细胞标本取材和制片方法
制片流程
离心涂片法操作步骤
一、妇科取材
将取样刷插入后抵住宫口，用力适中顺时针旋转5圈（禁忌来回旋转），若有血液及分泌物，先用干棉球拭去，取样时注意取到鳞柱交界处的细胞。
取样后将取样刷在保存液瓶内涮洗10次，或将刷头取下置于保存液中,旋紧瓶盖，做好标记，和记录好病人信息的检测申请单一起传送至实验室。
二、每个标本瓶用手上下摇晃10-20下，或者放在振荡器上震荡10到30分钟（最好是震荡30分钟），将取样刷上的细胞完全摇晃到细胞保存液。
三、静置30分钟左右，待样本细胞沉降至尖底保存瓶底部，开始制片。
如果是浑浊液体，用一次性吸管从瓶底吸取0.5到1ml 样本液，转移到一次性制片架内直接制片。
如果是清亮标本，把标本上下多摇晃几下，把标本瓶对称放入制片机中，开启制片机按键，800转离心1分钟，完成后取出标本瓶加液制片。
四、将制片架对称放入制片机中。
五、开启制片机按键，800转离心1分钟，制片完成。
六、晾片。
离心完毕后，将制片架取出，将载玻片和吸水纸片一起拉出来，将吸水纸垂直于玻片翻转去除（避免抽拉吸水纸片造成载玻片上细胞遗失），置于清水中轻轻漂洗2-3次。
七、取出细胞涂片，可直接将涂片置于95%乙醇中固定10分钟后，染色，阅片。
叶子表皮细胞制片观察详解
叶子表皮细胞制片观察详解1、药品处理法（溶解叶肉）原理：10%CrO3水溶液与10%硝酸临时配临时用1：1混合药品可以将叶肉溶解，但对于有角质层的表皮却不起作用，因此仅留上、下表皮。
方法：①药品与材料体积比20：1（药品尽可能多）；②将材料修剪好后，置于大扁平称量瓶中，倒入临时配好的处理液，放置于40-50℃温箱中，（注：温度不宜过高，易挥发，40-50℃刚好使反应速度加快，又不致于药品挥发）；2、取材：一般取已成熟的叶子，若有对比则应取同一方向，同一部位，条件一致。
3、修材：根据不同研究目的，将材料修成不同形状，一般若仅研究叶表皮及气孔等，则可取叶片中间段。
4、药品：三氧化铬强氧化剂，深褐色晶体，又名铬酸酐，浓硝酸强酸，混合液为棕褐色。
5、温度：40-50℃不是一个固定值，其主要目的是为了加快反应速度，夏天可以置于室温下（30-40℃）。
6、换药：当称量瓶中处理液已由棕黄色变为咖啡色时，说明已发生了反应，部分叶肉已溶解，处理液中的有效成份已经消耗光，需要换新的处理液，一般情况下较厚，较大的叶子需要更换药品，而像松针类则无必要。
7、取片：待药品处理8个小时左右（至少4小时），材料表面有很多气泡时，表明叶肉已被溶解。
①用毛笔伸到处理液中，将材料挑到一个已经装了水的培养皿中，然后使其展开，用笔尖轻轻垂直向下挤压叶片材料，使已溶解的叶肉被赶出来，仅留上、下表皮两层（形成套状）；②用剪刀沿边缘将上、下表皮剪开；③用毛笔竖起点挤材料，使叶肉尽可能脱离表皮，若想使叶肉脱干净，可以将表皮又重新放回处理液中处理；④反复将表皮用清水漂洗几次。
8、修片：用一张光滑硬纸片伸入培养皿中，将表皮牵引至纸片，然后分别上下表皮剪成不同形状（表皮粘附在纸片上，直接剪纸片即可），剪成不同形状是为了便于辨认；修完后，将纸片（修好后带材料）放回水中，然后轻轻用镊子掀起纸片，材料自然与纸片分离，回到水中，纸片应反扣在水中，材料在下。
9、初验：修完片后可以用干净载玻片将材料引出，在显微镜下观察，若仍有叶肉细胞残留，则应尽可能处理。
初中生物标本制作
初中生物标本制作生物标本制作是一门既具有科学性又具有艺术性的技术活动。
通过制作生物标本，我们可以更好地了解和学习动植物的结构、形态和特征，同时也可以培养我们对生命的敬畏和保护意识。
本文将介绍初中生物标本制作的步骤和注意事项。
一、准备工作在进行生物标本制作前，我们需要准备一些必要的工具和材料，以确保制作过程的顺利进行。
1.工具准备：- 显微镜：用来观察细胞结构等微小的细节。
- 剪刀和镊子：用于细致的剪裁和取样。
- 注射器和细针：用于注射和取样。
- 制片刀和玻璃片：用于制作玻璃载玻片。
- 酒精灯或煤气灯：用于烘烤杀灭和烘干样本。
2.材料准备：- 生物标本：可以是昆虫、鱼类、植物等。
- 标本瓶和标本盒：用于存放制作好的标本。
- 75%酒精：用于杀灭和保存标本。
- 石蜡和昆布：用于制作切片。
二、制作步骤1.选择标本：根据所学课程的要求，选择合适的标本进行制作。
可以选择已经死亡的动植物，也可以进行田间观察后自行捕捉或采集标本。
2.杀灭标本：将选择好的标本放入标本瓶中，注入75%酒精，密封瓶盖。
酒精可以杀灭标本上的细菌和寄生虫，并保持标本的形态和颜色。
注意，酒精具有易燃性，请远离明火。
3.固定标本：将醇定的标本取出，用镊子和剪刀等工具调整其姿势和形态。
然后，将标本放置在酒精中，保持一段时间，让酒精进入标本组织中，使其固定。
4.制作切片：选取制片刀，将固定好的标本切成薄片。
对于植物标本，可以先将其处理成透明切片，使用昆布将标本固定在玻璃片上；对于动物标本，可以先用注射器和细针将标本组织吸入，然后切割。
5.染色处理：根据需要，可以对标本切片进行染色处理，以突出某些特定的细胞结构或组织。
6.封装和保存：将制作好的切片放置在玻璃载玻片上，用石蜡将其固定，然后将载玻片放入标本盒中进行保存。
注意，标本需要放置在干燥通风的地方，避免受潮或遭到虫害。
三、注意事项1.安全第一：在进行生物标本制作时，务必注意个人安全和实验室安全。
手术病理标本处理规定及流程
手术病理标本处理规定及流程1.接收标本：手术标本在手术过程中收集，并由手术医生或护士放入相应的标本容器中。
这一步骤需在术中完成，并通过标本接收表格详细记录相关信息，如患者基本信息、手术部位、手术方式、取材数量等。
2.标本传递：将标本放入防漏、密封和不同溶液浸泡的标本容器中，并通过专门的运送箱传递到病理科实验室。
传递时要注意标本的安全，避免破损或引起误配。
4.标本处理：根据标本类型及病变部位选择相应的处理方法。
常见的处理方式有固定、包埋、切片等。
常规情况下，标本需使用10%中性缓冲福尔马林（10%NBF）进行固定，以保持组织结构和细胞形态的完整性。
5.标本切片：固定后的标本需进行脱水、透明化和浸渍处理，以便进行切片。
这一步骤通常通过把标本进行乙醇浓度逐渐升高浸泡，并用透明剂如苯醚浸渍处理。
浸泡时间通常为数小时或数天，以确保组织被完全清除。
6.切片制作：经透明化处理后，标本需保存在蜡块中，切割成非常薄（约3-5微米）的切片，并放置在切片机的载玻片上。
7.制片染色：切片制作完成后，需要进行染色以凸显组织细胞的形态特征。
常用的染色方法有常规的苏木精-伊红染色和免疫组织化学染色等。
8.扫描与分析：完成染色的切片需用显微镜观察，并通过数字化扫描将切片映射到计算机上。
然后，使用专业软件对映射的图像进行分析和测量，以得到关键指标如病变范围、细胞密度等。
9.诊断报告：经过病理医师的专业分析和判断，完成诊断报告的撰写。
报告应包含标本基本信息、组织学特征描述、诊断结论和建议治疗等内容。
病理报告需及时打印送交医生，并保存电子档案。
10.报告解读：临床医生收到病理报告后，进行解读，并与患者讨论评估后续的治疗方案。
总结而言，手术病理标本处理规定及流程包括标本接收、传递、登记、处理、切片、染色、扫描与分析、诊断报告、解读和结果通知等一系列步骤。
这些流程的顺利进行，是确保准确诊断、指导临床治疗及改善患者预后的重要环节。
标本的处理
标本的处理涂片的制备1. 用白金耳挑取待检材料（血液、脓汁、尿沉渣等），均匀涂布于载玻片上，约呈1平方厘米的圆形面积。
2. 用冷吹风机吹干后，立即应用，或装在塑料袋中，-10℃保存，可于二周内使用。
印片的制备1. 将待检组织以小剪刀剪开，用滤纸将创面血液吸干，然后用创面轻压玻片，使之粘上1-2层细胞。
2. 用冷吹风机将玻片吹干。
组织切片的制备1. 在-16~-25℃的低温下将冷冻的待检组织用冷冻切片机切片。
2. 将切片迅速贴在玻片上。
3. 用冷吹风机立即将玻片吹干。
标本的固定1. 将标本玻片置于玻片架上，浸入盛有固定剂溶液的搪瓷桶内。
2. 经过一定时间（参考3min）固定后取出玻片架。
3. 即刻以冷磷酸缓冲盐水冲洗，再按顺序经过磷酸缓冲盐水三缸浸泡，每缸3min，取出在空气中晾干或用风扇吹干。
涂片和印片血液、细菌培养物、脑脊液、体腔渗出液和细胞悬液等均可简单地涂抹在玻片上，干燥固定后就可用于荧光抗体染色。
脑脊液、脏器（肝、脾、淋巴结等）、细菌菌落或尸体病变组织可把切面压印于玻片上作成印片，经固定后再染色。
组织切片主要有以下两种：①冷冻切片：为了使抗原最大量的保存，首选的制片方法是冷冻切片，其优点是操作简单，组织的抗原性保存好，自发荧光较少，特异荧光强，同时适用于不稳定的抗原，缺点是组织结构欠清晰。
②石蜡切片：石蜡切片是研究形态学的主要制片方法，它不但是观察组织结构的理想方法，而且可进行回顾性研究。
其优点是组织细胞的精细结构显现清楚，但对抗原的保存量不如冷冻切片，并有组织自发荧光和非特异性荧光，需加酶消化处理。
细胞培养标本用HEP-2细胞或Hela细胞培养，待细胞在玻片上形成单层，固定后用作抗核抗体等检测的抗原片。
还可使细胞单层生长在玻片上，再用病毒或病人标本感染，然后固定，用荧光抗体染色法检测病毒。
活细胞染色检查淋巴细胞表面抗原以及免疫球蛋白受体、癌细胞表面抗原、血清中抗癌细胞抗体等，均可用活细胞荧光抗体染色法。
细胞病理学技术制作规范及质量控制标准
1.细胞学申请单和标本的验收( 1 )细胞病理学室应有专人负责细胞病理学标本及申请单的验收，并严格执行标本验收签名责任制。
验收工作包括以下内容。
①认真核对每例送检标本和申请单，确保标本和申请单一致。
发现疑问应及时与送检科室联系并在申请单上注明情况。
②认真检查送检标本及内容物是否完整，盛具是否洁净干燥，识别的标签是否牢附于容器上。
③申请单是否注明送检标本的目的和要求(包括特殊检查要求，如免疫细胞化学染色、份子病理学检测等)。
④子细查阅申请单上各项是否按要求填写清晰：包括患者的基本情况、送检单位、送检日期、送检标本类别、患者的临床资料、化验室及影像学检查结果、既往细胞病理学检查情况和临床诊断等。
⑤申请单上要详细记录患者或者家属的明确联系方式，以便必要时与患者或者家属联络。
( 2 )用于细胞病理学检查的标本必须新鲜，力求有足够数量，临床取材后应尽快送达细胞病理学室。
( 3 )申请单中由临床医师填写的各项内容不得擅自进行改动。
( 4 )下列情况者，标本不予接收。
①申请单与相关标本未同时送达细胞病理学室。
②申请单中填写的内容与送检标本不符。
③标本上无患者姓名、科室等标志。
④申请单上填写的内容自己潦草难以辨认。
⑤申请单中漏填重要项目。
⑥没有按照规范的方法进行采集、运送或者保存的标本。
⑦浮现泄漏、损坏、碎裂，液体标本干涸等不符合送检要求的标本。
( 5 )细胞病理学室对不能接收的标本及申请单一律当即退还送检人，不予存放。
2.申请单和标本的编号、登记( 1 )验收标本的人员应在已验收的申请单上注明收到标本的日期，及时准确地进行细胞病理学编号，并逐项录入登记薄或者计算机。
( 2 )细胞病理学标本、申请单、涂片、标本登记薄或者计算机内的编号必须彻底一致。
1.取材和制片标本一定要新鲜，接收标本后应即将涂片、固定和染色。
不能即将涂片时，应将标本置于低温或者加入适量 95%乙醇，短时间保存。
目前采用的制片方法如下。
( 1 )传统涂片法将标本直接涂片于载玻片上，涂片面积易占玻片的 1/2 或者 2/3。
脱落细胞检查标本采集和涂片制作方法
脱落细胞检查标本采集和涂片制作方法一、标本采集正确地采集标本是细胞学诊断的基础和关键之一，故要准确地选择部位，尽可能在病变区直接采集细胞。
采集的标本必须保持新鲜，尽快制得，以免细胞自溶或腐败。
尽可能避免血液、粘液等混入标本内，采集方法应简便，操作轻柔，避免病人痛苦和引起严重并发症及促进肿瘤扩散，下面介绐几种常用的标本采集方法。
（一）直视采集法外阴、阴道、阴道穹窿、宫颈、口腔、肛管、鼻腔、鼻咽部、眼结膜及皮肤等部位，可以直接用刮片刮取、吸管吸取、刷洗、食管、胃、直肠、气管和肺内支气管则使用纤维内镜在病灶处直接刷取细胞制片。
（二）自然分泌液的采集法1．痰液涂片检查：痰兴高采烈为支气管等呼吸的分泌物，对支气管肺癌和其它呼吸道疾病细胞学诊断具有重要价值。
2．尿液涂片检查：收集尿液中脱落的泌尿道细胞成分，作泌尿道肿瘤和某些疾病的细胞学诊断。
3．乳头溢涂片检查：用于导管内乳头状瘤和乳腺癌细胞学检查。
4．前列腺液涂片检查：采用前列腺按摩法取得分泌物，作前列腺细胞学诊断。
（三）灌洗洗向空腔器官或腹腔、盆腔（剖腹探查时）灌注一定量生理盐水冲洗，使其细胞成分脱落于液体中，收集灌洗液离心制片，作细胞学检查。
（四）磨擦法利用磨擦工具在病变部位磨擦，将擦取物直接涂片。
常用磨擦工具有海棉磨擦器、线网套、气囊等。
可分别用于鼻咽部、食管和胃部病灶的取材。
（五）针穿抽吸法当有胸腔、腹腔、心包腔及关节腔积液时，可用针穿抽吸部分积液作细胞学检查。
此外某些深部组织器官，如淋巴结、甲状腺、软组织、肝等亦可作细针穿刺吸取部分细胞进行涂片诊断。
二、涂片制作方法（一）涂片前准备工作及涂片方法1．涂片前准备工作（1）保证标本新鲜，取材后尽快制片。
（2）涂操作要轻巧，避免挤压以防止损伤细胞。
涂片要均匀，厚薄要适度，太厚细胞堆叠，太薄细胞过少，均影响诊断。
（3）玻片要清洁无油渍，先用硫酸洗涤液浸泡冲洗，再用75%乙酸浸泡。
（4）含蛋白质的标本可直接涂片，缺乏蛋白质的标本，涂片前先在玻片上涂薄层粘附剂，以防止染色时细胞脱落，常用粘附剂为蛋白甘油，由等量生鸡蛋白和甘油混合而成。
细胞学的常规制片方法
空针管，做体表肿块穿刺，吸取少量细胞作涂片；内脏肿块穿刺应在B 超、X线或CT引导下，由放射科医师或其他临床科医师施行
(二)细胞学制片方法
• 制片的目的是将采集的细胞成分均匀置于载玻片上，以便镜下检 查。因此，涂片要求：
• 1、细胞涂布均匀，分布在载玻片一侧2/3范围内，其余l/3留作贴 标签；
拉片法
• 拉片法常选小滴状标本，置于两张载玻片之间，稍 加压力反向拉开，即成两张厚薄均匀的涂片。拉片 法制片可适用于痰、胸腹水和穿刺细胞标本。
推片法
• 推片法为血液科常用的涂片方法，即选一个边缘光 滑的载玻片做推片，并使推片与载玻片之间成40° 左右的夹角，将载玻片上的细胞标本匀速推动，做 成细胞涂片。常用于穿刺细胞和体液标本。应注意： 因癌细胞体积较大，常位于细胞涂膜的尾部，因此 推片时不要将尾部推出片外。
细胞学的制片方法与应用 范围
细胞学检查包括：标本采集、涂片、固定、 染色、封片、阅片等过程，其中细胞学制片
是诊断细胞学的基础。
细胞学标本采集的原则应尽量减少受检者的 痛苦，取得其合作；尽可能使方法简便、快 速，并能获取丰及时。
(一)细胞学标本类型
• 细胞学标本分脱落细胞和细针穿刺细胞两大类。
1．脱落细胞是指正常或病理情况下，自然脱落下 来的细胞，随分泌物、排泄物排除体外。恶性肿瘤的组织 细胞之间粘合力下降，加上常有出血坏死等情况，致使肿 瘤细胞更易脱落。这是脱落细胞学用以临床诊断的理论依 据。如痰液、尿液细胞学检查，可分别查到呼吸道、泌尿 道肿瘤细胞，子宫颈刮片可查见宫颈恶性瘤细胞。
• 2、涂片时，勿用力挤压或摩擦，防止细胞由于挤压损伤或变形； • 3、做好标记，刻写编码，防止错号。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
细胞标本取材和制片方法跟着疾病的发生、发展，病理标本在疾病的诊疗过程中越来越重要。
病理标本的检查应包含大概和显微镜下察看两个方面，而正确的诊疗常常取决于正确的显微镜下察看，所以制片质量的利害将直接影响诊疗结果的正确性，甚至会带来错误的结果。
一张好的切片与取材和固定都有亲密的关系。
关于免疫组织化学方法所需资料的取材，不单要求组织细胞的形态完好保留，并且要最大程度的保留组织或细胞成分的抗原性。
1印片法印片法的长处是简易、迅速、经济、正确，特别是前三方面超出任何一种冰冻切片及迅速白腊切片法。
它不需要特别设施，凡病理室均可展开。
特别合用于县以下没有冰冻切片设施和条件的病理室。
印片法的速度特快，仅数分钟即可出结果。
在正确性方面与一般冰冻切片同样。
印片中的细胞形态比之在较厚的冰冻切片中所察看到的细胞形态构造更加清楚可辨，细胞畸形远较冰冻切片明显。
冯毓正等曾碰到两例乳腺硬癌，冰冻切片察看难以与硬化性乳腺病鉴识，而是联合印片中发现恶性细胞才确诊为硬癌。
依据乳腺标本的肉眼察看联合印片中有无恶性细胞对某些乳腺病变也能做出初步的诊疗。
一般说来，印片法是一种病理诊疗的协助1 / 7方法。
不论白腊切片或冰冻切片辅之以印片，互补欠缺，关于进一步提升病理诊疗的正确性均有极大的帮助。
冯毓正等以为印片法不单不过冰冻及白腊切片的协助诊疗方法，它能够取代冰冻切片对乳腺肿块进行迅速诊疗。
邝国乾等采纳印片法检测 AgNOR 可联合印片细胞学检查，使诊疗鼻咽癌的敏感性、特异性、适用性等都有提升。
所以，印片法优于切片法。
本方法作为诊疗鼻咽癌，拥有操作简单、经济、适用、正确、靠谱、重复性好，易于普及推行。
崔海等在研究以为使用印片法可提升外科医师术中对胃癌浆膜浸润或浸出状况的判断正确率，减少肉眼判断上的误判或漏判，并且方法简易、迅速。
需要指出的是，在做印片取材时，应当心柔和操作，更不可以用刮片的方法，免得人为惹起癌细胞的扩散转移。
2穿刺法当前临床上常用的穿刺方式有两种：软梯式和纽扣式穿刺方式。
纽扣式穿刺方式穿刺点固定，穿刺地区小，易使血管四周形成疤痕和动脉瘤，未穿刺的血管和组织形成塌陷，影响血流量。
可是因为纽扣式穿刺方式痛苦度低，患者关于它的允从性较高。
而软梯式穿刺方式，固然有纽扣式穿刺方式没法超越的优胜性一血管受力平均、对血管壁的损害小、不易惹起动脉瘤的发生，但因其每次穿刺需要改换新的穿刺点、痛苦度高而常常不被患者所2 / 7接受。
当前，宽泛应用的穿刺法大部分是改进过的。
2.1 改进穿刺法的临床应用自体动静脉内瘘是终末期肾病患者进行保持性血液透析最常用的血管通路，是患者赖以生计的“生命线”。
怎样采纳最正确的穿刺方法，减少透析患者频频穿刺带来的痛苦，减少并发症的发生，保护好动静脉内瘘管，延伸其使用寿命，是广大医护人员值得研究和商讨的问题。
李春艳等研究了针尖斜面向下的穿刺方法，关于减少穿刺痛苦也有必定的成效。
动静脉内瘘穿刺宽泛应用的惯例法是针尖斜面朝长进行穿刺，沈娴，等采纳改进法，即针尖斜面向右旋转45°，同时增大进针角度，减少了患者穿刺时的疼痛，减少了穿点渗血次数及压迫止血时间，成效满意。
关于患者而言，使用改进穿刺法后痛苦度减少的成效越显然。
痛苦度一旦减少，患者关于穿刺方式的选择允从性大大提升，进而达到防止并发症的发生、有效保护动静脉内瘘管的目的。
经外周中心静脉置管（ PICC）是用于为患者供给中期到长久的静脉输液治疗而留置的中心静脉导管，经外周静脉穿刺插管，使其尾端位于上腔静脉的下 1/3 处或上腔静脉与右心房交界处的深静脉导管置入术。
PICC 在临床应用中仍不行防止地发生各种并发症，此中导管头端的异位不单影响PICC 的正常使用，甚至能够惹起各样并发症，严重时需拔掉后二次置管，进而增添了患者的难过和经济负担。
临床上 PICC 的异位多发生于颈内静脉、3 / 7锁骨下静脉、腋静脉等部位，而导管异位至颈内静脉最为常有，发生率 3%～37%。
颈内静脉是颈部最粗大的静脉，且其管腔常常处于开放的状态，也为导管误入供给认识剖上的基础。
传统的穿刺法是让患者仰头，将头凑近穿刺侧的肩部。
其目的是为了使锁骨下静脉与颈内、外静脉之间形成一锐角，进而阻挡导管进入颈静脉。
传统穿刺法患者在穿刺过程中因为担忧错过配合的时间而向来处于紧张忧虑状态；配合时患者需要仰头，仰头使颈部肌肉紧张，舒坦度降低加重了忧虑的情绪；在配合过程中患者一直担心自己配合的动作能否正确进而产生过重的心理负担，致使血管痉挛造成送管困难，降低了穿刺的成功率；因为患者采纳的体位不正确，也增添了导管异位的发生率；此外，传统穿刺法因为需要患者的配合，关于老年、危重、体弱以及配合度差的患者也简单发生颈内导管异位。
运用传统穿刺法的异位发生率为 17%，许剑蕾为了减少患者的难过，保证导管的顺利置入，改进穿刺法全程由护士担当配合者，护士接受过专业医学的培训并认识整个穿刺的过程。
护士按压锁骨上窝近胸锁关节处，使颈内静脉受压变瘪，进而防止导管误入颈内静脉；改进穿刺法患者不需要做任何配合动作，同时配合护士在穿刺过程中不停地与患者沟通使其处于放松状态，降低了患者的忧虑程度，增添了舒坦度，使浑身肌肉和血管放松，便于导管的送入，增添了穿刺的成功率。
改良穿刺法配合护士在按压时能够感觉到导管误入到颈内静脉，及4 / 7时让操作者进行调整进而降低颈内导管异位的发生率。
2.2 扣眼穿刺法研究进展1977 年波兰学者 Twardowski 初次对 1 例血管长度受限的患者采纳固定穿刺点穿刺，并称之为固定点穿刺法。
1984 年Kronung 将此法用于居家透析患者并更名为扣眼穿刺法。
20 世纪80 年月起扣眼穿刺法在欧洲特别流行，并被美国肾脏病临床实践指南介绍为自体内瘘的首选穿刺方法。
扣眼穿刺法的特色：第 1 步是地道的形成，穿刺时要求每次都经过同一个皮肤穿刺点和血管穿刺点进针。
第 2 步，地道形成后要改用钝针穿刺，钝针是指针尖及边沿不尖利、没有切割作用的内瘘穿刺针。
假如没有形成地道，钝针就没法抵达血管腔，而地道形成后还用锐针，则简单出现穿刺点出血。
扣眼法与传统方法对比显然降低了血管瘤和血肿的发生率[13，14]，合用于新旧内瘘，简单穿刺，减少护士的操作时间，且患者能够自己穿刺 [15，16] 。
3积淀法一般状况下，脑脊液、浆膜腔液中细胞数目极少，需进行细胞采集后才能作细胞学检查。
教科书和一些操作手册中，常常只离心积淀法采集细胞，其长处是操作简易、收获细胞多，但该法有显然的缺点，因为标本中蛋白质含量过低等要素影响，加上离心力的作用，细胞形态构造易被损坏，特别是一些拥有诊疗意义的细胞如肿瘤细胞等，更易被损坏，进而影响细胞学检查结果。
5 / 7利用细胞自然沉降作用，同时使用滤纸将水分吸出，加快细胞的沉降，采集细胞于玻片上后进行细胞学检查。
此方法不影响细胞的形态构造，可作各样染色以进行细胞学检查。
不单粒细胞、淋巴细胞形态构造完好，其余细胞如间皮细胞、各样肿瘤细胞、淋巴样细胞、单核样细胞、室管膜细胞等也都构造清楚，基本上与血片、骨髓片中的细胞清楚度一致。
标本不宜久置，收取标本后应立刻进行采集细胞的操作，不然细胞易变形。
自然干燥时间太长也会致使细胞形态构造的改变，可用电吹风吹干。
该法弊端是操作稍费时，耗费的标本不可以作其余项目检查。
但战胜了离心积淀法的显然不足，能保持细胞形态、构造的原来面目，有益于明确细胞学诊疗。
将细胞积淀法应用于良恶性腹水鉴识，成效优秀。
与惯例离心积淀法对比，获得的细胞量显然增加，细胞形态清楚完好，可与血片及骨盈片对比较。
能辨识恶性细胞的特色，并且所需的标本量极少，在积液很大及腹水中细胞含量少的状况下，更拥有其优胜性。
既往诊疗小儿恶性血液病主要靠中枢神经系统症状、体征、CSF三项检查（压力、白细胞计数、蛋白定量）及试管离心积淀涂片找肿瘤细胞。
用玻片离心积淀法进行CSF细胞学检查，最先用于中枢神经系统白血病的检查。
后扩大到全部恶性血液病，领会到这是一种简易、迅速、较敏感的方法，在无临床症状、惯例6 / 7三项及试管离心积淀细胞学都正常时便可找到肿瘤细胞。
4活细胞标本的制备活细胞标本的制备多用于科研，用于惯例病理诊疗的较少。
标本主要根源于建株的培育细胞、短期培育细胞和外周血等。
细胞可直接培育在盖玻片上，固定后即可进行染色察看或进行免疫组织化学染色或扫描电镜标本制备。
也可培育于培育瓶或培育板内，制成细胞悬液，采集必定的细胞还可进行涂片。
能够经离心后进行透射电镜标本制备。
5小结大批报导表示，病理切片已成为诊疗疾病的重要手段。
并且细胞标本的取材和制备方法在病理切片诊疗中起着至关重要的作用。
当前，上述四种方法固然在不一样领域中成功应用，但仍旧有一些限制性。
所以，对细胞标本取材和制片方法的的研究还有待更进一步深入。
7 / 7。