微生物标本采集及保存要求
临床微生物标本的采集,储存和转运
临床微⽣物标本的采集,储存和转运临床微⽣物标本的采集，储存和转运微⽣物检验的基本原则1.及时采集微⽣物标本作病原学检查2.在抗菌药物使⽤前采集标本3.采样时严格执⾏⽆菌操作4.采样后⽴即送检5.标本容器须灭菌处理，但不得使⽤消毒剂6.送检标本应注明来源和检验⽬的标本采集1.尽早采集2.⽆菌操作3. 合适部位4.适量标本5. 适当⽅法6. 安全采集1-尽早采集标本“采集重在时效性”1.1最好是病程早期、急性期1.2尽量在抗⽣素使⽤之前采集1.3对已⽤抗⽣素⼜不能停药者，可在下次⽤药前采集2-合适部位“背景⼲扰”2.1⽆菌标本:注意局部及周围⽪肤的消毒，严格进⾏⽆菌操作与外界相通的腔道:避开腔道⼝区标本，以免⽪肤表⾯正常菌群的污染，造成混淆和误诊。
2.2正常菌群寄⽣部位:采集时应特别⼩⼼;应明确检查的⽬的菌在进⾏分离培养时，采⽤特殊选择性培养基2.3⾎标本采集:应避免输液的影响。
3-⽆菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近⽪肤或粘膜常居菌群污染和防⽌外源性细菌污染标本。
3.1.在采集⾎液、脑脊液、胸腔积液、关节液等⽆菌标本时，应注意对局部及周围⽪肤的消毒，严格进⾏⽆菌操作;3.2.对于采集与外界相通的腔道标本时，如窦道标本，应从窦道底部取活组织检查，⽽⾮从窦道⼝取标本，以免受⽪肤表⾯正常菌群的污染，造成混淆和误诊;3.3.采集的标本均应盛于⽆菌容器内送检。
盛装标本的容器须先经⾼压灭菌、煮沸、⼲热等物理⽅法灭菌，或使⽤⼀次性⽆菌容器，不能⽤消毒剂或酸类处理。
标本中也不得添加防腐剂，⼀⾯降低病原菌的分离率。
4-适量标本4.1标本采集应⾜量。
标本量过少，可能会导致假阴性结果。
4.1.1⾎液标本:通常成⼈采⾎量每瓶8-10ml,⼉童每瓶1-5ml;脑脊液、⾻髓、4.1.2脓肿、穿刺液、引流液、痰液等标本:≥1ml尿液标本: >3ml4.1.3粪标本: 1-3g或1-3ml4.2结核标本采集量要求特殊:4.2.1痰、肺泡灌洗液或⽀⽓管冲洗液: >5ml;4.2.2清晨中段尿: 5-10ml;4.2.3粪标本: >1g;4.2.4穿刺液(胸⽔、腹⽔、关节液等) : 5- 10ml。
临床微生物标本的选择、采集、运送及保存
临床微生物标本的选择、采集、运送及保存要发挥实验室的有效作用，选择正确生理部位和采集合适的标本及其正确运送等环节最为重要。
标本的采集和处理应该优先考虑，否则，实验室所做的工作几乎没有什么价值。
因此，所有与标本质量的各环节有关的医务工作者必须要了解在整个实验过程中保证标本质量的重要性和必要性。
实验室有责任提供相关信息资料，使之编入各科室的护理手册中。
包括详尽的安全标准，标本的选择、收集、运送、接收和填写及粘贴标签的标准。
在此手册中为您提供了临床微生物实验室的送检标本的正确采集和处理指南。
安全指南对于实验室工作人员最先考虑到的应是实验台的安全。
其他医务人员也许没在意在送往实验室的标本中潜在有病原体。
所以要制定安全规章制度以保护实验室人员和其他可能接触到病原体的人员。
大多数的微生物实验室的手册中都有实验室安全操作章节部分，实验室操作手册中还应该包括有关标本管理的安全操作的内容。
有关生物安全的参考资料对于每个微生物实验室都适用。
适用于实验室的安全参考资料应该包括有‘微生物实验室和生物实验室的生物安全指南，第三版’,以及实验室的生物安全指南：‘谨慎操作和处理传染性材料准则’。
直接有关标本的安全管理方针：1.所有采集标本的操作要戴手套，穿工作外套、口罩、甚至护目镜。
2.所有标本容器必须防漏，运送也应装入密封防漏的塑料袋中，袋上附有一表格用于填写日期、时间、姓名之用。
3.决不能将带有针头的注射器送到实验室。
应将注射器中的标本注入无菌试管中。
或采用防护手段取掉针头，再盖上注射器并放入密封防漏的塑料袋中送检。
4.不得将装有标本的破损容器送往实验室，也不能对其进一步处理。
应该及时向医生通报容器渗漏，解释如果留用标本，会带来的潜在危害性并要求重新送检。
如果新标本送来，则将泄漏的标本高温高压处理后再废弃掉。
标本的选择与采集采集送检标本前，必须有所选择标本的种类和采集部位并要反应有效病程。
如果不选择有效部位，再好的方法采集的标本，没有有效病原体也没多大临床价值。
微生物检验标本的正确采集及注意事项
微生物检验标本的正确采集及注意事项正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。
据相关统计：微生物标本的检测误差来源：80%来源于分析前20%来源于分析中和分析后其它检验样本的检测误差来源：45%分析前10%分析中（仪器））45%分析后.检验标本采集质量控制的重要性,分析前的误差来源所占比例的这个数据是惊人的，在我们的大型医院都存在这个问题，而在我们医院应该不会低于这个数据。
可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。
为此应正确采集各种细菌学标本。
一、血液标本的采集1、采集方法（1）75%酒精清洁局部皮肤。
（2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm （直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。
（3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。
（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。
2、注意事项（1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。
（2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，应在抗菌药物浓度最低时采集也即在下次用药前采血。
切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。
（3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。
（4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。
（5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。
（6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。
微生物检验标本采集和运送原则
微生物检验标本采集和运送原则微生物检验标本采集和运送原则正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键!其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性，同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。
下面是店铺为大家带来的关于微生物检验标本采集和运送原则的知识，欢迎阅读。
采样时机抗生素使用前(停用抗生素3至5天或下次用药前)采样采样方法采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。
采样容器专用的无菌，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。
送检尽快送检，一般不超过2小时。
若不能及时送检可于4-8℃保存，但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。
当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。
微生物检查的标本采集和运送原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。
2.尽量在抗菌药物使用前，或停药3至5天后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。
应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。
3.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。
4.采样时应严格执行无菌操作，将污染可能降至最低。
5.收集真正感染的病灶处的标本，且避免邻近区域常居菌群的污染。
6.采用专用无菌容器收集标本。
容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。
标本中不可添加防腐剂。
7.采样后应立即送检，最好在2h内。
如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但不超过24小时。
对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。
当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。
8.尽量不要以一般棉花拭子收集标本，应使用专用的纤维拭子。
9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。
(要标明病区、病人姓名、感染状况、近期抗菌药物使用情况、标本来源、检验目的、采集部位、采集及送检时间等)10.同一天同一检测目的、相同标本(血液标本除外)一般只需送检一次(份)。
微生物标本采集的一般原则
微生物标本采集的一般原则以微生物标本采集的一般原则为题，我们将从以下几个方面进行介绍。
一、采集时间和地点微生物标本的采集时间和地点非常重要，采集应尽可能在病情发生后的早期进行，以确保标本的准确性。
同时，标本的采集地点也应根据病情进行选择，例如：血液标本应从患者的静脉中采集，尿液标本应从患者的膀胱中采集等。
二、采集器具和保护标本的采集需要使用专门的采集器具和保护措施，以避免标本被污染或受到损害。
例如：血液标本应使用无菌采血器具进行采集，尿液标本应使用无菌尿采集器具进行采集等。
同时，采集后的标本应放置在适当的容器中，并妥善保存以避免温度过高或过低等情况导致标本失效。
三、采集前的准备工作标本采集前，采集者应进行适当的准备工作，例如：洗手、穿戴无菌手套等。
同时，采集者还应向患者详细介绍标本采集的过程和注意事项，以避免患者的紧张和担忧情绪对标本采集造成影响。
四、标本采集的技巧和操作标本采集的技巧和操作非常关键，采集者应具备专业知识和操作技巧，以确保标本的准确性和安全性。
例如：血液标本的采集应注意采血管的位置和深度、采血时的速度和压力等。
尿液标本的采集应注意尿液的收集量和时间、采集器具的无菌性等。
五、标本采集后的处理标本采集后，应及时进行处理，以确保标本的质量和可靠性。
例如：血液标本应在采集后立即进行标本处理，以避免血液凝固或血细胞破裂等情况导致标本失效。
尿液标本应尽快送至实验室进行检测，以避免细菌的生长和繁殖导致标本失效。
微生物标本采集的一般原则包括采集时间和地点、采集器具和保护、采集前的准备工作、标本采集的技巧和操作以及标本采集后的处理等方面。
遵循这些原则，能够确保标本的准确性和可靠性，为临床治疗和疾病诊断提供有力支持。
采集微生物学标本时有哪些注意事项？
采集微生物学标本时有哪些注意事项？
微生物学标本的正确采集直接关系到培养结果的准确性。
采集标本前，临床医生首先应考虑是否有适应证和禁忌证。
正确采集微生物学标本，需要明确以下几方面内容：①选择适当的时机，最好在病原体浓度最高的时间点。
②留取感染的正确部位。
部位不正确，结果无法解释。
③留取标本时，注意不能造成体内感染播散或人际传播。
④避免标本被污染，且应防止标本污染环境。
⑤采集标本量要足够，以提高检出率。
⑥选择无菌、无消毒剂、无污染、密封好的容器进行运送。
⑦准确标识患者信息、标本类型和检查目的。
⑧不同标本有不同的运送要求，温度、湿度和送检时限都应符合相关要求。
⑨采集和运送过程要遵循生物安全规范。
在保证适应证、可行性和必要性的前提下，考虑进行微生物学检查不是盲目的。
检查有针对性，临床诊断才有利无弊。
微生物标本采集方法及注意事项
微生物标本采集方法及注意事项微生物标本采集方法及注意事项微生物学检验标本的正确采集、运送及处理，与细菌的培养、鉴定结果有十分密切的关系。
医生、护士、检验人员均应重视微生物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣传和指导。
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一、粪便标本采集和处理(1)采集方法1.自然排便法：取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2～3g或 1～2 m1，盛无菌容器内或置于保存液或增茵液内送检;若疑似霍乱者应置于碱性蛋白胨水中(PH8.6)。
2. 直肠拭子法：难以获得粪便或排便困难患者及幼儿可采用此法，将拭子前端用无菌甘油或生理盐水湿润,然后插入肛门约4～5cm(幼儿2～3cm)，轻轻在直肠内旋转。
擦取直肠表面粘液后取出，盛于无菌试管中或保存液中送检。
(2) 注意事项1.尽可能在抗生素使用之前采集标本。
2.所挑取的粪便不应接触其他部位(如便盆)，粪便样本中不应混入尿液及其他异物，采集过程应尽量无菌操作。
3.不应用厕纸收集粪便。
4.对同一病人在同一天不宜重复送检。
5.宜在感染急性期(通常是5d-7d内)采集标本。
6.下列腹泻患者应连续3d送检标本--社区获得性腹泻(入院前或72h内出现症状)--医院腹泻(入院72h后出现症状)，且至少有下列情况之一：大于65岁并伴有内科疾病、HIV感染、粒缺(中性粒细胞<0.5)及疑似院内暴发。
--怀疑肠道感染的非腹泻性表现。
7.肠炎和发热病人建议做血培养。
8.伤寒沙门菌感染时骨髓培养高出血培养。
9新鲜粪便标本应在采集后尽快送检，不应超过2h。
(3)标本拒收干燥的拭子、含钡粪便、黄软成形便、干便、明显污染的粪便、一日内重复送检的标本，应设法与临床医师联系，可要求重新留取标本，并做好记录，在没有与医师沟通之前标本不应丢弃，仍按实验室标本保存原则存放。
二、尿液标本采集和处理(1)采集方法1. 中段尿采集法：清晨起床后用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用清水冲洗尿道口周围，然后排尿弃去前段尿液，收集中段尿5～10ml盛于带盖的无菌容器内立即送检，采集后于0.5h内进行接种。
微生物标本的采集和运送基本原则
一、我院微生物标本的采集和运送基本原则1．发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于70％。
2．尽量在抗菌药物使用前采集标本。
3．标本采集时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。
4．标本采集后立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。
5．以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子等，应标明标本种类，并立即送检。
6．盛标本容器须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。
中段尿培养的标本应用专用的无菌尿标留取（在仓库领取）。
静脉导管、胸腹水，脑脊液等到细菌室取无菌试管留取。
7．送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。
二、常见医院微生物标本采集送检方法1．血液与骨髓①通常采血部位为肘静脉。
疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。
切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采取血标本。
②采血部位的局部皮肤应严格消毒。
将采集的血液注入血培养基前，应更换针头或过火消毒针头。
血培养瓶应在避光室温中保存，不必置冰箱保存。
③每次采血量成人5一10ml，婴幼儿l一5ml，培养基与血液之比以10：1-5：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
④怀疑菌血症应尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机。
对已用抗菌药物而又不能停药者，可在下次用药前采血。
⑤每例病人至少采血两次，间隔0.5-lh，以利于提高阳性率和区分感染菌与皮肤污染菌。
多次多部位采血可提高阳性率。
⑥对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人，在病灶部位或髂前(后)上棘处严格消毒后抽取骨髓lml 作增菌培养。
2．尿液①中段尿：女性采样前应先用肥皂水或0．1％高锰酸钾溶液冲洗外阴部及尿道口；男性须翻转包皮冲洗，用0.1％新洁尔灭消毒尿道口．灭菌纱布擦干后收集标本10ml，0.5小时内送检。
②导尿管导尿采样可减少污染。
对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。
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微生物标本采集及保存要求
引言
微生物标本的采集和保存是微生物学研究和诊断的基础。
正确的采集和保存方法能够确保标本的质量和完整性，并提供可靠的结果。
本文将介绍微生物标本采集和保存的要求，旨在帮助人们正确进行微生物标本的处理。
1. 标本采集前的准备
在进行微生物标本采集之前，准备工作是至关重要的。
以下是一些需要注意的事项：
•准备采集工具和材料: 预先准备好所需的采集工具和材料，如无菌容器、无菌拭子等。
•确保个人卫生: 采集标本前，采集人员应洗手，佩戴适当的个人防护设备，例如手套和口罩，以防止交叉感染。
•了解采集部位和要求: 在采集标本前，了解所要采集的部位和采集要求，以便采集人员能够正确操作。
2. 标本采集步骤
下面是一些常见微生物标本的采集步骤：
2.1 血液标本
血液标本是常见的微生物病原体检测标本之一。
以下是血液标本的采集步骤：
1.选择合适的采集部位: 常用的采集部位有静脉内和
指尖采血。
根据需要选择合适的采集部位。
2.消毒采集部位: 使用适当的消毒剂对采集部位进行
消毒，以减少细菌的污染。
3.利用无菌注射器或放血针采集血液: 选择合适的采
血设备，按照正确的技术和步骤采集适量的血液。
4.将血液转移到无菌容器中: 将采集到的血液转移到
适当的无菌容器中，如血培养瓶或离心管。
2.2 呼吸道标本
呼吸道标本用于检测呼吸道感染。
以下是常见的呼吸道标本采集步骤：
1.依照需要选择合适的采集方法: 常见的呼吸道标本
采集方法包括咽拭子、鼻拭子、喉拭子等，根据需要选择合适的采集方法。
2.使用无菌拭子采集标本: 使用无菌拭子轻轻刮取相
应部位的分泌物，注意避免刮伤黏膜。
3.将拭子转移到无菌容器中: 将采集到的标本拭子放
入无菌容器中，并确保容器密封。
2.3 尿液标本
尿液标本常用于病原体的检测和诊断。
以下是尿液标本的采集步骤：
1.准备容器和适当的采集方法: 准备无菌容器和适当
的采集方法，如尿杯或导尿管。
2.进行尿液采集: 采集尿液时应注意保持个人卫生，
避免污染。
3.将尿液转移到无菌容器中: 将采集到的尿液转移到
无菌容器中，并尽快送至实验室进行分析。
2.4 粪便标本
粪便标本常用于检测肠道感染和胃肠道疾病。
以下是粪便标本的采集步骤：
1.准备无菌容器和手套: 准备无菌容器和适当的个人
防护设备，如手套。
2.采集粪便样本: 用无菌勺采集适量的粪便样本，避
免污染。
3.将粪便样本转移到无菌容器中: 将采集到的粪便样
本转移到无菌容器中，并尽快送至实验室。
3. 标本保存要求
正确的样本保存是保障样本质量和准确性的关键。
以下是一些建议的标本保存要求：
•标本存放温度: 不同类型的标本有不同的存放温度要求，如冷藏、冷冻或常温保存。
尽量按照标注要求存放标本，以确保样本的完整性和质量。
•标本保存时间: 建议按照标本类型和实验室要求保存一定的时间，在此期间保持标本的完整性和新鲜度。
•标本保护措施: 避免标本受到外界物理、化学或微生物的污染。
尽量在存放标本时包装密封，并尽早送达实验室。
结论
微生物标本的采集和保存要求是确保微生物学研究和诊断准确性的关键因素。
本文简要介绍了微生物标本采集和保存的要求，包括标本采集前的准备、标本采集步骤以及标本保存要求。
正确的操作和注意事项将有助于确保标本质量和提供可靠的结果。