mL,及时补充0.5 mL PBS缓冲液,0.2 μm滤膜过滤样品,测定不同时间段样品的药物含量。
2.4 脂质体粒径和电位测定吸取适量纳米脂质体溶液,用水稀释10倍,加入到检测仪的石英比色皿和毛细管小池中,测定粒径大小、分布及Zeta电位。
2.5 稳定性实验将纳米脂质体溶液分别放置在2~8 ℃冰箱和25±2 ℃恒温箱中,分别于0,3,6个月和0,2,4周取样,观察样品的外观形状并测定平均粒径及分布、Zeta电位、pH值、包封率及渗漏率的变化情况。
2.6 影响脂质体的处方因素考察2.6.1 磷脂种类的影响考察的磷脂为中性磷脂DOPC、DSPC、阳离子磷脂PEG5 000-DOTMA和阴离子磷脂PEG5 000-DMGS,按照2.1项下方法改变磷脂种类制备脂质体,药物投料为50 mg,胆固醇50 mg,质量分数80%的卵磷脂30 mg(乳化剂),选取的方案为:①150 mg HSPC;②150 mg DOPC;③120 mg HSPC+30 mg PEG 5 000-DOTMA;④120 mg DOPC+30 mg PEG 5 000-DOTMA;⑤120 mg HSPC+30 mg PEG 5 000-DMGS;⑥120 mg DOPC+30 mg PEG 5 000-DMGS。
6组分别进行实验,将制备好的纳米脂质体溶液放置在25±2 ℃恒温箱中,1周后取样,平均粒径分别为485.41,467.54,128.84,207.80,341.25和327.28 nm;包封率分别为40.56%,45.65%,87.87%,73.60%,63.77%和65.21%。
由此可知,由中性磷脂制备出的脂质体样品①和样品②稳定性很差,平均粒径较大,包封率很低,肉眼可见样品底部有大量白色沉淀物,脂质体溶液分层很厉害,由中性磷脂加阴离子磷脂制备的脂质体样品⑤和样品⑥次之,中性磷脂加阳离子磷脂制备的脂质体稳定性较好,其中样品③的脂质体稳定性最好,因此选用中性磷脂[15]HSPC加少量阳离子磷脂PEG5 000-DOTMA 的混合磷脂作为最优磷脂。