建立大鼠骨髓间充质干细胞稳定分离培养体系与鉴定
大鼠骨髓间充质干细胞体外培养和鉴定

全骨髓贴壁培 养法可有效地分 离和 扩增 B C , 离培养 的 MS s 分
【 关键 词】 骨 髓 问 充质 干 细胞 ;培 养 ; 化 分
【 图分 类 号】 R 3 ;源自 1 中 -3 Q 83 【 献标 识 码】 A 文 【 文章 编 号】 D I1 .9 9ji n1 7—5 12 1. 20 3 O :0 36 /. s. 623 1.0 1 1.0 s
具 有 活 跃 的增 殖 能 力 ; MS s 诱 导 后 可 分 别 向成 骨 、 脂 转 化 ; 式 分 析 表 面 标 志 分 子 高 表 达 C 9 ( 6 5 ) C 2 B C 经 成 流 D 0 9 . 、 D 9
(23 , 9 . %) 低表 达 C 3 (. 9 )C 4 (. 1 。结论 D 4 0 8 、 D 5 14 %)
s e c l BM S ) fr t n v to M e h d Th t m el s( Cs o a s i ir . t o s eBMS f a swe ec lu e y t ewh l o e ma r w d e e c u — Cso t r u t rd b h o e b n ro a h r n e c l r t r .BM S s i e tf d t r u h mu t d f r n ito n u f c r e s a ( D2 , ue Cswa d n ii h o g l — 讧 e e tai n a d s r a e ma k r a s y C 9 CD3 C 5 CD9 ) Reu t e i 4, D4 , O . sl s
Culu e a d ntfc to fr tb ne m a r w。 e i e e e c m a t m e l t r nd i e i i a i n o a o r o d rv d m s n hy ls e c ls
大鼠骨髓间充质干细胞的体外分离培养与鉴定

大鼠骨髓间充质干细胞的体外分离培养与鉴定作者:李兰兰陈玲肖马炬明来源:《中国现代医生》2014年第01期[摘要] 目的建立大鼠骨髓间充质干细胞(bone marrow-derived mesenchymal stem cells,BMSCs)体外分离培养方法。
方法采用全骨髓贴壁法分离培养BMSCs,进行形态学观察,绘制生长曲线,流式细胞仪分析细胞周期、检测细胞表面抗原标志物,并进行成脂、成骨分化诱导。
结果获取的BMSCs形态呈均一成纤维细胞样,并呈集落样生长。
生长曲线呈S形,细胞周期显示86.02% P3代细胞为G0/G1期,保持活跃的扩增能力。
BMSCs 高表达CD44、CD90、低表达CD34、CD45。
成脂诱导21 d后,可见细胞的胞浆内出现大量红染脂滴。
成骨诱导21 d后,可见大量橘红色矿化结节形成。
结论全骨髓贴壁培养法可成功有效地分离培养BMSCs。
[关键词] 骨髓间充质干细胞;全骨髓贴壁法;鉴定[中图分类号] R329.2 [文献标识码] A [文章编号] 1673-9701(2014)01-0007-04BMSCs具有高度增殖的能力、体外基因转移效率高以及多向分化潜能等优点[1-2],使其成为组织工程、细胞替代治疗等领域的首选种子细胞。
但是骨髓中的间充质干细胞含量极低[3],且其含量随年龄增长而逐渐减少[4],需经体外分离、纯化、扩增为纯度高、活力强、生物特性均一的间充质干细胞才能满足组织工程需求。
实验旨在建立一套简便有效的BMSCs原代培养方法,为后续实验做好准备。
1 材料与方法1.1 实验动物清洁级雄性SD大鼠6只,4周龄,体质量100 g,由浙江省实验动物中心提供。
实验过程中对动物的处置符合2006年科技部《关于善待实验动物的指导性意见》的规定。
1.2 时间及地点于2013年1~6月在中国人民解放军第一一七医院干细胞治疗中心完成。
1.3 实验主要试剂低糖DMEM培养基、0.25%胰酶-0.02%EDTA、青/链霉素(吉诺生物),优质胎牛血清(Gibco),anti-CD45、anti-CD90(BD),anti-CD34(Santa Cruz),anti-CD44(Abcam),细胞周期即时检测试剂盒(凯基生物),成骨及成脂诱导分化培养液、茜素红、油红O (Cyagen公司)。
大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养及GFP转染标记

大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养及GFP转染标记发表时间:2011-2-17 15:31:47来源:创新医学网医学编辑部推荐作者:王亭忠,马爱群,蒋文慧,徐正云,席雨涛作者单位(西安交通大学第一医院心内科;教育部环境与疾病相关基因重点实验室,陕西西安710061)【关键词】大鼠,骨髓间充质干细胞;培养;绿色荧光蛋白;转染摘要:目的建立大鼠骨髓间充质干细胞(MSCs)的分离和培养方法,检测绿色荧光蛋白基因转染MSCs的瞬时表达及转染效率。
方法应用Percoll密度梯度离心法分离大鼠MSCs,贴壁法不断纯化,流式细胞仪检测2代细胞表面CD34、CD71和CD90的表达,然后用pEGFPN3与Lipofectamine 2000不同浓度比例转染MSCs,荧光倒置显微镜下观察瞬时表达及转染效率。
结果①原代MSCs多呈纺锤形或梭形,有聚集生长的倾向,多3~5个细胞成为一个集落。
传代后,细胞变为形态均一的排列有序的成纤维细胞样,长梭形,胞浆突起较少,胞体轮廓不甚清晰,胞体也相对较大;②GFP转染后24h即可见绿色荧光蛋白表达,72h表达最强,此后逐渐减弱,到4周时仍可见少量表达;③转染效率与质粒和脂质体的浓度比例有关,1∶2到1∶3最高。
结论利用Percoll密度梯度离心法结合贴壁法可以获得比较纯的MSCs;GFP转染是一种较好的MSCs标记方法。
Rat mesenchymal stem cells culture and label withgreen fluorescent protein gene transfectionWang Tingzhong, Ma Aiqun, Jiang Wenhui, Xu Zhengyun, Xi Yutao(Department of Cardiology, First Hospital of Xi an Jiaotong University, Key Laboratory of Environment and Genes Related to Diseases of Ministry of Education, Xian 710061, China)ABSTRACT: ObjectiveTo establish a method of isolation and culture of the rat mesenchymal stem cells (MSCs), and to investigate the transient expression of green fluorescent protein gene transfection into MSCs. Methods MSCs, which were initially isolated from the bone marrow of rats, were cultured in vitro and tested by flow cytomertry. Then they were transfected with pEGFPN3 by means of Lipofectamine 2000. The ratio of plasmid to Lipofectamine varied according to the experiment design. The results of the transient expression of GFP and transfection efficiency were observed by fluorescence microscope. Results MSCs were adherent, elongated, and spindleshaped in the primary culture after 24 hours of plating, and then became several little clones; During mitosis the cells regained a rounded appearance, and remained loosely attached until division was completed. When they reached 80% confluence, MSCs were subcultured and gained uniform shape and similar growth pattern. The expression of GFP began at 24 hours after transfection, and reached the peak at 72 hours and decreased in 1 week; however, the transient expression remained for more than 4 weeks. Transfection efficiency was correlated with the ratio of plasmid to lipofectamine. Conclusion High pured MSCs can be obtained by Percoll gradient centrifuging and adherent method. GFP transfection is a better method to label MSCs.KEY WORDS: rat; mesenchymal stem cell; culture; green fluorescent protein; transfection 骨髓间充质干细胞(mesenchymal stem cells, MSCs)存在于骨髓基质中,是由Friedenstein最初在骨髓培养中发现的一种容易贴壁的纺锤状细胞[1]。
骨髓间充质细胞的提纯和分离、增殖

骨髓间充质干细胞分离及条件培养基在其培养扩增中的作用摘要:【目的】建立一种简便、快速、实用的大鼠骨髓间充质干细胞(mesenehymal stem cells,MSCs)体外分离、纯化和扩增的方法。
【方法】采用贴壁法分离纯化大鼠骨髓MSCs(rMSCs),并对其形态学特征进行观察,培养时观察条件培养基对rMSCs生长的影响。
【结果】贴壁法能有效地分离rMSCs,采用条件培养液培养,细胞活力好,增殖能力强,对维持细胞正常形态有着重要作用。
【结论】贴壁分离法能成功地进行rMSCs的体外分离,采用爷件培养液建立的rMSCs培养方法有效可行。
关键词:骨髓问充质干细胞/分离和提纯;细胞培养骨髓间充质干细胞(MSCs)是一种成体干细胞,具有较强的可塑性,能被诱导分化为成骨细胞、成软骨细胞、成脂肪细胞、成肌细胞等⋯1,同时发现MSCs还具有独特的免疫调节作用[2-4J。
细胞学、组织学及器官学的研究者均把目光投向MSCs,同时MSCs也受到药理研究者的关注。
MSCs除了可作为组织工程较理想的种子细胞外,也可作为药物作用的靶标或药理研究的工具,利用MSCs体内外生物学性质进行中药作用机理的研究已有众多报道I 。
但由于骨髓中的MSCs含量很低,1 个骨髓单核细胞中仅含有1~2个MSCs~11 J,加之MSCs主要存在于骨内膜_】,要获得满足药物研究所需的数量比较困难。
因此,采用合适的MSCs分离、纯化和扩增的方法是许多研究的重要前提。
1 材料与方法1.1 动物Sprague Dawley(SD)大鼠,性别不限,体质量100~120 g,本校实验动物中心提供,合格证号为SCXK (粤)2003.0001。
1,2 主要试剂低糖Dulbeceo改进的Eagle培养基(1ow glucose Dulbecco’s Modified Ea e Medium,LDMEM)由GIBCO 公司提供;胎牛血清(fetalbovine serum,FBS)由杭州四季青生物工程材料有限公司提供;2.5 g/L胰酶(含0.2 g/L EDTA)由吉诺生物医药技术有限公司提供;HEPES为Sigma产品,广州威佳公司分装;青霉素、链霉素由华北制药有限公司提供;兔抗大鼠CD44、CD54、I 型胶原抗体,生物素化抗生蛋白链菌素复合(Streptavidin.Biotin.Complex,SABC)试剂盒,二氨基联苯胺(diaminobenzidine,DAB)显色试剂盒均由武汉博士德公司提供。
SD大鼠骨髓间充质干细胞的体外培养及表型、纯度鉴定

( o ee f 1C lg adn 7 0 2 P R C ia c neH bi n e i B o i 0 10 , . . hn ) e v sy g
A s at 0bet e T po es peadss m cepr e t e ost gt i ui eeey a s m b t c: jci o xl et i l n yt i xei na m t d e hg prym snhm t r v e r h m e m l h o h t l e
o e p e o p n ui f h h n t ea d p r t y t y C E K i, A GX a -a g, H NGpn , h — e 。 U H N al K N in n Z A ig MU S um i G O M gse i f - n h
山东 医药 2 1 00年第 5 0卷第 l 期 1
S D大 鼠骨髓 间充质 干 细胞 的体外 培养 及 表 型 、 纯度 鉴定
陈 凯t 。 - 康现江¨ , I平, 一 张
。
穆淑梅 郭明 申 ,
( 1河北大学生命科学学院, 河北保定 0 1 22河北工程大学农学院; 70 ; 0 3河北 大 学附属 医院)
中 图分 类 号 : 83 1 Q 1. 1 文献 标 志 码 : A 文章 编 号 : 0 - 6 2 1 ) 103 -3 1 22 X(0 0 1-040 0 6
Bo e ma r w- eie e e c y J t m el o a ut rd j io a d je tia in n ro d r d m s n h ma e c i fSD rtc l e 1 vt n nic t v s s u 3 r d f o
分离培养及鉴定骨髓间充质干细胞的方法探析论文

分离培养及鉴定骨髓间充质干细胞的方法探析论文分离培养及鉴定骨髓间充质干细胞的方法探析论文骨髓间充质干细胞(BMSCs)也被称为间质祖细胞,由于其巨大的增殖和多向分化潜能,被认为是再生医学、基因治疗和细胞治疗的理想种子来源,已被广泛进行研究[1-3].目前,BMSCs在动物实验和临床应用上取得了巨大的成果,在骨、软骨、肌腱、神经胶质修复、心脏疾病、心肌梗塞、肝脏损伤等方面取得了重大突破[4-6],并且可避免胚胎干细胞和异基因干细胞治疗所涉及的伦理道德和免疫排斥问题,有利于细胞移植。
但是骨髓中的BMSCs含量极少,约占骨髓全细胞的0.001%~0.010%[7];因此,需要在体外分离纯化、培养扩增来满足临床应用和实验研究。
研究表明,不同分离方法和首次换液方式对BMSCs的增殖培养有很大的影响[8].本试验通过观察2种不同分离方法和不同首次换液时间对兔BMSCs生物活性的影响,旨在建立一种有效的分离培养及鉴定BMSCs的方法,以便获得大量、高纯度、高活性、培养周期短的BMSCs,为下一步研究和临床实验提供基础。
1 材料与方法1.1实验动物1月龄雄性新西兰大耳白兔1只,由河南省实验动物中心提供。
1.2主要试剂和仪器胎牛血清(北京四季青);DMEM-F12(Gibco);胰蛋白酶(北京拜尔迪生物公司);DMSO(Gibco);红细胞裂解液(北京赛驰生物技术有限公司);生物素标记山羊抗兔IgG、HRP标记链霉亲和素、DAB显色试剂盒、改良型苏木素(北京华肽先锋);兔抗兔CD34、CD44、CD99抗体(北京博奥森);封闭山羊血清(北京博奥森)。
HF151UV型CO2培养箱(Heal Force);倒置显微镜(Leica);800型离心机、85-2恒温磁力搅拌器:金坛市大地自动化仪器厂;数码相机:日本佳能IXUS 980IS;电子天平:METTLER TOLEDO AL104;超净工作台:AIR TECH;FX101-2型电热鼓风干燥箱:上海树立仪器仪表有限公司;pH计:上海雷磁仪器厂。
大鼠骨髓间充质干细胞(BMSC)的分离、鉴定与培养

大鼠骨髓间充质干细胞(BMSC)的分离与鉴定大鼠骨髓间充质干细胞(BMSC)的分离与鉴定材料试剂(一)主要设备和产地1.手术器械上海手术器械厂2.台式水平离心机Eppendorf,5810R德国3.Nanopure超纯水仪日本SANYO公司4.AA一200型电子天平美国Denver Instrumol/Lent公司5.低温高速离心机ThermoForma公司6.90一2型磁力搅拌器上海沪西分析仪器厂7.电动匀速垂直转轮上海沪西分析仪器厂8.微量移液枪德国Eppendorf公司9.烧杯、容量瓶上海实生公司10.全自动酶标光度仪美国Bio-Rad公司11.6cm/10cm细胞培养皿美国Conring12.2mL冻存管、细胞冷冻储存器美国Conring13.低温高速离心机ThermoForma公司产品14.YJ-875超净工作台苏州工业园区三兴净化科技有限公司15.C02培养箱3111型美国Thermo Forma公司16.CK40-F200型倒置显微镜日本Olympus公司17.10ml注射器美国BD公司(二)试剂和材料1.谷氨酰胺(L-Glutamine)美国Hyclone公司2.75%消毒酒精上海生工3.肝素美国sigma公司4.胰蛋白酶美国Amresco公司5.胎牛血清美国Gibco公司6.α-MEM培养液美国Hyclone公司7.5-6周龄SD大鼠上海斯莱克实验动物有限公司8.Percoll细胞分离液美国GE公司9.DMSO(细胞培养级)美国Sigma公司Rat BMSC的分离与培养分离颈椎脱臼法处死大鼠,75%酒精中浸泡5分钟,超级工作台内依次取下大鼠两条胫骨及两条股骨。
用手术器械将长骨上附着的肌肉组织尽量去除干净,整个过程保持无菌。
用剪刀剪去长骨两端,10ml注射器吸取加入肝素的完全培养液(10%FBSα-MEM),从长骨一端开口处注入,将骨髓腔内的细胞出入到50ml离心管内,直至长骨冲洗的发白,认为骨髓腔内的细胞都被吹入离心管内。
大鼠骨髓间充质干细胞的培养与鉴定

大鼠骨髓间充质干细胞的培养与鉴定干细胞研究一直是生物医学领域的前沿热点,其中骨髓间充质干细胞(BMSCs)因其具有多向分化潜能和低免疫原性而备受。
在众多研究中,大鼠BMSCs的体外培养和鉴定方法为其在科研和临床领域的应用提供了基础。
本文将就大鼠BMSCs的培养、鉴定方法进行详细介绍,并结合实验数据进行阐述。
BMSCs是一种成体干细胞,具有自我更新和多向分化潜能,可以分化为多种细胞类型,如成骨细胞、脂肪细胞、肌肉细胞等。
因其来源广泛,免疫原性低,大鼠BMSCs已成为再生医学、免疫调节等领域的重要研究对象。
近年来,随着生物技术的不断发展,BMSCs的培养和鉴定方法也得到了不断优化和改进。
BMSCs的培养需要无菌环境,常用的培养基为DMEM、F12等,添加适量的生长因子和抗生素以维持细胞的生长和存活。
细胞的鉴定主要包括形态学观察、表面标志物检测和多向分化潜能的证实。
其中,表面标志物如CDCD90等可用来区分BMSCs和其他细胞,多向分化潜能的证实包括成骨、成脂和成肌等方向的诱导分化。
本实验采用大鼠BMSCs的常规体外培养方法。
具体步骤如下:采集大鼠骨髓:在无菌环境下,用注射器抽取大鼠股骨和胫骨骨髓,加入肝素抗凝。
细胞分离:将采集的骨髓用密度梯度离心法分离出单个核细胞。
细胞培养:将单个核细胞接种于培养瓶中,用含10%血清、1%抗生素和1%谷氨酰胺的培养基培养。
细胞鉴定:经过约7-10天的培养,细胞达到80%-90%融合时,进行细胞鉴定。
通过形态学观察、表面标志物检测和多向分化潜能的证实,对BMSCs进行鉴定。
通过观察细胞的形态和生长情况,发现培养的BMSCs呈典型的长梭形,且细胞间连接紧密(图1)。
经表面标志物检测,BMSCs表达CD29和CD90等间充质干细胞表面标志物(图2)。
在多向分化潜能的证实中,我们发现BMSCs经成骨、成脂和成肌诱导后,可分别形成矿化结节、脂肪滴和肌纤维(图3)。
这些结果说明所培养的细胞为BMSCs。
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Received:2008 06-18
Accepted;2008-12-10
Abstract BACKGR0lUND:Bone marrow mesenchymal stem cells(BMSCs)are widely used as seed celIs in tissue engineering and other fields.Therefore.the establishment of a stable isolation and identification system of BMSCs is very important. OBJECTIVE:To/n vitro harvest rat BMSCs through various methods。to observe celI morphology,and to assess surface marker and multi—directionaI di仟erentiatjOn.
BMSCs.
Yang L,Zhang RH,Xie HJ,Cai Y。Huang F.Establishment of a stable isolation culture system and identification of rat bone marrow mesenchymal stem cells.Zhongguo Zuzhi Gongcheng Yanjiu yu Unchuang Kangfu 2009;1 3(6):1 064-1068(China) 【http://www.crfer.cn http://en.zglckf.cornl
126,com
Supported by:the NabOnal Nature Science Foundetioft ofChina.No. 30472274。:the SpeciaJ Program of TraditionaI Chim*se Medicine Scientific Research of the State Administration of Traditional Chinese Medicine,No. 04—05JLl9。:a grant from Natural Science Founda啊oR of Guangdong Province, No.04105837。:an Accented and Lead T0rm from SociaI
建立大鼠骨髓间充质干细胞稳定分离培养体系与鉴定米宰冰术☆
杨丽1,张荣华1,谢厚杰2,蔡宇1,黄丰3
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方法:无茼条件下分离大鼠双下肢,低糖DMEM培养液冲出骨髓,分别运用全骨髓贴壁法和密度梯度离心法体外分离骨髓 间充质干细胞。利用差速贴肇原理对细胞进行纯化扩增。取生长状态良好的第3代骨髓问充质干细胞,分别加入成骨、成脂,
成软骨诱导培养基,培养14 d。 主要观察指标:倒置相差显微镜下观察骨髓间充质千细胞的牛长状态,流式细胞仪检测细胞表面标志物的表达,采用碱性磷
CONCLUSlON:BMSCs by the adherence separation method have a good homogeneity,and the ou【ceme is better compared with the density gradient centrifugation.The cells isolated and cultured/n vitro in this study are identified as ral BMSCs by morphology, surface antigens and differentiation into osteoblasts.adipocytes and chondrocytes,which have the biological characteristics of
分离培养的细胞在形态学、细胞表面标志物表达和多向分化能力方面具有干细胞生物学特性,经鉴定为大鼠骨髓间充质干细 胞。
关键词:骨髓间充质干细胞:大鼠;分离:鉴定
杨丽。张荣华,谢厚杰,蔡宇,黄丰.建立大鼠骨髓问充质干细胞稳定分离培养体系与鉴定【J】.中国组织工程研究与临床康复,
2009,13(6):1064—1068
。Deparbment of Chinese Materia
Medica,。Department of Pharmacology, Coilege of
Pharmacology,Jinan Universi蚍
Guangzhou 510632.Guangdong Province.China; 。Medical Oepan'ment, Disable Veteran Rehabilitetion Hospital,Guangzhou 510260.Guangdong Province。China
目前还没有单一某种特异性的方法用来 鉴定骨髓问充质干细胞,因此实验采用形态学 观察初步判断骨髓间充质干细胞,然后通过表 面标志物的表达以及在诱导条件下对其多向 分化能力的判定,逆向证明体外分离培养的细 胞是否为骨髓间充质干细胞,以确立高效稳定 的大鼠骨髓问充质干细胞分离培养体系和鉴 定方案。
1材料和方法
【http://www.crter.org http://cn.zglckf.corn】
万数据
只D.Box 1200,Shenyang 110004 cn.zglckf.corn
扬丽.等建立太鼠骨髓同充硬干细魄稳定分离培莽体系s簦定
0引言
骨髓间充质干细胞是具有自我复制和多 向分化潜能的非造血干细胞[1-2]。目前用于分离 骨髓间充质干细胞的方法毛要有4种:全骨髓 贴壁法,贴壁筛选法、密度梯度离心法、细胞表 面分子标记分选法、细胞筛筛选法,其中以全 骨髓贴壁法和密度梯度离心法最为常用。后两 种方法虽然分离出的细胞纯度高,但由于分离 细胞数量少,活性低,加之技术难、成本高, 因此较少采用。
DESIGN.TIME AND SEITTING:This cytology/n vitro controlled expedment was performed at the Jinan University from August to
December 2005.
MATERIALS:Five SPF grade female Sprague Dawley rats,aged 3-months oId,were provided by the Animal Experimental Center
medium for 14 days.
MAIN OUTcoME MEASURES:The morphology of BMSCs was observed bV the inverted phase contrast microscope.Expression 0f BMSC surface antigens was detected by flow cytometar.0steogenous potential was assessed by alkaline phosphatase staining Adipogenic potential was evaluated bv OjI red O staining.Chondrogenic potential was assessed by toluidine blue staining· RESULTS:Compared with the density gradient centrifugation,BMSCs isolated by the adherence separation had shorter adherence time and faster multiplication rate,which could be purified by subculture.At the third passage,BMSCs showed the
酸酶染色罄定成骨能力,以油红O染色鉴定成脂能力,以甲苯胺蓝染色鉴定成软骨能力。 结果:与密度梯度离心法相比。全骨髓贴肇法分离获得的骨髓间允质干细胞贴壁时间短,增殖快,经传代后能够纯化。第3
代骨髓间充质干细胞形态单一均匀。呈舆型的极性漩涡状牛长,不表达造血前体细胞标志抗原CD34和自细胞标志抗原 CD45,表达整合索家族成员CD29和黏附分子CD44,经诱导后碱性磷酸酶染色、油红O染色和甲苯胺蓝染色均呈阳性。 结论:采用全骨髓贴壁法可稳定获得均质性良好的大鼠骨髓f’HJ充质干细胞,效果优于密度梯度离心法。经伞骨髓贴壁法体外
typical polar swirl morphology.BMSCs were negative for CD34 and CD45。but positive for CD29 and CD44.Following induction, alkaline phosphatase staining.Oil red staining and toluidine blue staining produced a strong reaction in cells.
设计:细胞学体外对比观察。 时间及地点:于2005—08/12在暨南大学完 成。 材料:SPF级3月龄SD雌性大鼠5只,体质 量(230-1-10)g,由中山大学实验动物中心提 供,动物质量合格证号:粤监证字2005A010, 实验过程中对动物的处置符合1988年国家科 委《实验动物管理条例》的规定[31。
摘要 背景:骨髓间充质干细胞作为种子细胞存组织-T程等领域应用广泛,建立稳定的分离培养体系和统一鉴定标准尤为重要a 目的:以不I司方法体外分离培养大鼠骨髓间充质干细胞,并进行细胞形态学观察、表面标志物鉴定及多向分化能力检测。