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食品微生物学检验金黄色葡萄球菌

食品微生物学检验金黄色葡萄球菌

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血浆凝固酶实验
血浆凝固酶试验:挑取、Baird-Parker平板或血平板上可疑菌落 1 个或以上,分别接种到5 mLBHI和营养琼脂小斜面,36 ±1℃培养18 h~24 h 。 取新鲜配置兔血浆0.5 mL ,放入小试管中,再加入BHI 培养物0.2mL~0.3mL ,振荡摇匀,置 36 ±1℃温箱或水浴箱内。 每半小时观察一次,观察 6 h,如呈现凝固(即将试管倾斜或倒置 时,呈现凝块)或凝固体积大于原体积的一半,被判定为阳性结果。 同时以血浆凝固酶试验阳性和阴性葡萄球菌菌株的肉汤培养物作为 对照。也可用商品化的试剂,按说明书操作,进行血浆凝固酶试验。 结果如可疑,挑取营养琼脂小斜面的菌落到 5 mL BHI,36±1℃培 养18 h~48h ,重复试验。
第二法金黄色葡萄球菌Baird-Parker平板计 数
结果
列出完成实验所使用的所有步骤。 切记要为步骤加编号。 添加实验照片。
第三法 金黄色葡萄球菌MPN计数
最大或然数(most probable number,MPN)计数又称稀释 培养计数,适用于测定在一个混杂的微生物群落中虽不占优 势,但却具有特殊生理功能的类群 其特点是利用待测微生物的特殊生理功能的选择性来摆 脱其他微生物类群的干扰,并通过该生理功能的表现来判断 该类群微生物的存在和丰度。本法特别适合于测定土壤微生 物中的特定生理群(如氨化、硝化、纤维素分解、固氮、硫 化和反硫化细菌等。)的数量和检测污水、牛奶及其他食品 中特殊微生物类群(如大肠菌群)的数量,缺点是只适于进 行特殊生理类群的测定,结果也较粗放,只有在因某种原因 不能使用平板计数时才采用。 MPN法原理与局限C:\Users\华侃\Desktop\MPN法的原理与局 限性分析.pdf

9.8.188.食品微生物快速检测金黄色葡萄球菌定性检测

9.8.188.食品微生物快速检测金黄色葡萄球菌定性检测
葡萄球菌的 Nhomakorabea速检测方法
3M™ Petrifilm™ 金黄色葡萄球菌测试片(STX) ▪ 标准Baird-Parker培养基 ▪ 22-29小时确认结果 ▪ 提供确认反应片对可疑菌落作确认性判读
葡萄球菌的快速检测方法
▪ 选择性配方-抑制非目标 菌的 生长
▪ 金黄色葡萄球菌是唯一 能将 测试片中的指示剂 转化成紫 红色色素的细 菌。
▪ 可能出现黑色或蓝绿色菌落。 ▪ 先将紫红色菌落圈出,再加 确认
反应片,1–3h,粉 红色晕圈。
▪ 合理计数范围15-150。
粉红色晕圈
总结
思考题
1.金黄色葡萄球菌有哪些危害? 2.如何利用金黄色葡萄球菌快速检测试纸进行定 性鉴定? 3.金黄色葡萄球菌快速检测适合在那些领域使用?
谢谢观看
金黄色葡萄球菌
金黄色葡萄球菌 (Staphylococcus aureus )
Staphyle -“葡萄串”
Coccus—“浆果”
▪ 球菌科的一个属 ▪ 革兰氏阳性球菌 ▪ 直径0.5 - 1.5 微米 ▪ 单个, 成对, 不规则成群 ▪ 过氧化氢酶阳性 ▪ 非动力 ▪ 兼性厌氧
葡萄球菌的检测方法
36℃±1℃
18h~24h
血浆凝固酶试验
报告
金黄色葡萄球菌检测程序
葡萄球菌的检测方法
初步鉴定溶血情况,金黄色葡萄球菌在BP平板上呈圆形,表面光滑、凸起、 湿润、菌落直径在2~3mm,颜色呈灰黑色至黑色,有光泽,常有浅色(非 白色)的边缘,周围绕以不透明圈,外有清晰带。
葡萄球菌的检测方法
在血平板上,形成菌落较大,圆形,光滑凸起、湿润、金黄色,菌落周围可 见透明溶血圈。
食品中金黄色葡萄球菌的定性测定依据 GB 4789.10-2016 食品微生物学检验

食品微生物检验 (6)

食品微生物检验 (6)

Baird-parker(贝尔德- 帕克)
36± 1℃ 24hr
血平板
36± 1℃ 24hr
血平板 ,Baird-parker
涂片染色
观察溶血
血浆凝固酶试验
报告
25g样品+ 225ml 生理盐水 5mL样品匀液(1:10)+ 7.5%氯化钠肉汤
36± 1℃ 24hr
血平板

BP平板
36± 1℃ 24hr
试管法
阴性反应
阳性反应
不凝固
少量、 零散凝 固
明显的块 状凝固
巨大块 凝固
完全凝固, 倒置不流动
革兰氏阳性,球形,组成葡萄状
检验程序 ——鉴定之凝固酶试验
金黄色葡萄球菌可以产生血浆凝固酶,因此对其鉴别 的主要试验是测定其凝固酶。
方法一:试管法 吸取1:4新鲜兔血浆0.5mL,放入小试管中,再加入 培养24h的金黄色葡萄球肉浸液肉汤培养物0.5mL,振荡 摇匀,放36±1℃恒温箱或水浴内,每半小时观察一次, 观察6h,如呈现凝固,即将试管倾斜或倒臵时,呈现凝 块者,被认为阳性结果。
镜检与 肉浸液肉汤培养 36± 1℃ 24hr
定性 检测
血浆凝固酶 试验
36± 1℃ 6hr
报告结果
定量 检测
(平板法)
25g样品+ 225ml 生理盐水
梯度稀释
选三个连续梯度,每个梯度分别取1mL接种之至表面 干燥的BP平板
36± 1℃ 48hr
适用于检测金黄色葡萄球菌 数不小于10/g(mL)的食品
生物学特性 ——致 病 性
金黄色葡萄球菌为条件致病菌,菌株致病力的强弱主 要取决于其产生的毒素和侵袭性酶: a.溶血素:外毒素,能损伤血小板,破坏溶酶体,引起肌 体局部缺血和坏死;在血平板培养出现溶血环。 b.杀白细胞素:可破坏人的白细胞和巨噬细胞; c.血浆凝固酶:当金黄色葡萄球菌侵入人体时,该酶使血 液或血浆中的纤维蛋白沉积于菌体表面或凝固,阻碍吞噬 细胞的吞噬作用。 d.脱氧核糖核酸酶(DNA酶) e.肠毒素:引起急性胃肠炎。

金黄色葡萄球菌检验 标准文本(食品安全国家标准)

金黄色葡萄球菌检验 标准文本(食品安全国家标准)

食品安全国家标准金黄色葡萄球菌检验1 范围本标准规定了食品中凝固酶阳性的金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)的检验方法。

本标准第一法适用于食品中凝固酶阳性的金黄色葡萄球菌的定性检验;第二法适用于金黄色葡萄球菌含量较高的食品中凝固酶阳性的金黄色葡萄球菌的计数;第三法适用于金黄色葡萄球菌含量较低而杂菌含量较高的食品中凝固酶阳性的金黄色葡萄球菌的计数。

2 设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:2.1 恒温培养箱:36 ℃±1 ℃。

2.2 冰箱:2 ℃~5 ℃。

2.3 恒温水浴箱:37 ℃~65 ℃。

2.4 天平:感量0.1 g。

2.5 均质器。

2.6 振荡器。

2.7 无菌吸管:1 mL(具0.01 mL 刻度)、10 mL(具0.1 mL 刻度)或微量移液器及吸头。

2.8 无菌锥形瓶:容量100 mL、500 mL。

2.9 无菌培养皿:直径90 mm。

2.10 L涂布棒。

2.11 pH 计或pH 比色管或精密pH 试纸。

3 培养基和试剂3.1 7.5 %氯化钠肉汤:见附录A 中A.1。

3.2 血琼脂平板:见附录A 中A.2。

3.3 Baird-Parker 琼脂平板:见附录A 中A.3。

3.4 兔血浆纤维蛋白原(RPF)琼脂培养基:见附录A 中A.4。

3.5 脑心浸出液肉汤(BHI) :见附录A 中A.5。

3.6 兔血浆:见附录A 中A.6。

3.7 稀释液:磷酸盐缓冲液:见附录A 中A.7。

3.8 营养琼脂小斜面:见附录A 中A.8。

3.9 革兰氏染色液:见附录A 中A.9。

3.10 无菌生理盐水:见附录A 中A.10。

第一法金黄色葡萄球菌定性检验4检验程序金黄色葡萄球菌定性检验程序见图1。

图1 金黄色葡萄球菌检验程序5 操作步骤5.1 样品的处理称取25 g 样品至盛有225 mL 7.5 %氯化钠肉汤的无菌均质杯内,8000 r/min~10000 r/min 均质1 min~2 min,或放入盛有225 mL 7.5 %氯化钠肉汤无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1 min~2 min。

食品中微生物的检测-金黄色葡萄球菌检验

食品中微生物的检测-金黄色葡萄球菌检验

免疫学方法
抗原制备
从金黄色葡萄球菌中提取特异性抗原,制备 成免疫原。
抗体制备
利用抗原抗体特异性结合的原理,通过凝集 反应、沉淀反应等方法检测样品中的金黄色
葡萄球菌。
抗原抗体反应
将免疫原注射到动物体内,刺激机体产生特 异性抗体。
结果判定
根据反应结果判断样品中是否含有金黄色葡 萄球菌。
分子生物学方法
食品中微生物的检测-金黄 色葡萄球菌检验
目录
• 引言 • 金黄色葡萄球菌概述 • 样品采集与处理 • 微生物学检测方法 • 理化检测方法 • 结果分析与报告 • 质量控制与实验室安全
01
引言
目的和背景
保障食品安全
金黄色葡萄球菌是一种常见的食品污染源,可引起食物中毒,对公众健康构成威胁。因此,检测食品中的金黄 色葡萄球菌对于保障食品安全具有重要意义。
适量性
根据检测方法和目的,采 集适量样品,以满足检测 需求。
样品保存与运
低温保存
样品应尽快放入低温环境 (如4℃冰箱)中保存,以 减缓微生物的生长速度。
避免反复冻融
尽量避免样品在保存过程 中反复冻融,以免影响微 生物的存活和检测结果的 准确性。
快速运输
样品在运输过程中应保持 低温,并尽快送达实验室 进行检测。
04
微生物学检测方法
传统培养法
增菌培养
将液体样品接种到选择性增菌液 中,于适宜温度下培养一定时间 ,使金黄色葡萄球菌得以增殖。
鉴定
通过观察菌落形态、革兰氏染色 、血浆凝固酶试验等生化特征进 行鉴定。
01
02
样品处理
取适量食品样品,进行均质化处 理,得到均匀一致的液体样品。
03
04

食品微生物学检验 金黄色葡萄球菌检验作业指导书

食品微生物学检验  金黄色葡萄球菌检验作业指导书

食品微生物学检验金黄色葡萄球菌检验1、范围:本方法规定了食品中金黄色葡萄球菌的检验方法。

2、主要设备与材料:除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:2.1 恒温培养箱:36 ℃±1 ℃。

2.2 冰箱:2 ℃~5 ℃。

2.3 恒温水浴箱:37℃~65℃。

2.4 天平:感量为 0.1 g。

2.5 均质器。

2.6 振荡器。

2.7 无菌吸管:1 mL、10 mL或微量移液器及吸头。

2.8 无菌锥形瓶:容量 100mL、500 mL。

2.9无菌培养皿:直径 90 mm。

2.10 注射器:0.5ml。

2.11 pH计或 pH比色管或精密 pH试纸。

3、培养基与试剂:3.1 10%氯化钠胰酪胨大豆肉汤;3.2 7.5%氯化钠肉汤;3.3血琼脂平板;3.4 Baird-Parker琼脂平板;3.5脑心浸出液肉汤(BHI);3.6兔血浆;3.7稀释液:磷酸盐缓冲液;3.8营养琼脂小斜面;3.9革兰氏染色液;3.10无菌生理盐水。

第一法金黄色葡萄球菌定性检验4、操作步骤4.1.样品的处理称取25g样品至盛有225ml7.5%氯化钠肉汤或10%氯化钠胰酪胨大豆肉汤的无菌均质杯内,8000r/min~10000r/min均质1min~2min,或放入盛有225mL7.5%氯化钠肉汤或10%氯化钠胰酪胨大豆肉汤的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1min~2min,若样品为液态,吸取25mL样品至盛有225mL7.5%氯化钠肉汤或10%氯化钠胰酪胨大豆肉汤的无菌锥形瓶(瓶内可预置适当数量的无菌玻璃珠)中,震荡混均。

4.2增菌和分离培养(1)将上述样匀液于36℃±1℃培养18h~24h。

金黄色葡萄球菌在7.5%氯化钠肉汤中呈现浑浊生长,污染严重时在10%氯化钠胰酪胨大豆肉汤内呈浑浊生长。

(2)将上述培养物,分别划线接种到Baird-Parker平板和血平板。

血平板在36℃±1℃培养18h~24h。

GB 4789.10-2016 食品安全国家标准 食品微生物学检验 金黄色葡萄球菌检验

GB 4789.10-2016 食品安全国家标准 食品微生物学检验 金黄色葡萄球菌检验

中华人民共和国国家标准G B4789.10 2016食品安全国家标准食品微生物学检验金黄色葡萄球菌检验2016-12-23发布2017-06-23实施中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会前言本标准代替G B4789.10 2010‘食品安全国家标准食品微生物学检验金黄色葡萄球菌检验“㊁S N/T0172 2010‘进出口食品中金黄色葡萄球菌检验方法“㊁S N/T2154 2008‘进出口食品中凝固酶阳性葡萄球菌检测方法兔血浆纤维蛋白原琼脂培养基技术“㊂本标准与G B4789.10 2010相比,主要变化如下:试验用增菌液统一为7.5%氯化钠肉汤㊂食品安全国家标准食品微生物学检验金黄色葡萄球菌检验1范围本标准规定了食品中金黄色葡萄球菌(S t a p h y l o c o c c u s a u r e u s)的检验方法㊂本标准第一法适用于食品中金黄色葡萄球菌的定性检验;第二法适用于金黄色葡萄球菌含量较高的食品中金黄色葡萄球菌的计数;第三法适用于金黄色葡萄球菌含量较低的食品中金黄色葡萄球菌的计数㊂2设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:2.1恒温培养箱:36ħʃ1ħ㊂2.2冰箱:2ħ~5ħ㊂2.3恒温水浴箱:36ħ~56ħ㊂2.4天平:感量0.1g㊂2.5均质器㊂2.6振荡器㊂2.7无菌吸管:1m L(具0.01m L刻度)㊁10m L(具0.1m L刻度)或微量移液器及吸头㊂2.8无菌锥形瓶:容量100m L㊁500m L㊂2.9无菌培养皿:直径90mm㊂2.10涂布棒㊂2.11p H计或p H比色管或精密p H试纸㊂3培养基和试剂3.17.5%氯化钠肉汤:见A.1㊂3.2血琼脂平板:见A.2㊂3.3 B a i r d-P a r k e r琼脂平板:见A.3㊂3.4脑心浸出液肉汤(B H I):见A.4㊂3.5兔血浆:见A.5㊂3.6稀释液:磷酸盐缓冲液:见A.6㊂3.7营养琼脂小斜面:见A.7㊂3.8革兰氏染色液:见A.8㊂3.9无菌生理盐水:见A.9㊂第一法金黄色葡萄球菌定性检验4检验程序金黄色葡萄球菌定性检验程序见图1㊂图1金黄色葡萄球菌检验程序5操作步骤5.1样品的处理称取25g样品至盛有225m L7.5%氯化钠肉汤的无菌均质杯内,8000r/m i n~10000r/m i n均质1m i n~2m i n,或放入盛有225m L7.5%氯化钠肉汤无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1m i n~ 2m i n㊂若样品为液态,吸取25m L样品至盛有225m L7.5%氯化钠肉汤的无菌锥形瓶(瓶内可预置适当数量的无菌玻璃珠)中,振荡混匀㊂5.2增菌将上述样品匀液于36ħʃ1ħ培养18h~24h㊂金黄色葡萄球菌在7.5%氯化钠肉汤中呈混浊生长㊂5.3分离将增菌后的培养物,分别划线接种到B a i r d-P a r k e r平板和血平板,血平板36ħʃ1ħ培养18h~ 24h㊂B a i r d-P a r k e r平板36ħʃ1ħ培养24h~48h㊂5.4初步鉴定金黄色葡萄球菌在B a i r d-P a r k e r平板上呈圆形,表面光滑㊁凸起㊁湿润㊁菌落直径为2mm~3mm,颜色呈灰黑色至黑色,有光泽,常有浅色(非白色)的边缘,周围绕以不透明圈(沉淀),其外常有一清晰带㊂当用接种针触及菌落时具有黄油样黏稠感㊂有时可见到不分解脂肪的菌株,除没有不透明圈和清晰带外,其他外观基本相同㊂从长期贮存的冷冻或脱水食品中分离的菌落,其黑色常较典型菌落浅些,且外观可能较粗糙,质地较干燥㊂在血平板上,形成菌落较大,圆形㊁光滑凸起㊁湿润㊁金黄色(有时为白色),菌落周围可见完全透明溶血圈㊂挑取上述可疑菌落进行革兰氏染色镜检及血浆凝固酶试验㊂5.5确证鉴定5.5.1染色镜检:金黄色葡萄球菌为革兰氏阳性球菌,排列呈葡萄球状,无芽胞,无荚膜,直径约为0.5μm~1μm㊂5.5.2血浆凝固酶试验:挑取B a i r d-P a r k e r平板或血平板上至少5个可疑菌落(小于5个全选),分别接种到5m LB H I和营养琼脂小斜面,36ħʃ1ħ培养18h~24h㊂取新鲜配制兔血浆0.5m L,放入小试管中,再加入B H I培养物0.2m L~0.3m L,振荡摇匀,置36ħʃ1ħ温箱或水浴箱内,每半小时观察一次,观察6h,如呈现凝固(即将试管倾斜或倒置时,呈现凝块)或凝固体积大于原体积的一半,被判定为阳性结果㊂同时以血浆凝固酶试验阳性和阴性葡萄球菌菌株的肉汤培养物作为对照㊂也可用商品化的试剂,按说明书操作,进行血浆凝固酶试验㊂结果如可疑,挑取营养琼脂小斜面的菌落到5m LB H I,36ħʃ1ħ培养18h~48h,重复试验㊂5.6葡萄球菌肠毒素的检验(选做)可疑食物中毒样品或产生葡萄球菌肠毒素的金黄色葡萄球菌菌株的鉴定,应按附录B检测葡萄球菌肠毒素㊂6结果与报告6.1结果判定:符合5.4㊁5.5,可判定为金黄色葡萄球菌㊂6.2结果报告:在25g(m L)样品中检出或未检出金黄色葡萄球菌㊂第二法金黄色葡萄球菌平板计数法7检验程序金黄色葡萄球菌平板计数法检验程序见图2㊂图2金黄色葡萄球菌平板计数法检验程序8操作步骤8.1样品的稀释8.1.1固体和半固体样品:称取25g样品置于盛有225m L磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内,8000r/m i n~10000r/m i n均质1m i n~2m i n,或置于盛有225m L稀释液的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1m i n~2m i n,制成1ʒ10的样品匀液㊂8.1.2液体样品:以无菌吸管吸取25m L样品置于盛有225m L磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶(瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分混匀,制成1ʒ10的样品匀液㊂8.1.3用1m L无菌吸管或微量移液器吸取1ʒ10样品匀液1m L,沿管壁缓慢注于盛有9m L磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换用1支1m L 无菌吸管反复吹打使其混合均匀,制成1ʒ100的样品匀液㊂8.1.4按8.1.3操作程序,制备10倍系列稀释样品匀液㊂每递增稀释一次,换用1次1m L无菌吸管或吸头㊂8.2样品的接种根据对样品污染状况的估计,选择2个~3个适宜稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液),在进行10倍递增稀释的同时,每个稀释度分别吸取1m L样品匀液以0.3m L㊁0.3m L㊁0.4m L接种量分别加入三块B a i r d-P a r k e r平板,然后用无菌涂布棒涂布整个平板,注意不要触及平板边缘㊂使用前,如B a i r d-P a r k e r平板表面有水珠,可放在25ħ~50ħ的培养箱里干燥,直到平板表面的水珠消失㊂8.3培养在通常情况下,涂布后,将平板静置10m i n,如样液不易吸收,可将平板放在培养箱36ħʃ1ħ培养1h;等样品匀液吸收后翻转平板,倒置后于36ħʃ1ħ培养24h~48h㊂8.4典型菌落计数和确认8.4.1金黄色葡萄球菌在B a i r d-P a r k e r平板上呈圆形,表面光滑㊁凸起㊁湿润㊁菌落直径为2mm~ 3mm,颜色呈灰黑色至黑色,有光泽,常有浅色(非白色)的边缘,周围绕以不透明圈(沉淀),其外常有一清晰带㊂当用接种针触及菌落时具有黄油样黏稠感㊂有时可见到不分解脂肪的菌株,除没有不透明圈和清晰带外,其他外观基本相同㊂从长期贮存的冷冻或脱水食品中分离的菌落,其黑色常较典型菌落浅些,且外观可能较粗糙,质地较干燥㊂8.4.2选择有典型的金黄色葡萄球菌菌落的平板,且同一稀释度3个平板所有菌落数合计在20C F U~ 200C F U之间的平板,计数典型菌落数㊂8.4.3从典型菌落中至少选5个可疑菌落(小于5个全选)进行鉴定试验㊂分别做染色镜检,血浆凝固酶试验(见5.5);同时划线接种到血平板36ħʃ1ħ培养18h~24h后观察菌落形态,金黄色葡萄球菌菌落较大,圆形㊁光滑凸起㊁湿润㊁金黄色(有时为白色),菌落周围可见完全透明溶血圈㊂9结果计算9.1若只有一个稀释度平板的典型菌落数在20C F U~200C F U之间,计数该稀释度平板上的典型菌落,按式(1)计算㊂9.2 若最低稀释度平板的典型菌落数小于20C F U ,计数该稀释度平板上的典型菌落,按式(1)计算㊂9.3 若某一稀释度平板的典型菌落数大于200C F U ,但下一稀释度平板上没有典型菌落,计数该稀释度平板上的典型菌落,按式(1)计算㊂9.4 若某一稀释度平板的典型菌落数大于200C F U ,而下一稀释度平板上虽有典型菌落但不在20C F U~200C F U 范围内,应计数该稀释度平板上的典型菌落,按式(1)计算㊂9.5 若2个连续稀释度的平板典型菌落数均在20C F U~200C F U 之间,按式(2)计算㊂9.6 计算公式式(1):T =A BC d(1)式中:T样品中金黄色葡萄球菌菌落数;A某一稀释度典型菌落的总数;B某一稀释度鉴定为阳性的菌落数;C某一稀释度用于鉴定试验的菌落数;d 稀释因子㊂式(2):T =A 1B 1/C 1+A 2B 2/C 21.1d(2)式中:T样品中金黄色葡萄球菌菌落数;A 1第一稀释度(低稀释倍数)典型菌落的总数;B 1第一稀释度(低稀释倍数)鉴定为阳性的菌落数;C 1第一稀释度(低稀释倍数)用于鉴定试验的菌落数;A 2第二稀释度(高稀释倍数)典型菌落的总数;B 2第二稀释度(高稀释倍数)鉴定为阳性的菌落数;C 2第二稀释度(高稀释倍数)用于鉴定试验的菌落数;1.1计算系数;d 稀释因子(第一稀释度)㊂10 报告根据9中公式计算结果,报告每g (m L )样品中金黄色葡萄球菌数,以C F U /g(m L )表示;如T 值为0,则以小于1乘以最低稀释倍数报告㊂第三法 金黄色葡萄球菌M P N 计数11 检验程序金黄色葡萄球菌M P N 计数检验程序见图3㊂图3金黄色葡萄球菌M P N法检验程序12操作步骤12.1样品的稀释按8.1进行㊂12.2接种和培养12.2.1根据对样品污染状况的估计,选择3个适宜稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液),在进行10倍递增稀释的同时,每个稀释度分别接种1m L样品匀液至7.5%氯化钠肉汤管(如接种量超过1m L,则用双料7.5%氯化钠肉汤),每个稀释度接种3管,将上述接种物36ħʃ1ħ培养,18h~24h㊂12.2.2用接种环从培养后的7.5%氯化钠肉汤管中分别取培养物1环,移种于B a i r d-P a r k e r平板36ħʃ1ħ培养,24h~48h㊂12.3典型菌落确认按8.4.1㊁8.4.3进行㊂13结果与报告根据证实为金黄色葡萄球菌阳性的试管管数,查M P N检索表(见附录C),报告每g(m L)样品中金黄色葡萄球菌的最可能数,以M P N/g(m L)表示㊂附录A培养基和试剂A.17.5%氯化钠肉汤A.1.1成分蛋白胨10.0g牛肉膏5.0g氯化钠75g蒸馏水1000m LA.1.2制法将上述成分加热溶解,调节p H至7.4ʃ0.2,分装,每瓶225m L,121ħ高压灭菌15m i n㊂A.2血琼脂平板A.2.1成分豆粉琼脂(p H7.5ʃ0.2)100m L脱纤维羊血(或兔血)5m L~10m LA.2.2制法加热溶化琼脂,冷却至50ħ,以无菌操作加入脱纤维羊血,摇匀,倾注平板㊂A.3B a i r d-P a r k e r琼脂平板A.3.1成分胰蛋白胨10.0g牛肉膏5.0g酵母膏1.0g丙酮酸钠10.0g甘氨酸12.0g氯化锂(L i C l㊃6H2O)5.0g琼脂20.0g蒸馏水950m LA.3.2增菌剂的配法30%卵黄盐水50m L与通过0.22μm孔径滤膜进行过滤除菌的1%亚碲酸钾溶液10m L混合,保存于冰箱内㊂A.3.3制法将各成分加到蒸馏水中,加热煮沸至完全溶解,调节p H至7.0ʃ0.2㊂分装每瓶95m L,121ħ高压灭菌15m i n㊂临用时加热溶化琼脂,冷至50ħ,每95m L加入预热至50ħ的卵黄亚碲酸钾增菌剂5m L摇匀后倾注平板㊂培养基应是致密不透明的㊂使用前在冰箱储存不得超过48h㊂A.4脑心浸出液肉汤(B H I)A.4.1成分胰蛋白质胨10.0g氯化钠5.0g磷酸氢二钠(12H2O)2.5g葡萄糖2.0g牛心浸出液500m LA.4.2制法加热溶解,调节p H至7.4ʃ0.2,分装16mmˑ160mm试管,每管5m L置121ħ,15m i n灭菌㊂A.5兔血浆取柠檬酸钠3.8g,加蒸馏水100m L,溶解后过滤,装瓶,121ħ高压灭菌15m i n㊂兔血浆制备:取3.8%柠檬酸钠溶液一份,加兔全血4份,混好静置(或以3000r/m i n离心30m i n),使血液细胞下降,即可得血浆㊂A.6磷酸盐缓冲液A.6.1成分磷酸二氢钾(K H2P O4)34.0g蒸馏水500m LA.6.2制法贮存液:称取34.0g的磷酸二氢钾溶于500m L蒸馏水中,用大约175m L的1m o l/L氢氧化钠溶液调节p H至7.2,用蒸馏水稀释至1000m L后贮存于冰箱㊂稀释液:取贮存液1.25m L,用蒸馏水稀释至1000m L,分装于适宜容器中,121ħ高压灭菌15m i n㊂A.7营养琼脂小斜面A.7.1成分蛋白胨10.0g牛肉膏3.0g氯化钠5.0g琼脂15.0g~20.0g蒸馏水1000m LA.7.2制法将除琼脂以外的各成分溶解于蒸馏水内,加入15%氢氧化钠溶液约2m L调节p H至7.3ʃ0.2㊂加入琼脂,加热煮沸,使琼脂溶化,分装13mmˑ130mm试管,121ħ高压灭菌15m i n㊂A.8革兰氏染色液A.8.1结晶紫染色液A.8.1.1成分结晶紫1.0g95%乙醇20.0m L1%草酸铵水溶液80.0m LA.8.1.2制法将结晶紫完全溶解于乙醇中,然后与草酸铵溶液混合㊂A.8.2革兰氏碘液A.8.2.1成分碘1.0g碘化钾2.0g蒸馏水300m LA.8.2.2制法将碘与碘化钾先行混合,加入蒸馏水少许充分振摇,待完全溶解后,再加蒸馏水至300m L㊂A.8.3沙黄复染液A.8.3.1成分沙黄0.25g95%乙醇10.0m L蒸馏水90.0m LA.8.3.2制法将沙黄溶解于乙醇中,然后用蒸馏水稀释㊂A.8.4染色法a)涂片在火焰上固定,滴加结晶紫染液,染1m i n,水洗㊂b)滴加革兰氏碘液,作用1m i n,水洗㊂c)滴加95%乙醇脱色约15s~30s,直至染色液被洗掉,不要过分脱色,水洗㊂d)滴加复染液,复染1m i n,水洗㊁待干㊁镜检㊂A.9无菌生理盐水A.9.1成分氯化钠8.5g蒸馏水1000m LA.9.2制法称取8.5g氯化钠溶于1000m L蒸馏水中,121ħ高压灭菌15m i n㊂附录B葡萄球菌肠毒素检验B.1试剂和材料除另有规定外,所用试剂均为分析纯,试验用水应符合G B/T6682对一级水的规定㊂B.1.1 A㊁B㊁C㊁D㊁E型金黄色葡萄球菌肠毒素分型E L I S A检测试剂盒㊂B.1.2p H试纸,范围在3.5~8.0,精度0.1㊂B.1.30.25m o l/L㊁p H8.0的T r i s缓冲液:将121.1g的T r i s溶解到800m L的去离子水中,待温度冷至室温后,加42m L浓H C L,调p H至8.0㊂B.1.4p H7.4的磷酸盐缓冲液:称取N a H2P O4㊃H2O0.55g(或N a H2P O4㊃2H2O0.62g)㊁N a2H P O4㊃2H2O2.85g(或N a2H P O4㊃12H2O5.73g)㊁N a C l8.7g溶于1000m L蒸馏水中,充分混匀即可㊂B.1.5庚烷㊂B.1.610%次氯酸钠溶液㊂B.1.7肠毒素产毒培养基B.1.7.1成分蛋白胨20.0g胰消化酪蛋白200m g(氨基酸)氯化钠5.0g磷酸氢二钾1.0g磷酸二氢钾1.0g氯化钙0.1g硫酸镁0.2g菸酸0.01g蒸馏水1000m Lp H7.3ʃ0.2B.1.7.2制法将所有成分混于水中,溶解后调节p H,121ħ高压灭菌30m i n㊂B.1.8营养琼脂B.1.8.1成分蛋白胨10.0g牛肉膏3.0g氯化钠5.0g琼脂15.0g~20.0g蒸馏水1000m LB.1.8.2制法将除琼脂以外的各成分溶解于蒸馏水内,加入15%氢氧化钠溶液约2m L校正p H至7.3ʃ0.2㊂加入琼脂,加热煮沸,使琼脂溶化㊂分装烧瓶,121ħ高压灭菌15m i n㊂B.2仪器和设备B.2.1电子天平:感量0.01g㊂B.2.2均质器㊂B.2.3离心机:转速3000g~5000g㊂B.2.4离心管:50m L㊂B.2.5滤器:滤膜孔径0.2μm㊂B.2.6微量加样器:20μL~200μL㊁200μL~1000μL㊂B.2.7微量多通道加样器:50μL~300μL㊂B.2.8自动洗板机(可选择使用)㊂B.2.9酶标仪:波长450n m㊂B.3原理本方法可用A㊁B㊁C㊁D㊁E型金黄色葡萄球菌肠毒素分型酶联免疫吸附试剂盒完成㊂本方法测定的基础是酶联免疫吸附反应(E L I S A)㊂96孔酶标板的每一个微孔条的A~E孔分别包被了A㊁B㊁C㊁D㊁E 型葡萄球菌肠毒素抗体,H孔为阳性质控,已包被混合型葡萄球菌肠毒素抗体,F和G孔为阴性质控,包被了非免疫动物的抗体㊂样品中如果有葡萄球菌肠毒素,游离的葡萄球菌肠毒素则与各微孔中包被的特定抗体结合,形成抗原抗体复合物,其余未结合的成分在洗板过程中被洗掉;抗原抗体复合物再与过氧化物酶标记物(二抗)结合,未结合上的酶标记物在洗板过程中被洗掉;加入酶底物和显色剂并孵育,酶标记物上的酶催化底物分解,使无色的显色剂变为蓝色;加入反应终止液可使颜色由蓝变黄,并终止了酶反应;以450n m波长的酶标仪测量微孔溶液的吸光度值,样品中的葡萄球菌肠毒素与吸光度值成正比㊂B.4检测步骤B.4.1从分离菌株培养物中检测葡萄球菌肠毒素方法待测菌株接种营养琼脂斜面(试管18mmˑ180mm)36ħ培养24h,用5m L生理盐水洗下菌落,倾入60m L产毒培养基中,36ħ振荡培养48h,振速为100次/m i n,吸出菌液离心,8000r/m i n 20m i n,加热100ħ,10m i n,取上清液,取100μL稀释后的样液进行试验㊂B.4.2从食品中提取和检测葡萄球菌毒素方法B.4.2.1牛奶和奶粉将25g奶粉溶解到125m L㊁0.25M㊁p H8.0的T r i s缓冲液中,混匀后同液体牛奶一样按以下步骤制备㊂将牛奶于15ħ,3500g离心10m i n㊂将表面形成的一层脂肪层移走,变成脱脂牛奶㊂用蒸馏水对其进行稀释(1ʒ20)㊂取100μL稀释后的样液进行试验㊂B.4.2.2脂肪含量不超过40%的食品称取10g样品绞碎,加入p H7.4的P B S液15m L进行均质㊂振摇15m i n㊂于15ħ,3500g离心10m i n㊂必要时,移去上面脂肪层㊂取上清液进行过滤除菌㊂取100μL的滤出液进行试验㊂B.4.2.3脂肪含量超过40%的食品称取10g样品绞碎,加入p H7.4的P B S液15m L进行均质㊂振摇15m i n㊂于15ħ,3500g离心10m i n㊂吸取5m L上层悬浮液,转移到另外一个离心管中,再加入5m L的庚烷,充分混匀5m i n㊂于15ħ,3500g离心5m i n㊂将上部有机相(庚烷层)全部弃去,注意该过程中不要残留庚烷㊂将下部水相层进行过滤除菌㊂取100μL的滤出液进行试验㊂B.4.2.4其他食品可酌情参考上述食品处理方法㊂B.4.3检测B.4.3.1所有操作均应在室温(20ħ~25ħ)下进行,A㊁B㊁C㊁D㊁E型金黄色葡萄球菌肠毒素分型E L I S A检测试剂盒中所有试剂的温度均应回升至室温方可使用㊂测定中吸取不同的试剂和样品溶液时应更换吸头,用过的吸头以及废液处理前要浸泡到10%次氯酸钠溶液中过夜㊂B.4.3.2将所需数量的微孔条插入框架中(一个样品需要一个微孔条)㊂将样品液加入微孔条的A~G 孔,每孔100μL㊂H孔加100μL的阳性对照,用手轻拍微孔板充分混匀,用黏胶纸封住微孔以防溶液挥发,置室温下孵育1h㊂B.4.3.3将孔中液体倾倒至含10%次氯酸钠溶液的容器中,并在吸水纸上拍打几次以确保孔内不残留液体㊂每孔用多通道加样器注入250μL的洗液,再倾倒掉并在吸水纸上拍干㊂重复以上洗板操作4次㊂本步骤也可由自动洗板机完成㊂B.4.3.4每孔加入100μL的酶标抗体,用手轻拍微孔板充分混匀,置室温下孵育1h㊂B.4.3.5重复B.4.3.3的洗板程序㊂B.4.3.6加50μL的TM B底物和50μL的发色剂至每个微孔中,轻拍混匀,室温黑暗避光处孵育30m i n㊂B.4.3.7加入100μL的2m o l/L硫酸终止液,轻拍混匀,30m i n内用酶标仪在450n m波长条件下测量每个微孔溶液的O D值㊂B.4.4结果的计算和表述B.4.4.1质量控制测试结果阳性质控的O D值要大于0.5,阴性质控的O D值要小于0.3,如果不能同时满足以上要求,测试的结果不被认可㊂对阳性结果要排除内源性过氧化物酶的干扰㊂B.4.4.2临界值的计算每一个微孔条的F孔和G孔为阴性质控,两个阴性质控O D值的平均值加上0.15为临界值㊂示例:阴性质控1=0.08阴性质控2=0.10平均值=0.09临界值=0.09+0.15=0.24B.4.4.3结果表述O D值小于临界值的样品孔判为阴性,表述为样品中未检出某型金黄色葡萄球菌肠毒素;O D值大于或等于临界值的样品孔判为阳性,表述为样品中检出某型金黄色葡萄球菌肠毒素㊂B.5生物安全因样品中不排除有其他潜在的传染性物质存在,所以要严格按照G B19489‘实验室生物安全通用要求“对废弃物进行处理㊂附录C金黄色葡萄球菌最可能数(M P N)检索表每g(m L)检样中金黄色葡萄球菌最可能数(M P N)的检索见表C.1㊂表C.1金黄色葡萄球菌最可能数(M P N)检索表阳性管数0.100.010.001M P N 95%置信区间下限上限000<3.0 9.5 0013.00.159.6 0103.00.1511 0116.11.218 0206.21.218 0309.43.638 1003.60.1718 1017.21.318 102113.638 1107.41.320 111113.638 120113.642 121154.542 130164.542 2009.21.438 201143.642 202204.542 210153.742 211204.542 212278.794阳性管数0.100.010.001M P N95%置信区间下限上限220214.542 221288.794 222358.794 230298.794 231368.794 300234.694 301388.7110 3026417180 310439180 3117517200 31212037420 31316040420 3209318420 32115037420 32221040430 323290901000 330240421000 331460902000 33211001804100 333>1100420注1:本表采用3个稀释度[0.1g(m L)㊁0.01g(m L)和0.001g(m L)]㊁每个稀释度接种3管㊂注2:表内所列检样量如改用1g(m L)㊁0.1g(m L)和0.01g(m L)时,表内数字应相应降低10倍;如改用0.01g (m L)㊁0.001g(m L)㊁0.0001g(m L)时,则表内数字应相应增高10倍,其余类推㊂。

金黄色葡萄球菌的检验

金黄色葡萄球菌的检验

鉴定
A 染色镜检:金黄色葡萄球菌为革兰氏阳性球菌,
排列呈葡萄球状,无芽胞,无荚膜,直径约为0.5m~ 1m。
革兰氏染色法一般包括初染、媒染、脱色、复染等
四个步骤,具体操作方法是:
1)涂片固定。 2)草酸铵结晶紫染1分钟。 3)用水冲洗。 4)加碘液覆盖涂面染约1分钟。 5)水洗,用吸水纸吸去水分。 6)加95%酒精数滴,并轻轻摇动进行脱色,20秒 后水洗,吸去水分。
基本原理
金黄色葡萄球菌可产生多种毒素和酶。在血 平板上生成金黄色色素使菌落呈现金黄色;由于 产生溶血素使菌落周围形成大而透明的溶血圈, 金黄色葡萄球菌能产生凝固酶,使血浆凝固,多 数致病菌株能产生溶血素,使血琼脂平板菌落周 围出现溶血环,在试管中出现溶血反应。这些事 鉴定致病性金黄色葡萄球菌的重要指标。在B-P 平板上生长时,因将亚碲酸钾还原成碲酸钾使菌 落呈灰黑色;因产生脂酶使菌落周围有一混浊带, 而在其外层饮产生蛋白水解酶有一透明带。
将上述样品匀液于 36 ℃±1 ℃培养 18 h~ 24 h。金黄色葡萄球菌在 7.5%氯化钠肉汤中呈混 浊生 长,污染严重时在 10%氯化钠胰酪胨大豆肉 汤内呈混浊生长。
将上述培养物,分别划线接种到 BairdParker 平板和血平板,血平板 36 ℃±1 ℃培养 18 h~24 h。 Baird-Parker 平板 36 ℃±1 ℃培 养 18 h~24 h 或 45 h~48 h。
金黄色葡萄球菌的检验
目的
参考:GB 4789.10-2010
1、了解金黄色葡萄球菌的生物学特征级临床 症状。
2、了解食品中掌握金黄色葡萄球菌群的检验方法。
基本原理
肉汤中培养时菌体可生成血浆凝固酶 并释放于培养基中,此酶类类似凝血酶原 物质,不直接作用到血浆纤维蛋白原上, 而是被血浆中的致活剂激活后,变成耐热的 凝血酶样物质,此物质可使血浆中的液态纤 维蛋白原变成纤维蛋白,血浆因而成凝固状 态。
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血平板上金黄色葡萄球菌 菌落形态
金黄色葡萄球球菌的单个菌落在血 平板上呈金黄色,有时也为白色,大而 突出、圆形、不透明、表面光滑,周围 有溶血圈。
金黄色葡萄球菌 在BP平板上的菌落形态
在Baird-Parker琼脂平板上菌落呈圆形,表面光 滑、凸起、湿 润,直径2~3 mm。灰黑色至黑色,有 光泽,常有浅色(非白色)的边缘,周围绕以不透明 圈 (沉淀),其外常有一清晰带。当用接种针触及 菌落时具有黄油样粘稠感。有时可见到不分解脂肪的 菌株,除没有不透明圈和清晰带外,其他外观基本相 同。从长期贮存的冷冻或脱 水食品中分离的菌落, 其黑色常较典型菌落浅些,且外观可能较粗糙,质地 较干燥。
***当金黄色葡萄球菌污染了含淀粉及水分较 多的食品,如牛奶和乳制品、肉、蛋等,在温度条 件适宜时,经过8~10小时即可产生相当数量的肠毒 素,肠毒素可耐受100℃煮沸30分钟而不被破坏。人 摄食该菌污染的食物2~3小时后可引起中毒症状, 它引起的食物中毒症状是呕吐和腹泻。 此外,金黄色葡萄球菌还产生溶表皮素、明胶 酶、蛋白酶、脂肪酶、肽酶等。
金黄色葡萄球菌的透射电镜照片 Tem x12000 digitized Staphylococcus aureus
2、培养特性:
金黄色葡萄球菌营养要求不高,在普通培养 基上生长良好,需氧或兼性厌氧,最适生长温度 37℃,最适生长pH 7.4。 平板上菌落厚、有光泽、圆形凸起,边缘整 齐、表面光滑、湿润,直径一般为1~2 mm。血 平板菌落周围形成透明的溶血环。 金黄色葡萄球菌有高度的耐盐性,可在7.5~ 15%NaCl肉汤中生长。
防止金黄色葡萄球菌肠毒素生成
应在低温和通风良好的条件下贮藏 食物,以防肠毒素形成; 在气温高的春夏季,食物置冷藏或 通风阴凉地方也不应超过6小时,并且 食用前要彻底加热。
法国梅里埃公司生产的RPF培养基
将兔血浆包括在培养基中作为直接确认菌落的手段
-
+
凝固酶阳性葡萄球菌 : 菌落周围形成沉淀圈 (例) 金黄色葡萄球菌
金黄色葡萄球菌污染的控制 防止食品污染
防止带菌人群对各种食物的污染: 定期对生产加工人员进行健康检查,患 局部化脓性感染(如疥疮、手指化脓等 )、上呼吸道感染(如鼻窦炎、化脓性 肺炎、口腔疾病等)的人员要暂时停止 其工作或调换岗位。
目前,随着研究的深入,一些快速和采用 现代技术的检测方法不断出现,这些新的快速 方法,一般都缩短了传统检测方法的时间,能 够较快地得到检测结果,并且操作相对简单。 比如:法国梅里埃公司生产的RPF培养基 、API检测系统等。梅里埃公司生产的mini VIDAS利用荧光免疫的方法检测葡萄球菌 肠毒素,在仪器上45 min可以得到结果。
*金黄色葡萄球菌肠毒素是个世界性卫生 问题,在美国由金黄色葡萄球菌肠毒素引起 的食物中毒占整个细菌性食物中毒的33%, 加拿大则更多,占45%,我国每年发生的此 类中毒事件也非常多。肠毒素形成条件: 存放温度,在37℃内,温度越高,产毒 时间越短; 存放地点,通风不良氧分压低易形成肠 毒素; 食物种类,含蛋白质丰富,水分多,同 时含一定量淀粉的食物,肠毒素易生成。
3、生化特性:
可分解葡萄糖、麦芽糖、乳糖、蔗糖,产酸 不产气。甲基红反应阳性,VP反应弱阳性。 许多菌株可分解精氨酸,水解尿素,还原硝 酸盐,液化明胶。 金黄色葡萄球菌具有较强的抵抗力,对磺胺 类药物敏感性低,但对青霉素、红霉素等高度敏 感。
金黄色葡萄球菌的致病性
金黄色葡萄球菌是人类化脓感染中最常见的病原菌,可 引起局部化脓 感染,也可引起肺炎、伪膜性肠炎、心包炎等, 甚至败血症、脓毒症等全身感染。 金黄色葡萄球菌的致病力 强弱主要取决于其产生的毒素和侵袭性酶: a.溶血毒素:外毒素,分甲、乙、丙、丁、戊五种,能损伤 血小板,破坏溶酶体,引起肌体局部缺血和坏死; b.杀白细胞素:可破坏人的白细胞和巨噬细胞; c.血浆凝固酶:当金黄色葡萄球菌侵入人体时,该酶使血液 或血浆中的纤维蛋白沉积于菌体表面或凝固,阻碍吞噬细胞 的吞噬作用。 葡萄球菌形成的感染易局部化与此酶有关; d.脱氧核糖核酸酶:金黄色葡萄球菌产生的脱氧核糖核酸酶 能耐受高温,可用来作为依据鉴定金黄色葡萄球菌; e.肠毒素:金黄色葡萄球菌能产生数种引起急性胃肠炎的蛋 白质性肠毒素,分为A、B、C、D、E及F六种血清型。
金黄色葡萄球菌的流行病学特点
季节分布,多见于春夏季;中毒食品 种类多,如奶、肉、蛋、鱼及其制品。此 外,剩饭、油煎蛋、糯米糕及凉粉等引起 的中毒事件也有报道。 上呼吸道感染患者鼻腔带菌率83%, 所以人畜化脓性感染部位常成为污染源。
金黄色葡萄球菌的流行病学
一般说,金黄色葡萄球菌可通过以下 途径污染食品: 食品加工人员、炊事员或销售人员带 菌,造成食品污染;食品在加工前本身带 菌,或在加工过程中受到了污染,产生了 肠毒素,引起食物中毒;熟食制品包装不 严,运输过程受到污染;奶牛患化脓性乳 腺炎或禽畜局部化脓时,对肉体其他部位 的污染。
金黄色葡萄球菌肠毒素的检测
一、动物学试验 主要用幼猫和猴。 二、血清学试验 肠毒素作为抗原,可以 和特异性抗体发生结合性反应,产生可见 沉淀。 用血清学反应检验金黄色葡萄球菌肠 毒素,方法主要有: 1.免疫琼脂扩散法 2.反向间接血凝试验 3.免疫荧光法 4.酶联免疫吸附法
金黄色葡萄球菌快速检测方法
金黄色葡萄球菌污染的控制 防止食品污染
防止金黄色葡萄球菌对奶及其制品 的污染:如牛奶厂要定期检查奶牛的乳 房,不能挤用患化脓性乳腺炎的牛奶; 奶挤出后,要迅速冷至-10℃以下,以防 毒素生成、细菌繁殖。奶制品要以消毒 牛奶为原料,注意低温保存。 对肉制品加工厂,患局部化脓感染 的禽、畜尸体应除去病变部位,经高温 或其他适当方式处理后进行加工生产。
食品卫生微生物学检验 金黄色葡萄球菌检验
一、金黄色葡萄球菌的生物学特性
1、形态与染色:(staphylococcus aureus) 金黄色葡萄球菌无芽胞、鞭毛,大多数无荚膜。 典型的金黄色葡萄球菌为球型,直径0.8 mm左右,显 微镜下排列成葡萄串状。
革兰氏染色阳性。
附: 金黄色葡萄球菌的显微照片 金黄色葡萄球菌的染色照片 金黄色葡萄球菌的扫描电镜照片 金黄色葡萄球菌的透射电镜照片
金黄色葡萄球菌的检验
1、样品制备 按无菌操作取检样25 g(mL),加入 225 mL灭菌生理盐水,固体样品研磨或置 均质器中制成1:10样品混悬液。 供计数检验时,可按十进位递增稀释法 将样品匀液再进行适当稀释。
金黄色葡萄球菌的检验
2、增菌及分离培养 吸取5 mL混悬液,接种于7.5%氯化钠 肉汤或胰酪胨大豆肉汤50 mL培养基内, 36℃±1℃培养24 h,转种血平板和BairdParker平板, 36℃±1℃培养24 h,挑取血 平板上金黄色(有时为白色)菌落进行革 兰氏染色镜检及血浆凝固酶试验。
金黄色葡萄球菌 在甘露醇盐平板上的菌落
Staphylococcus aureus on mannitol salts agar
3、血浆凝固酶试验:
吸取1:4新鲜兔血浆0.5 mL,放入小试 管中,再加入培养24 h的金黄色葡萄球菌 肉浸液肉汤培养物0.5 mL,振荡摇匀, 置 36±1℃温箱或水浴内,每半小时观察 一次,观察6 h,如呈现凝固,即将试管倒 置或 倾斜时,呈现凝块者,被认为阳性结 果。同时以已知阳性和阴性葡萄球菌株及 肉汤作为对照。
金黄色葡萄球菌的显微照片
典型的金黄色葡萄球菌为球型,直径0.8 mm 左右,显微镜下排列成葡萄串状。
金黄色葡萄球菌革兰氏染色显微照片
金黄色葡萄球菌无芽胞、鞭毛,大多数无荚膜。
革兰氏染色阳性。
金黄色葡萄球菌的扫描电镜照片 Staphylococcus aureus Enhanced sem w: 7.9 micron
金黄色葡萄球菌的流行病学
金黄色葡萄球菌在自然界中无处不在, 空气、水、灰尘及人和动物的排泄物中都可 找到。作为人和动物的常见病原菌,其主要 存在于人和动物的鼻腔、咽喉、头发上, 50%以上健康人的皮肤上都有金黄色葡萄球 菌存在。因而,食品受其污染的机会很多。
金黄色葡萄球菌的流行病学
近年来,美国疾病控制中心报告,由 金黄色葡萄球菌引起的感染占第二位,仅 次于大肠杆菌。
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