番茄环纹斑点病毒(TZSV)侵染对辣椒防御相关物质的影响
番茄满棚“黄化”，“缺素”还是“病毒”，分子检测大揭秘！
番茄满棚“黄化”，“缺素”还是“病毒”，分子检测大揭秘！天气回暖，虽有清明前后几天的冷天气，已然拦不住春天的脚步，万物复苏，遍地花开。
近来有山东农户反映自己这边棚里一人多高的番茄满棚“黄化”，不同人员会诊，多数说明为缺素，自己拿捏不准，就是心里感觉不对劲。
我们前去观察采样，借助实验检测，确诊这满棚的番茄“黄化”，又是病毒病惹的祸，“是去是留”，我们的棚友心里终于有个着落！1、田间现状听说棚友番茄出现异样，我们应邀赶去现场会诊，首先映入眼帘的是满棚的“黄花”（图1）通过和棚友介绍和现场观察，我们了解到以下情况：图1 满棚“黄花”2、大家一起来会诊（1）定植时间：2017年11月份（2）田间管理：定植后，粉虱出现过一阵子（2017年11月份），但是随即就被按下去，我们去的时候（2018年3月底），跑遍全棚几乎看不到粉虱的影子。
（3）“不对劲的时候”：定植后1月左右，膝盖高的番茄，棚友感觉出不对劲，头部有些发黄，且部分叶脉发紫，不过鉴于当时气温低，疑为低温影响导致。
年关过后，天气回暖，虽有黄化现象，但是番茄不断长高，时至今日，有1米7左右的番茄棵子。
（4）会诊史：多处会诊，考虑到前期低温，品种适应性，诊为根系不好，缺素。
前期虽有怀疑病毒病，但是棚内的番茄仍不断生长，现如今已经一人多高，早期得了病毒病一般明显矮化，还能长一人多高？因此前期的诊断是排除病毒病危害引起。
3、室内检测，解疑答惑图2 1号番茄植株图3 2号番茄植株图4 3号番茄植株根据现场观察，番茄植株虽然不断长高，但是相比同时期番茄（2米多高）生长相对迟缓，依然显矮；叶片脉间黄化明显（图2、图3、图4），疑似番茄病毒病。
分别在棚内采集了3株表现不同症状的番茄植株，带回实验室内，利用分子生物学方法，分别进行DNA和RNA 提取和病毒检测，检测结果，三个病样均能通过TYLCV-1/2（番茄黄化曲叶病毒的引物）和ToCV-1/2（番茄褪绿病毒的引物）扩增出约与预测大小一致的条带，初步表明了这3个番茄均复合感染番茄褪绿病毒（Tomato chlorisis virus，T oCV）和番茄黄化曲叶病毒（Tomato yellow leaf curl virus，TYLCV）；以此类推，该棚的番茄多数均感染了病毒病。
警惕番茄褐色皱纹果病毒在我国的传播和危害
警惕番茄褐色皱纹果病毒在我国的传播和危害
石钰杰;马子玥;杨秀玲;周雪平
【期刊名称】《植物保护》
【年(卷),期】2022(48)6
【摘要】番茄褐色皱纹果病毒(tomato brown rugose fruit virus,ToBRFV)是烟草花叶病毒属的一个新种,在自然界中主要危害番茄、辣椒等茄科作物。
自2014年首次在以色列发现以来,ToBRFV迅速蔓延至全球4个洲的35个国家,严重影响番茄和辣椒的产量和品质。
本文综述了ToBRFV的发现与分布、基因组结构、传播方式、寄主范围和检测方法,并提出了相应的防控建议,以防范ToBRFV在我国的进一步传播和危害。
【总页数】7页(P42-48)
【作者】石钰杰;马子玥;杨秀玲;周雪平
【作者单位】中国农业科学院植物保护研究所
【正文语种】中文
【中图分类】S436.412.1
【相关文献】
1.番茄褐色皱纹果病毒的为害及防控技术
2.番茄褐色皱纹果病毒的发生分布及防控对策
3.警惕新发病毒番茄褐色皱果病毒Tomato brown rugose fruit virus对我国番茄产业的危害
4.北京、山东、陕西部分地区番茄褐色皱纹果病毒的检测及同源性分析
5.番茄褐色皱纹果病毒对中国番茄产业的潜在威胁及预防措施
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辣椒表面产生紫色条斑的原因
辣椒是人们餐桌上常见蔬菜，可辣椒果面上，经常会出现了紫色条斑，这对辣椒生产尤其是设施辣椒生产会造成较大影响，严重影响辣椒的品相，导致青椒商品性、商品率和商品价值降低，给种植户造成一定的经济损失，因此，在生产中我们应应引起重视。
一、症状与特点辣椒青紫斑果病是一种生理性病害，主要表现在已经肥大的果实上。
通常先表现为果实失去光泽，其次是在绿色果面向阳的部位出现青紫色不规则的斑块，大小不一，严重时可占到果面的近1/3，有时在叶面上也会出现紫色斑块。
青紫斑果病在辣椒露地生产和设施栽培中均可发生，一般在生产中后期发生，以春季高温期发病较重。
连茬栽培的老菜地中较易发生，设施栽培比露地生产较易发生。
在日光温室辣椒长季节栽培中，主要在深冬和春季发生；露地辣椒主要在秋季发生。
二、产生原因青紫斑果的形成主要是由于土壤有效磷供应不足或根足或根系吸收困难，已经肥大的果实在阳光照射下绿色果皮表面就容易形成花青素而呈现紫色，严重时在叶面上也会形成花青素而呈现紫斑。
具体原因如下：1、地温过低。
导致土壤活性降低，根系发育不良，有效磷形成少，根系吸收不足而形成青紫斑果。
2、高温干旱。
干旱是引发青紫斑果病最主要的因素。
辣椒盛果期遇高温天气，土壤供水不足或忽干忽湿，导致植株营养物质尤其是磷素供应不上，出现青紫斑果。
3、土壤肥力不足。
辣椒生长后期营养跟不上或养分供应不平衡，植株脱肥早衰，吸肥力下降，吸收磷素困难，产生青紫斑果。
4、病害、虫害、肥害、药害。
均可导致植株根、叶功能下降，形成生理性干旱，从而发生青紫斑果。
三、防治措施影响辣椒青紫斑果病发生的主要因素是肥水供应不平衡，如果环境调控适宜，栽培管理得当，青紫斑果病的发生几率自然就会减少。
综合防治措施如下：1、选用抗性品种。
根据栽培茬口，有针对性地选择抗逆性强，耐低温弱光、高温干旱的优良品种。
2、培育壮苗。
加强光温及肥水调控，培育壮苗，提高植株的抗逆性，严防形成徒长苗、老化苗。
3、加强温度调控。
番茄斑萎病毒系统侵染我国大蒜
番茄斑萎病毒系统侵染我国大蒜宋晓宇;刘勇;陈建斌;史晓斌;张德咏【摘要】番茄斑萎病毒Tomato spotted wilt tospovirus (TSWV)是严重危害世界经济作物的一种病毒,寄主范围广泛.我们在研究中发现番茄斑萎病毒能侵染我国大蒜Allium sativum L..利用摩擦接种法将TSWV接种到健康大蒜上,结果显示:接种14 d后大蒜新生叶片出现褪绿和白色斑点症状.ELISA检测显示大蒜叶片汁液与TSWV的单克隆抗体产生血清学反应,采用TSWV N基因的引物对大蒜叶片总RNA进行RT-PCR,结果扩增出约800 bp的条带,在NCBI上BLAST显示与TSWV YN5576的同源性最高,为98.52％.这些数据表明番茄斑萎病毒系统侵染我国大蒜.【期刊名称】《植物保护》【年(卷),期】2019(045)003【总页数】4页(P149-151,173)【关键词】番茄斑萎病毒;大蒜;鉴定;RT-PCR【作者】宋晓宇;刘勇;陈建斌;史晓斌;张德咏【作者单位】湖南大学研究生院隆平分院,长沙410125;湖南大学研究生院隆平分院,长沙410125;湖南省农业科学院植物保护研究所,长沙410125;湖南大学研究生院隆平分院,长沙410125;湖南大学研究生院隆平分院,长沙410125;湖南省农业科学院植物保护研究所,长沙410125;湖南大学研究生院隆平分院,长沙410125;湖南省农业科学院植物保护研究所,长沙410125【正文语种】中文【中图分类】S436.33番茄斑萎病毒Tomato spotted wilt tospovirus(TSWV)属于番茄斑萎病毒科Tospoviridae, 番茄斑萎病毒属Orthotospovirus,是世界上最具经济危害性的十种病毒之一[1]。
TSWV病毒粒子为直径80～100 nm的球形[2],基因组由3个单链RNA组成,根据分子量的大小从大到小分别为 L RNA(8.9 kb)、 M RNA(4.8 kb)和S RNA(2.9 kb)[3-4]。
警惕番茄斑萎病毒病在陕西流行
2019.073吨病衣防治警惕番茄斑萎病毒病在陕西流行李英梅刘晨张伟兵王周平陈志杰番茄斑萎病毒(Tomato spotted wilt virus, TSWV)最早于1915年在澳大利亚被发现，目前已成为全世界10种危害性最大的植物病毒之一。
其寄主范围非常广泛，能够侵染84个科1090种植物，烟草、花生、辣椒、萬苣、茄子等经济作物均可被感染。
番茄斑萎病毒广泛分布于欧洲、北美、南美、亚洲和大洋洲等多个国家和地区，热带、亚热带、温带地区均有发生。
自1989年在广州出现以来，已在云南、贵州、四川、广东、广西、山东、河南、河北、北京、天津、宁夏等番茄主产区大面积发生，成为继番茄黄化曲叶病毒病之后的又一种灾害性病毒病。
该病毒属于欧洲及地中海植物保护组织(EPPO)检疫性有害生物，同时也是中国进境植物检疫性有害生物。
在陕西局部番茄种植区已有发生，其防治难度大于番茄黄化曲叶病毒病防治，一旦在陕西大规模流行，将给番茄生产带来巨大损失，务必高度重视，防止该病毒大面积流行。
李英梅，刘晨，陈志杰，陕西省生物农业研究所，邮编710043；张伟兵，王周平，陕西省园艺工作站。
收稿EJ期：2019-06-06•+--1y+-+-+-一-#一-+---t--T--+-+-+---+-・+表面呈现粉红色的黏质物，最终导致基部皮层及须根腐烂，引起植株死亡。
发病轻者损失一两成，发病重者可全田毁灭。
应严格轮作倒茬，保持土壤排水良好;及时拔除病株烧毁，病穴用石灰消毒；清除田间枯枝落叶及杂草，消灭越冬病原；用50%多菌灵可湿性粉剂500-600倍液灌根。
1症状识别番茄整个生育期均可感染，苗期染病，生长点和幼叶变为铜色上卷，后形成许多小黑斑，叶背面沿叶脉呈紫色，有的生长点坏死。
定植后感染，茎部形成褐色坏死条斑，病株仅半边生长或完全矮化或落叶呈萎蔦状，发病早的不结果。
坐果后染病，果实上出现褪绿环斑，果实表面有瘤状突起及褐色坏死斑，果实易脱落。
番茄黄化曲叶病毒番茄种质资源的鉴定与筛选
番茄黄化曲叶病毒番茄种质资源的鉴定与筛选摘要：番茄黄化曲叶病毒是番茄上的重要病害之一，严重影响番茄产量和品质，给番茄生产造成巨大的经济损失。
目前国内外对该病的防治主要依赖于化学药剂，但其有一定的抗药性、且会对环境造成污染，因此培育抗病品种是最有效的防治方法。
我国具有丰富的番茄种质资源，是开展番茄黄化曲叶病毒抗性研究的良好材料。
本研究对全国收集到的23份番茄材料进行了TYLCV检测，筛选出12份抗性较好的材料。
为培育抗病品种及防治番茄黄化曲叶病毒病提供了新的种质资源。
关键词：种质；黄化曲叶；病毒；鉴定；番茄；筛选；资源番茄黄化曲叶病毒病（TYLCV）是一种世界性分布的病毒病害，主要危害番茄，由番茄黄化曲叶病毒（TYLCV）引起，在我国北方番茄产区的发病率高达40%~80%。
TYLCV为双股DNA病毒，其基因组呈双链环状结构，该结构可使病毒粒子在植物体内移动。
当番茄感染TYLCV后，会造成番茄植株矮化、叶片变小、叶色黄绿、叶边锯齿状、果实畸形等症状，严重影响番茄的产量和品质。
目前对TYLCV的防治主要依靠化学药剂防治，但由于其有一定的抗药性，且会对环境造成污染，因此培育抗病品种是最有效的防治方法。
在我国番茄育种中，利用抗源培育抗病品种是最经济有效的方法。
国内外已有多个国家和地区对TYLCV进行了抗病毒研究，但在我国还没有相关研究报道。
本研究在前期工作基础上，对收集到的23份番茄材料进行了TYLCV检测及抗病性鉴定，筛选出12份具有较好抗病性的番茄材料，为进一步开展抗病育种工作提供了丰富的种质资源。
一、抗番茄黄化曲叶病毒的研究意义主要体现在以下几个方面：1.保障食品安全：番茄作为广泛使用的蔬菜之一，其安全问题直接关系到人们的饮食健康。
抗番茄黄化曲叶病毒的研究有助于培育出更健康的番茄品种，降低病毒对番茄生长的影响，从而保障食品的安全与质量。
2.提高农业效益：病毒病害对农业生产带来巨大损失。
抗番茄黄化曲叶病毒的研究有助于减少病毒对番茄产量的影响，提高农业经济效益，为农民带来更多收益。
辣椒的果实内脂溶性物质和水溶性物质关联分析
辣椒的果实内脂溶性物质和水溶性物质关联分析辣椒是一种常见的辛辣调味品，其独特的辣味来源于辣椒果实内的化学物质。
这些化学物质主要分为脂溶性物质和水溶性物质两类。
本文将分析辣椒果实内脂溶性物质和水溶性物质之间的关联。
首先，我们来了解一下脂溶性物质在辣椒果实中的成分和作用。
辣椒中的主要脂溶性物质是辣椒素。
辣椒素的化学结构中含有苯环和酯基，这种结构使其可以溶解在脂肪溶剂中。
辣椒素在果实的外层特别丰富，呈现出鲜艳的红色或黄色。
辣椒素具有刺激性的辣味，并且具有一定的保健作用。
研究表明，辣椒素可以促进消化液分泌，增加食欲，改善消化功能。
同时，辣椒素还可以促进血液循环，增加新陈代谢，有助于体内脂肪的代谢和消耗。
此外，辣椒素还具有抗氧化、抗菌、防止血栓形成等多种生理活性。
水溶性物质是另一类辣椒果实中的重要成分。
辣椒中的水溶性物质主要包括维生素C、维生素B群和胡萝卜素等。
维生素C 是一种重要的天然抗氧化剂，能够清除体内自由基，减缓衰老过程。
维生素B群对于神经系统的正常运作和新陈代谢的调节起着关键作用。
胡萝卜素是一种强效的抗氧化剂，有助于维持眼睛和皮肤的健康。
说到这里，我们不难发现脂溶性物质和水溶性物质的作用是互补的。
脂溶性物质辣椒素在辣椒果实的外层较多，赋予了果实强烈的辣味和鲜艳的色彩。
而水溶性物质主要分布在果实的内层，起到调节和保健的作用。
另外，辣椒果实内脂溶性物质和水溶性物质的含量和组分也与辣椒品种、生长环境、季节等因素密切相关。
辣椒品种的不同会导致脂溶性物质和水溶性物质的含量产生差异。
例如，Capsicum annuum品种的辣椒果实中辣椒素含量相对较低，而Capsicum chinense品种的辣椒果实中则富含辣椒素。
生长环境和季节的变化也会对辣椒果实内脂溶性物质和水溶性物质的含量和比例产生影响。
研究表明，阳光充足、温度适宜的环境有利于辣椒素的积累。
同样，干燥的季节可以促进水溶性物质的积累。
综上所述，辣椒果实内的脂溶性物质和水溶性物质之间存在密切的关联。
番茄病毒病的发生原因及防治技术
番茄病毒病的发生原因及防治技术内容摘要：番茄病毒病是番茄生产上发生普遍，且危害较为严重的病害之一，发病后难以防治。
该病不仅可以造成番茄品质下降，产量也可受到不同程度的影响，严重的甚至会绝收。
关键词：番茄病毒病；发生；防治番茄病毒病是由番茄黄化曲叶病毒、番茄斑萎病毒等病毒引起的、发生在番茄的病害。
不同病毒在番茄不同生长期发生侵染时所产生的症状都不尽相同。
番茄感染病毒病后会出现叶片卷缩、变黄、变脆，花叶、条斑和蕨叶，植株矮化等症状。
番茄病毒病是番茄生产上发生普遍，且危害较为严重的病害之一，发病后难以防治。
该病不仅可以造成番茄品质下降，产量也可受到不同程度的影响，严重的甚至会绝收。
其发生和环境条件及植株生长势强弱关系密切，高温、干旱极利于发生病毒病，植株生长势弱、偏施氮肥、土壤板结等现象都可能导致发病。
番茄病毒病因每种病毒不同其发生和流行规律往往有所区别，明确致病病原是防治关键。
整体防治策略:重在预防，及时发现，及时清除，消灭毒源，减少扩散。
症状识别该病症状主要有3种:花叶型，叶片上出现黄绿相间或深浅相间斑驳，叶脉透明，叶略有皱缩，植株略矮;蕨叶型，植株不同程度矮化，由上部叶片开始全部或部分变成线状，中、下部叶片向上微卷，花冠变为巨花;条斑型，可发生在叶、茎、果上，在叶片上为茶褐色的斑点或云纹，在茎蔓上为黑褐色条形斑块，斑块不深入茎、果内部。
此外，有时还可见到巨芽、卷叶和黄顶型症状;病原引致番茄病毒病的毒原有20多种，主要有烟草花叶病毒(Tobacccco mosaic virus简称ToMV)、黄瓜花叶病毒(CMV)、烟草卷叶病毒(TLCV)、苜蓿花叶病毒(AMV)等。
番茄病毒病韧皮部、筛管及伴胞内，近圆形或椭圆形，哑铃形或不规则形，147-195nm×240-390nm，单位膜厚度约11nm。
卷叶型病株，则由烟草卷叶病毒(Tobacco leafcurl virus简称TLCV)侵染引起，其寄主范围较窄，主要侵染茄科、菊科。
冬季棚温过低易导致番茄花脸果和辣椒紫斑果
营养
营养不足会导致番茄和辣椒的生长受限，影响果实的品质和产量。
营养过剩也会对番茄和辣椒的生长产生负面影响，导致果实表面出现畸形或紫斑 。
03
预防措施
温度管理
合理调控棚温
在冷空气来袭前，要提前做好棚室的保温措施，比如加盖双层膜、草帘等。在棚内温度下降到20℃左右的时候， 可以在棚室四周加盖保温被或者在棚膜上加盖草帘来保温。在棚内温度极低的时候，可以在棚室内加设火炉或者 电热线来提升温度。
科学安排播种期
尽量避免在低温时期种植番茄和辣椒，特别是冬春季节要做好保温措施。
湿度管理
控制浇水次数和水量
在低温时期，要适当减少浇水次数，浇 水时也要适当控制水量，避免土壤过湿 。在棚内温度极低的情况下，可以暂停 浇水，等到温度回升后再进行。
VS
提高土壤通透性
在浇水前，可以先松土或者使用生物菌肥 来提高土壤通透性，有利于水分蒸发，避 免土壤过湿。
斑果的发生。
防治病虫害
针对已发生的病虫害，如灰霉病 、菌核病等，及时采取化学防治
措施，避免病害加重。
生物方法
要点一
使用生物菌剂
喷施或滴灌生物菌剂，如枯草芽孢杆菌、酵母菌等，可改 善土壤生态环境，提高土壤温度和作物抗逆性。
要点二
合理轮作
与非茄科作物轮作，可减少土壤中病原菌的数量，减轻病 害发生。
05
王忠. 植物生理学[M]. 中国农业 出版社, 2010.
THANKS
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结论
结论
棚温过低对番茄和辣 椒的生长和发育都有 负面影响。
为了避免这些问题， 应该采取措施来保持 适宜的棚温。
番茄花脸果和辣椒紫 斑果是棚温过低导致 的结果。
06
辣椒、番茄细菌性斑点病国内外研究进展
辣椒、番茄细菌性斑点病国内外研究进展
杜志强;孙福在
【期刊名称】《植物检疫》
【年(卷),期】1994(8)6
【摘要】辣椒、番茄细菌性斑点病国内外研究进展杜志强，孙福在（中国农科院植保所北京１０００９４）辣椒、番茄细菌性斑点病，又称疱病，国内也叫细菌性疮痂病。
早在本世纪２０年代，该病就有过报道。
其病原菌于１９２０年经Ｄｏｉｄｇｅ鉴定，１９３９年由Ｄｏｗｓｏｎ正式定名...
【总页数】3页(P358-360)
【关键词】辣椒;番茄;病害;细菌性斑点病;斑点病
【作者】杜志强;孙福在
【作者单位】中国农科院植保所
【正文语种】中文
【中图分类】S436.41;S436.413.1
【相关文献】
1.加工番茄品种对番茄细菌性斑点病的抗性鉴定 [J], 张国丽;任毓忠;张莉;李国英
2.番茄品种对番茄细菌性斑点病的抗性鉴定 [J], 赵廷昌;孙福在;冯凌云
3.新疆加工番茄细菌性斑点病与溃疡病复合侵染鉴定及防治建议 [J], 康华军;温智浩;袁军海;柴阿丽;许建军;何伟;李宝聚
4.辣椒,番茄细菌性斑点病国内外研究与进展 [J], 孙福在;赵廷昌
5.番茄细菌性斑点病抗病信号传导途径的研究进展 [J], 洪玉梅;赵廷昌
因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
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番茄环纹斑点病毒(TZSV)侵染对辣椒防御相关物质的影响张晓林;陈永对;穆野;赵立华;张洁;郑雪【摘要】采用高效液相色谱法(HPLC)对番茄环纹斑点病毒(Tomato zonate spot virus,TZSV)侵染后辣椒和健康辣椒植株(CK)叶片中茉莉酸(jasmonic acid,JA)、水杨酸(jalicylic acid,SA)和茉莉酸-异亮氨酸(jasmonoyl isoleucine,JA-Ile)含量进行测定.结果表明,SA含量在TZSV侵染24、48、96、120、144、168、192、216、240 h后显著高于对照组;JA含量在TZSV侵染8、24、72、96、144、216 h后显著高于对照组;JA-Ile含量在TZSV侵染24、48、72、96、144、216 h后显著高于对照组.TZSV侵染可使辣椒SA、JA及其衍生物JA-Ile含量增加.%The contents of salicylic acid (SA), jasmonic acid (JA) and jasmonoyl-isoleucine (JA-Ile) in pepper leaves between plants infected with TZSV and healthy plants(CK) were determined by the high performance liquid chromatography (HPLC) method. The results showed that the content ofSA was significantly higher than CK at 24, 48, 96, 120, 144, 168, 192, 216 and 240 h after TZSV infection. The content of JA was significantly higher than CK at 8, 24, 72, 96, 144, 216 h after TZSV infection. The content of JA-Ile was also significantly higher than CK at 24, 48, 72, 96, 144, 216 h after TZSV infection. The results indicated that TZSV infection could increase the contents of SA, JA and JA-Ile in pepper.【期刊名称】《山东农业科学》【年(卷),期】2018(050)004【总页数】4页(P94-97)【关键词】番茄环纹斑点病毒;辣椒;茉莉酸;水杨酸;茉莉酸-异亮氨酸【作者】张晓林;陈永对;穆野;赵立华;张洁;郑雪【作者单位】西南林业大学生命科学学院,云南昆明 650224;云南省农业科学院生物技术与种质资源研究所/云南省农业生物技术重点实验室/农业部西南作物基因资源与种质创制重点实验室,云南昆明 650223;西南林业大学生命科学学院,云南昆明 650224;西南林业大学生命科学学院,云南昆明 650224;云南省农业科学院生物技术与种质资源研究所/云南省农业生物技术重点实验室/农业部西南作物基因资源与种质创制重点实验室,云南昆明 650223;云南省农业科学院生物技术与种质资源研究所/云南省农业生物技术重点实验室/农业部西南作物基因资源与种质创制重点实验室,云南昆明 650223;云南省农业科学院生物技术与种质资源研究所/云南省农业生物技术重点实验室/农业部西南作物基因资源与种质创制重点实验室,云南昆明 650223【正文语种】中文【中图分类】S436.418.1+2番茄环纹斑点病毒(Tomato zonate spot virus，TZSV)属于布尼亚科(Bunyaviridae)番茄斑萎病毒属(Tospovirus)，于2008年在云南省首次发现并报道[1]。
TZSV病毒是一种RNA病毒，植物感染该病毒后，新叶上首先出现黄色同心环纹或环形带状褪绿斑点，之后由黄斑转变为枯斑，叶片出现黄化、凋零，造成整叶或半叶呈红褐色坏死。
感病植株还会出现矮化、顶芽萎蔫下垂、叶片皱缩退绿等症状。
TZSV寄主植物广泛，包含茄科、菊科、蓼科、藜科、豆科、葱科、鸢尾科共7 科的25 种植物，对云南省番茄、辣椒、烟草、花卉等经济作物的生产构成严重威胁[2,3]。
病毒侵染可造成植物防御次生物质含量、解毒和防御相关酶活性的改变，并对植物感知昆虫危害启动相应的防御反应产生干扰。
研究表明茉莉酸(jasmonic acid，JA)、水杨酸(salicylic acid，SA)作为植物激素是目前已知的参与高等植物防御反应的一类重要的信号物质[4]。
SA在植物对病原菌的过敏反应和系统获得抗性中起主要作用[5]。
在虫害诱导的直接和间接防御反应中，JA是植物诱导伤害反应的一种重要信号分子，其衍生物茉莉酸-异亮氨酸(jasmonoyl-isoleucine，JA-Ile)是JA生成的关键底物之一，主要诱导植物产生各种抗性[6,7]。
研究表明烟草花叶病毒(Tobacco mosaic virus,TMV)对烟草的侵染可能抑制了植物对昆虫取食的防御反应，这种抑制作用很可能是由病毒侵染导致寄主植物内源SA含量的上升对JA途经的抑制引起的[8]。
中国番茄黄化曲叶病毒(Tomato yellow leaf curl China virus，TYLCCNV)侵染烟草，可抑制植物JA防御途径，提高B型烟粉虱Bemisia tabaci(Gennadius)对寄主植物的适应性[9]。
本试验以TZSV-辣椒互作为切入点，研究辣椒感染TZSV前后SA、JA、JA-Ile等相关防御物质含量的变化，为下一步解析TZSV侵染诱导的寄主植物防御相关机制奠定基础。
1 材料与方法1.1 试验材料供试辣椒品种为Zunla-1号，由遵义市农业科学研究院提供。
人工气候室中栽培，栽培条件：温度25℃，湿度60%，光照时间16 h/d。
供试TZSV毒源来源于云南元谋的番茄叶片。
1.2 试验方法TZSV侵染辣椒植株的人工接种方法：将含有TZSV毒源的番茄叶片加入接种缓冲液研磨直至汁液溢出，用棉签蘸取少量汁液，在洒了少许金刚砂的辣椒(苗龄为35d)叶面上摩擦2～3次，10 min后用清水冲洗辣椒叶片。
试验设TZSV侵染辣椒植株和健康辣椒植株两个处理组，以后者为对照。
自TZSV 侵染时开始计算，分别于8、24、48、72、96、120、144、168、192、216、240 h后选取TZSV侵染株和健康株相同部位的叶片0.15 g，重复取样5次混匀备用。
1.3 测定指标与方法水杨酸(SA)、茉莉酸(JA)、茉莉酸-异亮氨酸(JA-Ile)检测方法参见文献[10,11]的方法并根据本实验室情况稍作改进：将采集的叶片在液氮中研磨，称取0.15 g于2.5 mL离心管，加入1 mL乙酸乙酯，后根据不同的测定指标分别加入200 ng13C2-JA(水杨酸的内标物质)或D4-SA(茉莉酸的内标物质)或香豆酸(茉莉酸-异亮氨酸的内标物质)，将每个样本在Fest Prep均质器上均质化，4℃最大速度离心10 min后将上清转移到新的2 mL离心管中，再将沉淀物用0.5 mL乙酸乙酯进行提取，离心分离，合并两次上清液在真空浓缩器(Eppendorf)上干燥，后置于0.5 mL 70%甲醇(V/V)中并离心澄清。
将上清液移到玻璃小瓶中，然后通过HPLC-MS / MS分析。
1.4 数据处理与分析数据均采用SPSS 11.5软件进行分析，使用Duncan’s新复极差法比较处理间的差异显著性。
2 结果与分析2.1 TZSV侵染辣椒植株中SA含量的变化TZSV侵染株8 h后SA含量变化较为平稳，96 h后开始下降，至168 h达到最低，为16.01 ng/gFW，216 h达到最大值205.14 ng/gFW，后迅速降低，240 h下降为41.50 ng/gFW。
TZSV侵染组SA含量仅在侵染168 h后低于对照组，其余时间均高于对照组，且在侵染24、48、96、120、144、168、192、216、240h时达显著水平(表1)。
2.2 TZSV侵染辣椒植株中JA含量的变化TZSV侵染株8 h时JA含量最高，为269.22 ng/gFW，之后逐渐下降，48 h后开始缓慢上升至72 h后开始回落，144 h后下降，至240 h后达到最低值，6.80 ng/gFW。
TZSV侵染组JA含量在侵染后120、168、192 h低于对照组，但差异不显著，在侵染后8、24、72、96、144、216 h则显著高于对照组(表1)。
2.3 TZSV侵染辣椒植株中JA-Ile含量的变化TZSV侵染株8 h后 JA-Ile含量迅速上升，并于24 h后达到最大值185.18ng/gFW。
在侵染48～96 h范围内变化较为平缓，而96 h后急剧下降，120 h 后又急剧上升，144 h后开始回落。
在168～240 h范围内变化较为平稳，其中240 h后JA-Ile达最低值4.21 ng/gFW。
TZSV侵染组JA-Ile含量仅在侵染后192 h低于对照组，但差异不显著，其它时间均高于对照组，且在侵染24、48、72、96、144、216 h时达到显著水平(表1)。
表1 TZSV侵染辣椒植株中3种内源激素的变化 (ng/gFW)取样时间(h)SA含量TZSV侵染组对照组JA含量TZSV侵染组对照组JA-Ile含量TZSV侵染组对照组821.09±3.26a16.93±1.96a269.22±27.19a205.79±18.68b123.53±12.20a118. 58±19.39a2431.22±8.92a13.27±4.46b219.97±28.13a11.40±3.95b185.18±1 0.38a4.59±1.06b4840.92±8.79a21.61±3.25b27.31±12.30a13.27±2.02a88.92±13.51a7.09±1.26b7231.07±9.92a21.72±3.27a53.51±12.47a14.85±4.81b88 .68±14.50a15.40±2.12b9656.82±2.22a17.01±3.00b47.03±16.57a12.30±2.2 3b86.27±7.15a15.41±1.97b12048.41±13.12a19.96±5.68b15.52±2.71a16.59±3.42a15.90±2.11a15.30±1.95a14430.62±1.92a16.4±5.33b47.88±21.66a11. 41±3.83b75.40±6.92a5.55±1.12b16816.01±4.11a35.76±1.92b10.99±6.38a1 1.03±1.91a9.35±1.23a6.80±1.05a19252.62±6.59a32.27±4.40b8.27±1.04a13.60±3.01a6.10±1.16a6.93±1.57a216205.14±20.16a30.00±2.13b21.70±4.14a 6.28±3.57b13.75±2.87a1.59±0.50b24041.50±7.74a16.57±3.76b6.80±1.05a 4.39±0.77a4.21±1.28a0.64±0.23a注：同一激素同行数值后不同小写字母表示差异显著(P < 0.05)。