畜禽血液样品的采集、制备与保存方法

畜禽血液样品的采集、制备与保存方法
畜禽血液样品的采集、制备与保存方法

畜禽血液样品的采集、制备与保存方法

血液不断地在全身流动,参与机体的各种功能活动,对动物的新陈代谢以及维持内环境和保持与外界环境间的平衡起着重要的作用。当血液发生病理变化时,常常会影响全身的组织和器官,而组织和器官的病变又可以引起血液成分的变化,因此,血液的检验在疾病的诊断中起到十分重要的作用;临床检验采用的血液样品分为全血、血清和血浆。全血主要用于血细胞成分的检验,血清和血浆主要用于大部分临床化学检查和免疫学检验。血液样品的采集、制备与保存是重要的前期工作,是保证正确诊断的基本条件。

1.采集部位与方法

畜禽血液样品的采集部位和方法,与种类、检测项目、试验方法及用血量有关,视实际情况而定。

1.1鸡的采血技术

1.1.1翅静脉采血:是常用的采血部位,翅静脉在肘关节腹侧的表面,清晰地暴露于皮肤之下,肉眼可见。采血时先拔去该部位的羽毛,抽血时,动作轻柔缓慢,防止血管塌陷不回流,采血后略移动皮肤轻压即可止血;由于鸡的皮肤游离性大,采血后容易形成血肿。

1.1.2心脏采血:此方法多用于进行尸体剖检前的血液采集检验。将鸡仰卧保定,针头从V型锁骨前端刺入,或者在靠近心脏的胸侧壁刺入;心脏采血过程中,如果操作不慎,易损伤肺脏,更有慎者,引起大出血死亡。

1.1.3颈静脉采血:鸡的左侧颈静脉很细,通常右侧颈静脉采血。在皮肤上的一个无毛的沟正好是右侧颈静脉所处的位置。颈静脉游离性大,皮肤松弛,采血后易于形成血肿。

1.2猪采血技术

1.2.1前腔静脉采血:猪前腔静脉是由左右两侧的颈静脉与腋静脉至第一对肋骨间的胸骨柄汇合形成。采血时,针头刺入部位在与耳根和对侧肩胛骨上缘连线垂直线的胸骨端处,大猪采用站立保定,小猪可以采用仰卧保定法。左侧靠近膈神经,故以右侧采血为宜。

1.2.2耳静脉采血:一般用于体格较大的猪。保定后,耳部消毒灭菌,以手指压迫近心端耳部静脉,使血管努张,针头刺入血管后,动作要轻柔,采血要缓慢,否则血液不回流使静脉瘪陷。

1.3牛的采血技术

1.3.1颈静脉采血:将头向一侧保定,用手指压迫颈静脉沟处,待血管怒张后,于采血部位消毒进针采血。

1.3.2尾静脉采血:采血人员站立牛正后方,将牛尾向上抬起180度,在第一尾锥与第二尾锥之间的尾中线上进针采血。此方法需要人员少,采血速度快,可以****操作。

1.4马、羊的采血技术

马、羊均采用颈静脉采血。方法同牛的颈静脉采血。

1.5犬、猫的采血技术

一般在后肢外侧小隐静脉或前肢内侧皮下静脉采血,采血前由助手保定,在采血部位的近心端扎止血带,待血管怒张后,迅速刺入采血器,松开止血带左手固定针头,采血力度要适当。

2.血液样品的处理

2.1血浆的制备:在采血器内加入适量的抗凝剂,采血后,反复颠倒采血器,使

抗凝剂与血液充分混匀,静置或经过离心使血细胞下沉后,上清液即为血浆。2.2血清的制备:首先将采集的血液样品置室温半小时,待血液凝固后2000-3000转/分离心5-10分钟,上清夜即为血清;如离心后有轻微的溶血,用牙签将血凝块挑出,将混有红细胞碎片的血清再次离心,用干净吸管收集血清于干燥的指型管中,贴上标签备用。如血清溶血严重,应剔出样品。

2.3全血的制备:全血制备与血浆制备基本相同。供全血分析时,抗凝剂选用会直接影响化验结果,选用抗凝剂的原则:主要用于血液PH值和血液电解质测定的应选用肝素;柠主要用于血液促凝时间的测定应选用柠檬酸钠;主要用于血液有形成分检查的全血应选用EDTA;草酸盐不能用作血小板计数和尿素、血氨、非蛋白氮等含氮物质的检测;

3.血液样品的保存与运送

采集的血液样品如不能及时进行检验,必须做适当的处理,防止其成分发生大的变化。

通常分离到的血清与血浆样品保存于密闭试管中,存放于4℃冰箱内或冷冻。

全血样品应保存于4℃冰箱内,检验时,样品必须达到室温,达到室温之后颠倒数次,使血液充分混匀后,方可检验。

如果样品能在24小时内送往实验室,可保存于4℃环境的保温箱内,如果24小时内不能抵达或有些样品送往外地实验室时,样品必须冷冻处理后,并在低温下运送。运送途中防止样品泄漏,密闭封装并加冰袋运送。同时要填写详细的样品记录。

4.分析:血液样品变异因素的控制

严格控制血液样品的变异因素,是使检测结果尽可能符合客观情况的重要环节。因此,在采血过程中应注意下列问题:

4.1.规定动物的采血时间:有些血液化学成分有明显的昼夜波动,对采血动物,应在禁食12小时后采血,这样可以将食物对血液各种成分的浓度的影响减少到最低程度。在刚进完食动物身上采取的血液样品,往往出现血糖、甘油三酯增高,无机磷降低,麝香草酚浊度增加。进食富含脂肪的饲料,常导致血清混浊而干扰很多项目的生化检测。

4.2.血液样品来源一致:动脉血和经脉学的化学成分略有差异,整个试验期间,采取的血液样品必须一致。

4.3.防止分解:血液内某些化学成分,离体后由于氧化酶或细菌的作用,容易分解,致其含量有所改变。所以,为了防止血液内某些化学成分的分解,血液样品被采集后应立即按规定处理,及时检测或加入适当的保存剂按规定保存。

4.4.防止气体逸散:血液暴露于空气中后,二氧化碳迅速逸出,并吸收氧气提高血氧饱和度,进而引起血浆成分的改变,因此,在采血过程中要根据检测项目的需要来采取适当的采血方式。

4.5.防止污染:采血器及样品容器都必须用化学处理并用重蒸馏水冲洗,防止铜、铁等金属离子和污染物对影响检测结果。并且在做作蛋白结合碘测定时,禁用碘酊消毒采血部。

4.6.防止溶血:溶血可以影响许多生化检测项目的结果。红细胞破裂后释放出的物质与血浆中许多成分的浓度不一样,如钠、氯化物、钙等在血浆中的浓度要高于红细胞内的浓度,应予以防止。

4.7引起溶血原因是强力震荡、离心速度过快、温度过低或者过高、加入与血液环境不等渗液体、放置时间过长等等引起红细胞破裂的因素。

第一章 饲料样品的采集与制备

第一章 饲料样品的采集与制备 从受检的饲料产品或原料中,按规定抽取一定数量具有代表性的部分,称为样品。样品一般分 为原始样品,平均样品和试验样品。 1、原始样品 从一批受检的饲料或原料中最初抽取的样品,称为原始样品,原始样品一般不少于 2㎏。 2、平均样品 将原始样品按规定混合,均匀地分出一部分,称为平均样品,平均样品一般不 少于1㎏。 3、试验样品 平均样品经过混合分样,根据需要从中抽取一部分,用作试验室分析,称为试 样样品。 采集样品的过程叫采样。在某种程度上可以说采样比分析更重要。要求采集的样品具有 代表性。 一、采样工具 剪刀、刀、取样铲、组织捣碎机、样本粉碎机(40~60目)、采样器(适用颗粒料)、套管采样 器(适用于粉状饲料)、扦样玻璃管、扦样筒(适用于散状液体饲料)。 二、采样 (一)基本方法 采样的基本方法有两种:几何法和四分法 几何法:是指把整个一堆物品看成一种有规则的几何形状(立方体、园柱体、园锥体),取样 时首先把这个主体分为若干体积相等的问部分,从棕样部分中取出体积相等的样品,这部分样品称 为支样,再把支样混合,即得原始样品。 四分法: % (1)散装颗粒或粉状饲料或原料的采样 仓装 按面积分区,按高度分层,每区不超过50平方米,分为5点。 料层>0.75米,取三层,上(10~15㎝)、中、下(20㎝) 料层<0.75米,取二层,上、下 % % 园仓 按高度分层,每层按仓直径分内(中心)、中(半径的一半处)、外(距仓边30㎝)三 圈。 直径<8米,每层分别设1、2、4共7点采样。 直径>8米,每层分别设1、4、8共13点采样。 %% (2)袋装 中小颗料料如玉米、大麦抽样的袋娄不少于总袋数的5%,粉状饲料抽样的袋数不少于 3%也可以 根据√总袋数2 计算得出。 表1-1 袋装饲料采集方案 饲料包装单位 取样包装单位(袋) 10个以下 每袋取样 10~100 10袋

第四章 生物样品的采集、储存及预处理

第四章生物样品的采集、储存及预处理 第一节生物样品的采集、储存 体内药物分析的任务和分析对象具有如下特点:被测定的药物和代谢物的浓度极低;样品介质复杂,其中存在各种各样直接或间接影响测定结果的物质,大多需要分离和净化;仅有少量样品可供分析,尤其是在连续测定过程中,很难再度获得完全相同的样品;样品的稳定性需要特别注意等。 一、生物样品的采集 生物介质(biological matrix)包括全血、血浆、血清、尿、粪、唾液和各种组织。其中最常用的生物样品是血液和尿液。 1.血样的采集 供测定的血样应能代表整个血药浓度。若能从动脉或心脏取血最为理想,但只能用于动物,不能用于人。动物采血可根据不同种类及实验需要,采取适当的方法。如大、小鼠可由尾动脉、静脉、心脏、眼眶取血或断头取血等,家兔可由耳缘静脉、颈静脉等多处取血,犬可由前、后肢静脉等处取血。对于受试者通常采用静脉取血(成人从肘正中静脉取血,小儿从颈外静脉取血)。静脉取血一般将注射器针头插入静脉血管抽取。抽取的血液转移至试管或其它容器时应缓缓压出,以防血细胞破裂。 全血在加肝素或柠檬酸、草酸盐等抗凝剂后,离心分取血浆,其体积约为全血的一半。血清则是由血液中纤维蛋白原等影响下,引起血块凝结而析出,离心取用,而血块凝结时往往易造成药物吸附的损失。 全血直接作为样品时,也应加入抗凝剂混匀,防止凝血。对大多数药物来说,血浆浓度与红细胞中的浓度呈正比,所以测定全血不能比测定血浆提供更多的信息。而全血的净化较血浆与血清复杂,尤其是溶血后,血色素等可能会给HPLC测定带来影响。但是,一些药物可与红细胞结合,或药物在血浆和红细胞的分布比率因人而异,在这些情况下,宜采用全血。 血样抽取量受到一定的限制。人体药代动力学研究需要在多个时间点(一般为12~20点)取样,每次由前臂静脉取血3~5m1。随着高灵敏度测定方法的建立,取样量可继续降低,从而更易为受试者接受。实验动物取血量应注意是否超过了动物的生理承受能力。 制备血浆样品时,将采取的血样置含有抗凝剂的试管中,缓缓转动试管使其充分混合、离心,所得上清液即为血浆。常用的抗凝剂有肝素,它是体内正常的生理成分,因而不会改变血样的化学组成或引起药物的变化,一般不会干扰测定。通常lml血液采用20个单位

饲料样品的采集与制备

饲料样品的采集与制备公司内部档案编码:[OPPTR-OPPT28-OPPTL98-OPPNN08]

实验一?饲料样品的采集与制备 ? 一、实验目的 通过学习,使学生了解饲料原始样品的采集方法,掌握分析样品的制备及保存方法,掌握相关的基本概念。 二、仪器与工具 剪刀、刀、取样铲、组织捣碎机、样本粉碎机(40~60目)、采样器(适用颗粒料)、套管采样器(适用于粉状饲料)、扦样玻璃管、扦样筒(适用于散状液体饲料)。 二、方法步骤 (一)基本概念 从受检的饲料产品或原料中,按规定抽取一定数量具有代表性的部分,称为样品。采集样品的过程叫采样。样品一般分为原始样品和分析样品。从一批受检的饲料或原料中最初抽取的样品,称为原始样品,原始样品一般不少于2㎏。原始样品经过混合分样,根据需要从中抽取一部分,用作实验室分析,称为分析样品,分析样品一般为500g。在某种程度上可以说采样比分析更重要。要求采集的样品具有代表性。 (二)原始样品的采集 不同饲料样品的采集因饲料的状态、性质、颗粒大小、包装方式和数量的不同而异。

1、袋装 用采样器随机从不同袋中分别取样,混合后即得原始样品,每批采样的袋数取决于总袋数、颗粒大小和均匀度。可以根据下表(表-2)计算得出。 表-2 袋装饲料采集方案 饲料包装单位取样包装单位(袋) 10个以下每袋取样 10~10010袋 100以上10袋为基础,每增加100个,多取3个 包装单位 2、仓装 可根据饲料层厚度,按高度分层采样。料层>米时,取三层,上(10~15㎝)、中、下(20㎝);料层<米,取两层,上(10~15㎝)、下(20㎝)。每层至少分5个采样点。见下图: 3、桶装 桶装饲料多为液体或半固体,应根据桶的数量确定取样桶数(见表-3)。每桶应取3点,取样前应混匀。 表-3 桶装饲料采样方案 7桶以下不少于5桶 10桶以下不少于7桶 10~50桶不少于10桶 51~100桶不少于15桶 100桶以上不少于15%的总桶数采样

实验样品采集运输保存方法

1.R N A实验样品采集、保存方法 使用范围及样品量 类别:Microarray Service;Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 样本量: 样本样本量 哺乳动物培养细胞样品(悬浮细胞)1*107个 哺乳动物培养细胞样品(贴壁细胞)15cm2 植物组织样品100mg-1g,根据植物不同部位的组织决定组 织需要量,尽可能多些,但不必超过1g 动物组织样品 新鲜组织样品 A. 使用RNAlater试剂 取新鲜组织(注:动物死亡后尽快在10min内取材),组织块以PBS或生理盐水清洗干净,所用组织必须切至厚度在一下,然后放入装有5倍体积RNAlater的离心管(或冻存管)中。 4度孵育过夜,此时样品管需要横置以便组织块充分接触到RNAlater,然后转入-20中保存,样品在-20不会冻结,但溶液中可能会有一些晶体出现,这并不影响后续的RNA抽提。 B. 使用Trizol试剂 取新鲜组织(1min以内),组织块以PBS或生理盐水清洗干净,每50-100mg组织加入1ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品,最好冰上进行操作。

匀浆的裂解液4度短期保存(1month),-20或者-70度长期保存。 冻存组织 生物体死亡后尽快(10min以内)切取新鲜组织,并以PBS或生理盐水清洗干净切成小块;培养液倒入离心管中,离心沉淀细胞,弃去上清液。 细胞沉淀(1*107个)中加入1ml Trizol裂解液 反复吸打几次后,目视可见细胞层溶液完全 -70保存 贴壁细胞 从培养容器中吸出并弃去培养液 培养瓶直接加入Trizol试剂,Trizol用量与细胞贴壁面积有关,15cm2细胞贴壁面积加入1mlTrizol。 反复吸打几次后,目视可见细胞层溶解完全。 -70度保存。 植物组织样品 准确取得所需新鲜组织后,如有必要可用PBS清洗干净,将所用组织切碎,装入冻存管中或者用锡箔包裹好。 立即投入液氮中保存。 2.血液类样品采集、保存方法 适用范围及样品量 全血/血细胞:Microarray Service;Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 血清/血浆:Microarray Service;PCR Array& PCR Service

电镜样品制备方法中英文(常用_

No.1 扫描电镜样品制备方法 样品在2.5%的戊二醛溶液中4℃固定过夜,然后按下列步骤处理样品:?倒掉固定液,用0.1M,pH7.0的磷酸缓冲液漂洗样品三次,每次15min; ?用1%的锇酸溶液固定样品1-2h; ?倒掉固定液,用0.1M,pH7.0的磷酸缓冲液漂洗样品三次,每次15min; ?用梯度浓度(包括30%,50%,70%,80%,90%和95%五种浓度)的乙 醇溶液对样品进行脱水处理,每种浓度处理15min,再用100%的乙醇处理两次,每次20 min。 ?用乙醇与醋酸异戊酯的混合液(V/V=1/1)处理样品30min,再用纯醋酸 异戊酯处理样品1-2h。 ?临界点干燥。 ?镀膜,观察。 处理好的样品在Hitachi TM-1000型扫描电镜中观察。 1.Double fixation: The specimen was first fixed with 2.5% glutaraldehyde in phosphate buffer (pH7.0) for more than 4hours; washed three times in the phosphate buffer; then postfixed with 1% OsO4 in phosphate buffer (pH7.0) for 1hour and washed three times in the phosphate buffer. 2.Dehydration: The specimen was first dehydrated by a graded series of ethanol (30%,50%, 70%, 80%, 90%, 95% and 100%) for about 15 to 20 minutes at each step, transferred to the mixture of alcohol and iso-amyl acetate (v:v=1:1) for about 30 minutes, then transferred to pure iso-amyl acetate for about 1hour. In the end, the specimen was dehydrated in Hitachi Model HCP-2 critical point dryer with liquid CO2. 3.Coating and observation: The dehydrated specimen was coated with gold-palladium and observed in Philips Model TM-1000 SEM. No.2 Negative staining of bacterium The bacterium suspension was stained by 1 to 2%solution of phosphotungstic acid (PTA) in a pH range of 6.5 to 7.0 for 15 to 30 seconds. Then, the bacterium was observed in TEM of Model JEM1230. No.3透射电镜样品制备方法 样品在2.5%的戊二醛溶液中4℃固定过夜,然后按下列步骤处理样品:?倒掉固定液,用0.1M,pH7.0的磷酸缓冲液漂洗样品三次,每次15min; ?用1%的锇酸溶液固定样品1-2h; ?倒掉固定液,用0.1M,pH7.0的磷酸缓冲液漂洗样品三次,每次15min; ?用梯度浓度(包括30%,50%,70%,80%,90%和95%五种浓度)的乙 醇溶液对样品进行脱水处理,每种浓度处理15min,再用100%的乙醇

TEM样品的制备方法及注意事项。

第一节概述 由于电子束的穿透能力比较低(散射能力强),因此用于TEM分析的样品厚度 要非常薄,根据样品的原子序数大小不同,一般在5~500nm之间。要制备这样薄的样品必须通过一些特殊的方法。 第二节复型技术 ?衬度:眼睛能观察到的或者其它媒介能记录到的光强度或感光度的差异; ?质厚衬度就是样品中不同部位由于原子序数不同或者密度不同、样品厚度不同,入射电子被散射后能通过物镜光阑参与成像的电子数量不同, 从而在图像上体现出的强度的差别。

2.1 影响质厚衬度的因素: ?与原子序数的关系:物质的原子序数越大,散射电子的能力越强,在明场像(物镜光阑只允许散射角小的电子通过)中参与成像的电子越少,图像上相应位置越暗。 ?与试样厚度的关系:设试样上相邻两点的物质种类和结构完全相同,只是电子穿越的厚度不同,则在明场像中,暗的部位对应的试样厚,亮的部位对应的试样薄。 ?与物质密度的关系:试样中不同的物质或者不同的聚集状态,其密度一般不同,也可形成图像的反差,但这种反差一般比较弱。 2.2 复型技术 复型就是表面形貌的复制(其原理与侦破案件时用的石膏复制罪犯鞋底花纹相似)。通过复型制备出来的样品是真实样品表面形貌组织结构细节的薄膜复制品。 2.3 用于复型制备材料的要求: (1)必须是非晶材料; ( 2)粒子尺寸必须很小; ( 3)应具备耐电子轰击的性能。 2.4 主要采用的复型方法: 一级复型法、二级复型法、萃取复型法。 2.4.1一级复型 ?一级复型是指在试样表面的一次直接复型。 ?一级复型复型主要分为塑料(火棉胶)一级复型和碳膜一级复型,以及氧化膜复型。 塑料(火棉胶醋酸戊酯溶液或者醋酸纤维素丙酮溶液-AC纸)一级复型,相对于试样表面来讲,是一种负复型,即复型与试样表面的浮雕相反;其形成的示意图如下图所示。从图中可以看出,一级塑料复型是对样品表面形貌的简单的复制,它表面的形貌与样品的形貌刚好互补,所以称之为负复型。其厚度可以小到100纳米。

生物样品储存方法概述-冷冻保存

https://www.360docs.net/doc/5817523895.html, 生物样品储存方法概述-冷冻保存 将需要冷冻的样品冷冻(freezing,放于-20?C或-80?C)得当能有效的保证样品质量!下面给大家安利几种常见样品的冷冻储存方式: DNA及缓冲液:对于基因组材料来说,收到轻微的机械剪切力不是什么大事情;对于不稳定的缓冲液,如含有DTT的缓冲液,可直接冷冻储存,无需调整。 蛋白:需要添加防冻剂用于蛋白的冷冻储存。蔗糖或甘油是防冻剂很好的选择,但对于不同的蛋白,蔗糖或甘油所占的百分比须有所不同。可选择20%的蔗糖或10%的甘油。限制性内切酶可以储存在50%甘油中以保持稳定性。由于较低的冷冻温度,这种甘油的浓度可防止溶液完全冻结! 微生物(细菌,酵母和真菌):10-20%甘油效果很好。更高的百分比(即更接近20%)使平板划线更加容易。 高等真核细胞:常见的的冷冻过程为(仅供参考): 1. 配制含10% DMSO或甘油、10~20%小牛血清的冻存培养液; 2. 取对数生长期的细胞,用胰蛋白酶把单层生长的细胞消化下来,悬浮生长的细胞则直接将细胞移至15ml离心管中;

3. 离心1000rpm,5min; 4. 去除胰蛋白酶及旧的培养液,加入适量配制好的冻存培养液,用吸管轻轻吹打使细胞均匀,计数,调节冻存液中细胞的最终密度为5×106/ml~1×107/ml; 5. 将细胞分装入冻存管中,每管1~1.5 ml; 6. 在冻存管上标明细胞的名称,冻存时间及操作者; 7. 冻存:标准的冻存程序为降温速率-1~-2℃/ min;当温度达-25℃以下时,可增至-5℃~-10℃/min;到-100℃时,则可迅速浸入液氮中。也可将装有细胞的冻存管放入-20℃冰箱2h ,然后放入-70℃冰箱中过夜,取出冻存管,移入液氮容器内。 8.从增殖期到形成致密的单层细胞以前的培养细胞都可以用于冻存,但最好为对数生长期细胞。在冻存前一天最好换一次培养液; 9.将冻存管放入液氮容器或从中取出时,要做好防护工作,以免冻伤; 10.冻存和复苏最好用新配制的培养液。 另外,反复冻融对样品损害很大,因此将样品分装成小规格保存是不错的选择。为了最大限度减少样品浪费,分装之前需要知道样品的浓度、后续实验每次的用量,以便分装成适当的体积。小贴士:对于分装成微小的体积,PCR条管是不错的选择。 此外,一些大分子在储存之前快速冷冻(flash-freezing),能更好的保持功能。如何进行快速冷冻:穿上实验室外套,戴上护目镜、手套,将样品放入含有少量液氮的杜瓦瓶(dewar)中,有泡沫和烟雾产生(此操作需要在通风环境中进行)。一旦停止产生泡沫,迅速将样品取出,存储在-20?C或-80?C。 https://www.360docs.net/doc/5817523895.html,

完整word版透射电镜样品制备方法

透射电镜样品制备方法 由于电子束穿透能力限制,必须把标本切成厚度小于0.1um以下的薄片才适用,这种薄片称为超薄切片。常用的超薄切片厚度是50-70nm。在透射电镜的样品制备方法中,超薄切片技术是最基本、最常用的制备技术。超薄切片的制作过程基本上和石蜡切片相似,需要经过取材、固定、脱水、渗透、包埋聚合、切片及染色等步骤。 一.取材的基本要求 组织从生物活体取下后,如果不立即进行适当处理,会由于细胞内部的各种酶作用,出现细胞自溶现象。此外还可能由于污染,微生物在组织内繁殖使细胞的微细结构遭受破坏,因此,为了细胞结构尽可能保持天然状态,必须做到快、小、准、冷。 (1)动作迅速,组织从活体取下后应在最短的时间内(争取1分钟内)投入2.5%戊二醛固定液。 (2)所取组织的体积要小,一般不超过1mm*1mm*1mm。也可将组织修成1mm*1mm*2mm大小长条形。因为固定剂的渗透能力较弱,组织块如果太大,块的内部将不能得到良好的固定。 (3)机械损伤要小,解剖器械应锋利,操作宜轻,避免牵拉、挫伤与挤压。 ℃)下进行,以降低酶的活性,防~4℃0作最好在低温(操)4(.止细胞自溶。

(5)取材部位要准确。 二.取材方法 将取出的组织放在洁净的蜡版上,滴一滴预冷的固定液,用新的、锋利的刀片将组织切下并修小,然后用牙签或者镊子将组织块移至盛有冷的固定液的1.5ml离心管中。如果组织块带有较多的血液和组织液,应先用PBS洗几遍,然后切成小块固定。 1.动物及人体组织的取材(在冰浴上进行) 动物组织的取材,应麻醉(1%戊巴比铵5ml/kg体重腹腔注射)或断头急性处死,解剖出所需器官,用解剖剪刀剪取一小块组织,放在干净的纸板上,滴一滴冷却的固定液,用新的、无油污的锋利双面刀片将材料切成大约1mm宽,2~3mm长的3的小块,1mm小块并从中选出受损伤较小的小条,再将其切成最后用牙签将这些小块逐一放入盛有预冷的、新鲜固定液的1.5ml管内,放入冰箱冷藏室低温固定(0~4℃)2-4小时或以上。 *固定结束后,将固定液用PBS稀释三倍,样品于该溶液中在4℃冰箱保存。送样前请用PBS浸泡清洗3次,贴好标签送至电镜室。 2.体外培养细胞的取材(在冰浴上进行) 培养在培养瓶中的细胞取材时,先倒出部分培养液,然后用刮刀轻轻刮下瓶壁上的细胞,将细胞悬液转移到离心管中, 离心机4℃低速离心(2000转/分)10分钟,使细胞聚成团块,弃去 上清,沿壁小心加入新鲜的固定液,保持细胞成团状态,于4℃冰箱中固定2小时以上。

(整理)样品保存方法

精品文档 分析项目 固定剂名称 采样器皿 保存方法 保存时间 钙 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 铬 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 铅烟 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 铅尘 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 锰 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 钼 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 镍 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 钾 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 钠 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 锌 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 一氧化氮 吸收液 空气采样器,多孔玻板吸收管 封闭吸收管进出气口,置于清洁容器中 当天测定 二氧化氮 吸收液 空气采样器,多孔玻板吸收管 封闭吸收管进出气口,置于清洁容器中 当天测定 氨 吸收液 空气采样器,大型气泡吸收管 封闭吸收管进出气口,置于清洁容器中 当天测定 氰化氢 吸收液 空气采样器,小型气泡吸收管 封闭吸收管进出气口,置于清洁容器中 当天测定 氰化物 微孔滤膜 空气采样器 滤膜置于具塞刻度试管 室温下至少7天 磷酸 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可保存3天 二氧化硫 吸收液 空气采样器,多孔玻板吸收管 封闭吸收管进出气口,置于清洁容器中 室温下可保存15天 三氧化硫 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于具塞比色管 室温下可保存3天 硫酸 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于具塞比色管 室温下可保存3天 硫化氢 吸收液 空气采样器,多孔玻板吸收管 封闭吸收管进出气口,置于清洁容器中 至少可保存5天 氟化氢 微孔滤膜 空气采样器,多 封闭吸收管进出气 室温下可保存7天

食品样品的采集与制备

食品样品的采集与制备 样品(sample)是指从某一总体中抽出的一部分,食品采样(sampling)是指从较大批量食品中抽取能较好地代表其总体样品的方法。食品卫生监督部门或食品企业自身为了解和判断食品的营养与卫生质量,或查明食品在生产过程中的卫生状况,可使用采样检验的方法。根据抽样检验的结果,结合感官检查,可对食品的营养价值和卫生质量作出评价,或协助企业找出某些生产环节中存在的主要卫生问题。食品采样是食品检测结果准确与否的关键,也是营养食品卫生专业人员必须掌握的一项基本技能。 (一)采样目的 食品采样的主要目的是鉴定食品的营养价值和卫生质量,包括食品中营养成分的种类、含量和营养价值;食品及其原料、添加剂、设备、容器、包装材料中是否存在有毒有害物质及其种类、性质、来源、含量、危害等。食品采样是进行营养指导、开发营养保健食品和新资源食品、强化食品的卫生监督管理、制定国家食品卫生质量标准以及进行营养与食品卫生学研究的基本手段和重要依据。 (二)采样原则 1. 代表性在大多数情况下,待鉴定食品不可能全部进行检测,而只能抽取其中的一部分作为样品,通过对样品的检测来推断该食品总体的营养价值或卫生质量。因此,所采的样品应能够较好地代表待鉴定食品各方面的特性。若所采集的样品缺乏代表性,无论其后的检测过程和环节多么精确,其结果都难以反映总体的情况,常可导致错误的判断和结论。 2. 真实性采样人员应亲临现场采样,以防止在采样过程中的作假或伪造食品。所有采样用具都应清洁、干燥、无异味、无污染食品的可能。应尽量避免使用对样品可能造成污染或影响检验结果的采样工具和采样容器。 3. 准确性性质不同的样品必须分开包装,并应视为来自不同的总体;采样方法应符合要求,采样的数量应满足检验及留样的需要;可根据感官性状进行分类或分档采样;采样记录务必清楚地填写在采样单上,并紧附于样品。 4. 及时性采样应及时,采样后也应及时送检。尤其是检测样品中水分、微生物等易受环境因素影响的指标,或样品中含有挥发性物质或易分解破坏的物质时,应及时赴现场采样并尽可能缩短从采样到送检的时间。 (三)采样工具和容器

样品制作管理办法

样品制作管理办法 更多免费资料下载请进:https://www.360docs.net/doc/5817523895.html,好好学习社区

样品制作管理办法 一、目的: 1.1配合公司发展需求,规范样品制作流程、最终达到顾客满意。 二、适用范围: 2.1适用于营业需求之自制新产品、非自制之新产品、新客户需求样品。 三、定义: 略. 四、职责: 4.1营业部:样品需求的提出,市场调查、掌握客户需求信息,负责承接客户需求,对厂内提出需求,负责送样及客户信息回馈与传达。 4.2物流部: 外购品供应商开发与评鉴,负责和供应商联络及索取所需之样品及资料;负责样品或制作样品所需之原材购买。 4.3工程部:负责接收营业部提出之样品需求,并协助制造部制做样品;负责营业、采购提供之样品及资料审核;外购样品承认核准及建档;负责营业、采购提供样品之最 终判定;负责跟催营业取得客户反馈样品承认状况。 4.4制造部: 生产样品、协助执行外购样品包材或自制产品之零组件试样。 4.5品控部:受工程委托进行样品之检验及相关功能测试。 五、作业内容: 5.1样品需求的提出: 5.1.1营业根据市场和客户需求(包括HSF要求),确认需求的样品数量,如为已量产产品需先确认是否有库存,如有则自行领取,并送品保做检验。如需重新制作则开立《样品制作需求单》,审签后交工程样品专员处理.

5.2样品制作: 5.2.1工程样品专员收到《样品制作需求单》首先确认所需样品为自制还是外购,如确认为自制则填写《样品制作流程管制表》,交由负责该产品工程师开立《非生产领料单》领取所需物料或开立《请购单》购买物料,通过生管安排制造单位制作,并将《样品制作流程管制表》及相关资料交与制造单位。 5.2.2当样品为外购时由工程开立《工程样品需求单》,由采购向供应商索取样品、承认书(包含图面、材质证明、电镀测试报告、包装方式、SGS检测报告、低毒测试报告,保证函等)、相关检验报告并交工程负责人员确认,工程单位主管判定并签核。签核后之样品承认书交于文控中心分发至相关单位,以备查看,参考《零件承认管理办法》。客户索要样品数超过500PCS时,营业需要求客户下订单,特殊情况需呈请事业部最高主管核准。 5.3样品检验及测试: 5.3.1 制造单位样品制作完成后将样品及《样品制作流程管制表》交品保单位。 5.3.2品保接获样品及《样品制作流程管制表》后,按工程单位要求检验项目找到对应检验标准如:工程图面(客户提供资料)、QIP、产品规格书等进行相关检验与测试,保证厂内工程图面与客户提供标准的一致性。 5.3.3 5.3.4 样品测试完成由品保填写《样品检验记录表》,由主管签核。 5.4样品包装: 5.4.1样品外购或自制并测试完成后,交工程负责产品工程师做此次样品的最终判定,判定OK后,由负责产品工程师指导进行包装,贴上相关标签;交样品专员登记后转交需求单位;如客户有特殊要求,依客户要求执行。

临床样本保存及处理方式

临床常见的标本有血清(浆)、全血、分泌物、棉拭子、脓液、体液、新鲜组织、石蜡切片等,这些临床标本的处理和保存方法各有不同。 临床标本的处理 血清(浆)标本 一些病原体,如乙肝病毒(HBV)、丙肝病毒(HCV)、人类免疫缺陷病毒(HIV)等的PCR检测常采用血清或血浆标本。 HBV: 标本通常由医护人员采集,应注意避免溶血,如为血浆标本注意抗凝剂的选择,一般用EDTA-Na2或枸橼酸纳,不可使用肝素。标本为全血时,及时分离出血浆,提取病毒DNA进行检测。 HCV: 检测RNA病毒。由于RNA极易降解,标本的制备和保存方式往往可以影响测定结果。若用血浆标本,应使用EDTA抗凝。严禁使用肝素,因其对PCR扩增有抑制作用,且无法在核酸提取过程中去除。抗凝后6小时内分离血浆。如用血清标本,则应尽快(2小时内)分离血清进行检测,或-20oC保存。 全血标本 通常用来提取外周血单个核细胞核酸: 如基因组DN A、线粒体DN A、总RNA等。 抗凝剂: 一般使用EDTA-Na 2、枸橼酸xx,不使用肝素。

1)加适量的红细胞裂解液(破膜液),裂解全血中的红细胞。 2)再加适量的细胞核裂液(破核液),裂解白细胞中的细胞核,使核内DNA释放出来。 3)然后再加SDS(十二烷基硫酸钠)等去污剂,溶解脂蛋白,解聚核蛋白。 SDS可与蛋白质结成复合物,使蛋白质变性沉淀,但SDS在以后的核酸提取过程中必须除去。 痰标本 痰属于分泌物,临床上常用作结核杆菌DNA测定样本,由于痰标本中含大量粘蛋白和杂质,故在核酸提取时,一定要对标本进行前处理,即用4%NaOH 液化,去除粘蛋白,然后用煮沸或蛋白酶、酚/氯仿等经典法提取DNA。 具体方法: 用无菌平皿取患者肺深部咳出的痰液1-3ml,↓加入4倍体积4%NaOH,摇匀,室温下放置30分钟左右液化↓取 1.5ml EP管,加 0.5ml液化痰液,再加 0.5ml 4%NaOH室温放10分钟↓ 12000 rpm,离心15分钟↓弃上清,加无菌生理盐水1 ml,混匀,12000rpm离心5分钟↓弃上清,沉淀物用于DNA提取 棉拭子 用PCR方法检测性病病原体时(衣原体、支原体、淋球菌、梅毒螺旋体、人乳头状瘤病毒等),临床标本一般为棉拭子。标本取材是关键,衣原体等病原体感染上皮细胞,因此取材一定要取到细胞。

样品采集与制备(1)复习课程

和田青松样品采集与制备制度 一、目的 为规范样品的采集与制备,所取的样品具有及时性、准确性和代表性,减少因样品制备影响检测结果,特制定规范本标准。 二、范围 本标准适用于进厂原燃材料、生料、煤粉、熟料、商品熟料、出磨水泥、出厂水泥、水泥袋重检测、均匀性试验等样品的采集与制备。 三、职责 化验室控制室负责进厂原燃材料、生产过程、出厂水泥的样品采集与制备工作。 四、样品的采集及制备的一般规定 严格按照本标准规定的方法采集及制备样品,取样、制样工具和设备要清洁,采集粉状或粒状样品应剥离表面,在0.2-0.3米深处取样,所取样品要有代表性,样品在制备过程中要防止粉状飞溅,除按要求缩分剔除的样品外不得随意把样品丢掉,传递样品时,标签内容要填写清楚。 五、程序: 1、进厂原燃材料 ①原煤取样及样品制备 a)接到汽车衡通知有原煤进厂时,由取样人员按产地

每车次取一次,人工在原煤、辅料堆场根据每堆的堆型均匀布置10个点,每个点铲一铲,在现场缩分后,每次取样不少于5公斤。 b)布堆煤采用人工取样,每入一次一班取两次样,在入均化堆场的皮带上每隔1分钟取0.5kg取15分钟,取样量不少于5kg。把每班的煤样合并。 c)进厂原煤和布堆原煤取回后经SPC-1/8破碎缩分联合制样机破碎。破碎前要先开机半分钟,把破碎缩分机和接料斗中上一次破碎剩余样品清理干净,并检查分料装置是否畅通。破碎时不要一次加料过多,以免造成堵料或外溢,且要随时观察缩分器,如发现下料不畅要及时疏通。破碎、缩分后的样品应在100g以上,准确称取100g样品,然后检测水分。如果样量少于100g,则准确称取样品,然后检测水分;水分检测执行《物料水分的测定》。 d)水分测定时间为1小时,测定水分后的样品在震动研磨机上进行粉磨,粉磨前要将煤专用磨盘清扫干净至没有上次粉磨的煤样存留,清理时要用清理煤磨盘的专用工具,不得与清理其它磨盘的工具混用,粉磨时间为2分钟,磨完后用小勺将煤粉先集中到磨盘的一侧,然后用小勺依次将煤粉装袋并标识,标识内容包括:样品名称、取样时间、班次、取样人、取样日期以及水分,装袋量要适中,以装满且能封口为准,装袋后的煤样放在控制制样室的煤样品盒中。 e)样品取回后,要在《进厂煤取样记录》和《布堆取样记录》中记录煤的品种、产地、取样时间、存放地点、取样

饲料样品的采集与制备

实验一饲料样品的采集与制备 一、实验目的 通过学习,使学生了解饲料原始样品的采集方法,掌握分析样品的制备及保存方法,掌握相关的基本概念。 二、仪器与工具 剪刀、刀、取样铲、组织捣碎机、样本粉碎机(40~60目)、采样器(适用颗粒料)、套管采样器(适用于粉状饲料)、扦样玻璃管、扦样筒(适用于散状液体饲料)。 二、方法步骤 (一)基本概念 从受检的饲料产品或原料中,按规定抽取一定数量具有代表性的部分,称为样品。采集样品的过程叫采样。样品一般分为原始样品和分析样品。从一批受检的饲料或原料中最初抽取的样品,称为原始样品,原始样品一般不少于2㎏。原始样品经过混合分样,根据需要从中抽取一部分,用作实验室分析,称为分析样品,分析样品一般为500g。在某种程度上可以说采样比分析更重要。要求采集的样品具有代表性。 (二)原始样品的采集 不同饲料样品的采集因饲料的状态、性质、颗粒大小、包装方式和数量的不同而异。 1、袋装 用采样器随机从不同袋中分别取样,混合后即得原始样品,每批采样的袋数取决于总袋数、颗粒大小和均匀度。可以根据下表(表-2)计算得出。 表-2 袋装饲料采集方案 饲料包装单位取样包装单位(袋) 10个以下每袋取样 10~100 10袋 100以上10袋为基础,每增加100个,多取3个包装单位 2、仓装 可根据饲料层厚度,按高度分层采样。料层>0.75米时,取三层,上(10~15㎝)、中、下(20㎝);料层<0.75米,取两层,上(10~15㎝)、下(20㎝)。每层至少分5个采样点。见下图:

3、桶装 桶装饲料多为液体或半固体,应根据桶的数量确定取样桶数(见表-3)。每桶应取3点,取样前应混匀。 表-3 桶装饲料采样方案 7桶以下不少于5桶 10桶以下不少于7桶 10~50桶不少于10桶 51~100桶不少于15桶 100桶以上不少于15%的总桶数采样 (三)分析样品的采集 分析样品一般是原始样品通过“四分法”而得到。四分法的方法是:将饲料混匀,铺成四方形或圆形,用取样铲、刀子或其他器具在饲料上画“十”字,将饲料分成四等分,任意弃去对角的两份,将剩余的两份混合,继续重复上述步骤,直到剩余样品数量接近需要量(通常为500g)为止。 (四)样品的制备 采集来的分析样品,还需经过烘干、粉碎和混匀、装瓶保存等过程,这个过程就是样品的制备。对于风干样品(含水量在15%以下)可直接用样品粉碎机粉碎,通过1mm孔筛(40~60目),装入磨口广口瓶,贴上标鉴,注明样品名称、采样地点、采样日期、制样日期和分析日期。对于新鲜样品,还需烘干以得到风干样品的过程,同时测定饲料的初水分。 初水分测定步骤: (1)在已知重量的瓷称取鲜样200~300克; (2)放入120℃烘箱中烘10~15分钟; (3)60~70℃烘箱中烘8~12小时; (4)取出放置空气中冷却24小时,充分回潮称重; (5)再将装有样品的瓷盘放入60~70℃烘箱内烘24小时,回潮24小时,称重,两次重量之差小于0.5克为止。 思考题: 1、什么叫采样、原始样品和分析样品? 2、什么叫“四分法”? 3、测定出水分时,为何先要在120℃烘箱中烘10~15分钟后才转入60~70℃烘箱?(使植物加快死亡,细胞及酶失活)

实验样品采集运输保存方法修订版

实验样品采集运输保存 方法修订版 IBMT standardization office【IBMT5AB-IBMT08-IBMT2C-ZZT18】

1. RNA实验样品采集、保存方法 1.1 使用范围及样品量 类别:Microarray Service;Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 样本量: 样本样本量 1*107个 哺乳动物培养细胞样品(悬浮细 胞) 15cm2 哺乳动物培养细胞样品(贴壁细 胞) 植物组织样品100mg-1g,根据植物不同部位的组织 决定组织需要量,尽可能多些,但不必超过 1g 1.2 动物组织样品 1.2.1 新鲜组织样品

A. 使用RNAlater试剂 取新鲜组织(注:动物死亡后尽快在10min内取材),组织块以PBS或生理盐水清洗干净,所用组织必须切至厚度在0.5cm一下,然后放入装有5倍体积RNAlater的离心管(或冻存管)中。 4度孵育过夜,此时样品管需要横置以便组织块充分接触到RNAlater,然后转入-20中保存,样品在-20不会冻结,但溶液中可能会有一些晶体出现,这并不影响后续的RNA 抽提。 B. 使用Trizol试剂 取新鲜组织(1min以内),组织块以PBS或生理盐水清洗干净,每50-100mg组织加入1ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品,最好冰上进行操作。 匀浆的裂解液4度短期保存(1month),-20或者-70度长期保存。 1.2.2 冻存组织 生物体死亡后尽快(10min以内)切取新鲜组织,并以PBS或生理盐水清洗干净切成小块;培养液倒入离心管中,离心沉淀细胞,弃去上清液。 细胞沉淀(1*107个)中加入1ml Trizol裂解液 反复吸打几次后,目视可见细胞层溶液完全 -70保存 1.3 贴壁细胞

样品管理控制办法

样品管理规范 1.目的 确保样品/样件接收、提取、登记、评审和保存等活动得到有效控制。2.范围 2.1顾客提供给本公司的产品样品/样件和从市场得到的样品/样件。 2.2供应商为按本公司和顾客要求而提供的外协件、外购件、材料样品。 2.3本公司按照顾客设计规范而生产、装配的用于生产件批准提交的样品,以及 生产、装配作业中生产、装配和检验的比对的极限和不良样品。 3.术语 3.1极限样品:外观品质,无法以书面订定规格或容许与既定之标准有某些程度 公差之样品实物称之为限度样品; 3.2 标准样品: 客户提供的标准样品或者项目部和质量部签发的合格样品; 3.3 不良样品: 缺陷样品,具有一个或一个以上明显缺陷的产品。 4.职责 4.1质量部负责按照顾客提供有关设计/检验规范对供应商提供给本公司的样品 /样件和从市场得到的样品/样件进行检测并组织确认。 4.2质量部负责从本公司进货、生产、装配等阶段提取作生产、装配及检验之用 的比对样品。 4.3质量部是样品管理的归口部门,质量工程师负责所属项目样品建档,签发及

管理;

检验员负责所属样品的建档、使用、清洁和保管。 4.4项目部负责对顾客样品和本公司标准样品进行签发,并负责从本公司进货、 生产/装配中,提取本公司生产的样品作为向顾客提交的标准样品。 4.5 项目部负责新产品各相关工序的标准样品、极限样品、缺陷样品的封样。 4.6国内采购物流部及国际销售物流部负责与顾客联系样品、样件。 4.7国内采购物流部及国际销售物流部负责与供应商联系样品、样件。 5.工作程序 5.1顾客样品控制 5.1.1项目部负责对顾客签发的样品进行接收移交质量部管理并妥善保存,质量 部将样品资料登记于“样品一览表”并放置在样品柜。 5.1.2项目部负责对需确认的顾客样品进行审查,审查的内容如下: a)样品是否有缺陷或不明确之处; b)与图纸规范要求是否一致; c)本公司是否具备相应的生产能力等。 5.1.3审查后,若有问题应及时反馈国际销售物流部,由其与顾客及时联系直至解 决,并依照顾客图纸、样品及其它技术文件资料拟订相应的技术规范和 工艺标准。 5.2供应商样品控制 5.2.1供应商按照本公司提供的图纸、样品等技术资料而生产制造样品。若是小 批量试样,则该样品必须是取自供应商的正常生产过程中的代表性产品。

食品营养与卫生实验一-食品样品的采集与制备

实习一食品样品的采集与制备 样品(sample)是指从某一总体中抽出的一部分,食品采样(sampling)是指从较大批量食品中抽取能较好地代表其总体样品的方法。食品卫生监督部门或食品企业自身为了解和判断食品的营养与卫生质量,或查明食品在生产过程中的卫生状况,可使用采样检验的方法。根据抽样检验的结果,结合感官检查,可对食品的营养价值和卫生质量作出评价,或协助企业找出某些生产环节中存在的主要卫生问题。食品采样是食品检测结果准确与否的关键,也是营养食品卫生专业人员必须掌握的一项基本技能。 (一)采样目的 食品采样的主要目的是鉴定食品的营养价值和卫生质量,包括食品中营养成分的种类、含量和营养价值;食品及其原料、添加剂、设备、容器、包装材料中是否存在有毒有害物质及其种类、性质、来源、含量、危害等。食品采样是进行营养指导、开发营养保健食品和新资源食品、强化食品的卫生监督管理、制定国家食品卫生质量标准以及进行营养与食品卫生学研究的基本手段和重要依据。 (二)采样原则 1. 代表性在大多数情况下,待鉴定食品不可能全部进行检测,而只能抽取其中的一部分作为样品,通过对样品的检测来推断该食品总体的营养价值或卫生质量。因此,所采的样品应能够较好地代表待鉴定食品各方面的特性。若所采集的样品缺乏代表性,无论其后的检测过程和环节多么精确,其结果都难以反映总体的情况,常可导致错误的判断和结论。 2. 真实性采样人员应亲临现场采样,以防止在采样过程中的作假或伪造食品。所有采样用具都应清洁、干燥、无异味、无污染食品的可能。应尽量避免使用对样品可能造成污染或影响检验结果的采样工具和采样容器。 3. 准确性性质不同的样品必须分开包装,并应视为来自不同的总体;采样方法应符合要求,采样的数量应满足检验及留样的需要;可根据感官性状进行分类或分档采样;采样记录务必清楚地填写在采样单上,并紧附于样品。 4. 及时性采样应及时,采样后也应及时送检。尤其是检测样品中水分、微生物等易受环境因素影响的指标,或样品中含有挥发性物质或易分解破坏的物质时,应及时赴现场采样并尽可能缩短从采样到送检的时间。

土壤样品的采集与制备

90Sr土壤样品的采集与制备 一、土壤样品的采集 土壤样品的采集方法对分析结果和评价影响很大,采样时的误差往往比分析的测定误差更大。因而,必须严格采集,保证土样具有代表性,能正确真实地反映原采样地块的土壤情况。土样采集的时间、地点、层次、方法、数量等都由土样分析的目的来决定。 1.采样前的准备工作采样前必须了解采样地区的自然条件(母质、地形、植被、水文、气候等),土壤特征(土壤类型、层次特征、分布)及农业生产物特性(土地利用、作物生长、产量、水利、化肥、农药的使用情况等),是否受到污染及污染的历史与现状等情况。在调查的基础上,根据需要和可能来布设采样点,同时挑选一定面积的对照地块。 2.采样点的选择由于土壤本身在空间分布上具有较大的不无均匀性,需要在同一采样地点作多点采样,再混合均匀。当采样地点的面积不大(1000m2---2000m2以内)时,可在不同方位上选择5---10个有代表性的采样点,采样点的分布不能太集中,通常采用下列方法(图5-4) 3.采样深度一般性地了解土壤受污染情况,采取深度约15cm的耕层土壤和耕层以下(15---30)cm的土样。如果要了解土壤污染深度,则应按土壤剖面层次分层取样。在每个采样点上,按层垂直向下切取土壤。每个点取厚约1cm的土壤,且在每个点上所取的土量要基本相等,采样完毕后将各点的土样混合均匀即可。如要测定重金属,则应将和金属采样器接触部分剥去。 4.采样时间采样时间视测定的目的而定。若为了了解土壤污染情况,则可随时采集土样测定;若为了了解在该田块上生长的植物污染状况,则可在植物收获季节同是采集土壤和植物样品。 5.土样数量一般要求采样1k g左右。由于土壤样品不均匀需多点采样而取土量较大时,应反复以四分法缩分至所需量。 6、注意事项 (1)采样点不能选在田边、路边和服堆边。 (2)经最后缩分所得的土样应装入塑料袋中,同是备好记有采样地点、日期、样品情况、采样人等项目的标签。 二、土壤样品的制备 1.土样的风干需要用风干土样,因为风干的土样较易混匀,重复性和准确性都较好。风干的方法为:将采回的土样倒在盘中,趁半干状态把土块压碎,除去植物残根等杂物,铺成薄层并经常翻动,在阴凉处使其慢慢风干。 2.磨碎与过筛风干后的土样,用有机玻璃(或木棒)碾碎后过2mm塑料(尼龙)筛,除去2mm以上的砂砾和植物残体(若砂砾量多时应计算其占土样的百分比)。留下的样品进一步磨细过0.25mm孔径的塑料(尼龙)筛,充分拌匀后装瓶备用。 3.含水量的测定无论何种土样均需测定土样的含水量以便按烘干土为基准进行计算。可在百分之一的天平上称取土样(20-30)g,在105℃下烘(4-5)h,干燥至恒重,计算含水量,以mg?kg-1表示。 90Sr生物样品的采集与制备 与任何其他采样一样,采集前应对所采集对象作必要的调查,选出采样区和对照采样区,在采样区内再划出和固定一些有代表性和生长典型的小区。根据采样的次数及每次采样的数量决定采样布点。

相关文档
最新文档