MCT_6型糙米调质器的研制与应用
转基因玉米NK603基体标准物质研制
作物学报ACTA AGRONOMICA SINICA 2022, 48(5): 1059 1070 / ISSN 0496-3490; CN 11-1809/S; CODEN TSHPA9E-mail: zwxb301@DOI: 10.3724/SP.J.1006.2022.13025转基因玉米NK603基体标准物质研制单露英1李俊2李亮3张丽2王颢潜1高佳琪3吴刚2武玉花2,*张秀杰1,*1 农业农村部科技发展中心, 北京 100025;2 中国农业科学院油料作物研究所 / 农业农村部油料作物生物学与遗传育种重点实验室,湖北武汉 430062; 3 中国农业科学院生物技术研究所, 北京 100081摘要: 转基因安全管理和标识制度的实施需要标准化的检测方法和转基因检测标准物质, 转基因标准物质是获得准确、可靠、可比检测结果的保证。
目前, 转基因玉米NK603已在我国批准进口用作加工原料, 其安全监管亟须制备标准物质。
本研究将筛选后的转基因玉米NK603杂合种子和对应的非转基因受体种子, 按转基因质量分数为60.0mg g–1、100.0 mg g–1、1000 mg g–1 (理论值)的比例配置了3个梯度浓度水平的转基因基体标准物质。
利用二重微滴数字聚合酶链式反应(droplet digital polymerase chain reaction, ddPCR)对研制的标准物质进行均匀性与稳定性检测。
结果表明: 研制的标准物质均匀性良好, 可在60℃下运输14 d, 稳定性不低于6个月。
同时, 由8家实验室采用二重ddPCR方法联合测定标准物质NK603转化体与内标基因的拷贝数比值, 其标准值及不确定度为: (2.75±0.26)%、(4.68±0.39)%、(51.8±3.7)%。
本批标物使用时最小取样量100 mg。
可用于转基因食品和饲料中转基因成分NK603的定性和定量检测以及转基因玉米特异性检测方法的评价和实验室质量控制等领域。
2010年度河南省工业和信息化科技成果奖获奖项目名单(公示)
王辉、郭敬业、姚斌、李君、张俊花、陈剑波、 韩民、王东方、刘伟、曹晓新、马宏兵、柴建 一等奖 勋、郑如军、张军伟、张耿 焦大宏、叶继明、黄林浩、许海涛、任新强、 史国显、南怀志、王君玲、石亚飞、常丽强、 宋彩玲、吕达、郭谦、王涛、孙晓娜 李文海、罗干平、张金岭、张德聚、冯焕丽、 孙浩欣、许保卫、李营超、米永祥 李新宝、徐丽、周文强、刘国际、温淅华、郭 红玲、李凯慧、王海荣、杨光瑞、雒廷亮 陈建中、刘文朝、沈丽娟、祝学斌、王中民、 赵建华、李延峰、刘丙春、张新民、黄文峰、 尹茂、聂倩倩、赵江涛 一等奖 一等奖 一等奖
一等奖
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一等奖
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一等奖
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秦海清、李现锋、申 江、洪玉申、张永灿、 胡 城、陈亚楠、刘 斌、张咸忠、 张平卿、 一等奖 许银亮、闫 瑾、杨 英 孙海良、李延河、周 文、司新波、王襄禹、 孟庆妮、齐中立、赵义华、朱 明、柏建彪、 一等奖 李 冰、宋英明、张 旭、曹书凯
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矿井重点工程决策系统 HNGXS-20101114 研究与实施
河南通和高速公路养护工程 有限责任公司 郑州市豫中轻金属机械有限 公司 河南索凌电气有限公司 平高集团有限公司 华北水利水电学院 郑州大学 中国矿业大学 河南神火煤电股份有限公司 选煤厂 河南省科学院地理研究所 河南省遥感与地理信息系统 重点实验室 建设综合勘察研究设计院 乐凯集团第二胶片厂 河南省煤科院耐磨技术有限 公司 河南省煤炭科学研究院有限 公司 河南工程学院
中国平煤神马能源化工集团 有限责任公司 平顶山煤业集团有限责任公 司中国矿业大学 平顶山天安煤业股份有限公 司 中国矿业大学 煤炭资源与安全开采国家重 点实验室 平顶山天安煤业股份有限公 司十矿 河南理工大学 平顶山天安煤业股份有限公 司十三矿 河南理工大学 中国平煤神马能源化工集团 有限责任公司 平顶山天安煤业股份有限公 司二矿 河南理工大学 河南平禹煤电有限责任公司 中国矿业大学
转基因玉米MIR604基体标准物质研制
转基因玉米 MIR604 基体标准物质研制
李 俊1 翟杉杉 1
李 亮2 柳方方 2
李夏莹 3 吴 刚1
宋贵文 3 沈 平 3 张 丽 1 张秀杰 3,* 武玉花 1,*
1 中国农业科学院油料作物研究所 / 农业农村部油料作物生物学与遗传育种重点实验室, 湖北武汉 430062; 2 中国农业科学院生物技 术研究所, 北京 100081; 3 农业农村部科技发展中心, 北京 100025
Development of genetically modified maize MIR604 matrix reference materials
LI Jun1, LI Liang2, LI Xia-Ying3, SONG Gui-Wen3, SHEN Ping3, ZHANG Li1, ZHAI Shan-Shan1, LIU Fang-Fang2, WU Gang1, ZHANG Xiu-Jie3,*, and WU Yu-Hua1,*
为了满足不断增长的食用油和饲料需求, 我国 从 2003 年开始大量进口转基因产品用作加工原料,
批准进口的品种包括 19 个玉米、14 个大豆、9 个棉 花、8 个油菜和 1 个甜菜。在转基因生物安全监管 工作中, 我国一直从国外购买转基因检测标准物质, 周期长、价格昂贵。为了消除对国外标准物质的严 重依赖, 从 2008 年开始我国自主研发标准物质。转 基因玉米 MIR604 是先正达公司(Syngenta)研发的抗 虫转基因玉米, 2008 年我国批准其进口用作加工原 料, 是我国进行转基因生物安全监管的重要对象。 转基因玉米 MIR604 采用农杆菌介导法将修饰的抗 虫基因 mcry3A 表达盒(pMTL-mcry3A-Tnos)和磷酸 甘露糖异构酶基因 Pmi 表达盒(pZmUbiInt-pmi-Tnos) 转化到玉米中, 在受体基因组中外源基因为单拷贝 插入, 插入位点的旁侧基因组序列已经阐释清楚, 5′ 端旁侧基因组序列长 1312 bp, 3′端旁侧基因组序列 长 1570 bp [8]。
米糠稳定化技术和米糠功能性应用
米糠稳定化技术和米糠功能性应用左青;钱胜峰;彭伟城;刘海波;魏良云;李磊;王进【摘要】介绍了米糠营养性和脂肪酶的活性,如何测试脂肪酶活性,推广规模型米糠稳定化技术,如何评价米糠稳定化指标,开发高伴随物的米糠油和米糠的功能性应用.【期刊名称】《粮食与食品工业》【年(卷),期】2019(026)001【总页数】5页(P5-9)【关键词】米糠稳定化;高伴随物;功能性;米糠油【作者】左青;钱胜峰;彭伟城;刘海波;魏良云;李磊;王进【作者单位】江苏牧羊集团有限公司扬州 225127;江苏牧羊集团有限公司扬州225127;江苏牧羊集团有限公司扬州 225127;江苏牧羊集团有限公司扬州225127;江苏牧羊集团有限公司扬州 225127;江苏牧羊集团有限公司扬州225127;江苏牧羊集团有限公司扬州 225127【正文语种】中文【中图分类】TS221米糠是稻谷脱壳后依附在糙米上的表面层，由外果皮、中果皮、交联层、种皮及糊粉盖板层组成。
米糠的重量占稻谷粒重的7.5%～8.0%(其中含30%的稻谷米胚)，稻谷中的稻壳占16%～20%，糙米约占80%，糙米中的精白米约占72%，稻米胚芽约占2.5%，稻米胚的中性脂质组成与米糠基本相似，稻谷胚中营养成分较米糠中含量高。
稻谷经砻谷脱壳后的糙米，再经脱米糠碾制呈精米，米糠和稻谷胚是生产米糠油的原料。
米糠和稻米胚的化学成分见表1。
表1 米糠和稻米胚的化学成分[1]指标米糠稻米胚水分/% 12.1 10.4 粗蛋白/% 17.5 20.8 粗脂肪/% 21.5 20.7 粗纤维/% 9.11 10.1 灰分/% 9.9 10.2 无氮浸出物/% 38.6 28.0 维生素B1 /(μg/100 g) 2 000 7 300米糠有很高的食用价值，含油16%～20%，含蛋白8.5%～10%。
米糠蛋白主要是四种蛋白：37%清蛋白、36%球蛋白、22%谷蛋白和5%醇溶蛋白。
米糠蛋白的组成基本达到儿童的必需氨基酸需要量。
一种从玉米胚芽中综合提取油和蛋白粉工艺
<REC><申请号>=CN200610089286.0<名称>=一种从玉米胚芽中综合提取油和蛋白粉工艺<主分类号>=A23D9/02(2006.01)I<分类号>=A23D9/02(2006.01)I;A23J1/12(2006.01)I<申请（专利权）人>=尤新<发明（设计）人>=尤新;顾尤<公开（公告）日>=2008.09.17<公开（公告）号>=CN100418429<专利代理机构>=<代理人>=<申请日>=2006.08.15<地址>=100045北京市西城区三里河一区3号院2号楼1102室<摘要>=本发明涉及一种从玉米胚芽中综合提取油和蛋白粉工艺，包括下列步骤：1)用酒精萃取玉米胚芽得到胚芽渣和浸出油溶液，浸出油溶液分离得油；2)用碱溶解所说的胚芽渣得到碱不溶渣和碱溶蛋白液，沉淀碱溶蛋白液中的蛋白质，得蛋白粉。
本发明的优点在于工艺简单，大大提高玉米胚芽综合利用的经济效益。
<国省代码>=北京;11<REC><申请号>=CN200610043249.6<名称>=一种生物保健茶<主分类号>=A23F3/14(2006.01)I<分类号>=A23F3/14(2006.01)I;A61K31/715(2006.01)I;A61P7/02(2006.01)I;A61P31/12(2006.01)I;A61P35/ 00(2006.01)I;A61P17/16(2006.01)I;A61P9/12(2006.01)I;A61P3/06(2006.01)I;A61P17/18(2006.01)I <申请（专利权）人>=许衍地<发明（设计）人>=许衍地;仪力<公开（公告）日>=2008.09.17<公开（公告）号>=CN100418430<专利代理机构>=济南金迪知识产权代理有限公司<代理人>=于冠军<申请日>=2006.03.23<地址>=266033山东省青岛市鞍山路104号1号楼三单元603户<摘要>=本发明一种生物保健茶涉及一种含有海洋生物提取物甲壳质衍生物成份的保健茶及其制备方法。
小麦ERF_亚族转录因子参与逆境胁迫的研究进展
㊀山东农业科学㊀２０２４ꎬ５６(２):１７６~１８０ＳｈａｎｄｏｎｇＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＳｃｉｅｎｃｅｓ㊀ＤＯＩ:１０.１４０８３/ｊ.ｉｓｓｎ.１００１－４９４２.２０２４.０２.０２４收稿日期:２０２３－０３－０５基金项目:国家自然科学基金项目(３２００１５４５)ꎻ山东省农业良种工程项目(２０２１ＬＺＧＣ０１３)ꎻ山东省农业科学院农业科技创新工程项目(ＣＸＧＣ２０２３Ａ０１)ꎻ农业农村部黄淮北片小麦种质资源精准鉴定项目作者简介:崔德周(１９８７ )ꎬ男ꎬ山东惠民人ꎬ博士ꎬ助理研究员ꎬ主要从事小麦种质资源与遗传育种研究ꎮＥ－ｍａｉｌ:ｄｅｚｈｏｕｃｕｉ＠１２６.ｃｏｍ王丽丽(１９８９ )ꎬ女ꎬ山东郓城人ꎬ山东大学人居环境研究中心特约研究员ꎬ主要从事植物种质资源研究ꎮＥ－ｍａｉｌ:５６５９９３５７０＠ｑｑ.ｃｏｍ∗同为第一作者ꎮ通信作者:樊庆琦(１９７８ )ꎬ男ꎬ山东郓城人ꎬ博士ꎬ研究员ꎬ主要从事小麦种质创新研究ꎮＥ－ｍａｉｌ:ｆａｎｑｉｎｇｑｉ＠１６３.ｃｏｍ小麦ＥＲＦ亚族转录因子参与逆境胁迫的研究进展崔德周１ꎬ王丽丽２∗ꎬ陈祥龙３ꎬ李永波１ꎬ黄琛１ꎬ隋新霞１ꎬ楚秀生１ꎬ樊庆琦１(１.山东省农业科学院作物研究所/小麦玉米国家工程研究中心/农业农村部黄淮北部小麦生物学与遗传育种重点实验室/山东省小麦技术创新中心/济南市小麦遗传改良重点实验室ꎬ山东济南㊀２５０１００ꎻ２.山东省林草种质资源中心ꎬ山东济南㊀２５０１０２ꎻ３.山东鲁研农业良种有限公司ꎬ山东济南㊀２５０１００)㊀㊀摘要:小麦是中国三大粮食作物之一ꎬ其生长发育过程中会受到多种逆境胁迫的影响ꎮＡＰ２/ＥＲＥＢＰ是植物特有的一个庞大的转录因子超家族ꎬ普遍参与生长发育和逆境胁迫应答等生物学进程ꎮＥＲＦ类转录因子是ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ转录因子超家族的一个亚族ꎮ本研究结合国内外相关研究进展ꎬ简要综述了小麦ＥＲＦ亚族转录因子的结构特征与分布ꎬ重点阐述近年来小麦ＥＲＦ亚族转录因子响应高盐㊁干旱㊁低温㊁重金属㊁病原菌侵染等逆境胁迫的功能和机制研究进展ꎬ最后展望了ＥＲＦ亚族转录因子的研究方向和应用前景ꎮ关键词:小麦ꎻＥＲＦ亚族ꎻ转录因子ꎻ胁迫响应ꎻ研究进展中图分类号:Ｓ５１２.１㊀㊀文献标识号:Ａ㊀㊀文章编号:１００１－４９４２(２０２４)０２－０１７６－０５ＡｄｖａｎｃｅｓｉｎＲｅｓｅａｒｃｈｏｎＦｕｎｃｔｉｏｎｏｆＷｈｅａｔＥＲＦＴｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎＦａｃｔｏｒＳｕｂｆａｍｉｌｙｉｎＳｔｒｅｓｓＲｅｓｐｏｎｓｅＣｕｉＤｅｚｈｏｕ１ꎬＷａｎｇＬｉｌｉ２∗ꎬＣｈｅｎＸｉａｎｇｌｏｎｇ３ꎬＬｉＹｏｎｇｂｏ１ꎬＨｕａｎｇＣｈｅｎ１ꎬＳｕｉＸｉｎｘｉａ１ꎬＣｈｕＸｉｕｓｈｅｎｇ１ꎬＦａｎＱｉｎｇｑｉ１(１.ＣｒｏｐＲｅｓｅａｒｃｈＩｎｓｔｉｔｕｔｅꎬＳｈａｎｄｏｎｇＡｃａｄｅｍｙｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＳｃｉｅｎｃｅｓ/ＮａｔｉｏｎａｌＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇＲｅｓｅａｒｃｈＣｅｎｔｅｒｏｆＷｈｅａｔａｎｄＭａｉｚｅ/ＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＷｈｅａｔＢｉｏｌｏｇｙａｎｄＧｅｎｅｔｉｃｓａｎｄＢｒｅｅｄｉｎｇｉｎＮｏｒｔｈｅｒｎＨｕａｎｇ￣ＨｕａｉＲｉｖｅｒＰｌａｉｎꎬＭｉｎｉｓｔｒｙｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅａｎｄＲｕｒａｌＡｆｆａｉｒｓ/ＳｈａｎｄｏｎｇＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙＩｎｎｏｖａｔｉｏｎＣｅｎｔｅｒｏｆＷｈｅａｔ/ＪｉｎａｎＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＷｈｅａｔＧｅｎｅｔｉｃＩｍｐｒｏｖｅｍｅｎｔꎬＪｉｎａｎ２５０１００ꎬＣｈｉｎａꎻ２.ＳｈａｎｄｏｎｇＰｒｏｖｉｎｃｉａｌＣｅｎｔｅｒｏｆＦｏｒｅｓｔａｎｄＧｒａｓｓＧｅｒｍｐｌａｓｍＲｅｓｏｕｒｃｅｓꎬＪｉｎａｎ２５０１０２ꎬＣｈｉｎａꎻ３.ＳｈａｎｄｏｎｇＬｕｙａｎＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＣｏ.ꎬＬｔｄ.ꎬＪｉｎａｎ２５０１００ꎬＣｈｉｎａ)Ａｂｓｔｒａｃｔ㊀ＷｈｅａｔｉｓｏｎｅｏｆｔｈｅｔｈｒｅｅｍａｊｏｒｇｒａｉｎｃｒｏｐｓｉｎＣｈｉｎａꎬｂｕｔｉｔｓｇｒｏｗｔｈａｎｄｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔｍｉｇｈｔｂｅａｆｆｅｃｔｅｄｂｙｍｕｌｔｉｐｌｅａｄｖｅｒｓｅｓｔｒｅｓｓｅｓ.ＡＰ２/ＥＲＥＢＰｉｓａｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙｏｆｐｌａｎｔｓｐｅｃｉｆｉｃｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓｗｈｉｃｈａｒｅｗｉｄｅｌｙｉｎｖｏｌｖｅｄｉｎｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｐｒｏｃｅｓｓｅｓｅｓｓｕｃｈａｓｇｒｏｗｔｈꎬｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｎｄｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅ.ＴｈｅＥＲＦｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｃｌａｓｓｉｓａｓｕｂｆａｍｉｌｙｏｆｔｈｅＡＰ２/ＥＲＥＢＰｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙ.Ｈｅｒｅꎬｔｈｅｓｔｒｕｃｔｕｒａｌｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓａｎｄｄｉｓ￣ｔｒｉｂｕｔｉｏｎｓｏｆＥＲＦｓｕｂｆａｍｉｌｙｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓｉｎｗｈｅａｔｗｅｒｅｂｒｉｅｆｌｙｉｎｔｒｏｄｕｃｅｄ.Ａｎｄｔｈｅｒｅｃｅｎｔｒｅｓｅａｒｃｈｐｒｏ￣ｇｒｅｓｓｅｓｏｆｔｈｅｆｕｎｃｔｉｏｎｓａｎｄｍｅｃｈａｎｉｓｍｓｏｆＥＲＦｓｕｂｆａｍｉｌｙｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓｉｎｗｈｅａｔｗａｓｅｍｐｈａｓｉｚｅｄｉｎｒｅ￣ｓｐｏｎｓｅｔｏｓｔｒｅｓｓｅｓｓｕｃｈａｓｈｉｇｈｓａｌｔꎬｄｒｏｕｇｈｔꎬｌｏｗｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅꎬｈｅａｖｙｍｅｔａｌａｎｄｐａｔｈｏｇｅｎｉｎｆｅｃｔｉｏｎ.ＦｉｎａｌｌｙꎬｔｈｅｒｅｓｅａｒｃｈｄｉｒｅｃｔｉｏｎａｎｄａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｐｒｏｓｐｅｃｔｏｆＥＲＦｓｕｂｆａｍｉｌｙｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓｗｅｒｅｐｒｏｓｐｅｃｔｅｄ.Ｋｅｙｗｏｒｄｓ㊀ＷｈｅａｔꎻＥＲＦｓｕｂｆａｍｉｌｙꎻＴｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒꎻＳｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅꎻＲｅｓｅａｒｃｈｐｒｏｇｒｅｓｓ㊀㊀小麦(ＴｒｉｔｉｃｕｍａｅｓｔｉｖｕｍＬ.)是世界上最重要的粮食作物之一ꎬ是全球三分之一以上人口的主食ꎮ中国是世界上最大的小麦生产国和消费国ꎬ小麦的高产稳产对保障国家粮食安全至关重要ꎮ小麦生长发育周期长ꎬ期间干旱㊁盐碱㊁低温㊁高温㊁重金属㊁病虫害等生物㊁非生物胁迫都会不同程度地威胁小麦的高产稳产ꎮ近年来ꎬ得益于小麦基因组学的飞速发展ꎬ小麦响应逆境胁迫的分子调控网络被逐步阐明ꎬ转录因子在功能基因表达调控中的关键作用进一步凸显[１－４]ꎮ根据ＤＮＡ结合域的特性ꎬ转录因子可分成若干家族ꎬ包括ＭＹＢ㊁ＷＲＫＹ㊁ｂＺＩＰ㊁ＮＡＣ㊁ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ等[５－７]ꎮＡＰ２/ＥＲＥＢＰ转录因子是植物特有的一类转录因子ꎬ广泛参与小麦逆境胁迫应答[８－１０]ꎮＥＲＦ转录因子是ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ转录因子超家族的一个亚族ꎬ最早从烟草中分离得到[１１]ꎮ本研究综述小麦ＥＲＦ亚族转录因子在逆境胁迫应答中的作用及可能机制ꎬ以期为深入研究小麦ＥＲＦ亚族的分子功能及其抗逆遗传改良提供参考ꎮ１㊀ＥＲＦ亚族转录因子的特征ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ是一个庞大的基因家族ꎬ因含有６０~７０个氨基酸组成的ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ结构域而得名[１２]ꎮ在拟南芥中ꎬＳａｋｕｍａ等[１３]根据序列相似性和ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ结构域的数量ꎬ将其分为５个亚族 ＥＲＦ亚族㊁ＤＲＥＢ亚族㊁ＲＡＶ亚族㊁ＡＰ２亚族和其他ꎮＡＰ２亚族含有２个ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ结构域ꎬ主要在细胞生长发育过程中发挥调控作用[１４－１５]ꎻＲＡＶ亚族含有１个ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ结构域和１个Ｂ３结构域ꎬ在乙烯㊁油菜素内酯和胁迫响应过程中发挥重要作用[１４ꎬ１６－１７]ꎻＤＲＥＢ亚族和ＥＲＦ亚族均属于ＥＲＥＢＰ型转录因子ꎬ都仅含１个ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ结构域ꎬ在调控植物细胞发育及对病原菌㊁干旱㊁高盐㊁低温㊁激素等胁迫的应答反应中发挥作用[１４ꎬ１８－２２]ꎬ但ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ结构域的第１４位和第１９位氨基酸存在差异ꎬＤＲＥＢ亚族分别是缬氨酸和谷氨酸ꎬ而ＥＲＦ亚族则分别是丙氨酸和天冬氨酸ꎮＥＲＦ亚族转录因子还可与乙烯诱导顺式作用元件ＧＣＣ－ｂｏｘ结合ꎬ抵御植物逆境胁迫[２３－２６]ꎮ２㊀小麦ＥＲＦ亚族转录因子鉴定分析目前正式命名的小麦ＥＲＦ亚族转录因子基因只有８个ꎬ而从全基因组水平分析ꎬ符合ＥＲＦ亚族特征的基因则有上百个之多[２７－２８]ꎮＺｈｕａｎｇ等[２９]在全基因组水平鉴定到４７个小麦ＥＲＦ亚族转录因子成员ꎬ根据拟南芥和水稻同源基因分类ꎬ将其分为Ｂ１㊁Ｂ２㊁Ｂ３㊁Ｂ４和Ｂ６五个亚组ꎮ随着二代测序技术及小麦基因组学研究的飞速发展ꎬＲｉａｚ等[３０]鉴定到１３８个ＥＲＦ亚族转录因子成员ꎬ分为６个亚组ꎬ主要定位于细胞核ꎻＭａｇａｒ等[２]鉴定到２３８个成员ꎬ其中ꎬ１７４个基因不含内含子㊁３个基因含３个内含子ꎬ鉴定数量有了质的飞跃ꎮ李世姣等[３１]利用隐马尔可夫模型文件检索中国春数据库ꎬ筛选到２２９条小麦ＥＲＦｓꎬ通过分析Ａ/Ｂ/Ｄ同源关系ꎬ将其归为９６个ＥＲＦ亚族成员ꎮ此外ꎬＦａｒａｊｉ等[３２]在硬粒小麦中鉴定到１８５个ＥＲＦ亚族成员ꎮ３㊀小麦ＥＲＦ亚族转录因子参与逆境胁迫的分子机制３.１㊀非生物胁迫越来越多的研究表明ꎬ大部分小麦ＥＲＦ亚族成员在对高盐㊁干旱㊁低温㊁重金属等非生物胁迫抗性调控中发挥重要作用(表１)ꎮ位于小麦７Ａ染色体上的ＴａＥＲＦ１ꎬ通过结合ＧＣＣ－ｂｏｘ和ＤＲＥ/ＣＲＴ元件㊁激活启动子区含ＧＧＣＣ－ｂｏｘ的ＰＲ蛋白(ｐａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓｒｅｌａｔｅｄｐｒｏ￣ｔｅｉｎꎬ病程相关蛋白)㊁磷酸化ＴａＭＡＰＫ１等方式ꎬ参与干旱㊁高盐㊁低温等代谢途径ꎬ过表达ＴａＥ￣ＲＦ１可显著提高转基因拟南芥对干旱㊁高盐和低温的耐受能力[３３]ꎮＴａＥＲＦ２基因受干旱㊁高盐㊁低温和湿害强烈诱导ꎬ过表达后可提高转基因拟南芥对干旱㊁低温等非生物胁迫的抗性[３４－３５]ꎮＴａＥＲＦ３通过特异结合ＧＣＣ－ｂｏｘꎬ正向调控ＬＥＡ３㊁ＧＳＴ６等抗逆相关基因表达ꎬ过表达ＴａＥＲＦ３可增加叶片脯氨酸㊁叶绿素含量ꎬ降低过氧化氢含量ꎬ增强小麦对高盐㊁干７７１㊀第２期㊀㊀㊀㊀㊀㊀崔德周ꎬ等:小麦ＥＲＦ亚族转录因子参与逆境胁迫的研究进展旱胁迫的耐受能力ꎻ而经病毒诱导基因沉默(ＶＩＧＳ)干扰后的小麦植株则表现为盐和干旱敏感[３６]ꎮＴａＥＲＦ４是一个具有ＥＡＲ基序的转录抑制因子ꎬ过表达ＴａＥＲＦ４抑制ＡｔＮＨＸ１㊁ＡｔＮＨＸ２等钠离子转运相关基因的表达ꎬ通过非ＡＢＡ依赖的信号通路降低拟南芥耐盐性[３７]ꎮＴａＥＲＦ５受高盐㊁渗透胁迫㊁乙烯㊁ＡＢＡ和茉莉酸甲酯诱导表达ꎬ遗传学证据显示ꎬＴａＥＲＦ５－Ｂ过表达增强了转基因水稻的耐盐性[３８]ꎮ叶片ＴａＥＲＦ７表达受温度和日照调控ꎬ进而影响小麦百农不育系育性[２７]ꎮＴａＥ￣ＲＦ８－２Ｄ的表达受高盐胁迫诱导持续上调ꎬ其分子机制有待进一步研究[３９]ꎮＺｈｕ等[４０]研究发现ꎬＴａＰＩＥＰ１/ＴａＰＩＥ１通过激活乙烯合成基因ꎬ增强小麦对冷害胁迫的抗性ꎮＴａＥＲＦＬ１ａ受低温㊁高盐㊁干旱㊁ＡＢＡ等胁迫诱导表达ꎬＶＩＧＳ干扰该基因降低小麦对干旱胁迫的抗性[４１]ꎮＤｕ等[４２]研究表明ꎬＴａＥＲＦ８７通过与Ｔａ￣ＡＫＳ１互作ꎬ协同增强ＴａＰ５ＣＳ１和ＴａＰ５ＣＲ１的表达ꎬ提高脯氨酸的生物合成ꎬ进而增强小麦抗旱性ꎮ此外ꎬ在硬粒小麦(ＴｒｉｔｉｃｕｍｔｕｒｇｉｄｕｍＬ.ｓｕｂ￣ｓｐ.ｄｕｒｕｍ)中ꎬＴｄＥＲＦ１响应高盐和干旱胁迫[４３－４４]ꎬＴｄＳＨＮ１受高盐㊁干旱㊁低温㊁ＡＢＡ和重金属胁迫强烈诱导表达ꎬ过表达ＴｄＳＨＮ１可显著提高酵母对非生物胁迫的耐受性[４５－４６]ꎮ㊀㊀表１㊀参与非生物胁迫的小麦ＥＲＦ亚族转录因子基因结合元件分子功能参考文献ＴａＥＲＦ１ＧＣＣ－ｂｏｘ/ＤＲＥ/ＣＲＴ提高拟南芥对干旱㊁高盐和低温的耐受能力[３３]ＴａＥＲＦ２ＧＣＣ－ｂｏｘ/ＥＲＥ提高拟南芥对干旱㊁低温的耐受能力ꎬ响应小麦湿害胁迫[３４－３５]ＴａＥＲＦ３ＧＣＣ－ｂｏｘ提高小麦对高盐㊁干旱胁迫的耐受能力[３６]ＴａＥＲＦ４ 降低拟南芥对高盐胁迫的耐受能力[３７]ＴａＥＲＦ５ 提高水稻对高盐胁迫的耐受能力[３８]ＴａＥＲＦ６ 与ＴｄＥＲＦ１高度同源[４７]ＴａＥＲＦ７ＧＣＣ－ｂｏｘ/ＤＲＥ/ＣＲＴ控制百农不育系小麦育性[２７]ＴａＥＲＦ８－２Ｄ 高盐胁迫下持续上调表达[３９]ＴａＰＩＥＰ１/ＴａＰＩＥ１ＧＣＣ－ｂｏｘ提高小麦对冷害胁迫的耐受能力[４０]ＴａＥＲＦＬ１ａ 提高小麦对干旱胁迫的耐受能力[４１]ＴａＥＲＦ８７ＧＣＣ－ｂｏｘ/Ｅ－ｂｏｘ提高小麦对干旱胁迫的耐受能力[４２]ＴｄＥＲＦ１ＧＣＣ－ｂｏｘ/ＤＲＥ响应高盐和干旱胁迫[４３－４４]ＴｄＳＨＮ１ＧＣＣ－ｂｏｘ/ＤＲＥ提高酵母对高盐㊁干旱㊁重金属胁迫的耐受能力[４５－４６]３.２㊀生物胁迫小麦生育期遭遇的生物胁迫主要包括病原菌侵染和植食性害虫啃食ꎬ而小麦响应生物胁迫的转录因子研究主要集中在前者ꎮ研究表明ꎬＥＲＦ亚族转录因子可以提高小麦对病原菌的抗性(表２)ꎮＴａＥＲＦ１的表达受白粉病菌侵入的诱导ꎬ过表达ＴａＥＲＦ１可提高转基因拟南芥对真菌㊁细菌病害的抗性[３３]ꎮ病原菌侵染下ꎬＴａＥＲＦ３可激活防御基因表达ꎬ其中ꎬ在白粉病菌侵染早期主要通过水杨酸途径ꎬ而在镰刀菌㊁纹枯病菌侵染晚期主要通过乙烯/茉莉酸途径[４８]ꎮ过表达ＴａＰＩＥＰ１/ＴａＰＩＥ１可大量激活下游防卫基因的表达ꎬ进而提高小麦对纹枯病㊁根腐病的抗性[４０ꎬ４９]ꎮＣｈｅｎ等[５０]从中间偃麦草中分离了一个新的ＥＲＦ基因ＴｉＥＲＦ１ꎬ该基因主要通过依赖乙烯的信号转导途径激活病程蛋白相关基因的表达ꎬ提高转基因小麦对纹枯病的抗性ꎮ㊀㊀表２㊀参与生物胁迫的小麦ＥＲＦ亚族转录因子基因结合元件分子功能参考文献ＴａＥＲＦ１ＧＣＣ－ｂｏｘ/ＤＲＥ/ＣＲＴ提高拟南芥对真菌㊁细菌病害的抗性[３３]ＴａＥＲＦ３ＧＣＣ－ｂｏｘ参与对小麦白粉病菌㊁镰刀菌㊁纹枯病菌的防卫[４８]ＴａＰＩＥＰ１/ＴａＰＩＥ１ＧＣＣ－ｂｏｘ提高小麦对纹枯病㊁根腐病的抗性[４０ꎬ４９]ＴｉＥＲＦ１ＧＣＣ－ｂｏｘ提高小麦对纹枯病的抗性[５０]８７１山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第５６卷㊀４㊀展望近年来ꎬ极端天气频发ꎬ低温㊁干旱㊁高盐等非生物胁迫及病原菌侵染等生物胁迫严重制约小麦的安全生产ꎬ给粮食安全带来了严峻挑战ꎮ作为ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ转录因子超家族的一个亚族ꎬＥＲＦ类转录因子连接上游信号和下游功能基因ꎬ在小麦抵御逆境胁迫中具有关键作用ꎮ基因组学分析表明ꎬ小麦ＥＲＦ亚族基因有２００余个ꎬ但目前只克隆鉴定了部分基因ꎬ并且已经投入育种应用的转基因材料也鲜有报道ꎬ后续仍需进一步深入挖掘具有重要抗逆功能的ＥＲＦ亚族基因ꎮ此外ꎬ目前的研究多集中在转录因子基因的克隆及转录调节功能的鉴定分析上ꎬＥＲＦ亚族转录因子自我调节的模式及其同其他转录因子间的相互作用关系尚未完全了解ꎮ相信随着基因组学㊁分子生物学技术的发展ꎬ对小麦ＥＲＦ亚族转录因子的抗逆网络解析会更加深入ꎬ从而为小麦抗逆遗传改良提供更坚实的理论依据和更强有力的基因工具ꎮ参㊀考㊀文㊀献:[１]㊀ＧａｈｌａｕｔＶꎬＪａｉｓｗａｌＶꎬＫｕｍａｒＡꎬｅｔａｌ.Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓｉｎｖｏｌｖｅｄｉｎｄｒｏｕｇｈｔｔｏｌｅｒａｎｃｅａｎｄｔｈｅｉｒｐｏｓｓｉｂｌｅｒｏｌｅｉｎｄｅｖｅｌｏ￣ｐｉｎｇｄｒｏｕｇｈｔｔｏｌｅｒａｎｔｃｕｌｔｉｖａｒｓｗｉｔｈｅｍｐｈａｓｉｓｏｎｗｈｅａｔ(Ｔｒｉｔｉｃ￣ｕｍａｅｓｔｉｖｕｍＬ.)[Ｊ].Ｔｈｅｏｒ.Ａｐｐｌ.Ｇｅｎｅｔ.ꎬ２０１６ꎬ１２９(１１):２０１９－２０４２.[２]㊀ＭａｇａｒＭＭꎬＬｉｕＨꎬＹａｎＧＪ.Ｇｅｎｏｍｅ￣ｗｉｄｅａｎａｌｙｓｉｓｏｆＡＰ２/ＥＲＦｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙｇｅｎｅｓｉｎｃｏｎｔｒａｓｔｉｎｇｗｈｅａｔｇｅｎｏｔｙｐｅｓｒｅｖｅａｌｓｈｅａｔｓｔｒｅｓｓ￣ｒｅｌａｔｅｄｃａｎｄｉｄａｔｅｇｅｎｅｓ[Ｊ].Ｆｒｏｎｔ.ＰｌａｎｔＳｃｉ.ꎬ２０２２ꎬ１３:８５３０８６.[３]㊀ＸｉａｏＪꎬＬｉｕＢꎬＹａｏＹＹꎬｅｔａｌ.Ｗｈｅａｔｇｅｎｏｍｉｃｓｔｕｄｙｆｏｒｇｅｎｅｔ￣ｉｃｉｍｐｒｏｖｅｍｅｎｔｏｆｔｒａｉｔｓｉｎＣｈｉｎａ[Ｊ].Ｓｃｉ.ＣｈｉｎａＬｉｆｅＳｃｉ.ꎬ２０２２ꎬ６５(９):１７１８－１７７５.[４]㊀解亚蒙ꎬ赵晓蕾ꎬ白菁华ꎬ等.小麦ＮＦ－Ｙ家族基因ＴａＮＦ－ＹＡ１介导植株耐旱功能研究[Ｊ].河北农业大学学报ꎬ２０２３ꎬ４６(１):１－９.[５]㊀丰锦ꎬ陈信波.抗逆相关ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ转录因子研究进展[Ｊ].生物技术通报ꎬ２０１１(７):１－６ꎬ１１.[６]㊀王淑叶ꎬ伍国强ꎬ魏明.ＷＲＫＹ转录因子调控植物逆境胁迫响应的作用机制[Ｊ].生物工程学报ꎬ２０２４ꎬ４０(１):３５－５２. [７]㊀ＪａｖｅｄＴꎬＳｈａｂｂｉｒＲꎬＡｌｉＡꎬｅｔａｌ.Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓｉｎｐｌａｎｔｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅｓ:ｃｈａｌｌｅｎｇｅｓａｎｄｐｏｔｅｎｔｉａｌｆｏｒｓｕｇａｒｃａｎｅｉｍ￣ｐｒｏｖｅｍｅｎｔ[Ｊ].Ｐｌａｎｔｓꎬ２０２０ꎬ９(４):４９１.[８]㊀ＹｕＹꎬＹｕＭꎬＺｈａｎｇＳＸꎬｅｔａｌ.ＴｒａｎｓｃｒｉｐｔｏｍｉｃｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆｗｈｅａｔＡＰ２/ＥＲＦｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓａｎｄｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｃｈａｒａｃ￣ｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆＴａＥＲＦ￣６￣３Ａｉｎｒｅｓｐｏｎｓｅｔｏｄｒｏｕｇｈｔａｎｄｓａｌｉｎｉｔｙｓｔｒｅｓｓｅｓ[Ｊ].Ｉｎｔ.Ｊ.Ｍｏｌ.Ｓｃｉ.ꎬ２０２２ꎬ２３(６):３２７２. [９]㊀ＫａｒａｍｉＭꎬＦａｔａｈｉＮꎬＬｏｈｒａｓｅｂｉＴꎬｅｔａｌ.ＲＡＶｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｒｅｇｕｌａｔｏｒｙｆｕｎｃｔｉｏｎｉｎｒｅｓｐｏｎｓｅｔｏｓａｌｔｓｔｒｅｓｓｉｎｔｗｏＩｒａｎｉａｎｗｈｅａｔｌａｎｄｒａｃｅｓ[Ｊ].Ｊ.ＰｌａｎｔＲｅｓ.ꎬ２０２２ꎬ１３５(１):１２１－１３６. [１０]洪林ꎬ杨蕾ꎬ杨海健ꎬ等.ＡＰ２/ＥＲＦ转录因子调控植物非生物胁迫响应研究进展[Ｊ].植物学报ꎬ２０２０ꎬ５５(４):４８１－４９６.[１１]Ｏｈｍｅ￣ＴａｋａｇｉＭꎬＳｈｉｎｓｈｉＨ.Ｅｔｈｙｌｅｎｅ￣ｉｎｄｕｃｉｂｌｅＤＮＡｂｉｎｄｉｎｇｐｒｏｔｅｉｎｓｔｈａｔｉｎｔｅｒａｃｔｗｉｔｈａｎｅｔｈｙｌｅｎｅ￣ｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅｅｌｅｍｅｎｔ[Ｊ].ＰｌａｎｔＣｅｌｌꎬ１９９５ꎬ７(２):１７３－１８２.[１２]刘建光ꎬ王永强ꎬ张寒霜ꎬ等.ＥＲＦ转录因子在植物抗逆境胁迫的研究进展[Ｊ].华北农学报ꎬ２０１３ꎬ２８(增刊):２１４－２１８.[１３]ＳａｋｕｍａＹꎬＬｉｕＱꎬＤｕｂｏｕｚｅｔＪＧꎬｅｔａｌ.ＤＮＡ￣ｂｉｎｄｉｎｇｓｐｅｃｉｆｉｃ￣ｉｔｙｏｆｔｈｅＥＲＦ/ＡＰ２ｄｏｍａｉｎｏｆＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓＤＲＥＢｓｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓｉｎｖｏｌｖｅｄｉｎｄｅｈｙｄｒａｔｉｏｎ￣ａｎｄｃｏｌｄ￣ｉｎｄｕｃｉｂｌｅｇｅｎｅｅｘｐｒｅｓ￣ｓｉｏｎ[Ｊ].Ｂｉｏｃｈｅｍ.Ｂｉｏｐｈｙｓ.Ｒｅｓ.Ｃｏｍｍｕｎ.ꎬ２００２ꎬ２９０(３):９９８－１００９.[１４]张计育ꎬ王庆菊ꎬ郭忠仁.植物ＡＰ２/ＥＲＦ类转录因子研究进展[Ｊ].遗传ꎬ２０１２ꎬ３４(７):４４－５６.[１５]ＷａｎｇＹＹꎬＳｕｎＬＬꎬＷａｎｇＲꎬｅｔａｌ.ＴｈｅＡＰ２ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓＴＯＥ１/ＴＯＥ２ｃｏｎｖｅｙＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓａｇｅｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎｔｏｅｔｈ￣ｙｌｅｎｅｓｉｇｎａｌｉｎｇｉｎｐｌａｎｔｄｅｎｏｖｏｒｏｏｔｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ[Ｊ].Ｐｌａｎｔａꎬ２０２２ꎬ２５７(１):１.[１６]ＦｕＭꎬＫａｎｇＨＫꎬＳｏｎＳＨꎬｅｔａｌ.ＡｓｕｂｓｅｔｏｆＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓＲＡＶｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓｍｏｄｕｌａｔｅｓｄｒｏｕｇｈｔａｎｄｓａｌｔｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅｓｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔｏｆＡＢＡ[Ｊ].ＰｌａｎｔＣｅｌｌＰｈｙｓｉｏｌ.ꎬ２０１４ꎬ５５(１１):１８９２－１９０４.[１７]ＬｕｏＹＸꎬＣｈｅｎＳＫꎬＷａｎｇＰＤꎬｅｔａｌ.Ｇｅｎｏｍｅ￣ｗｉｄｅａｎａｌｙｓｉｓｏｆｔｈｅＲＡＶｇｅｎｅｆａｍｉｌｙｉｎｗｈｅａｔａｎｄｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆＴａＲＡＶ１ｉｎｓａｌｔｓｔｒｅｓｓ[Ｊ].Ｉｎｔ.Ｊ.Ｍｏｌ.Ｓｃｉ.ꎬ２０２２ꎬ２３(１６):８８３４.[１８]于志晶ꎬ蔡勤安ꎬ刘艳芝ꎬ等.拟南芥抗逆基因ＤＲＥＢ２Ａ转化大豆的研究[Ｊ].大豆科学ꎬ２０１３ꎬ３２(５):６０６－６０８. [１９]ＺｈａｎｇＸＸꎬＴａｎｇＹＪꎬＭａＱＢꎬｅｔａｌ.ＯｓＤＲＥＢ２Ａꎬａｒｉｃｅｔｒａｎ￣ｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒꎬｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙａｆｆｅｃｔｓｓａｌｔｔｏｌｅｒａｎｃｅｉｎｔｒａｎｓｇｅｎｉｃｓｏｙｂｅａｎ[Ｊ].ＰＬｏＳＯＮＥꎬ２０１３ꎬ８(１２):ｅ８３０１１.[２０]刘坤ꎬ李国婧ꎬ杨杞.参与植物非生物逆境响应的ＤＲＥＢ/ＣＢＦ转录因子研究进展[Ｊ].生物技术通报ꎬ２０２２ꎬ３８(５):２０１－２１４.[２１]ＣｈｅｎｇＣꎬＡｎＬＫꎬＬｉＦＺꎬｅｔａｌ.Ｗｉｄｅ￣ｒａｎｇｅｐｏｒｔｒａｙａｌｏｆＡＰ２/ＥＲＦｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｆａｍｉｌｙｉｎｍａｉｚｅ(ＺｅａｍａｙｓＬ.)ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｎｄｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅｓ[Ｊ].Ｇｅｎｅｓꎬ２０２３ꎬ１４(１):１９４.[２２]阮航ꎬ多浩源ꎬ范文艳ꎬ等.ＡｔＥＲＦ４９在拟南芥应答盐碱胁迫中的作用[Ｊ].生物技术通报ꎬ２０２３ꎬ３９(１):１５０－１５６. [２３]ＭüｌｌｅｒＭꎬＭｕｎｎé￣ＢｏｓｃｈＳ.Ｅｔｈｙｌｅｎｅｒｅｓｐｏｎｓｅｆａｃｔｏｒｓ:ａｋｅｙｒｅｇｕｌａｔｏｒｙｈｕｂｉｎｈｏｒｍｏｎｅａｎｄｓｔｒｅｓｓｓｉｇｎａｌｉｎｇ[Ｊ].ＰｌａｎｔＰｈｙｓ￣ｉｏｌ.ꎬ２０１５ꎬ１６９(１):３２－４１.[２４]ＤｅｂｂａｒｍａＪꎬＳａｒｋｉＹＮꎬＳａｉｋｉａＢꎬｅｔａｌ.Ｅｔｈｙｌｅｎｅｒｅｓｐｏｎｓｅ９７１㊀第２期㊀㊀㊀㊀㊀㊀崔德周ꎬ等:小麦ＥＲＦ亚族转录因子参与逆境胁迫的研究进展ｆａｃｔｏｒ(ＥＲＦ)ｆａｍｉｌｙｐｒｏｔｅｉｎｓｉｎａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｅｓａｎｄＣＲＩＳＰＲ￣Ｃａｓ９ｇｅｎｏｍｅｅｄｉｔｉｎｇｏｆＥＲＦｓｆｏｒｍｕｌｔｉｐｌｅａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｔｏｌｅｒ￣ａｎｃｅｉｎｃｒｏｐｐｌａｎｔｓ:ａｒｅｖｉｅｗ[Ｊ].Ｍｏｌ.Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ.ꎬ２０１９ꎬ６１(２):１５３－１７２.[２５]赵曾强ꎬ郭文婷ꎬ张析ꎬ等.棉花抗枯萎病相关基因ＧｈＥＲＦ５￣４Ｄ的克隆及功能分析[Ｊ].生物技术通报ꎬ２０２２ꎬ３８(４):１９３－２０１.[２６]才晓溪ꎬ胡冰霜ꎬ沈阳ꎬ等.ＧｓＥＲＦ６基因过表达对水稻耐盐碱性的影响[Ｊ].作物学报ꎬ２０２３ꎬ４９(２):５６１－５６９. [２７]李紫良ꎬ张建朝ꎬ李政ꎬ等.小麦转录因子基因ＴａＥＲＦ７的克隆及其表达分析[Ｊ].西北植物学报ꎬ２０２０ꎬ４０(２):２１０－２１７.[２８]ＺｈａｎｇＬꎬＬｉｕＰꎬＷｕＪꎬｅｔａｌ.ＩｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆａｎｏｖｅｌＥＲＦｇｅｎｅꎬＴａＥＲＦ８ꎬａｓｓｏｃｉａｔｅｄｗｉｔｈｐｌａｎｔｈｅｉｇｈｔａｎｄｙｉｅｌｄｉｎｗｈｅａｔ[Ｊ].ＢＭＣＰｌａｎｔＢｉｏｌ.ꎬ２０２０ꎬ２０(１):２６３.[２９]ＺｈｕａｎｇＪꎬＣｈｅｎＪＭꎬＹａｏＱＨꎬｅｔａｌ.Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙａｎｄｅｘｐｒｅｓ￣ｓｉｏｎｐｒｏｆｉｌｅａｎａｌｙｓｉｓｏｆＡＰ２/ＥＲＦｆａｍｉｌｙｇｅｎｅｓｆｒｏｍＴｒｉｔｉｃｕｍａｅｓｔｉｖｕｍ[Ｊ].Ｍｏｌ.Ｂｉｏｌ.Ｒｅｐ.ꎬ２０１１ꎬ３８(２):７４５－７５３. [３０]ＲｉａｚＭＷꎬＬｕＪꎬＳｈａｈＬꎬｅｔａｌ.ＥｘｐａｎｓｉｏｎａｎｄｍｏｌｅｃｕｌａｒｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆＡＰ２/ＥＲＦｇｅｎｅｆａｍｉｌｙｉｎｗｈｅａｔ(ＴｒｉｔｉｃｕｍａｅｓｔｉｖｕｍＬ.)[Ｊ].Ｆｒｏｎｔ.Ｇｅｎｅｔ.ꎬ２０２１ꎬ１２:６３２１５５. [３１]李世姣ꎬ张晓军ꎬ乔麟轶ꎬ等.小麦盐胁迫响应相关ＥＲＦ基因的分离和初步验证[Ｊ].核农学报ꎬ２０２１ꎬ３５(５):１０３９－１０４７.[３２]ＦａｒａｊｉＳꎬＦｉｌｉｚＥꎬＫａｚｅｍｉｔａｂａｒＳＫꎬｅｔａｌ.ＴｈｅＡＰ２/ＥＲＦｇｅｎｅｆａｍｉｌｙｉｎＴｒｉｔｉｃｕｍｄｕｒｕｍ:ｇｅｎｏｍｅ￣ｗｉｄｅｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎａｎｄｅｘ￣ｐｒｅｓｓｉｏｎａｎａｌｙｓｉｓｕｎｄｅｒｄｒｏｕｇｈｔａｎｄｓａｌｉｎｉｔｙｓｔｒｅｓｓｅｓ[Ｊ].Ｇｅｎｅｓꎬ２０２０ꎬ１１(１２):１４６４.[３３]ＸｕＺＳꎬＸｉａＬＱꎬＣｈｅｎＭꎬｅｔａｌ.Ｉｓｏｌａｔｉｏｎａｎｄｍｏｌｅｃｕｌａｒｃｈａｒ￣ａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆｔｈｅＴｒｉｔｉｃｕｍａｅｓｔｉｖｕｍＬ.ｅｔｈｙｌｅｎｅ￣ｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅｆａｃ￣ｔｏｒ１(ＴａＥＲＦ１)ｔｈａｔｉｎｃｒｅａｓｅｓｍｕｌｔｉｐｌｅｓｔｒｅｓｓｔｏｌｅｒａｎｃｅ[Ｊ].ＰｌａｎｔＭｏｌ.Ｂｉｏｌ.ꎬ２００７ꎬ６５(６):７１９－７３２.[３４]宋桂成ꎬ周淼平ꎬ余桂红ꎬ等.小麦乙烯转录因子ＴａＥＲＦ２响应湿害胁迫的表达分析[Ｊ].核农学报ꎬ２０２２ꎬ３６(５):８７６－８８４.[３５]徐兆师.小麦抗逆相关ＤＲＥＢ/ＥＲＦ转录因子基因的克隆与鉴定[Ｄ].北京:中国农业科学院ꎬ２００５:１１４－１２１. [３６]ＲｏｎｇＷꎬＱｉＬꎬＷａｎｇＡＹꎬｅｔａｌ.ＴｈｅＥＲＦｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒＴａＥＲＦ３ｐｒｏｍｏｔｅｓｔｏｌｅｒａｎｃｅｔｏｓａｌｔａｎｄｄｒｏｕｇｈｔｓｔｒｅｓｓｅｓｉｎｗｈｅａｔ[Ｊ].ＰｌａｎｔＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌ.Ｊ.ꎬ２０１４ꎬ１２(４):４６８－４７９. [３７]ＤｏｎｇＷꎬＡｉＸꎬＸｕＦꎬｅｔａｌ.ＩｓｏｌａｔｉｏｎａｎｄｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆａｂｒｅａｄｗｈｅａｔｓａｌｉｎｉｔｙｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅＥＲＦｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒ[Ｊ].Ｇｅｎｅꎬ２０１２ꎬ５１１(１):３８－４５.[３８]张蕾.小麦盐胁迫应答相关基因ＴａＥＲＦ５的功能研究[Ｄ].北京:中国农业科学院ꎬ２０１３:３２－３４.[３９]崔德周ꎬ李永波ꎬ隋新霞ꎬ等.小麦盐胁迫持续上调转录因子基因ＴａＥＲＦ８￣２Ｄ的克隆及其分析[Ｊ].山东农业科学ꎬ２０２１ꎬ５３(５):３２－３７.[４０]ＺｈｕＸＬꎬＱｉＬꎬＬｉｕＸꎬｅｔａｌ.Ｔｈｅｗｈｅａｔｅｔｈｙｌｅｎｅｒｅｓｐｏｎｓｅｆａｃ￣ｔｏｒｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｐａｔｈｏｇｅｎ￣ｉｎｄｕｃｅｄＥＲＦ１ｍｅｄｉａｔｅｓｈｏｓｔｒｅｓｐｏｎｓｅｓｔｏｂｏｔｈｔｈｅｎｅｃｒｏｔｒｏｐｈｉｃｐａｔｈｏｇｅｎＲｈｉｚｏｃｔｏｎｉａｃｅｒｅａｌｉｓａｎｄｆｒｅｅｚｉｎｇｓｔｒｅｓｓｅｓ[Ｊ].ＰｌａｎｔＰｈｙｓｉｏｌ.ꎬ２０１４ꎬ１６４(３):１４９９－１５１４.[４１]ＧａｏＴꎬＬｉＧＺꎬＷａｎｇＣＲꎬｅｔａｌ.ＦｕｎｃｔｉｏｎｏｆｔｈｅＥＲＦＬ１ａｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｉｎｗｈｅａｔｒｅｓｐｏｎｓｅｓｔｏｗａｔｅｒｄｅｆｉｃｉｅｎｃｙ[Ｊ].Ｉｎｔ.Ｊ.Ｍｏｌ.Ｓｃｉ.ꎬ２０１８ꎬ１９(５):１４６５.[４２]ＤｕＬＹꎬＨｕａｎｇＸＬꎬＤｉｎｇＬꎬｅｔａｌ.ＴａＥＲＦ８７ａｎｄＴａＡＫＳ１ｓｙｎｅｒｇｉｓｔｉｃａｌｌｙｒｅｇｕｌａｔｅＴａＰ５ＣＳ１/ＴａＰ５ＣＲ１￣ｍｅｄｉａｔｅｄｐｒｏｌｉｎｅｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓｔｏｅｎｈａｎｃｅｄｒｏｕｇｈｔｔｏｌｅｒａｎｃｅｉｎｗｈｅａｔ[Ｊ].ＮｅｗＰｈｙｔｏｌ.ꎬ２０２３ꎬ２３７(１):２３２－２５０.[４３]ＭａｋｈｌｏｕｆｉＥꎬＹｏｕｓｆｉＦＥꎬＭａｒａｎｄｅＷꎬｅｔａｌ.Ｉｓｏｌａｔｉｏｎａｎｄｍｏ￣ｌｅｃｕｌａｒｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆＥＲＦ１ꎬａｎｅｔｈｙｌｅｎｅｒｅｓｐｏｎｓｅｆａｃｔｏｒｇｅｎｅｆｒｏｍｄｕｒｕｍｗｈｅａｔ(ＴｒｉｔｉｃｕｍｔｕｒｇｉｄｕｍＬ.ｓｕｂｓｐ.ｄｕｒｕｍ)ꎬｐｏｔｅｎｔｉａｌｌｙｉｎｖｏｌｖｅｄｉｎｓａｌｔ￣ｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅｓ[Ｊ].Ｊ.Ｅｘｐ.Ｂｏｔ.ꎬ２０１４ꎬ６５(２２):６３５９－６３７１.[４４]ＭａｋｈｌｏｕｆｉＥꎬＹｏｕｓｆｉＦＥꎬＰｉｒｒｅｌｌｏＪꎬｅｔａｌ.ＴｄＥＲＦ１ꎬａｎｅｔｈｙｌ￣ｅｎｅｒｅｓｐｏｎｓｅｆａｃｔｏｒａｓｓｏｃｉａｔｅｄｗｉｔｈｄｅｈｙｄｒａｔｉｏｎｒｅｓｐｏｎｓｅｓｉｎｄｕ￣ｒｕｍｗｈｅａｔ(ＴｒｉｔｉｃｕｍｔｕｒｇｉｄｕｍＬ.ｓｕｂｓｐ.ｄｕｒｕｍ)[Ｊ].ＰｌａｎｔＳｉｇｎａｌａｎｄＢｅｈａｖ.ꎬ２０１５ꎬ１０(１０):ｅ１０６５３６６.[４５]ＤｊｅｍａｌＲꎬＫｈｏｕｄｉＨ.ＩｓｏｌａｔｉｏｎａｎｄｍｏｌｅｃｕｌａｒｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆａｎｏｖｅｌＷＩＮ１/ＳＨＮ１ｅｔｈｙｌｅｎｅ￣ｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒＴｄＳＨＮ１ｆｒｏｍｄｕｒｕｍｗｈｅａｔ(ＴｒｉｔｉｃｕｍｔｕｒｇｉｄｕｍＬ.ｓｕｂｓｐ.ｄｕ￣ｒｕｍ)[Ｊ].Ｐｒｏｔｏｐｌａｓｍａꎬ２０１５ꎬ２５２(６):１４６１－１４７３. [４６]ＤｊｅｍａｌＲꎬＫｈｏｕｄｉＨ.Ｔｈｅｅｔｈｙｌｅｎｅ￣ｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｏｆｄｕｒｕｍｗｈｅａｔꎬＴｄＳＨＮ１ꎬｃｏｎｆｅｒｓｃａｄｍｉｕｍꎬｃｏｐｐｅｒꎬａｎｄｚｉｎｃｔｏｌｅｒａｎｃｅｔｏｙｅａｓｔａｎｄｔｒａｎｓｇｅｎｉｃｔｏｂａｃｃｏｐｌａｎｔｓ[Ｊ].Ｐｒｏｔｏｐｌａｓｍａꎬ２０２２ꎬ２５９(１):１９－３１.[４７]ＨａｇｈｉｒＳꎬＡｌｅｍｚａｄｅｈＡ.Ｃｌｏｎｉｎｇａｎｄｍｏｌｅｃｕｌａｒｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａ￣ｔｉｏｎｏｆＴａＥＲＦ６ꎬａｇｅｎｅｅｎｃｏｄｉｎｇａｂｒｅａｄｗｈｅａｔｅｔｈｙｌｅｎｅｒｅ￣ｓｐｏｎｓｅｆａｃｔｏｒ[Ｊ].Ｍｏｌ.Ｂｉｏｌ.Ｒｅｓ.Ｃｏｍｍｕｎ.ꎬ２０１８ꎬ７(４):１５３－１６３.[４８]ＺｈａｎｇＺＹꎬＹａｏＷＬꎬＤｏｎｇＮꎬｅｔａｌ.ＡｎｏｖｅｌＥＲＦｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎａｃｔｉｖａｔｏｒｉｎｗｈｅａｔａｎｄｉｔｓｉｎｄｕｃｔｉｏｎｋｉｎｅｔｉｃｓａｆｔｅｒｐａｔｈｏｇｅｎａｎｄｈｏｒｍｏｎｅｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ[Ｊ].Ｊ.Ｅｘｐ.Ｂｏｔ.ꎬ２００７ꎬ５８(１１):２９９３－３００３.[４９]ＤｏｎｇＮꎬＬｉｕＸꎬＬｕＹꎬｅｔａｌ.ＯｖｅｒｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆＴａＰＩＥＰ１ꎬａｐａｔｈｏｇｅｎ￣ｉｎｄｕｃｅｄＥＲＦｇｅｎｅｏｆｗｈｅａｔꎬｃｏｎｆｅｒｓｈｏｓｔ￣ｅｎｈａｎｃｅｄｒｅｓｉｓｔａｎｃｅｔｏｆｕｎｇａｌｐａｔｈｏｇｅｎＢｉｐｏｌａｒｉｓｓｏｒｏｋｉｎｉａｎａ[Ｊ].Ｆｕｎｃｔ.Ｉｎｔｅｇｒ.Ｇｅｎｏｍｉｃ.ꎬ２０１０ꎬ１０(２):２１５－２２６.[５０]ＣｈｅｎＬꎬＺｈａｎｇＺＹꎬＬｉａｎｇＨＸꎬｅｔａｌ.ＯｖｅｒｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆＴｉＥＲＦ１ｅｎｈａｎｃｅｓｒｅｓｉｓｔａｎｃｅｔｏｓｈａｒｐｅｙｅｓｐｏｔｉｎｔｒａｎｓｇｅｎｉｃｗｈｅａｔ[Ｊ].Ｊ.Ｅｘｐ.Ｂｏｔ.ꎬ２００８ꎬ５９(１５):４１９５－４２０４.０８１山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第５６卷㊀。
X年度国家科学技术进步奖初评通过项目
2
作物遗传育种与园艺组
矮秆高产多抗广适小麦新品种矮抗58选育及应用
茹振钢，赵??虹，李友勇，胡铁柱，邱??军，牛立元，欧行奇，许学宏，刘明久，李??淦，姚小凤，李笑慧，常??萍，冯素伟，陈刚立
河南科技学院，河南省农业科学院小麦研究所，河南金蕾种苗有限公司，江苏省农产品质量检验测试中心，安徽省农作物新品种引育中心
陕西省
30
油气工程组
超大型复杂油气地质目标地震资料处理解释系统及重大成效
刘超颖，赵??波，张??玮，詹仕凡，文佳敏，罗国安，冉贤华，陈继红，王成祥，白雪莲
中国石油集团东方地球物理勘探有限责任公司
中国石油天然气集团公司
31
油气工程组
鄂尔多斯盆地中部延长组下组合找油突破的勘探理论与关键技术
王香增，赵金洲，罗晓容，曹金舟，张丽霞，高瑞民，任来义，张小莉，申??峰，郭小阳
2013年度国家科学技术进步奖初评通过项目（通用项目）
2013年度国家科学技术进步奖初评通过项目（通用项目）
序号
评审组
项目名称
主要完成人
主要完成单位
推荐单位/推荐专家
1
作物遗传育种与园艺组
两系法杂交水稻技术研究与应用
袁隆平，石明松（已故），邓华凤，卢兴桂，邹江石，罗孝和，王守海，杨振玉，牟同敏，王??丰，陈良碧，贺浩华，覃惜阴，刘爱民，尹建华，万邦惠，李成荃，孙宗修，彭惠普，程式华，潘熙淦，杨聚宝，游艾青，曾汉来，吕川根，武小金，邓国富，周广洽，黄宗洪，刘宜柏，冯云庆，姚克敏，汪扩军，王德正，朱英国，廖亦龙，梁满中，陈大洲，粟学俊，肖层林，尹华奇，廖伏明，袁潜华，李新奇，童??哲，周承恕，郭名奇，阳庆华，徐小红，朱仁山
中海石油（中国）有限公司，中海油研究总院，海洋石油工程股份有限公司
2010年度陕西省科学技术奖推荐项目
项目 编号
10-001 10-002
项目名称
基于软交换的全 IP 化移 动通信组网技术 大跨径钢箱梁桥面铺装 技术体系研究 水泥稳定碎石振动试验 方法及工程应用 BT 系列积极式凸轮开口 装置关键技术研究及产 品开发 微胶囊药物纳米复合防 污、 抗菌、 抗病毒纺织品 开发 计算机优化配毛及毛条 辅助制造系统 输电线路运行工况在线 监测与故障诊断及系列 产品开发 纺织平网印花机电气控 制装置关键技术研究及 产业化 跨边界知识共享研究 分布式数据挖掘优化技 术 认知无线电技术研究 目标与复杂地海背景的 电磁散射研究 高速无线通信系统中的 传输与组网新技术 正交时分复用技术研究 中国食蚜蝇科昆虫物种 多样性研究 量子体系非对易拓扑相 位和非对易能级的研究 秦巴山区猪苓资源保护 及开发利用研究 天然活性成分的微生物 转化研究
10-041 10-042 10-043 10-045
NiTi 形状记忆合金的疲 劳断裂性能及本构模型 基于混合网络的设备故 障远程测试诊断智能信 息处理平台 面向大规模定制生产的 快速工艺设计系统 校园计算网格 营利组织内优化活动及 其向可持续竞争优势演 化的机理研究 飞行器机电系统早期故 障预示技术 齿轮先进啮合理论研究 及工程应用 复杂系统现代估计理论 及应用 数字式皮革收缩温度测 量技术及装置的研究 水热合成无机功能材料 及陶瓷涂层的理论与应 用基础研究 CO2/CH4 的催化转化及 相关绿色过程的基础研 究 蝗虫的分子系统学和分 类鉴定专家系统研究 算子矩阵及其应用 低频液体表面波声光效 应及应用 渭河流域万年尺度环境 变化与土壤发育演变规 律 过渡金属掺杂材料结构、 性能与微观机理研究 “翔式道路”——西部以 军地融合高新技术产业 发展促进产业结构优化 升级的理论对策 复杂目标光电散射特征 建模及其在实际探测中 的应用研究
辽宁推荐2011年国家科技奖项目公示-辽宁农业科学院
附件：辽宁省农科院拟推荐2015年度省科技奖励项目项目名称北方设施园艺作物优质高效关键技术研究与应用推荐单位辽宁省农业科学院项目简介项目针对辽宁省设施农业发展中存在的优良新品种缺乏、标准化程度低、农业投入品施用过量、养分比例失衡、土传病害频发、次生盐渍化严重、优质高效栽培技术集成度低等问题，开展了北方设施园艺作物优质高效关键技术研究，选育出适宜辽宁省设施园艺栽培的优良作物新品种，构建了设施园艺主要作物工厂化繁育技术体系，摸清了设施土壤次生盐渍化发生机理，建立了土壤次生盐渍化等级评价体系，提出了土壤次生盐渍化、设施园艺作物连作障碍及其主要病虫害综合防治技术，评价了辽宁省设施蔬菜产地环境的质量安全性，形成了优质高效栽培技术模式并进行了大面积推广示范。
主要技术成果如下：1、选育出适宜辽宁省设施园艺栽培的优良作物新品种蔬菜12个，果树2个，玫瑰6个，切花菊19个和百合6个。
2、明确了育苗基质、适宜温度、科学施肥等工厂化育苗共性关键技术，构建了番茄、辣椒、茄子、黄瓜、菊花和百合的工厂化繁育技术体系。
3、摸清了设施土壤次生盐渍化发生机理及其主要驱动因子，建立了土壤次生盐渍化等级评价体系，提出了土壤次生盐渍化综合防治技术，研发了兼顾作物产量和环境质量的设施蔬菜科学施肥技术。
4、揭示了设施园艺作物连作障碍的主要致病病菌，研制出黄瓜细菌性角斑病早期快速诊断技术和利用生防菌XD6菌株防治辣椒疫病技术，完成了番茄叶霉病菌和辣椒疫病和致病镰刀菌的敏感性测定，筛选出高效低毒的药剂配方。
5、探明了设施蔬菜产地环境质量安全主要驱动因子及其动态变化规律，评价了辽宁省设施蔬菜产地的质量安全性。
6、形成了辽宁省设施园艺主要作物优质高效栽培技术模式13个，建立示范基地19个。
完成单位创新推广贡献辽宁省农业科学院与国内外同类研究相比，本项目实现了7项技术创新：1、筛选出菇渣添加甜叶菊粉末和全牛粪喷施靓丰素叶面肥的育苗复合新基质，提出了双断根贴接嫁接等果菜类育苗组培优化条件，集成了果菜类工厂化育苗技术体系。
黑米酶解工艺关键技术的实验研究
第49卷 第7期 2022年7月天 津 科 技TIANJIN SCIENCE & TECHNOLOGYV ol.49 No. 7Jul. 2022收稿日期：2022-07-06基础研究黑米酶解工艺关键技术的实验研究璠曲亮1,2,4，郝景雯1,4,5，谢庆方1,2,5，黄 华1,3,4，许勤虎1,4,5，王祥河1,4,5(1. 天津市工业微生物研究所有限公司 天津300462；2. 天津量信检验认证技术有限公司 天津300462； 3. 天津实发中科百奥工业生物技术有限公司 天津300462；4. 天津市工业微生物企业重点实验室 天津300462；5. 天津市工业微生物工程技术中心 天津300462)摘 要：以黑米为原料，以酶解液中的还原糖含量为指标，采用葡萄糖淀粉酶和α-淀粉酶进行谷物糖化实验。
通过单因素实验研究了酶解时间、酶解pH 、液化酶与糖化酶添加比例、酶制剂添加量、酶解温度对黑米糖化实验的影响。
在此基础上，通过四因素三水平的正交实验优化其酶解工艺，得到的最佳工艺条件为：反应温度60℃、pH 为4.0、酶制剂添加量0.8%，此时酶解液中还原糖含量为4.29g/100g 。
关键词：黑米 α-淀粉酶 葡萄糖淀粉酶 工艺优化中图分类号：TS275 文献标志码：A 文章编号：1006-8945(2022)07-0076-04Research on Key Technology of Black Rice Enzymolysis ProcessQU Liangfan 1,2,4，HAO Jingwen 1,4,5，XIE Qingfang 1,2,5，HUANG Hua 1,3,4，XU Qinhu 1,4,5，WANG Xianghe 1,4,5(1. Tianjin Research Institute of Industrial Microbiology Co.， Ltd.，Tianjin 300462，China ； 2. Tianjin Line-seen Inspection & Certification Technology Co., Ltd.，Tianjin 300462，China ；3. Tianjin SF-Bio Industrial Bio-tec Co., Ltd.，Tianjin 300462，China ；4. Tianjin Key Laboratory of Industrial Microbiology Enterprises ，Tianjin 300462，China ；5. Tianjin Industrial Microbial Engineering Technology Center ，Tianjin 300462，China )Abstract ：Using black rice as raw material and the content of reducing sugar in the enzymatic hydrolyzate as an index ，saccharification experiments were carried out with glucoamylase and α-amylase. The effects of enzymolysis time ，enzymolysis pH ，addition ratio of enzyme and saccharification enzyme ，enzyme preparation amount and enzymolysis tem-perature on the saccharification experiment of black rice were studied by single factor experiment. On this basis ，an or-thogonal experiment with four factors and three levels was carried out to optimize the enzymatic hydrolysis process. The best conditions obtained are 60℃，pH 4.0，enzyme preparation 0.8%. At this time ，the reducing sugar content in the enzymatic hydrolysis solution is 4.29g/100g.Key words ：black rice ；α-amylase ；glucoamylase ；process optimization黑米是我国著名珍贵稻种，资源广泛，历史悠久，极具特色。