血管平滑肌细胞钙化后转化类型的研究

合集下载

慢性肾脏病血管钙化的研究进展

慢性肾脏病血管钙化的研究进展

慢性肾脏病血管钙化的研究进展心血管疾病(Cardial Vessel Disease,CVD)是慢性肾脏病(Chronic Kidney Disease,CKD)患者中最常见的并发症,且CVD又是CKD患者主要的死亡原因之一,而血管钙化是CVD发生的独立危险因素。

现代医学一体化治疗CKD 并CVD多从控制血压、血糖,调整血脂,纠正贫血、甲状旁腺功能紊乱、酸中毒及同型半胱氨酸血症等治疗入手,但针对CKD血管钙化尚无公认有效的治疗方案,而中医药的临床与实验研究已逐渐显现其独特优势,因此寻求有效的中西医结合治疗手段在防治CKD病人血管钙化研究中有很重要的现实意义。

标签:慢性肾脏病;血管钙化;中西医有研究表明慢性肾脏病(Chronic Kidney Disease,CKD)患者心血管疾病(Cardial Vessel Disease,CVD)发生率高于同龄一般人群5~8倍,CKD并发CVD病死率高,终末期肾衰竭患者死于CVD比例占43.6%[1]。

据报道透析患者存在明显的冠状动脉疾病40%~70%,提示CKD患者比一般人群更易发生血管钙化[2]。

既往普遍认为血管钙化是单纯的由血浆钙磷过饱和被动沉积过程。

近年研究发现CKD血管钙化的发生与骨代谢异常及多种因素参与调控密切相关,包括异位骨形成、钙磷代谢紊乱诱导血管固有细胞凋亡形成钙化核、血管钙化抑制物表达缺失、血管基质重塑[3]。

CKD血管钙化发病机制研究的不断明确,为临床更好的防治血管钙化发生提供了依据。

笔者现就CKD血管钙化的中西医研究进展作一综述。

1 CKD血管钙化的西医发病机制血管钙化在CKD相关性心血管疾病的病理表现为内膜钙化和中膜钙化[4]。

研究证明CKD的血管钙化被认为是独立于动脉粥样硬化的血管中膜钙化[5]。

目前国内外研究发现CKD血管钙化的机制主要为血管平滑肌细胞(SMC)病变、促进因素与抑制因素失衡两个方面。

1.1 血管平滑肌细胞(SMC)病变SMC参与血管钙化的病变包括SMC凋亡和SMC表型改变。

211281713_精氨酸甲基转移酶5发挥促血管平滑肌表型转化作用研究

211281713_精氨酸甲基转移酶5发挥促血管平滑肌表型转化作用研究

广东药科大学学报Journal of Guangdong Pharmaceutical University May,2023,39(3)精氨酸甲基转移酶5发挥促血管平滑肌表型转化作用研究刘思彤1,段岩2,蔡思栋1,麦艳琪1,罗文威1,刘培庆1,李卓明1(1.中山大学药学院,广东广州510006;2.南方医科大学珠江医院特需医疗服务中心,广东广州510280)摘要:目的探究精氨酸甲基转移酶5(protein arginine methyltransferase5,PRMT5)对血管平滑肌表型转化的调控作用。

方法采用组织贴块法培养原代SD大鼠主动脉平滑肌细胞(VSMCs),构建血小板衍生物生长因子(PDGF-BB)诱导的平滑肌表型转化模型,检测PRMT5蛋白表达水平。

在此模型基础上给予PRMT5抑制剂EPZ015666(EPZ)1μmol/L共处理48h,检测其对平滑肌收缩表型指标α-平滑肌肌动蛋白(α-SMA)和平滑肌蛋白22(SM22)的蛋白表达影响。

采用胶原凝胶收缩实验检测EPZ对VSMCs收缩能力的影响。

划痕实验考察EPZ对细胞迁移能力的影响。

利用腺病毒过表达PRMT5检测其对增殖细胞核抗原(PCNA)和SM22的蛋白表达影响。

结果PRMT5在PDGF-BB诱导的表型转化模型中表达增加(P<0.05)。

利用EPZ抑制PRMT5后可部分逆转模型中的收缩表型指标蛋白α-SMA和SM22的下调(P<0.05),且能改善PDGF-BB诱导的细胞凝胶收缩力下降(P<0.01),划痕实验表明EPZ可抵抗PDGF-BB诱导的细胞迁移增加(P<0.05)。

VSMCs中过表达PRMT5可促进收缩表型蛋白SM22的下降和合成表型蛋白PCNA的上调(P<0.01)。

结论PRMT5在平滑肌表型转化过程中上调,并发挥促VSMCs从收缩表型向合成表型转化的作用。

关键词:血管平滑肌细胞;PRMT5抑制剂;表型转化中图分类号:R977.3文献标识码:A文章编号:2096-3653(2023)03-0001-06DOI:10.16809/ki.2096-3653.2023030401Arginine methyltransferase5promotes phenotypic transformation of vascular smooth muscleLIU Sitong1,DUAN Yan2,CAI Sidong1,MAI Yanqi1,LUO Wenwei1,LIU Peiqing1,LI Zhuoming1*(1.School of Pharmaceutical Sciences,Sun Yat-sen University,Guangzhou510006,China;2.Special Medical Service Center,Zhujiang Hospital of Southern Medical University,Guangzhou510280,China)*Corresponding author Email:****************Abstract:Objective To investigate the biological effect of protein arginine methyltransferase5(PRMT5)on vascular smooth muscle phenotypic transformation.Methods The primary aortic smooth muscle cells(VSMCs) from SD rats were cultured by tissue paste method.A model of smooth muscle cell phenotypic transformation was induced by PDGF-BB and the expression of PRMT5protein was detected.Based on this model,PRMT5inhibitor EPZ015666was treated with1μmol/L for48h to investigate its effect on the contractile phenotype protein expression ofα-smooth muscle actin(α-SMA)and smooth muscle protein22(SM22).Collagen gel contraction experiment was conducted to detect its effect on cell contraction capacity.Scratch assay was used to test the effect of EPZ on cell migration.Adenovirus was used to overexpress PRMT5to detect its effect on the protein expression of proliferating cell nuclear antigen(PCNA)and SM22.Results The protein expression of PRMT5 was upregulated in PDGF-BB-induced phenotypic transformation model(P<0.05).Inhibition of PRMT5by EPZ partially reversed the downregulation of contractile phenotype markers SMA and SM22(P<0.05),and improved the reduction of gel contractility induced by PDGF-BB(P<0.01).Scratch test showed that EPZ can resist the increase of cell migration induced by PDGF-BB(P<0.05).Overexpression of PRMT5in VSMCs promoted the收稿日期:2023-03-04基金项目:国家自然科学基金项目(82273925,81973318);广东省自然科学基金项目(2022A1515011374)作者简介:刘思彤,女,硕士,主要从事心血管药理研究,Email:******************通信作者:李卓明,女,副教授,主要从事心血管药理研究,Email:****************。

血管平滑肌细胞钙化机制的研究进展

血管平滑肌细胞钙化机制的研究进展

血管平滑肌细胞钙化机制的研究进展王亚萍;何胜虎【摘要】血管钙化是导致心血管事件的重要危险因素,普遍存在于高血压、动脉粥样硬化、糖尿病血管病变、慢性肾脏病等疾病,发生率越来越高,与许多不良事件相关.血管平滑肌细胞(VSMCs)在血管钙化中发挥重要作用,主要通过向成骨样细胞分化并产生基质囊泡生成磷酸钙在血管壁沉积.曾经认为是被动的过程,现认识到血管钙化是高度调控的复杂的主动过程,涉及细胞信号通路的激活,钙化抑制物的产生,遗传因素和激素的调控等机制.了解VSMCs导致血管钙化的机伺,对减少血管钙化、降低心血管疾病发生风险有重要作用.【期刊名称】《医学综述》【年(卷),期】2018(024)017【总页数】6页(P3350-3355)【关键词】血管钙化;血管平滑肌细胞;机制【作者】王亚萍;何胜虎【作者单位】扬州大学医学院,江苏扬州225001;扬州大学临床医学院江苏省苏北人民医院心内科,江苏扬州225001;扬州大学临床医学院江苏省苏北人民医院心内科,江苏扬州225001【正文语种】中文【中图分类】R54血管钙化是指羟基磷灰石沉积于血管壁的过程,是普遍存在的血管病理类型,与高血压、动脉粥样硬化、糖尿病和慢性肾脏病(chronic kidney disease,CKD)等疾病均有关。

血管钙化存在,预示着更差的临床结果。

有研究发现,1型糖尿病(type 1 diabetes mellitus,T1DM)中超过70%的男性患者和50%的女性患者在45岁左右会发展为冠状动脉钙化(coronary artery calcification,CAC)[1]。

高血糖是CAC发生的主要原因,但2型糖尿病(type 2 diabetes mellitus,T2DM)的发病原因是多因素的,临床特征为肥胖症、高血糖症、高脂血症和胰岛素抵抗,冠状动脉内斑块具有较大的坏死核心,炎症反应也较非糖尿病患者更严重[2]。

T2DM患者在冠状动脉、颈动脉和其他动脉床有更广泛的斑块钙化[2]。

透析治疗之血管钙化

透析治疗之血管钙化

透析治疗之血管钙化
血液透析患者血管钙化非常常见。

且越来越年轻化,所有大和中等大小的肌性动脉以及微动脉均可发生钙化。

因动脉与静脉的机械力和组织结构不同,静脉几乎不会钙化,除非是存在受损或动脉化内瘘血管。

血液透析患者中有两种类型的血管钙化,中膜钙化和内膜钙化,其发病机制不同。

一、中膜钙化
中膜结构主要是血管平滑肌细胞,钙化主要原因与此相关:
①血管平滑肌细胞转变为成骨样细胞的表型改变:高磷血症、高钙血症,高甲状旁腺素是最主要病因。

②局部炎症:尿毒症的全身微炎症状态,部分巨噬细胞浸润血管中膜层,会释放促炎症细胞因子,导致淋巴细胞和平滑肌细胞汇集。

巨噬细胞或凋亡巨噬细胞释放的细胞微泡会形成钙化中心,而源自巨噬细胞的炎症调节因子(如基质金属蛋白酶和组织蛋白酶S)会引发血管壁中的弹性纤维和基质成分瓦解,这些都会促发钙化。

二、内膜钙化
继发于已形成的动脉粥样硬化,机制大致与冠状动脉粥样硬化相同,在此基础上,剪应力、局部炎症以及源自巨噬细胞和血管平滑肌细胞的微泡钙化都会加强内膜钙化程度。

中膜的钙化因素(钙磷代谢紊乱)都会加重内膜钙化。

治疗:
①减少钙剂的摄入,透析患者高钙血症存在医源性因素:过量口服钙剂使用、含钙降磷药使用、高钙透析液使用;控制高磷;
②使用拟钙剂,经典药物西那卡塞,减轻血管钙化和心脏瓣膜钙化,可以联
合活性维生素D使用;
③优化透析方案,使用优质透析用水、透析器等;减少炎症反应;
④使用镁可以防止血管钙化,可能的机制包括抑制循环中的磷酸钙晶体生长,从而减少磷酸钙沉积,以及防止血管平滑肌转变为成骨细胞表型。

血管平滑肌细胞在血管中膜钙化中的作用研究进展

血管平滑肌细胞在血管中膜钙化中的作用研究进展

血管平滑肌细胞在血管中膜钙化中的作用研究进展作者:罗智环陈俊闵新文来源:《中国医药导报》2016年第11期[摘要] 近年动脉钙化(VCs)的研究比较广泛,人们对动脉钙化的认识也有了进一步的提升,明确其是一种通过多种分子信号通路启动和调节的主动过程。

在动脉中膜钙化过程中,血管平滑肌细胞(VSMCs)在钙化的启动、进展及调节中发挥了重要作用,本文回顾了血管平滑肌细胞在血管中膜钙化中的相关作用研究,并指出平滑肌细胞转分化为骨样细胞的动力研究以及如何通过控制平滑肌细胞的骨转化来逆转钙化将是未来可能的研究方向。

[关键词] 中膜钙化;平滑肌细胞;转录因子;基质囊泡;钙化调节[中图分类号] R714.252 [文献标识码] A [文章编号] 1673-7210(2016)04(b)-0031-04[Abstract] In recent years, vascular calcification(VCs) is widely researched. People's understanding of arterial calcification has also been further improved, recent studies illustrate that VC is an active process initiated and regulated via a variety of molecular signalling pathways. In the process of arterial medial calcification, vascular smooth muscle cells (VSMCs) played an important role in the initiate, development and regulation of vascular calcification. This report will review the effect of vascular smooth muscle cell in medial vascular calcification and propose that the original power of VSMCs transformed into an osteo-chondrogenic phenotype and how to reverse calcification through regulating VSMCs trans-differentiate will be the research direction in the future.[Key words] Medial calcification; Smooth muscle cell; Transcription factor; Matrix vesicle; Calcium regulation血管钙化是一种伴随着羟基磷灰石结晶在细胞外基质和动脉壁细胞上蓄积的病理过程,是动脉粥样硬化、高血压、糖尿病血管病变的共同病理表现。

血管钙化及其平滑肌细胞表型转化的调节机制

血管钙化及其平滑肌细胞表型转化的调节机制

血管钙化及其平滑肌细胞表型转化的调节机制血管钙化常见于高血压、糖尿病血管病变、动脉粥样硬化、慢性肾病、衰老等传统的老年病或慢性病,此外还可见于小儿,如新生儿期血管钙化、肺动脉高压、尿毒症性小动脉钙化等,均可危及生命。

最近研究发现,血管钙化是一种多因素介导、可逆的、主动的调节过程,涉及多种细胞因子及信号通路,血管钙化的本质是血管平滑肌细胞向成骨细胞样表型转化,导致血管壁增厚、管腔狭窄、血管硬化重塑,因此血管钙化及其平滑肌细胞表型转化相关的信号转导调节机制成为这一领域的重大研究课题。

[Abstract] Vascular calcification is common in hypertension,atherosclerosis,diabetes,chronic kidney disease,aging,etc. Not only found in these elderly or chronic diseases,but also in children,such as neonatal vascular calcification,pulmonary hypertension,uremic small artery calcification,can endanger life. Recent studies have found that vascular calcification is a multi factor,reversible and active regulation process. It involves many kinds of cytokines and signaling pathways. The essence of vascular calcification is vascular smooth muscle cells to differentiate into osteoblast like phenotype,resulting in vascular wall thickening,lumen stenosis and vascular remodeling. Therefore,it is important to study the mechanism of vascular calcification and the modulation of the signal transduction pathway related to the phenotype of smooth muscle cells.[Key words] Vascular calcification;Vascular smooth muscle cells;Cell phenotype transformation;Signaling pathway血管钙化是一种类似于骨和软骨生理性矿化的主动的、可逆的、多种细胞因子介导的调节过程[1]。

高龄大鼠血管钙化及血管壁骨桥蛋白、骨钙素表达的研究

高龄大鼠血管钙化及血管壁骨桥蛋白、骨钙素表达的研究

高龄大鼠血管钙化及血管壁骨桥蛋白、骨钙素表达的研究刘菊菊;李书国;邓娟娟;叶明;张丹;彭燕;朱正庭【摘要】目的:研究高龄大鼠血管钙化的发生情况,以及骨桥蛋白( osteopontin, OPN)、骨钙素( osteocalcin, OC)在高龄大鼠动脉血管壁表达的变化。

方法选择20只20月龄的SD大鼠为实验组,20只3月龄的SD大鼠为对照组,取大鼠的主动脉条、心脏和肾组织备检。

HE染色观察血管形态,Von Kossa染色判断钙盐沉积程度,免疫组化和蛋白质印迹法( Western⁃blot)测定血管壁OPN、OC的表达情况。

结果实验组大鼠血管平滑肌细胞排列紊乱,中膜层厚度增加,弹力板断裂,血管纤维化程度增高;对照组大鼠血管内膜内皮细胞、血管平滑肌细胞排列整齐,弹力板完整。

实验组大鼠的大动脉和微小动脉内均可见钙盐沉积,对照组动脉未见钙盐沉积。

实验组大鼠血管壁OPN、OC的表达较对照组明显上调(P <0�05)。

结论血管中膜钙化可能是血管老化的病理表现,血管钙化的形成可能与骨形成相关蛋白OPN和OC的表达上调有关。

%Objective This study was designed to investigate the morphology of vascular calcification in aged rats and the expressions of osteopontin and osteocalcin in the arterial wall of old rats. Methods 20 20⁃month⁃old SD rats were recruited in experimental group and 20 3⁃month⁃old SD rats were recruited in control group. Aorta, heart and kidney of the rats were collected for assay. HE staining and Von Kossa staining were used to determine the vascular calcification. The expressions of OPN and OC in vascular wall were tested by Immuno⁃ histochemistry and Western⁃blot. Results In the experimental group, vascular smooth muscle cells are disordered arrangement, thickness of membrane layer is increased, elasticplate fracture and the vascular fibrosis is increased. In the control group, vascular endothelial cells and smooth muscle cells are arranged in neat, elastic plate is complete. In the experimental group, the large artery and small artery were observed the calcium salt deposits. In the control group,arteries were not observed calcium salt deposits. Compared with the control group, the expressions of OPN and OC were significantly increased in the experimental group ( P <0�05). Conclusions Vascular medial calcification may be pathological features of vascular aging. Vascular calcification may be related with the up ⁃regulated expression ofbone⁃associated protein OPN and OC.【期刊名称】《中国比较医学杂志》【年(卷),期】2016(026)009【总页数】8页(P54-60,68)【关键词】血管钙化;血管老化;骨桥蛋白;骨钙素【作者】刘菊菊;李书国;邓娟娟;叶明;张丹;彭燕;朱正庭【作者单位】三峡大学第一临床学医学院&宜昌市中心人民医院老年病科,湖北宜昌 443003;三峡大学第一临床学医学院&宜昌市中心人民医院老年病科,湖北宜昌 443003;三峡大学第一临床学医学院&宜昌市中心人民医院老年病科,湖北宜昌 443003;三峡大学第一临床学医学院&宜昌市中心人民医院老年病科,湖北宜昌 443003;三峡大学第一临床学医学院&宜昌市中心人民医院老年病科,湖北宜昌 443003;三峡大学第一临床学医学院&宜昌市中心人民医院老年病科,湖北宜昌 443003;三峡大学第一临床学医学院&宜昌市中心人民医院老年病科,湖北宜昌 443003【正文语种】中文【中图分类】R-332随着人口老年化的发展,血管老化的形成机制及血管老化相关疾病的防治正在成为人们研究的热点。

平滑肌细胞成骨分化致血管钙化中MAPK信号通路基因的表达谱变化

平滑肌细胞成骨分化致血管钙化中MAPK信号通路基因的表达谱变化
关键 词 : 组织 构建 ;骨组 织构 建 ;动 脉 粥样硬 化 ;血 管钙 化 ;尿 毒症 ;平滑 肌细 胞 ;丝 裂原 活化 蛋 白激 酶 ;基 因 芯片 ;表达 谱 ;MA P K信 号通路 ;形 态学 变化 ;差异 表达 基 因; 国家 自然 科学 基金
j i n b o 7 7 1 1 @y a h o o
检 测结 果相 符合 。经 K E G G 通 路分析 , E R K 1 / 2 信 号通 路可 能在 血管钙 化 的病理 生理 过程 中扮演 着重 要 的角色 。 说明 5 / 6肾切除 A p o E 一 , 、 鼠主 动脉 钙化斑 块形 成与 M A P K 信 号通路 激活 密切相 关 ,该信 号通 路可 能在平 滑肌 细胞 转分 化过 程 中起 着至 关重 要作 用 。
d o i : l O . 3 9 6 9 / j . i s s n . 2 0 9 5 - 4 3 4 4 . 2 0 1 3 . 2 0 . 0 0 2 l h n p : / / www. c fe  ̄ o r g ] 金波 .尹恒冲 ,汪凌清 .包丽雯。李延秫.朱车,施海 朗,平滑肌细瞻戏骨分化致血管钙化中 MAP K信 号通路基因的表达谱变化 中国组织I程研究,2 0 1 3 ,1 7  ̄ : 3 6 1 8 - 3 6 2 5 .
文 章编 号 : 2 0 9 5 - . 4 3 4 4
( 2 0 1 3 ) 2 0 - 0 3 6 1 8 - 0 6
收稿 E l 期:2 0 1 2 — 1 0 — 1 8
修 回 日期 : 2 0 1 2 . 1 1 - 2 0
( 2 0 1 2 0 8 1 8 0 0 9 / D’ Y )
金 波☆ ,男 ,1 9 7 7年 生 ,
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

血管平滑肌细胞钙化后转化类型的研究作者:刘鸿昊徐秋亚刘超
来源:《中西医结合心血管病电子杂志》2015年第18期
【摘要】目的分析主动脉血管平滑肌细胞钙化后细胞转化类型。

方法将第4代细胞等量随机分为实验组和对照组,给予实验组10 mmol/L的β-甘油磷酸盐进行细胞诱导,给予对照组正常DMEM培养基培养,连续培养10天,测定两组碱性磷酸酶(ALP)活性及骨钙素的含量,采用Western blot方法检测VSMCs及成骨细胞标志蛋白(骨桥蛋白)含量的差异。

结果细胞诱导钙化后,细胞聚集并形成囊泡结构,实验组ALP、骨钙素含量较对照组有所增加,差异有统计学意义(P
【关键词】细胞钙化;血管平滑肌细胞;钙化模型;成骨细胞
【中图分类号】R543.5 【文献标识码】B 【文章编号】ISSN.2095-6681.2015.18..03
如今心血管钙化已成为普遍现象,许多心血管事件均与血管钙化有关,如心肌梗死、瓣膜钙化、夹层动脉瘤等疾病,这些疾病均有较高的致残率和致死率。

血管钙化机制并没有完全明确,普遍认为血管平滑肌细胞(vascular smooth muscle cells,VSMCs)对血管钙化起着重要作用[1],其作用机制及转化分型对研究心血管疾病发病机制有着重要作用,因此对VSMCs钙化后转化类型研究有积极的意义。

本研究中,对VSMCs进行体外培养并诱导钙化,旨在探讨主动脉VSMCs钙化后细胞转化类型,为血管钙化的机制及通路研究提供重要基础。

1 材料与方法
1.1 主要材料及试剂
血管平滑肌原代细胞(广州吉尼生物科技有限公司);DMEM培养基(Gibco公司);胎牛血清、双抗、胰酶(HyClone公司);OPN单克隆抗体及过氧化物酶标记的抗鼠IgG(中杉金桥生物技术有限公司);碱性磷酸酶检测试剂盒、β-甘油磷酸盐、茜素红染色剂及其他试剂耗材(郑州乐睿生物科技有限公司)。

实验主要依托单位河南省高等学校临床医学重点学科开放实验室。

1.2 方法
1.2.1 VSMCs体外钙化模型建立
原代血管平滑肌细胞置于37℃、5%CO2细胞培养箱中静置培养,待细胞长满培养瓶,底面积>80%并形成致密细胞层后开始传代。

将传至第4代的细胞等量随机分为实验组和对照组,给予实验组10 mmol/L的β-甘油磷酸盐进行细胞诱导培养,给予对照组正常DMEM培养基培养,换液1次/2 d,连续培养10天。

1.2.2 碱性磷酸酶(ALP)测定
细胞弃去培养液,磷酸盐缓冲液(PBS)洗细胞3次,取六孔板,每孔加入500μl
0.1%Triton X-100(0.9% NaCl制备),4℃过夜,反复吹打使细胞破碎,收集于离心管中,1200r/min离心3 min,收取上清,按ALP检测试剂盒操作测定ALP活性。

1.2.3 骨钙素含量测定
将两组细胞分别接种于25 mL培养瓶中,换液1次/3 d,连续培养10天。

留置实验第0天和10天更换下来的细胞培养液,置-80℃保存。

测量前先将500μL样品干燥浓缩成粉状,采用125I放射免疫法测量骨钙素,具体方法按试剂盒说明进行。

实验重复2次。

1.2.4 Western blot测定成骨细胞标志蛋白含量
收取两组细胞,裂解后取上清液,测定蛋白浓度,进行浓度测定及定量后,95℃5 min变性,加入1/3体积的4×SDS上样缓冲液,电转移蛋白至硝酸纤维素膜膜上,5%无脂奶粉封闭,一抗为OPN单克隆抗体(1:500),孵育杂交过夜,洗膜后在过氧化物酶标记的抗鼠IgG中孵育1 h,漂洗后ECL显色,曝光,扫描并分析。

独立实验重复3次。

1.3 统计学方法
采用SPSS 17.0统计学软件对数据进行处理,计量资料以“x±s”表示,采用t检验,以P
2 结果
2.1 细胞钙化
经β-甘油磷酸盐诱导钙化后可见实验组大量钙化结节,茜素红染色后钙化细胞呈红色,并分布于整个细胞,对照组没有附着红色染料,实验组细胞在钙化诱导条件下有钙盐沉积,VSMCs钙化模型建立成功。

2.2 ALP检测
两组ALP活性均随培养时间延长逐渐升高。

实验组ALP第10天明显高于对照组,差异有统计学意义(P
2.3 骨钙素含量
对照组中骨钙素含量很低,而实验组细胞骨钙素含量持续升高,且明显高于对照组,差异有统计学意义(P
2.4 成骨细胞标志物含量
Western blot显示,实验组OPN表达量明显高于对照组,差异有统计学意义(P
3 讨论
血管钙化是一个与骨调节相关蛋白有关的主动调节过程,与临床心血管疾病的发生密切相关,课题组在前期查阅文献后综述示钙化的形式类似于软骨内成骨和膜内成骨;同时中膜自身的血管平滑肌细胞具有向成骨细胞转化的潜能[2]。

本研究在上述结果的基础上,通过血管平滑肌体外细胞钙化模型,研究细胞钙化转化类型,为心血管疾病认识提供新的思路和研究机制。

本实验中细胞活性及其纯度是钙化诱导成功的关键[3]。

我们采用10 mmol/L β-甘油磷酸盐作为诱导剂,β-甘油磷酸盐能在短期内诱导血管平滑肌细胞弥漫性钙化,与体内血管钙化形式非常接近,β-甘油磷酸盐是ALP的一种作用底物,在ALP的作用下分解产生无机磷酸盐并以囊泡的形式分泌到胞外,与胞外基质相互作用,形成钙化点;而10 mmol/L β-甘油磷酸盐能上调血管平滑肌细胞的ALP水平,促进钙化[1]。

而对钙化的鉴定采用茜素红染色,茜素红能够螫合钙盐,使钙化细胞呈现红色或者橘红色。

研究发现,钙化发生的中心环节是VSMCs向成骨样细胞的转分化,VSMCs在诱导条件下(如炎性因子、TGF-β和高密度脂蛋白等)均可转变为具有合成和分泌功能的成骨细胞,能合成和分泌多种骨形成蛋白,从而发生钙化[4]。

实验组中成骨细胞标志物的ALP、OPN、骨钙素含量在钙化后含量明显增高,差异有统计学意义(P
本研究说明在钙化过程中存在VSMCs向成骨细胞转化的可能,对临床心血管钙化疾病的研究具有重要意义。

但血管钙化是一个复杂的过程,其机制仍需深入研究和探索。

参考文献
[1] Zhan JK,Wang YJ,Wang Y,et al.The mammalian target of rapamycin signalling pathway is involved in osteoblastic differentiation of vascular smooth muscle cells[J].Can J Cardiol,2014,30(5):568-575.
[2] 郭朋举,刘超.血管钙化的研究现状[J].中华胸心血管外科杂志,2013,29(4):233-236.
[3] Freise C,Querfeld U.Inhibition of vascular calcification by block of intermediate conductance calcium-activated potassium channels with TRAM-34[J].Pharmacol Res,2014,85:6-14.
[4] Johnson RC,Leopold JA,Loscalzo J.Vascular calcification: pathobiological mechanisms and clinical implications[J].Circ Res,2006,99(10):1044-1059.
[5] 朱磊,谭全海,肖紫春.转化生长因子-β2对骨髓间充质干细胞体外向成骨细胞分化的影响[J].中华实验外科杂志,2014,31(9):1983-1984.
[6] Yamaguchi A,Akashi T.Vascular calcification: mutual interaction between bone and blood vessel[J].Clin Calcium,2010,20(11):1669-1676.
[7] 邵文,李书国.血管平滑肌细胞与血管钙化机制的研究进展[J].医学综述,2013,19(16):2898-2901.
本文编辑:李淑雁。

相关文档
最新文档