第六章+愈伤组织培养
愈伤组织的诱导和培养

班级:植物092 姓名:徐炜佳学号:0901080223愈伤组织的诱导和培养一、实验目的及意义植物愈伤组织的诱导和培养在植物科学的基础研究和应用研究中都有重要的意义。
通过本次实验,可以初步掌握植物外植体材料消毒、接种的无菌操作技术,愈伤组织的诱导方法和愈伤组织继代培养的方法。
二、实验原理植物组织与细胞培养是应用无菌操作的方法培养离体的植物器官、组织或细胞的过程。
如果组织培养使用的植物材料是带菌的,在接种前就必须选择适当的消毒剂对植物外植体进行表面消毒,获得无菌材料进行组织培养,这是取得植物组织培养,成功的基本前提和重要保证。
由于植物细胞具有全能性,外植体在合适的培养基上通过脱分化,形成一种能迅速增殖的无特定结构和功能的细胞团——愈伤组织(callus)。
植物生长调节剂如2,4-二氯苯氧乙酸(2,4-D)等是诱导外植体形成遇上组织的重要因素。
三、实验仪器与药品超净工作台,酒精灯,镊子,剪刀,解剖刀,75%乙醇,酒精消毒棉材料:烟草无菌苗,甘薯无菌苗四、实验步骤1.按下表分别配制培养基将配置的四种培养基分别分装入20个培养瓶,高温灭菌后水平放置凝固2.接种前,将实验所需器具放入超净工作台,打开紫外灯灭菌20~30min,关闭紫外灯,开启通风开关。
洗手后用酒精喷洒消毒手、手臂、实验材料及培养基外部等进入超净工作台的部分。
进入超净工作台,用酒精棉擦拭台面(手勿伸出工作台),台面完全风干后点燃酒精灯。
3.接种开始时,将镊子及手术刀在酒精中浸泡,并在酒精灯外焰上烧炽片刻,充分冷却。
取幼嫩的烟草(甘薯)叶片,用手术刀切割成小片,再用镊子将其接种至相应的培养基上,每瓶接种3~5片,封口后取出超净工作台,标注姓名、日期、培养基和接种材料。
4.将上述培养材料常温暗培养,每隔7天观察一次,并记录培养情况五、实验结果组织长芽,而当生长素含量大于细胞分裂素含量时,二者共同作用在室温下可诱导外植体生成不定根,也可形成愈伤组织,细胞色素沉淀情况严重;NAA为植物生长素,6-BA为细胞分裂素,促进扦插生根,而当细胞分裂素含量大于生长素含量时,二者共同作用在室温下可诱导外植体生成不定芽,此次实验由于温度非形成愈伤组织的最适温度,所以未形成完整的愈伤组织细胞团。
胡萝卜愈伤组织的培养

胡萝卜愈伤组织的培养一、实验目的1、理解胡萝卜愈伤组织培养的培养方法及条件。
2、了解培养基的成分及掌握培养基的配制方法。
3、会对外植体胡萝卜进行预处理和正确消毒。
4、能严格按照操作规程进行无菌操作。
二、实验原理在离体根培养中,首先解决外植体消毒问题,因为在自然条件下,根生长在土壤中,要进行彻底灭菌、消毒。
为了消灭这种污染源,在把植物组织接种到培养基上之前必须要进行彻底的表面消毒;内部已受到真菌或细菌侵染的组织在组织培养研究中一般都淘汰不用。
胡萝卜的肉质根,其硬度较大,容易操作,可直接用灭菌剂进行处理。
无菌操作技术室用于防止微生物进入实验室区内的操作技术。
要求:①在进行无菌操作之前将界面上的细菌和病毒等微生物杀灭;②操作过程中是界面与外界隔离,避免微生物的侵入。
目前,多数实验室都使用各种类型的超净工作台进行无菌操作。
三、实验材料与用具1、器具:培养瓶、电磁炉、玻璃棒、酒精灯、解剖刀、镊子、酒精棉球(浓度为75%)、烧杯、废液缸、滤纸、玻璃棒、移液管、PH试纸2、材料:新鲜健康的胡萝卜肉质直根3、试剂、2.4-D、6-BA、大量元素母液、微量元素母液、铁盐母液、有机物母液、蔗糖、琼脂、钙盐母液、无菌水、蒸馏水四、实验方法与步骤1、配制培养基(1)、确定配方和配制量:根据实验需要,确定配制培养基的配方。
(2)、计算各种母液和药品用量:a、确定培养基配制量b、查看MS培养基母液的扩大倍数、植物生长调节剂母液浓度c、由母液用量=培养基配方浓度/培养基母液浓度*培养基配制量植物生长调节剂母液用量=培养基配方浓度/植物生长调节剂母液浓度*培养基配制量(3)、量取:由表一的数据仔细量取相应的量并用托盘天平分别称取蔗糖、琼脂。
(4)、溶解:a、在锅内加配制量60%左右的蒸馏水,至于电磁炉加热b、加入琼脂,加热不断搅拌,待琼脂完全溶化后加入蔗糖c、将所量取的各种母液的混合液倒入锅中,搅拌均匀d、琼脂必须完全熔化,以免造成浓度分布不均匀(5)、用蒸馏水定容:a、将完全溶解、混匀后的培养基倒入烧杯中b、加蒸馏水定容至规定体积。
愈伤组织培养

•
第三节 愈伤组织形态的发生
愈伤组织培养物在某些条件下,可以再分
化产生不定芽或根的分生组织甚至是胚状
体,继之,由这些有结构的组织而发育成
苗或完整小植株。
一、愈伤组织通过再分化形成再生植株的 方式:主要有三种(1)先产生芽,后在茎的
外植体的细胞数目多,获得愈伤组织的机会也多。
如果目的仅在于得到愈伤组织,那末将茎的切
段、叶、根、花、果实或种子,或其中的某种 组织切成一片片或一块块放到培养基上就可以 了。
如果要定量地研究愈伤组织的发生,那末外植体
的大小必须一致,形状和组成也要基本相同。进 行这类研究常选用组织块较大的材料,例如胡萝 卜的贮藏根、马铃薯的块茎、菊芋、荷兰防风草
成的能力,因此表面积越大,产生分泌物数量也
越多,愈伤组织的得率也越高。
外植体的体积应尽可能小,从而得到较大数量的
外植体。外植体最小的限度由其亲本组织细胞的
平均大小来决定。细胞数目。
例如菊芋的细胞比胡萝卜根次生韧皮部的细胞 大三倍,一个3.8毫克的胡萝卜外植体大约包含
25,000个细胞,这样一个外植体是能够成活的。
• 理论上愈伤组织是可以无限制继代,但 愈伤组织继代次数增加,形态发生能力 逐渐丧失。 • 原因:遗传因素即继代培养中通常出现 染色体紊乱。
REASONS
遗传上表现不稳定:染色体出现多倍 体和非整倍体
• 四、培养条件
• 1、光照:愈伤组织的诱导需弱光或不需 光,分化需光。继代培养一般需光。此 时光对器官的作用是一种诱导反应。 • 2、温度:一般采用24~28℃的恒温条件 进行。 • 3、湿度:较大,以免引起培养基干缩。
有好几种化学试剂都能起到表面消毒的作
用,试剂的选择及处理时间的长短要根据 材料对试剂的敏感性来决定。
愈伤组织培养步骤

愈伤组织培养步骤
愈伤组织培养是生物科学研究中的重要技术,它能够让细胞在体外环境下生长和分化。
以下是愈伤组织培养的详细步骤:
1、准备培养基:愈伤组织培养需要特殊的培养基,其中包含细胞生长所需的各种营养成分。
按照培养基的说明书进行配制,确保准确无误。
2、灭菌:在培养之前,所有的培养器具和培养基都需要经过高温高压灭菌,以确保无菌环境。
这是细胞生长的关键,因为任何污染都可能导致实验失败。
3、细胞分离:从植物中分离出细胞是培养愈伤组织的第一步。
通常采用酶解法,即用纤维素酶和果胶酶分解细胞壁,使细胞分离成单个。
这一步要特别小心,因为酶的作用会影响后续的细胞生长。
4、接种:将分离出的单个细胞接种到培养基上。
这一步骤需要使用显微操作技术,确保每个细胞都准确地放置在培养基上。
5、培养:将接种了细胞的的培养基放入恒温箱中,设定适宜的温度和湿度。
在培养期间,要定期检查细胞的生长情况,确保没有污染。
6、观察与记录:每天使用显微镜观察细胞的生长情况,记录生长速度、形态变化等数据。
这些数据对于后续的研究非常重要。
7、换液与传代:随着细胞的生长,营养物质会被消耗。
因此,需要定期更换新鲜的培养基,以保证细胞的正常生长。
当细胞数量足够多时,可以进行传代,即将一部分细胞重新接种到新的培养基上。
8、实验结束后的处理:实验结束后,对使用过的器具和培养基进行消毒处理,避免对环境造成污染。
以上是愈伤组织培养的基本步骤,但实际操作中可能还需要根据具体的实验需求进行调整。
在进行实验时,一定要注意遵守实验室规则,保证实验安全。
愈伤组织培养

菊花叶片培养
器官形成
愈伤组织形成
胚形成
五、愈伤组织的应用
(1)加快了植物新品种和良种繁育速度 植物组织培养将传统的育种方式改在试管和室
内进行,利用一块植物组织在一年内可繁殖成千 上万株的小植株,取得迅速高效、低成本推广新 品种的效果。
(2)利于种质资源保存和远距离运输 应用组织培养保存种质资源具有节约土
1、植物愈伤组织的形成结构
根据愈伤组织的性质和细胞组成的特点,可以将 它们的结构分为致密和松散两种类型。
松散型
致密型
2、愈伤组织形成的过程
外植体中已分化的活细胞,在外源激素的诱导下 通过脱分化后形成愈伤组织,这一过程被大致划 分为四个时期,即诱导期、分裂期、形成期和分 化期。
诱导期:
是细胞准备进行分裂的时期。 特点:代谢活化了,细胞内的合成代谢迅速进行,
通过继代培养,可使愈伤组织无限期地保持在不 分化的增殖状态。
由于代谢产物的积累会产生毒害作用,如 果长时间不继代培养,就会使愈伤组织变 成黑褐色,继而死亡。
用继代培养维持愈伤组织生长,是长期保 存愈伤组织的一种方法。
一般来说,愈伤组织的增殖生长只发生在不与琼 脂接触的表面,而与琼脂接触的一面极少细胞增 殖,只是细胞分化形成紧密的组织块。因此,由 于愈伤组织的迅速增殖,整个愈伤组织小方块变 成了一个不规则的馒头状的组织块。
影响因子: (一)外植体本身 (二)培养基 (三)培养环境
(一)外植体本身
1.遗传型 材料的基因型对愈伤组织的器官 分化有决定性的影响。
2.器官和部位 对有些植物而言,不同的器 官或组织所形成的愈伤组织,在生理上或形态 上存在明显差异。
3.年龄 年龄较幼的外植体,不仅易于诱导 形成愈伤组织,而且也容易诱导分化成植株。
愈伤组织培养

分裂期
是指细胞通过一分为二的分裂,不断增生子细胞 的过程。
外植体的细胞一旦经过诱导,其外层细胞开始迅 速分裂,使细胞脱分化。
在细胞分裂期,其形成结构和生理生化都发生深 刻的变化:
•
1.数目迅速增加。 2.平均鲜重下降。 3.体积小,内无液泡。 4.核和核仁增大到最大。
•
形成期
是指外植体经过诱导期和分裂期后形成了无序结 构的愈伤组织的时期。
•
由于代谢产物的积累会产生毒害作用,如 果长时间不继代培养,就会使愈伤组织变 成黑褐色,继而死亡。
用继代培养维持愈伤组织生长,是长期保 存愈伤组织的一种方法。
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一般来说,愈伤组织的增殖生长只发生在不与琼 脂接触的表面,而与琼脂接触的一面极少细胞增 殖,只是细胞分化形成紧密的组织块。因此,由 于愈伤组织的迅速增殖,整个愈伤组织小方块变 成了一个不规则的馒头状的组织块。
它是愈伤组织表面或近表面瘤状物生长的结果。
•
•青苹果愈伤组织增殖培养
•
•乌桕愈伤组织增殖培养
•
三 愈伤组织的形态发生
形态建成:外植体在适宜的培养条件下经 过脱分化和再分化形成完整植株的过程。
在组织培养中,从外植体形成器官或无性 系的形态发生,有下面两种方式:
•
形态发生方式(一)
不定芽方式 指愈伤组织通过再分化形成不定芽再生植 株。这是组织培养中常见的器官发生方式。
这一时期愈伤组织内细胞的特点是: ①大而不规则,高度液泡化,整个组织是比较松 散的。 ②细胞增殖速度快,适合用液体培养或悬浮培养。
•
③生长旺盛的愈伤组织呈乳黄色或白色,有光泽 ,也有浅绿色或绿色的;老化的愈伤组织多转变 为黄色甚至褐色。
•
•愈伤组织形成
植物组织培养的类型

植物组织培养的类型植物组织培养是一种在无菌条件下,利用植物组织的分裂、分化和再生能力进行体外培养的技术。
通过植物组织培养,可以实现无性繁殖、快速繁殖和遗传改良等目的。
本文将介绍几种常见的植物组织培养类型。
一、愈伤组织培养愈伤组织是指植物受到外界刺激后产生的异常组织,具有强烈的再生分裂能力。
愈伤组织培养是指通过培养和再生愈伤组织,实现植物的快速繁殖和遗传改良。
愈伤组织培养常用的方法有切割法、刺激法和悬浮培养法等。
通过这些方法,可以获得大量的愈伤组织,并进一步分化为根、茎、叶等不同的植物器官。
二、胚培养胚培养是指将植物胚或胚乳在适宜培养基上进行培养,促使其发育成为完整植株的技术。
胚培养可以实现无性繁殖、快速繁殖和遗传改良等目的。
胚培养常用的方法有胚轴培养、胚乳培养和胚培养悬浮液法等。
通过这些方法,可以培养出大量的植物胚,进一步发育为完整的植株。
三、单细胞培养单细胞培养是指将植物体的单个细胞或细胞团在适宜培养基上进行培养,促使其分化为完整植株的技术。
单细胞培养可以实现无性繁殖、快速繁殖和遗传改良等目的。
单细胞培养常用的方法有悬浮细胞培养、离体培养和原生质体培养等。
通过这些方法,可以培养出大量的植物细胞,进一步发育为完整的植株。
四、花药培养花药培养是指将植物的花药在适宜培养基上进行培养,促使其分化为花粉或胚囊的技术。
花药培养可以实现花粉无性繁殖和胚囊遗传改良等目的。
花药培养常用的方法有花药切片培养、花药培养悬浮液法和花药离体培养等。
通过这些方法,可以获得大量的花粉或胚囊,进一步进行无性繁殖或遗传改良。
五、根尖培养根尖培养是指将植物的根尖在适宜培养基上进行培养,促使其分化为根系的技术。
根尖培养可以实现植物的快速繁殖和根系遗传改良等目的。
根尖培养常用的方法有根尖切割培养、根尖培养悬浮液法和根尖离体培养等。
通过这些方法,可以获得大量的根系,进一步进行无性繁殖或遗传改良。
六、叶片培养叶片培养是指将植物的叶片在适宜培养基上进行培养,促使其分化为植物器官的技术。
植物愈伤组织培养

针对不同植物,选择适宜的基因型和生理状态进 行愈伤组织培养,以提高成功率。
3
采取抗污染和抗褐化措施
在愈伤组织培养过程中,采取抗污染和抗褐化措 施,如定期更换培养基、添加抗氧化剂等。
加强愈伤组织培养研究的建议与展望
加强基础研究
深入研究植物愈伤组织培养的机理和调控机制,为实际应用提供 理论支持。
遗传改良
愈伤组织培养可用于植物的遗传改良,通过细胞工程和基 因工程技术将优良性状导入到其他植物中,培育出抗逆性 更强、产量更高、品质更优的新品种。
生物技术研究
愈伤组织培养是植物生物技术研究的重要基础,可以用于 研究植物生长发育规律、细胞分化与形态发生、基因表达 与调控等生物学问题。
愈伤组织培养的历史与发展
将已经形成的愈伤组织进行继代培养,通过不断 的切割和重新接种,实现愈伤组织的快速增殖。
悬浮培养法
将已经形成的愈伤组织进行悬浮培养,通过细胞 分裂和增殖,实现愈伤组织的快速增殖。
添加激素法
在培养基中添加适当的激素,如生长素和细胞分 裂素,促进愈伤组织的增殖。
愈伤组织的分化技术
器官分化法
将愈伤组织进行器官分化 培养,通过特定的培养条 件诱导产生根、茎、叶等 器官。
基的营养成分和激素水平也需要精确控制。
基因型和生理状态的影响
02
不同基因型和生理状态的植物在愈伤组织培养中的表现差异较
大,需要针对不同情况进行调整。
污染和褐化问题
03
愈伤组织培养过程中易出现污染和褐化现象,影响培养效果。
提高愈伤组织培养效率的方法与策略
1 2
优化培养条件
根据不同植物的特点,调整温度、光照、湿度等 环境条件,以及培养基的营养成分和激素水平。
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得到无菌材料,植物组织必须先进行消毒。
有好几种化学试剂都能起到表面消毒的作 用,试剂的选择及处理时间的长短要根据 材料对试剂的敏感性来决定。
一般都采用在消毒后能很容易去除的药剂。
因为消毒剂对植物细胞也有杀伤作用,若 不去除就会妨碍愈伤组织的发生。 例如用无菌水反复冲洗后可以把大部分药 剂都洗掉,或者能自动分解变成低毒性物 质。
所有的多细胞植物都有诱发愈伤组织成功的潜 在可能性。
植物的各种组织,如维管束形成层、贮藏器官 的薄壁组织、根的中柱鞘、胚乳、子叶、叶片 的叶肉、维管束组织等,在合适的条件下,都 能形成愈伤组织。
双子叶植物能够迅速地长出愈伤组织。
2.材料必须完全无菌
微生物一旦与培养基接触,就迅速繁殖,抑制 愈伤组织的生长。 用抗菌素来抑制微生物的生长,在短时间有效, 而且抗菌素只能对一定谱系中的细菌才产生作 用,该谱系以外的微生物仍然可以大量繁殖。 抗菌素还可能抑制植物组织的生长。
例如菊芋的细胞比胡萝卜根次生韧皮部的细胞 大三倍,一个3.8毫克的胡萝卜外植体大约包含 25,000个细胞,这样一个外植体是能够成活的。 而同样重量的菊芋外植体,由于细胞大而数目 少,在分离过程中造成损伤往往难以成活。必 须重量达到8毫克才包含约20,000个细胞,使 之易于成活。
第四节 愈伤组织的 培养
次氯酸钠能分解成为具有杀菌效能的氯气,然 后就散失到空气中。 低浓度的氯化汞是一种令人满意的消毒剂,只 是难以去除,故在消毒后必须用大量清水冲洗 材料。 在材料放入消毒剂之前,先在乙醇中漂洗一下, 可以使材料表面弄湿,从而使消毒剂易于渗入 并杀死微生物。
3.外植体的大小和形态
消毒后的植物材料,即可进行培养。
如果目的仅在于得到愈伤组织,将茎的切段、 叶、根、花、果实或种子,或其中的某种组织 切成一片片或一块块放到培养基上就可以了。
如果要定量地研究愈伤组织的发生,外植体的大 小必须一致,形状和组成也要基本相同。进行这 类研究常选用组织块较大的材料,例如胡萝卜的 贮藏根、马铃薯的块茎、菊芋、荷兰防风草等。 这样才能得到足够数量的、无菌的、一致的、适 合于培养的外植体。
具体的操作过程:
无菌的块茎或块根,用钻孔器钻出一批同一类薄 壁组织圆柱形的组织,平行排列好。多把刀片等 距离地固定在一组金属片之间,一次切下去得到 许多个长短一致的圆柱形的外植体。
圆柱形大量地、准确地得到外形相同的外植体。 圆柱体的表面积大,利于组织块和外界气体和营 养物的交换。 外植体的损伤表面分泌物,具有促进愈伤组织形 成的能力,因此表面积越大,产生分泌物数量也 越多,愈伤组织的得率也越高。 外植体的体积应尽可能小,从而得到较大数量的 外植体。外植体最小的限度由其亲本组织细胞的 平均大小来决定。细胞数目。
从外表均一的外植体长出的愈伤组织,在开始阶 段是相当一致的,而从茎、根等器官切段上长出 的则是一个混杂的愈伤组织。
有些外植体外表上看来是由同一类细胞组成,例 如烟草的髓、胡萝卜的次生韧皮部、菊芋的块茎 等,这些细胞中DNA的含量有很大差别。这种差 别可能是由于细胞核中染色体数目的差别,即倍 性不同所造成的。
一、培养基
培养基一般包括大量元素、微量元素和一种碳水化合 物,最常用的碳水化合物是蔗糖。
这样简单的培养基(基本培养基)只有很少几种植物组织 能够培养和维持下去,大多数组织需要添加各种各样 的附加物(完全培养基),如维生素、氨基酸、糖醇, 生长素、细胞分裂素、赤霉素、螯合剂如EDTA、各种 营养性的提取物如椰子汁等。
愈伤组织培养的主要内容:
• 材料的制备 • 愈伤诱导与分化 • 形态发生 • 愈伤的培养
第一节 植物材料(外植体)的制备
1.一般植物组织都能诱发愈伤组织。 : 诱导愈伤组织的成败关键主要不是实验材料,
而是培养条件,其中激素的成分和浓度是最重要 的因素。
双子叶植物为最多,单子叶植物少些,此外, 裸子植物、蕨类和藓类植物也有诱发成功的例子。
• 植物之所以会产生器官,•是由于受伤组织产生了创伤 激素,促进了周围组织的生长而形成愈伤组织,•凭借 内源激素和贮藏营养的作用又产生新的器官。
• 通过诱导愈伤组织进行植物体组培的的优点: 快速 得到大量的愈伤组织,进而得到植株
• 在组织培养中再生植株还可通过与合子胚相似的胚胎发育过程进行,•即
形成胚状体再发育成完整植株。•
注意:选用完全已知的合成化合物,不大主张用 复杂的天然产物,如酵母提取物、番茄汁、椰子 汁等。
必须强调:
适合于诱发愈伤组织的培养基不一定适合于维持 这些愈伤组织;适合于液体培养的培养基也不一 定适合于固体培养。
早期, 采用无机盐浓度低的培养基,化学工业不够发 达,化学试剂中杂质含量较高。用高浓度无机盐带入更 大量的杂质,往往会抑制愈伤组织的生长。
第六章 愈伤组织培养
细胞的全能性和植物的再生性
• 细胞的全能性:•? • 在切口处组织长出不定芽和不定根,从而成 为新的完整的植株。
在自然情况下,•一些植物的营养器官和细胞再生比较困难, 主要是由于内源激素调整缓慢或不完全,•外界条件不易控 制等因素所致。在组织培养人工控制培养的条件下,•通过 对培养基的调整,特别是对激素成分的调整,就有可能顺利 地再生。
得到形态一致的愈伤组织的培养策略 从切段中取出某一种组织进行培养。 改变培养基的组成,只促进某一类细胞分裂而抑 制其他细胞分裂的办法来建立这一类细胞的愈伤 组织。 往往培养基略加改变就能改变愈伤组织的整个性 质。
接种的外植体的大小和形状并不需要严格限制 不能太小,小于肉眼能见的限度时,细胞分裂可 能难以发生。故一般要求切块的大小要适当。 外植体的细胞数目多,获得愈伤组织的机会也多。
愈伤组织 (Callus) ?
• 愈伤组织(callus):愈伤组织原是指生物 在受伤以后于伤口表面形成的一团薄壁 细胞。在组织培养中,则是指外植体在 人工培养基上诱导产生的无序生长的薄 壁细胞团。
• 在组培中,主要目标是诱导愈伤组织形 成和形态发生,使一个细胞、一块组织 或一个器官的细胞,通过脱分化形成愈 伤组织,并再分化成植株。