Jagged1基因敲除小鼠血管内皮发育异常

合集下载

Jagged1蛋白在肌源性干细胞分化为神经样细胞过程中的表达差异

Jagged1蛋白在肌源性干细胞分化为神经样细胞过程中的表达差异

Jagged1蛋白在肌源性干细胞分化为神经样细胞过程中的表达差异郭占鹏;梅晰凡;李全双;王滢丽;张赫;刘世琼【期刊名称】《辽宁医学院学报》【年(卷),期】2009(030)005【摘要】目的 Jagged1蛋白在大鼠肌源性干细胞(MDSCs)体外增殖分化为神经样细胞过程中的表达差异研究.方法大鼠乳鼠骨骼肌消化后体外培养增殖,第5代传代后细胞分为2组:对照组完全培养基培养,诱导组加入诱导剂诱导.6 d后观察2组细胞的形态变化,并进行NSE免疫细胞化学鉴定.然后通过免疫荧光观察Jagged1蛋白的表达差异.结果诱导组细胞NSE染色阳性,免疫荧光结果显示对照组Jagged1蛋白表达阳性,实验组基本不表达.结论大鼠肌源性干细胞分化为神经样细胞过程中Jagged1蛋白表达存在明显差异.【总页数】4页(P389-391,477)【作者】郭占鹏;梅晰凡;李全双;王滢丽;张赫;刘世琼【作者单位】辽宁医学院附属第一医院骨科;辽宁医学院附属第一医院骨科;辽宁医学院附属第一医院骨科;辽宁医学院附属第一医院内分泌科,辽宁,锦州,121000;辽宁医学院附属第一医院骨科;辽宁医学院附属第一医院骨科【正文语种】中文【中图分类】R687【相关文献】1.与胰岛共培养诱导肌源性干细胞分化为胰岛素分泌细胞的可能性研究 [J], 王欣燕2.Detla1基因在肌源性干细胞分化为神经样细胞过程中的表达 [J], 郭占鹏;梅晰凡;袁亚江;张赫;李全双3.大鼠乳鼠肌源性干细胞体外诱导分化为神经样细胞 [J], 郭占鹏;梅晰凡;李全双;袁亚江;王岩松;张赫;刘世琼4.转染SMDF基因的小鼠肌源性干细胞分化为施万样细胞的初步研究 [J], 宋艳玲;沈拓;朱峰;张盈帆;苏志达;江华5.肌源性干/祖细胞对造血干细胞分化、支持的研究进展 [J], 古晶晶因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

小鼠血管内皮细胞的培养、鉴定及巨噬细胞移动抑制因子对其促增殖作用的研究

小鼠血管内皮细胞的培养、鉴定及巨噬细胞移动抑制因子对其促增殖作用的研究
[ 摘要 】 目的 探 讨 小 鼠血 管 内 皮 细 胞 的 培 养 、 鉴定方法及 巨噬细胞移动抑 制因子 ( MI F ) 对 其 增 殖 活 性 的 调 节
作 用 。方 法 取 小 鼠主 动 脉 , 去 除周 围 的 脂 肪 和结 缔 组 织 , 将动脉环剪成 0 . 5 n l m大小 , 放入基质胶 处理 的 1 2孔 培 养 板 内, 待 细 胞 长满 , 用胰酶消化后 , 取单细胞悬液用抗 C D 1 4 6免 疫 磁 珠 纯 化 , 再用 C D 3 1抗 体 鉴 定 细 胞 纯 度 , 按 l 0 个 细胞/ f - L 加入 9 6孔 板 培 养 , 细胞 7 0 % ~8 0 % 融 合 时 用 不 同 浓 度 M1 F或 MI F抑 制 剂 处 理 细 胞 , 4 8 h后 用 甲 基 噻 唑 基 四 唑( M T T ) 检 测 细 胞 增 殖 程 度 。结 果 经C D 1 4 6磁 珠 纯 化 后 细 胞 纯 度 为 9 5 % 以上 , MT T检 测 结 果 显 示 低 剂 量 MI F能
c o m m o d a t i o n o n p r o l i f e r a t i o n b y ma c r o p h a g e m i g r a t i o n i n h i b i t o r y f a c t o r( MI F ) .Me t h o d s Mu r i n e a o r t a V E C w e r e g o t i r d o f
的增 殖 , 说明 M I F在 血 管 内皮 细胞 的 多 种病 理 生 理 反 应 中 起 重 要 作 用 。 [ 关键词 ] 巨噬细胞移动抑制因子 ; 血 管 内皮 细 胞 ; 细胞培养技术 ; 剂量效应关 系; 小 鼠 [ 中国 图书 资 料 分 类 号 ] R 一 3 2 2 ; R 3 2 9 . 5 [ 文 献 标 志码 ] A [ 文章编号 ] 2 0 9 5 — 1 4 0 X( 2 0 1 3 ) 0 1 — 0 0 1 0 - 0 4

基因敲除在肾素血管紧张素系统研究中的应用

基因敲除在肾素血管紧张素系统研究中的应用

基因敲除在肾素-血管紧张素系统研究中的应用关键词:基因肾素-血管紧张素系统高血压肾素-血管紧张素系统(RASA)在维持正常血压和电解质平稳中起着十分重要的作用[1],也是高血压防治研究的中心环节[2]。

80年代以来对RAS的研究已深切到基因和分子水平,如RAS基因多态性与高血压发病的研究等[3]。

最近几年来应用基因打靶(genetargeting)那么为RAS研究提供了一个全新的手腕,本文着重介绍其中的基因敲除(genekockout)在这方面的应用。

1基因敲除的大体原理和步骤大体原理基因敲除是利用基因同源重组(genehomologousrecombination)又称基因打靶的原理,用外源片断整合到活体细胞DNA的同源序列中,使某个基因被取代或破坏而失活,由于同源重组具有高度特异性和方向性,外源片断也具有可操作性,故该技术可使细胞的基因定点和定量改变[4,5]。

大体步骤为了改变某个动物的基因型且能稳固遗传,科学家们经太长期探讨成立了将胚胎干细胞(embryostemcellESC)基因打靶及胚胎移植结合起来的一套新技术[6,7]。

ESC取自小鼠胚泡的内细胞层细胞,具有能在体外培育保留又能在必然条件下发育成个体的性能。

在体外进行基因操作后植回小鼠胚泡发育成嵌合体。

嵌合体是含有突变基因的性腺细胞,通过杂交便取得突变基因的纯合子和杂合子。

基因敲除进程:先克隆ESC靶基因的同源片断。

用限制性内切酶切开其外显子两头,插入一个标志/选择基因(经常使用Neo-新霉磷酸转移酶基因,作为阳性选择基因和阳性同源重组的标志),另在载体同源序列外围接上另一个阴性选择基因(经常使用单纯疱疹病毒胸腺嘧啶激酶基因,作为非同源重组的标志和挑选基因)。

将载体导入ESC,用含G418/GANC 的培育液作正负选择系统PNS)挑选出已发生同源重组的ESC,将后者植入另一怀孕小鼠的胚泡后发育娩出嵌合体小鼠。

用Southem杂交来鉴定已携带敲除基因(即含Neo基因)的雄鼠,再用后者与同系雌鼠交配娩出基因敲除的杂合子即F1,F1近交便产生基因敲除的纯合子和杂合子(F2),经多次交配繁衍出数量众多的新品系小鼠且维持基因性状稳固遗传和供研究之用。

Jagged 1在辐射诱导肺纤维化中的作用

Jagged 1在辐射诱导肺纤维化中的作用

Jagged 1在辐射诱导肺纤维化中的作用来志扬;魏仲航【期刊名称】《中国实验诊断学》【年(卷),期】2018(022)012【总页数】3页(P2151-2153)【作者】来志扬;魏仲航【作者单位】吉林大学中日联谊医院放射线科,吉林长春 130033;吉林大学中日联谊医院急救医学科,吉林长春 130033【正文语种】中文Jagged1(JAG1)可以调节诸多细胞表型,并在辐射诱导的肺纤维化过程中发挥重要作用,在肺损伤发展过程中,血管周围成纤维细胞中的Notch被激活,激活的Notch可与JAG1结合,并抑制肺组织正常的损伤修复过程,从而促进肺纤维化的发生发展。

放射性肺纤维化是放射治疗最为棘手的并发症之一。

如何减少放射性肺纤维化的发生、减轻肺纤维化程度,以增强放疗的效果已经成为肿瘤放射治疗的一个热点。

了解掌握JAG1在肺纤维化发生、发展中的分子机制,对防治肺纤维化,减少并发症的发生具有重要意义。

本文对JAG1在放射性肺纤维化中作用的分子机制及治疗进展进行综述。

哺乳动物有4种Notch受体(Notch1-4)和5种Notch配体(Delta-like1/3/4,Jagged1/2)。

Notch信号的产生是通过相邻细胞的Notch配体与受体相互作用,Notch蛋白经过3次剪切,由胞内段(NICD)释放入胞质,并进入细胞核与转录因子CSL结合,形成NICD/CSL转录激活复合体,从而激活HES、HEY等碱性螺旋转录抑制因子家族的靶基因,发挥生物学作用[1-3]。

肺部受到辐照或化学药物损伤过程中,成纤维细胞产生的少量基质可以促进损伤修复,但当产生基质过多的时候,就可以形成瘢痕或纤维化。

所以成纤维细胞是纤维化形成过程中的核心细胞[4,5],在肺损伤修复过程中同样发挥至关重要作用。

Notch-JAG1主要作用是调节肺细胞的表型,从而发挥生物学功能,包括调节肺动脉细胞、支气管平滑肌细胞,所以Notch-JAG1可能在肺成纤维细胞中也有调控作用[6,7]。

Jagged 1在生理性和病理性新生血管形成中的表达变化

Jagged 1在生理性和病理性新生血管形成中的表达变化

Jagged 1在生理性和病理性新生血管形成中的表达变化目的观察Jagged 1在生理性和病理性新生血管形成中的表达变化,为肿瘤的治疗寻找新的靶点。

方法体外培养血管内皮细胞免疫细胞化学法检测其Jagged 1的表达。

建立鸡胚尿囊膜动态血管发育模型,免疫荧光化学和Western blot检测不同发育时期尿囊膜血管中Jagged 1的表达。

免疫组织化学和Western blot检测正常结直肠组织和大、中、小三种尺寸的结直肠癌肿块中Jagged 1的表达。

结果(1)免疫细胞化学结果显示,Jagged 1是细胞跨膜蛋白,表达于细胞膜上。

(2)成功建立鸡胚尿囊膜动态血管发育模型,其免疫荧光和Western blot 结果显示,Jagged 1随着血管的发育而表达,随血管密度、血流量增加而表达上调。

(3)免疫组化结果显示Jagged 1在结直肠癌中广泛表达,而在正常皮肤及结直肠组织中表达较少,Jagged 1的表达量同肿瘤的体积有关。

结论Jagged 1在内皮细胞、血管发育初期和肿瘤新生血管中表达上调,表明其可能是新生血管形成的早期事件,参与诱导下游新生血管形成基因的表达。

[Abstract] Objective To research the role of Jagged 1 in physiological and pathological neovascularization. Methods The expression of Jagged 1 were detected in endothelial cells by immunocytochemistry.The expression of Jagged 1 were detected in blood vessel of chick chorioallantoic membrane by immunofluorescence and Western blot.The expression of Jagged 1 were detected in normal colorectal mucosa tissue and three colorectal cancers with large,median and small volume by immunohistochemistry and Western blot. Results (1)Results of immunocytochemistry showed that Jagged 1 is a cell transmembrane protein and express in the cell membrane. (2)Successfully established the dynamic blood vessel developmental model of chick chorioallantoic membrane,The dynamic blood vessel developmental model of chick chorioallantoic membrane showed that the vascular network in chorioallantoic membrane develops gradually with embryo age and reveals the process of neovascularization,vigorous growth and wilt dynamically.Results of immunofluorescence and Western blot revealed that Jagged 1 has different expression profiling at different period of vascular development.The expression of Jagged 1 increased with the increasing of physiologic vessels,vessel density,blood supply. (3)Results of immunohistochemistry performed on hemangioma and colorectal cancer,Jagged 1 was widely expressed in neonatal vessels originated from hemangioma proliferation and few expressed in normal skin tissue.The expression of Jagged 1 was related to the tumor size in colorectal cancer. Conclusion The expression of Jagged 1 up-regulated in endothelial cells,primary period of vascular development and tumor angiogenesis,which may be an early event in neovascularization involved in inducing the expression of downstream gene.[Key words] Jagged 1;Angiogenesis;Chick chorioallantoic membrane肿瘤的生长和转移,均呈明显的新生血管依赖性。

Jagged-1抑制小鼠胚胎干细胞分化为造血干祖细胞

Jagged-1抑制小鼠胚胎干细胞分化为造血干祖细胞

January 2021Vol.41 No.12021年 1月 第41卷第1期基础医学与临床Basic & Clinical Medicine文章编号:1001-6325 ( 2021 ) 01-0055-07研究论文Jagged-1抑制小鼠胚胎干细胞分化为造血干/祖细胞陈日玲1,郑伟荣2,谭 霖3,刘东强3,史 惠3,陈启康1*收稿日期:2019-05-16 修回日期:2020-03-30基金项目:湛江市科技竞争性项目(2014A01022)*通信作者(corresponding author ) : chen.qikang@ (1.广东医科大学附属顺德妇女儿童医院儿科,广东顺德528300; 2.泉州市第一医院儿科,福建泉州362000;3.广东医科大学附属医院儿童医学中心,广东湛江524023)摘要:目的探讨Notch 信号通路在小鼠胚胎干细胞(ESC )分化为造血干/祖细胞(HSC/HPC )中的作用。

方法1)体外培养小鼠拟胚体细胞(EBs ),使用Jagged-1蛋白活化Notch 信号通路及DAPT (7-分泌酶抑制剂)抑制Notch信号通路。

实验分为拟胚体细胞复苏组(EB 组)、对照组、Jagged-1组、DAPT 组和Jagged-1-DAPT 组。

2)流式细胞计量术检测ESC 特异性表型和HSC/HPC 特异性表型的表达。

3)实时定量PCR 检测各组Notch 信号通路基因、小 鼠ESC 表型基因和HSC/HPC 表型基因的表达。

结果1) Jagged-1组细胞胚胎干细胞数较对照组和Jagged-1-DAPT组明显增多(P <0. 05) , 2)Jagged-1-DAPT 组分化的 HSC/HPC 数较 control 组及 Jagged-1 组明显增多(P <0. 05);3)Jagged-1 组 Notch1、Notch2、Notch4 mRNA 表达量较对照组明显升高(P <0. 05) ;4) DAPT 组和 Jagged-1-DAPT 组中 Notch1、Notch4 mRNA 表达量较对照组降低(P <0.05)。

Jagged1在树突状细胞诱导免疫耐受中的作用

Jagged1在树突状细胞诱导免疫耐受中的作用

Jagged1在树突状细胞诱导免疫耐受中的作用
滕振平;邢飞跃;于哲;曾耀英
【期刊名称】《细胞生物学杂志》
【年(卷),期】2006(28)4
【摘要】Jagged1是Notch信号通路中的一个配体,近来许多研究表明,它能诱导树突状细胞的成熟,并通过促使T淋巴细胞分化成调节性T细胞或II型T辅助细胞,从而诱导免疫耐受。

【总页数】4页(P535-538)
【关键词】Jagged1;树突状细胞;免疫耐受
【作者】滕振平;邢飞跃;于哲;曾耀英
【作者单位】暨南大学组织移植与免疫教育部重点实验室
【正文语种】中文
【中图分类】Q25
【相关文献】
1.Jagged1在树突状细胞介导淋巴细胞诱导免疫耐受中的作用 [J], 陈玲;邢飞跃;狄静芳;陈笛;廖继东
2.IL-12及Th1/Th2细胞因子在IL-10修饰的树突状细胞诱导大鼠角膜移植免疫耐受中的作用 [J], 李雪;刁玉梅;李兵
3.Jagged1在树突状细胞介导淋巴细胞诱导皮肤移植免疫耐受中的作用 [J], 陈玲;邢飞跃;狄静芳;陈笛;廖继东
4.他克莫司处理供者树突状细胞在诱导大鼠同种心脏移植免疫耐受中的作用 [J],
张桂铭;王祥花;孙立江
5.树突状细胞在诱导免疫耐受中作用机制的研究进展 [J], 李松;何浩;宋文刚
因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

Jagged-1

Jagged-1
p r o l i f e r a t i o n , a p o p t o s i s , a n d a n g i o g e n e s i s o f e n d o t h e l i a l p r o g e n i t o r c e l l s ( E P C s ) .Me t h o d s T h e E P C s w a s t r a n s f e e t e d b y t h e
EP Cs VEGF
蔡朝 民 , 何 小解 , 刘 香 萍 , 徐 羽中 , 李 小云 , 彭运 生
1 . 深圳 市宝安 区人 民医 院, 南 方医科大学附属宝安医 院检验科 , 广东 深圳 5 1 8 1 0 1 ; 2 . 中南大学湘雅二 医院儿 童医学中心 , 湖南 长沙4 1 0 0 1 1 摘要: 目的 研 究 J a g g e d 一 1 对 内皮祖细胞 血管 内皮生长 因子 ( V a s c u l a r e n d o t h e l i l a g r o w t h f a c t o r , V E G F ) 表达 、 增生 、
中国热带 医学 2 0 1 5 年第l 5 卷第 0 5 期
C h i n a T r o p i c a l Me d i c i n e , Ma y 2 0 1 5 , V o 1 . 1 5 , N o ・ 0 5

・5 3 3 ・

著・
J a g g e d . . . 1 An g I I
与未转染组显著增 高( 0 . 0 1 ) 。结论 提高 E P C s 的J a g g e d - 1 表达, 可 以提 高 E P C s 的成血管能力 , 原 因可能是 E P C s 中
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

交通医学2006年第20卷第6期MedJofCommunications,2006,Vol.20.No.6血管是胎生动物胚胎发育中最早形成的器官,鼠胚从第7.5天血岛开始形成到第11天完成原始血管系统[1-2]。

许多关键因子信号途径影响和控制着血管发育的早期过程,如VEGF、TGF2β、angiopoietin、Tie、Eph-Ephrin、Notch信号途径等[3,4]。

Notch信号途径由Notch受体、配体和下游效应物组成。

Notch是一个高度保守的细胞间信号机制,对哺乳动物胚胎发育十分重要,Notch信号的异常可引起严重的血管发育异常。

人类Notch配体Jagged1突变可引起阿拉日耶综合征。

Jagged1基因敲除小鼠死于胚胎10.5天,表现为血管发育异常和广泛出血,血管重塑严重缺陷[5]。

本实验利用Jagged1基因敲除小鼠为模型,进一步研究Jagged1基因敲除小鼠胚胎血管发育异常和血管重塑严重缺陷的细胞生物学基础。

1材料与方法1.1动物与试剂实验动物Jagged1基因敲除小鼠57BL/6J*129S1/SvImJ遗传背景(南京大学模式动物研究中心提供)。

动物均在SPF动物房饲养,温度在22±3℃,12小时明暗交替,饲料用60Co照射。

DMEM培养基,胎牛血清(GIBCO公司);DynabeadsBiotinBinder,DynalMPC-S(Dynalbiotech公司);Biotin-ConjugatedRatAnti-MouseCD31(PECAM-1),RatTailCollagenTypeI(BDPharmingen公司);Medium131,MVGS(MicrovascμlarGrowthSupplement),AF(AttachmentFactor)(cascadebio公司);胰蛋白酶,I型胶元酶(Sigma公司)。

1.2模型的获得将杂合子Jagged1基因敲除小鼠于第1天下午5点合笼(1雄×2雌),第2天早上8*[基金项目]江苏省高校自然科学研究计划项目(03KJB108111)。

**[作者简介]顾星星,男,生于1964年11月,汉族,江苏海门人,博士,副教授。

研究方向:发育生物学,神经生物学。

Jagged1基因敲除小鼠血管内皮发育异常*顾星星**陶慧(南通大学江苏省神经再生重点实验室,江苏22600l)摘要目的:探讨Jagged1基因敲除小鼠模型中,胚胎血管发育异常和血管重塑严重缺陷。

方法:通过基因型鉴定确认纯合子Jagged1基因敲除小鼠(Jag-/-),分析9.5天小鼠胚胎血管发育状态和血管内皮超微结构;分离胚胎内皮细胞培养于I型鼠尾胶中,观察环样结构生成。

结果:与正常野生型小鼠相比,纯合子Jagged1基因敲除小鼠血管内皮延伸段薄弱,内皮连接以点状连接为主,存在明显的结构缺陷;分离获得的胚胎内皮细胞鼠尾胶培养时,环样结构生成能力下降。

结论:Jagged1基因敲除可导致小鼠血管内皮发育异常,内皮结构的脆弱,成环能力下降,是纯合子基因敲除小鼠胚胎广泛出血现象的发育结构基础。

关键词基因敲除;内皮细胞;发育;胚胎中图分类号Q812DefectsofvasculardevelopmentinJagged1targetedmouseGUXingxing,TaoHui(JiangsuKeyLabofNeuroregeneration,NantongUniversity,Jiangsu226001)AbstractObjective:ToinvestigatedefectsofvascularremodelinginembryonicAngiogenesisinmicehomozygousofJagged1(Jag-/-)mutation.Methods:GenotypeofembryoswasidentifiedbyPCR.Ultrastructuralstructureofendothelialcell(EC)andthejunctionorcoalesceforminthecourseofECcoalesceintocordstoformalumenhadbeenexamined.ECisolatedandculturedonrattailcollagentypeIandthecord-likestructuresformingwasinvestigated.Results:ThespreadsegmentofECwastenuousandflimsyinJag-/-embryos.ThemainjunctionorcoalesceformwasincontactintheJag-/-embryoswhileoverlapordoublecontactwasinthewildtype.ItisdifficultforECtoformedcord-likestructuresfromJag-/-whenitwasculturedonrattailcollagen.Conclusion:MicehomozygousfortheJag1mutationdiefromhemorrhageearlyduringembryogenesis.AbnormalUltrastructuralECMorphologyinJag-/-embryosanddifficultyforculturedECtoformcord-likestructuresfromJag-/-embryosmaycontributetodefectsinremodelingoftheembryonicandyolksacvasculatureofJag-/-embryo.Keywordsgenetarget;endothelialcell;development;embryo642・・交通医学2006年第20卷第6期MedJofCommunications,2006,Vol.20.No.6点前检查确定是否完成交配。

孕至9.5天,引颈法处死怀孕母鼠,取出怀孕子宫。

在解剖镜下获取小鼠胚胎和卵黄膜。

1.3Jagged1基因敲除小鼠胚胎基因型鉴定对应敲除基因和野生型基因设计相应的特异性引物(由上海生工生物工程公司合成)。

JAG15’-TCTCACTCAGGCATGATAAACC-3’JAG25’-AACGGGGACTCCGGACAGGG-3’JAG45’-GGTGCTGTCCATCTGCACGAG-3’基因型鉴定时,Jagged1野生型基因用JAG1与JAG2扩增,Jagged1敲除基因用JG1与JG4扩增。

PCR扩增条件:常规加样,总反应体积50μl。

PCR程序:94℃预变性3分钟,94℃30秒,58℃40秒,72℃30秒,扩增35个循环,最后72℃延长5分钟。

1.4电镜标本制备将获取的小鼠胚胎和卵黄膜经过PBS漂洗后,置2%戊二醛固定液中4℃下前固定1~2小时,用二甲砷酸钠缓冲液漂洗2小时(4℃),用1%锇酸再固定1.5~2小时(4℃)。

常规脱水、浸透、Epon812包埋、切片、醋酸铅-双氧铀染色,JEMS-100透射电镜下观察。

1.5内皮细胞培养1.5.1胚胎卵黄膜内皮细胞分离培养:CD31亲合磁珠准备按试剂盒说明书进行,4℃保存,1周内可用。

解剖镜下无菌取9.5天小鼠胚胎卵黄膜,切割成微小块。

每胚胎加1mg/mlI型胶元酶1ml,37℃消化13分钟,吹打成单细胞悬液。

单细胞悬液800转/分离心5分钟沉淀细胞,DMEM培养基离心洗涤1次,加1mlDMEM培养基,20μlCD31亲合磁珠,2 ̄8℃旋转孵育20分钟(无菌),置DynalMPC-S吸附架吸附磁珠,DMEM洗涤1分钟×3次。

收集磁珠吸附内皮细胞接种于48孔培养板(AF包被),加400μl内皮细胞培养基Medium131,内含MVGS(1∶5),10%胎牛血清,37℃,5%CO2培养2天,待细胞生长,充分脱离磁珠后洗去磁珠。

1.5.2内皮细胞I型鼠尾胶培养:用0.02N冰乙酸溶解I型鼠尾胶使之浓度为5mg/ml,用DMEM培养基稀释溶解I型鼠尾胶使之浓度为1.35mg/ml,取200μl/孔加到48孔培养板。

无菌下,培养板在氨气容器中暴露3分钟使胶凝结,在无菌双蒸水中平衡30分钟后,换双蒸水平衡过夜,备用。

用0.25%胰酶消化原代培养获得的胚胎内皮细胞,接种到I型鼠尾胶培养板,加内皮培养基础600μl,37℃,5%CO2培养2 ̄5天后,观察内皮环形成。

2结果2.1基因型确认杂合子Jagged1敲除小鼠相互交配,可以完成正常生育,在小鼠胚胎发育到9.5天时,可以得到纯合子Jagged1(Jag-/-)敲除小鼠个体,个体基因型可以通过PCR鉴定确认。

2.2血管内皮发育用电子显微镜观察小鼠9.5天胚胎系膜中胚层内的血管结构,可以发现在野生型小鼠中,内皮细胞相互已经形成连接包裹,或正在进行的连接中,内皮细胞间相互连接交错的区域较长,细胞间形成的连接较多表现为交错(overlap)和双交错(doublecontact),在点状连接(contact)状态下,内皮细胞延伸段也表现为丰厚充实。

而在Jag-/-小鼠中的内皮细胞间的连接,则主要表现为点状连接(见图1),连接区域内皮细胞延伸段相对纤弱的,在某些状态表现为非常纤细的简单膜结构和不连续的内皮细胞断裂结构(见图1箭头所示)。

在野生型(JAG+/+)胚胎中内皮细胞环发育良好。

2.3环样结构形成用CD31(PECAM-1)亲合磁珠细胞分选技术分离9.5天小鼠胚胎卵黄膜内皮细胞,可以得到200-1000细胞/胚胎,贴壁培养到48孔板,细胞达到长满培养孔约需20天左右的时间。

内皮细胞传代培养于I型鼠尾胶显示,野生型小鼠内皮细胞能相互快速形成良好网状连接的管样结构,而从纯合子基因敲除小鼠胚胎分选获得的内皮细图1Jagged1基因敲除小鼠血管内皮细胞结构特点(3000×)表19.5天小鼠胚胎系膜中胚层中内皮细胞连接方式点状连接交错交错长度双交错Jag-/-86201.094±0.391μm3Jag+/+9273.443±0.452μm6Jag+/-8213.294±0.622μm3643・・交通医学2006年第20卷第6期MedJofCommunications,2006,Vol.20.No.6胞,不能快速形成良好网状连接的环样结构,内皮细胞生长伸出端纤弱(图2)。

3讨论Jagged1基因敲除小鼠死于胚胎发育10.5天,表现为血管发育异常和广泛出血。

这种广泛出血被认为是由于血管重塑严重缺失所引起的[5]。

相关文档
最新文档