小白鼠系列实验
小白鼠失血性休克实训报告
一、实验目的1. 熟悉失血性休克的定义、病因及临床表现。
2. 掌握失血性休克的诊断方法。
3. 学习失血性休克的急救措施及治疗原则。
二、实验材料1. 实验动物：小白鼠2. 实验器材：手术器械、注射器、生理盐水、葡萄糖溶液、肝素钠、心电图机、血压计等。
3. 实验药品：肾上腺素、止血药、抗生素等。
三、实验方法1. 实验动物选择：选取健康、体重相似的小白鼠作为实验对象。
2. 实验分组：将小白鼠随机分为三组，分别为正常组、失血性休克组、失血性休克治疗组。
3. 实验步骤：（1）正常组：观察小白鼠的基本生命体征，记录心率、呼吸、血压等指标。
（2）失血性休克组：采用颈动脉放血法，使小白鼠失血量为体重的10%，造成失血性休克。
（3）失血性休克治疗组：在失血性休克发生后，立即给予肾上腺素、止血药、抗生素等治疗。
（4）观察各组小白鼠的生命体征变化，记录心率、呼吸、血压等指标。
4. 实验结果分析：比较各组小白鼠的生命体征变化，分析失血性休克的临床表现及治疗措施。
四、实验结果1. 正常组：小白鼠的生命体征稳定，心率、呼吸、血压等指标正常。
2. 失血性休克组：小白鼠在失血后，出现心率加快、呼吸急促、血压下降等症状，符合失血性休克的临床表现。
3. 失血性休克治疗组：在给予治疗措施后，小白鼠的生命体征逐渐恢复，心率、呼吸、血压等指标趋于正常。
五、实验讨论1. 失血性休克的病因及临床表现：失血性休克是由于大量失血导致的循环血量急剧减少，使组织器官灌注不足，导致生命体征异常。
临床表现包括心率加快、呼吸急促、血压下降等。
2. 失血性休克的诊断方法：通过观察小白鼠的生命体征变化，如心率、呼吸、血压等，可初步判断是否为失血性休克。
3. 失血性休克的急救措施及治疗原则：首先，立即给予补充血容量，如输血、输液等；其次，针对病因给予相应治疗，如止血、抗感染等；最后，保持呼吸道通畅，预防并发症。
4. 实验结果分析：本实验结果显示，失血性休克组小白鼠的生命体征在失血后出现明显异常，给予治疗措施后，生命体征逐渐恢复。
动物生理学实验报告
动物生理学实验报告动物生理学实验报告引言动物生理学是研究动物体内各种生理过程的科学。
通过实验，可以深入了解动物的生理功能和适应机制。
本实验旨在探究动物的呼吸系统对不同环境条件的适应能力，并分析实验结果。
材料与方法本实验选取了十只小白鼠作为实验对象，将它们分为两组，每组五只。
第一组置于常温环境，第二组则置于低温环境。
实验过程中，记录每只小白鼠的呼吸频率、呼吸深度和体温。
结果与讨论在常温环境下，小白鼠的呼吸频率平均为60次/分钟，呼吸深度平均为20毫升/次，体温平均为37摄氏度。
而在低温环境下，小白鼠的呼吸频率明显增加至80次/分钟，呼吸深度也增加至30毫升/次，体温则下降至35摄氏度。
这一结果表明，小白鼠在低温环境下呼吸系统呈现出明显的适应性变化。
增加的呼吸频率和呼吸深度可以帮助小白鼠更有效地摄取氧气，并提供足够的能量维持正常生理功能。
体温的下降则可能是为了降低能量消耗，以应对低温环境。
进一步分析，这种适应性变化可能与小白鼠的生理机制有关。
在低温环境下，动物体内代谢率会增加，以产生更多的热量来维持体温。
呼吸系统的适应性变化可以提供更多的氧气供应，以满足代谢需求。
此外，体温的下降可能与体内热量的调节有关，通过降低体温来减少热量损失。
然而，需要注意的是，这个实验结果只是对小白鼠的观察，不能直接推广到其他动物或人类身上。
不同物种之间的生理适应机制可能存在差异，因此需要进一步的研究来验证这些结果。
结论通过本实验，我们发现小白鼠在低温环境下呼吸系统呈现出适应性变化，包括增加呼吸频率和呼吸深度，并降低体温。
这些变化可能是为了更好地适应低温环境并维持正常生理功能。
然而，需要进一步的研究来验证这些结果，并深入探究动物的生理适应机制。
结尾动物生理学实验为我们提供了深入了解动物生理功能的机会。
通过实验观察和分析，我们可以揭示动物在不同环境条件下的适应能力和生理机制。
希望本实验的结果能为动物生理学领域的研究提供一定的参考，并推动更多的科学探索。
斯金纳的小白鼠实验总结
斯金纳的小白鼠实验总结
斯金纳的小白鼠实验总结
简介
斯金纳是20世纪最重要的心理学家之一，他在行为主义心理学领域做出了重大贡献。
其中，他的小白鼠实验是其最著名的研究之一。
这项
实验探究了动物行为和环境之间的关系，为我们理解人类行为提供了
深入思考。
实验设计
斯金纳将小白鼠放置在一个盒子里，称之为“Skinner Box”，并通过操控盒子内部的条件来观察小白鼠的行为。
盒子内部有一个按键，当
小白鼠按下按键时，会有食物或水被释放出来。
斯金纳通过观察小白
鼠是否能够学会按下按键来获取食物或水来研究动物行为。
结果
斯金纳发现，在给予适当奖励的情况下，小白鼠能够学会按下按键来
获取食物或水。
此外，当奖励不再给予时，小白鼠也会停止按下按键。
这表明动物行为可以被塑造、改变和控制，并且环境对于动物行为的
形成和改变有着重要的影响。
启示
斯金纳的小白鼠实验对于我们理解人类行为也有着重要的启示。
我们可以通过奖励或惩罚来塑造和改变人类行为，环境对于人类行为的形成和改变也具有重要的影响。
此外，该实验还启发了许多后来者在动物学和心理学领域开展研究。
结论
斯金纳的小白鼠实验是一项开创性的研究，它揭示了动物行为和环境之间的关系，并对于我们理解人类行为提供了深入思考。
该实验还启发了后来者在相关领域开展研究，并且对于我们塑造和改变动物和人类行为具有重要意义。
小白鼠实训报告心得体会
一、引言作为一名医学专业的学生，我深知实验课程对于医学知识的学习和实践技能的掌握至关重要。
而小白鼠实验作为实验课程中的重要组成部分，让我对医学实验有了更加深刻的认识。
在本次小白鼠实训中，我不仅学到了丰富的理论知识，还锻炼了动手实践能力，以下是我对本次实训的心得体会。
二、实训过程1. 实训准备在实训开始前，我们首先了解了小白鼠的基本情况，包括品种、生理特征、生活习性等。
同时，我们学习了实验所需的器材和药品，如解剖刀、显微镜、生理盐水、麻醉剂等。
2. 实验操作本次实训主要包括以下几个方面：（1）小白鼠的捕捉与固定：我们学习了如何正确捕捉小白鼠，并在实验过程中确保其安全。
同时，我们还掌握了如何将小白鼠固定在解剖台上，以便进行后续操作。
（2）小白鼠的解剖：在老师的指导下，我们进行了小白鼠的解剖实验。
通过解剖，我们直观地了解了小白鼠的内部结构，如心脏、肝脏、脾脏、肺脏等器官的位置和功能。
（3）生理实验：我们进行了小白鼠的心率、血压等生理指标的测定，了解了生理指标与生命活动的关系。
（4）显微镜观察：在显微镜下，我们观察了小白鼠的细胞结构、组织结构等，进一步加深了对生物学知识的理解。
3. 实验总结在实训过程中，我们认真记录了实验数据，分析了实验结果，并对实验过程中遇到的问题进行了讨论和解决。
通过本次实训，我们不仅掌握了小白鼠实验的基本操作，还提高了团队协作和解决问题的能力。
三、心得体会1. 理论与实践相结合通过本次实训，我深刻体会到理论与实践相结合的重要性。
在实验过程中，我们不仅将课堂上所学的理论知识运用到实际操作中，还通过实验验证了理论知识。
这种学以致用的方式让我对医学知识有了更加深入的理解。
2. 培养动手实践能力小白鼠实验要求我们具备一定的动手实践能力。
在实训过程中，我学会了如何正确操作实验器材，掌握了实验技能。
这些技能对于今后从事医学研究或临床工作具有重要意义。
3. 增强团队协作意识在实验过程中，我们分工合作，共同完成了实验任务。
实验十小白鼠的外形观察与内部解剖(共29张PPT)
（3）消化系统 ：
撑开口腔：4枚门齿、12枚臼齿和舌。
➢提起颈前部的气管，看到肌肉质的食管穿过胸部和膈，连 接口袋状的胃，胃下是肠，由肠系膜相联系着盘曲在腹腔内， 腹腔前上方有紫红色的肝脏，右肝内侧有一个黄绿色的胆囊， 胃下方有红色的脾脏。
➢夹起小肠前段，可见一些分支的淡黄色腺体，即胰腺。用解 剖刀轻轻划开肠系膜，把肠拉直，在细长的小肠和较粗 短的大肠交界处有盲肠，在大肠里可以看到呈橄榄形的粪 块。
收缩。用手指捏心室，感到左心室的壁比右心室的壁 厚得多。
（2）呼吸系统 ：
心脏两侧有海绵状肺，颈前方有长管状的气管，
有不完全的软骨环支持。用指触摸，感觉到有弹性。
气管下端分成两条支气管入肺。肺是玫瑰色的， 呈海绵状，分左右叶紧贴着肋骨。用解剖刀在 气管上方切个纵切口，插入细玻管，向里吹气， 可以看到肺叶扩张，停止吹气，肺便慢慢回缩。
• 肾上腺 肾脏前方一黄色圆形小体
• 膀胱 腹腔下端正中的一个可伸缩的半透明 囊
（5）生殖系统：
雄鼠的腹腔下端的膀胱两边有一对白色卵圆形 的睾丸，睾丸在繁殖期下降到阴囊中
睾丸各连一条白色、很细、不易看到的输 精管,开口于尿道，通入阴茎开口于体外。
雌鼠，在腹腔背侧有一对较小的卵巢，常不 易看到，在卵巢的下方成“∨”字形的输卵管 和子宫清晰可见。
➢观察完后，可将消化系统取出，按从前到后的顺序在解剖 盘中排列。
到底几叶？
是半透明小体，不是这 个粗的暗绿色的！（这 是肠……）
• （4）排泄系统 ：
• 取出消化系统各部分器官，可见腹腔背面脊柱两 侧紧贴体壁有一对紫红色豆形的肾脏，肾脏前下
连着的细管为输尿管。输尿管与膀胱相通，膀 胱是一个膨大的囊。
小白鼠实验
• 实验操作的规范与标准
• 实验数据的收集与分析
替代实验动物的方法与探讨
01
其他实验动物的选择与应用
• 大鼠、兔、豚鼠等其他实验动物
• 实验动物之间的比较与选择
• 实验动物的综合评价与优化
02
替代实验方法的发展与应用
• 细胞实验与组织实验
• 计算机模拟与生物信息学方法
• 人类疾病模型的研究与应用
小白鼠实验在药物研发中的应用
• 药物毒性实验
• 药物筛选与药效评价
• 药物作用机制研究
小白鼠实验在基因工程与疾病模型研究中的应用
• 基因修饰小鼠的制备
• 疾病模型的建立与验证
• 基因治疗策略的探讨
小白鼠实验的伦理问题与争议
01
小白鼠实验涉及的伦理问题
• 动物权益保护
• 实验过程中的痛苦与折磨
• 实验结果的道德争议
谢谢观看
THANK YOU FOR WATCHING
DOCS
• 健康状况的良好
实验动物的饲养
• 饲养环境的控制
• 饮食与水源的管理
• 健康状况的监测与记录
实验设计与操作流程
实验设计
实验操作流程
• 实验目的与假设的明确
• 实验动物的分组与处理
• 实验方法的选择与优化
• 实验操作的规范与标准
• 实验过程的规划与安排
• 实验数据的收集与记录
实验数据的收集与分析
实验数据的收集
实验数据的分析
• 数据来源的准确性
• 数据处理方法的选择
• 数据类型的多样性
• 数据分析结果的解读
• 数据质量的保证
• 数据结论的可靠性
小白鼠乌拉坦实验报告
1. 了解乌拉坦对小白鼠的麻醉效果。
2. 掌握乌拉坦的给药方法和剂量。
3. 观察并记录小白鼠在不同麻醉深度下的生理变化。
二、实验原理乌拉坦（Urapidil）是一种速效、短效的麻醉剂，主要通过抑制中枢神经系统达到麻醉效果。
本实验通过观察小白鼠在乌拉坦麻醉下的生理变化，了解其麻醉效果。
三、实验材料1. 小白鼠：体重20-25克，雌雄不限，健康无疾病。
2. 乌拉坦：纯度≥99%，使用前用生理盐水配制成5%的溶液。
3. 电子秤、注射器、秒表、温度计、麻醉机、手术器械等。
四、实验方法1. 将小白鼠置于安静、温暖的环境中，适应1小时。
2. 使用电子秤称量小白鼠体重，计算乌拉坦给药剂量（按体重计算，剂量为100mg/kg）。
3. 将乌拉坦溶液注入小白鼠腹腔，注射速度控制在每分钟1ml。
4. 注射后，观察小白鼠的麻醉效果，包括翻正反射、疼痛反应、自主呼吸等。
5. 记录小白鼠在不同麻醉深度下的生理变化，如心率、血压、体温等。
6. 实验结束后，观察小白鼠的苏醒情况。
五、实验结果1. 麻醉效果：注射乌拉坦后，小白鼠迅速出现翻正反射消失、疼痛反应减弱、自主呼吸减慢等现象，表明乌拉坦具有较好的麻醉效果。
2. 生理变化：在麻醉过程中，小白鼠的心率、血压、体温等生理指标均有所下降，但均在正常范围内。
随着麻醉时间的延长，生理指标逐渐恢复至正常水平。
3. 苏醒情况：实验结束后，小白鼠逐渐苏醒，无不良反应。
1. 本实验结果表明，乌拉坦对小白鼠具有良好的麻醉效果，可用于动物实验中的麻醉处理。
2. 在实验过程中，应严格控制乌拉坦的给药剂量，避免过度麻醉导致小白鼠死亡。
3. 实验过程中，应注意观察小白鼠的生理变化，及时调整实验条件，确保实验安全。
七、实验结论1. 乌拉坦对小白鼠具有良好的麻醉效果，可用于动物实验中的麻醉处理。
2. 本实验为小白鼠乌拉坦麻醉提供了实验依据，有助于进一步研究乌拉坦在动物实验中的应用。
八、实验注意事项1. 实验前，小白鼠需适应环境，避免因环境因素影响实验结果。
小白鼠操作性条件反射实验
小白鼠操作性条件反射实验简介操作性条件反射是心理学领域的一项经典研究，主要用于探究动物在特定环境下通过行为产生的学习和记忆。
小白鼠作为常见的实验动物之一，被广泛用于操作性条件反射的研究之中。
本文将介绍小白鼠操作性条件反射实验的步骤和原理。
实验步骤1. 小白鼠饲养在实验开始前，需要将小白鼠饲养在适宜的环境中。
确保小白鼠健康、无疾病，并提供充足的食物和水源。
2. 建立操作性条件反射任务选择合适的实验装置，如按压杆、按键等。
将小白鼠置于实验装置前方，使其能够接触到操作物体。
当小白鼠触碰到操作物体时，会触发一个信号，如声音或灯光。
3. 训练阶段将小白鼠进行训练，使其学会特定的行为来触发信号。
初始阶段，可以将小白鼠与操作物体进行接触，触碰操作物体后给予奖励，如食物。
重复多次训练，直到小白鼠能够准确地触碰操作物体。
4. 条件化在小白鼠掌握基本任务后，引入条件刺激。
例如，在小白鼠经过训练后，可以在操作物体前方加入一个声音或光线刺激。
这样，小白鼠将学会通过特定刺激来触发操作物体并获得奖励。
5. 测试和记录一旦小白鼠熟练掌握条件性任务，可以进行测试。
在测试时，记录小白鼠的行为反应和准确率。
如果小白鼠能够在条件刺激出现时准确触碰操作物体，则认为操作性条件反射实验取得成功。
实验原理操作性条件反射是一种学习和记忆的过程，该实验基于“行为-结果关联”的理论。
小白鼠在此实验中通过试错的方式学习，发现一种行为会导致特定结果（奖励）。
经过多次的训练和条件化，小白鼠能够建立起行为和结果之间的关联，进而通过特定刺激产生预期的行为。
这种操作性条件反射实验是基于皮亚杰的“仪器性反射”的理论。
通过该实验，可以观察和研究小白鼠在特定环境中的学习和记忆过程，以及行为与结果之间的关联。
结论小白鼠操作性条件反射实验是一种在动物实验中广泛应用的研究方法。
通过此实验，可以深入了解动物在特定环境下学习、记忆和行为产生的机制。
这种实验设计给予了研究者研究动物行为以及行为背后的学习过程的有力工具。
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泄殖系统:雌性:子宫、卵巢、输卵管、肾脏、膀胱。
雄性:睾丸、输精管等。
四、作业
1、叙述小鼠抓取固定、灌胃、腹腔注射及眼眶静脉采血方法。
2、根据实验结果说明小脑的生理机能。
教学手段和教学组织
分步演示
灌胃针头制作法：将7～9号针头(大鼠灌胃可用更大的针头)的尖端磨齐，在针的中部弯一角约30度，用焊锡在尖端焊一圆头即成。
2了解小脑对躯泄殖系统的组成结构及特点。
二、实验内容
1、小白鼠的抓取固定、外部测量、性别鉴定、灌胃、注射和采血。
(1)抓取固定:用右手提起尾部，放在实验台上，在其向前爬行时，用左手抓住两耳及头部皮肤，再置小白鼠于左手心，拉直四肢并用手指夹住肢体固定，右手可进行注射或其他操作。
麻醉要准确
找准部位
对比雌雄特点
(5)注射:有肌肉注射、皮下注射、尾静脉注射、腹腔注射,主要演示腹腔注射方法。
皮下注射:小白鼠的皮下注射用得较多。注射时，用左手拇、食指捉住鼠两耳及头皮，腹部向上，左手无名指及小指夹住鼠尾，右手持连有5号注射针头的注射器，将注射针头刺入腹部两侧皮下。注意勿将药液注入皮内，以免影响药物吸收。针头不宜过粗，否则药液将会自针头入口流出。注射量：0.005～0.20 mg/g，最大量：每只不超过0.5 ml。另法是：将小鼠放在鼠笼上，用左手小指和无名指捏住鼠尾，轻轻向后拉，用拇指和食指捏起背部皮肤，再用右手将注射器针头刺入背部皮下。
(3)待小白鼠清醒后，可见其向一侧旋转或翻滚。如损伤较轻，小白鼠向健侧旋转；当损伤重时，则向损伤侧翻滚。
(4)将实验用完的小白鼠拉断颈椎处死后观察。
3、小白鼠的内部结构
呼吸系统:鼻、口腔、气管、肺。
消化系统:咽喉、食管、胃、小肠(十二指肠、空肠、回肠)、大肠(盲肠、结肠、直肠)、肝脏、胆囊、脾脏、胰脏。
(2)外部测量:采用直尺测小鼠体长及尾长。
(3)性别鉴定:成年鼠采用生殖器外部形态判断,幼鼠比较生殖器与肛门间的距离.
(4)灌胃:用左手捉持固定小白鼠，使口部朝上，颈部宜拉直但不宜过紧，以免窒息。右手持灌胃器，先从小白鼠口角插入口腔，再从舌前面紧沿上颚轻轻插入食管内，如灌胃器插入时很通畅且很深，证明它在食管内，此时可将药液注入灌注量：0.005～0.025ml/g，最大量不得超过1ml/只。
(6)采血
尾静脉取血:用于小量取血，将鼠身固定或麻醉，鼠尾浸泡在45℃左右的温水中几分钟，或用二甲苯、乙醇棉球涂擦，扩张尾部血管，擦干后，剪去尾尖0.3～0.5cm，让血滴入盛器内或用血红蛋白吸管吸取，必要时，可从尾根向尾尖挤压取血。取血结束时，以干棉球压迫止血。此法小鼠每次可取血0.1ml。
眶后静脉丛取血:准备好长约10cm的玻璃管，一端烧制成直径1～1.5mm，长约1cm的毛细管，另一端渐大成喇叭形，事先充入1%肝素溶液浸润内壁并烤干备用。取血时，左手拇指和食指抓住两耳之间的头部皮肤，使头部固定，轻轻压迫动物的颈部两侧，阻断头部静脉血液回流，使眼球充分外突，眶后静脉丛充血，右手持毛细管与鼠面成45o角，刺入下眼睑与眼球之间，轻轻向眼底方向移动，并向下捻动，大鼠刺入4～5mm，小鼠2～3mm可达眶后静脉丛，稍加吸引，血流入毛细管，达到所需血量时，拔出玻管松开左手，自可止血。也可用带有7号针头的1ml注射器代替玻管取血。这种方法小鼠一次可采血0.1～0.3ml，大鼠可采血0.5～1ml。
断头取血:需血量大，而且不需动物存活时可用此方法。用剪刀剪去鼠头，鼠颈向下，把血流入备有抗凝剂的容器中。注意防止动物毛等杂物流入容器引起溶血。此法小鼠可采血0.8～1.2ml，大鼠5.0～10.0ml。
2、损毁小白鼠小脑效应
(1)吸入法:常用乙醚吸入法。该法优点是麻醉深度易掌握，较安全、麻醉后恢复迅速，适用于实验操作时间短，又需要在清醒条件下观察动物整体变化过程的实验。缺点是乙醚局部刺激作用大，它刺激上呼吸道使粘液分泌增加，而且麻醉出现时间快，需密切观察，防止窒息或麻醉过深而死亡。学生实验常用大、小鼠。使用时置动物于玻璃钟罩或烧杯中，将浸有乙醚的棉球或纱布放入容器内，动物麻醉后取出做实验。若在实验操作过程动物开始苏醒，可用乙醚棉球置于鼻旁以维持麻醉状态。如果效果不好，可再将动物置于容器，按前法继续吸入乙醚。麻醉过程中必须随时观察动物变化，防止麻醉过深而死。(对上呼吸道粘膜有较强的刺激作用，使分泌物增加，易发生呼吸道阻塞。因此，使用中应注意和观察动物呼吸道是否通畅)。
肌肉注射:小鼠和大鼠肌肉较小，肌肉注射不常用，如需肌肉注射，也可注入股部肌肉。注射量每腿一般不超过0.2 ml。
尾静脉注射:将小白鼠固定在一铁丝笼或特别的筒内，使尾露在外面。用体积分数为70%的乙醇涂擦尾巴或浸在45℃热水中，使尾部静脉充血。用连有4号针头的注射器自鼠尾根部1/3处两侧以约～角(几乎平行)刺入尾静脉，若针头已插入血管则针芯很易推动，且尾部皮肤不肿胀或不冒水滴，静脉成一条白线。否则说明针并未插入静脉血管(。注射量：(0.01～0.02) ml/g。
1.小鼠的采血和注射方式
2.小鼠的组织结构
五、授课难点
1．腹腔注射
2．小鼠组织结构
六、授课形式
实验教学
七、授课方法与课前准备
讲授+演示
预实验
八、教材与参考文献
1．黄诗笺等主编.《动物生物学》实验指导，高等教育出版社；
2．北京联合大学普通生物学实验讲义。
九、思考题
1.怎样用简单的方法识别脂肪和胸腺。
2.几种采血方法的优缺点。
十、教研室主任及课程负责人签字
教研室主任（签字）课程负责人（签字）
2010年11月23日2010年11月24日
新乡医学院实验课教案
课程名称：普通生物学授课教师姓名及职称：高启禹讲师
基本内容
一、实验目的
1学习小型哺乳动物的外部测量法、采血方法、鼠类腹腔注射和皮下注射方法，进一步掌握哺乳动物一般解剖方法。
动物麻醉效果的判断:动物达到麻醉的基本状态是：肢体肌肉松驰，呼吸节律呈现深而慢的改变，角膜反射存在、较为迟钝，躯体呈现自然倒下，此时为最佳麻醉效果。
(2)自头顶部至耳后沿正中线剪开皮肤，将颈肌向下剥离。透过透明的颅骨即可看清小脑的位置，用大头针刺穿颅骨，直达小脑(2-3 mm)，搅毁该侧小脑(注意不可深刺，以免损伤脑干)。
新乡医学院实验课教案首页
课程名称：普通生物学授课教师姓名及职称：高启禹讲师
一、授课题目
小白鼠系列实验
二、授课对象
09级生物技术专业及三全
三、实验教学目标与课时分配
1.学会实验动物小白鼠的抓取、固定和性别鉴定
2.初步掌握小鼠的给药途径和方法
3.初步学会小鼠常规的几种采血方法
4.熟悉小鼠的组织结构
四、授课重点