凝胶层析分离蛋白质实验方法的优化
凝胶层析法分离纯化蛋白质

汇报日期
汇报人姓名
单/击/此/处/添/加/副/标/题/内/容
【目的】
掌握凝胶层析的基本原理 学习利用凝胶层析法分离纯化蛋白质的实验技能
【原理】
凝胶层析也称分子筛层析、排阻层析。是利用具有网状结构的凝胶的分子筛作用,根据被分离物质的分子大小不同来进行分离的技术。
凝胶层析是按照蛋白质分子量大小进行分离的技术,又称之凝胶过滤、分子筛层析或排阻层析。 单个凝胶珠本身象“筛子”。不同类型凝胶的筛孔的大小不同。
04
相对分子质量较小的物质由于直径小于凝胶网孔,可完全渗透进入凝胶颗粒的网孔,在向下移动过程中,因此流程较长,移动速率慢;所以最后流出。
03
总结:
01
相对分子质量较大的物质由于直径大于凝胶网孔被完全排阻在孔外,只能在凝胶颗粒外的空间向下流动,因此流程较短,移动速度快;所以首先流出。
02
层析柱
01
恒流泵
凝胶柱的处理 凝胶用过后,反复用蒸馏水通过柱(2~3倍床体积)即可。
注意事项
始终保持柱内液面高于凝胶表面,否则水分挥发,凝胶变干。也要防止液体流干,使凝胶混入大量气泡,影响液体在柱内的流动,导致分离效果变坏,不得不重新装柱。
Байду номын сангаас
各接头不能漏气,连续用的小乳胶管不要有破损,否则造成漏气、漏液。注意恒压瓶内的排气管应无液体,并随着柱下口溶液的流出不断有气泡产生,则表示恒压瓶不漏气。操作过程中,层析柱内液面不断下降,则表示整个系统有漏气之处,应仔细检查并加以纠正。
01
02
01
加样与洗脱 将柱中多余的液体放掉出,使液面刚好盖过凝胶,关闭出口,将1ml样品沿层析柱管壁小心加入,加完后打开底端出口,使液面降至与凝胶面相平时关闭出口,加洗脱液至液层4cm左右,接上恒流泵,开始洗脱( 0.5ml/min)。
凝胶层析法分离纯化蛋白质

了解凝胶层析分基本原理,学会用凝胶层析分离纯化蛋白质。
三、试剂和材料
1)载体:葡聚糖凝胶G-50 2)样品液:
含蓝色葡聚糖2000[相对分子质量在200万以上,蓝色], 红色水溶性百里香酚蓝[分子质量488.60,红色]
3)洗脱液: 50mmol/L pH3.0 磷酸缓冲液。
(每组200ml。溶液配方:磷酸氢二钠:1.754g;磷酸二氢钠: 0.796g;NaCl:1.752g,用水定容至200ml。配制完成后用盐酸调pH 值为3.0)
凝胶过滤层析原理示意图
一、目的 二、原理
1)凝胶层析是基于分子大小不同而进行分离的一种分离方 法。 2)将一定量的含有不同大小分子的混合原料加在柱上并用 流动相洗脱,则无法进入多孔凝胶颗粒内部的大分子会直接随 流动相由凝胶颗粒之间的空隙被洗脱下来; 3)小分子因可深入凝胶颗粒内部而受到很大的阻滞,最晚 洗脱下来; 4)中等大小的分子虽可进入凝胶颗粒内部但并不深入,受 到凝胶颗粒的阻滞作用不强,因而在两者之间被洗脱下来。
8
实验步骤
五、收集: 1、用试管进行样品的收集,每管1ml。
2、注意观察层析柱内分离现象,并观察收集管内颜色深浅, 以—、+、++等记号记录两种物质洗脱液的颜色。或者用400nm, 550nm测其OD值
六、凝胶柱的处理: 1、凝胶柱用过后,反复用蒸馏水(2~3倍床体积)通过柱即可。
2、如果凝胶有颜色或比较脏,需用0.5 mol/L 的NaOH-0.5 mol/L NaБайду номын сангаасl洗涤,再用蒸馏水洗。
7
实验步骤
三、平衡: 1、将洗脱液与恒流泵相连,用2倍床体积的洗脱液平衡,平衡 完成后,检测流出液的pH值是否为3.0。 四、加样和洗脱: 1、将柱中多余的液体放出,使液面刚好盖过凝胶,关闭出口。 2、将400ul的样品沿层析柱管壁小心加入,加完后,在打开底 端出口。 3、用少量洗脱液清洗柱内壁2次,加洗脱液至液层4cm左右, 按上恒流泵,开始洗脱。
葡聚糖凝胶Sephadex G–25柱层析法脱盐分离蛋白质实验技术总结

凝胶是由胶体粒子构成的立体网状结 构。网眼里吸满水后凝胶膨胀呈柔软而富 于弹性的半固体状态。人工合成的凝胶网 眼较均匀地分布在凝胶颗粒上有如筛眼, 小于筛眼的物质分子均可通过,大于筛眼 的物质分子则不能,故称为“分子筛”。 小于筛眼的分子将完全渗入凝胶网眼,并 随着流动相的移动沿凝胶网眼孔道移动, 从一个颗粒的网眼流出,又进入另一颗粒 的网眼,如此连续下去,直到流过整个凝
胶
柱为止,因而流程长、阻力大、流速慢; 大于筛眼的分子则完全被筛眼排阻而不 能进入凝胶网眼,只能随流动相沿凝胶 颗粒的间隙流动,其流程短、阻力小、 流速快,比小分子先流出层析柱;小分 子最后流出。分子大小介于完全排阻不 能进入或完全渗入凝胶筛眼之间的物质 分子,则居中流出。这样被分离物质即 被按分子的大小分开。
层析法的基本原理
层析法是利用混合物中各组分物理化学性 质的差异(如吸附力、分子形状及大小、分子亲 和力、分配系数等),使各组分在两相(一相为 固定的,称为固定相;另一相流过固定相,称为 流动相)体系中的分布程度不同,从而使各组分 以不同的速度移动而达到分离的目的。
如盐析(粗分级分离)向蛋白质 溶液中加入大量的中性盐[(NH4)2SO4, Na2SO4,Na2SO4],使蛋白质脱去水化 层而聚集沉淀,这种现象称为盐析。
可见,不同类型的各种凝胶溶涨所需 的最少时间是不相同的,请参考有关的技 术数据。 在凝胶溶涨的处理过程中,不能进行 剧烈搅拌,禁止使用电磁搅拌器,以为这 样会使凝胶颗粒破裂而产生碎片。
2. 装柱
将层析剂装入柱中进行层析的方法称 柱层析法。 作层析用的柱子称层析柱。 柱子的一 端为进口,另一端为出口,出口端底部有 烧结玻璃砂板 ,能阻止层析剂流出,溶剂 则可流过。 层析柱的长短粗细根据实验的 目的而定,一般说来,凝胶层析时柱越长, 分离效果越好。但柱过长,层析时间长, 样品易稀释造成扩散。
实验一凝胶过滤层析分离蛋白质 ppt课件

吸水能力,每g干胶吸水量的10倍
数字愈小,交联度越大,被筛分物质的分子量也愈小
例:
Sephadex G-50:
对多肽及蛋白质的筛分范围(分子量)为: 1500 – 30000
Sephadex G-200:
对多肽及蛋白质的筛分范围(分子量)为: 5000 – 80000
B. 琼脂糖凝胶
( 商品名: Sepharose , Bio- gel – A ) 对实验条件要求高 ( 温度, pH )
实验一凝胶过滤层析分离蛋白质
一、 实验目的
1.掌握凝胶过滤层析法的基本原理; 2.掌握凝胶过滤层析法分离蛋白质的过程。
实验一凝胶过滤层析分离蛋白质
1. 常用生化实验技术
分光光度技术 电泳技术 离心技术 层析技术
实验一凝胶过滤层析分离蛋白质
是利用混合物中各组分的理化性质差异(吸附 力、溶解度、分子形状和大小、分子极性、分子亲 和力等)建立起来的技术。
注意:
防止床面干涸,可适当补充蒸馏水
实验一凝胶过滤层析分离蛋白质
① 加样前打开出口,使床面的蒸馏水流出,正好露 出床面时,立即关闭出口(将干未干)
② 用滴管将混合样品(0.6ml,即血红蛋白和溶菌酶 各0.3ml)缓缓沿柱内壁小心加于床表面
③ 打开出口,使样品进入床内,直到床面重新露出, 立即加入1~2倍于样品体积的蒸馏水
名称
操作形式
柱层析法
固定相装于层析柱内,使样品沿着一个方 向前移而达分离的层析法,包括一般柱层 析法、毛细管层析法和微粒填充柱层析法
平面层析法 层析过程在固定相构成的平面层内进行的 层析法,包括纸层析法、薄层层析法和薄 膜层析法
实验一凝胶过滤层析分离蛋白质
分离效率高 分析速度快 具有极高的灵敏度 应用范围广
实验三葡聚糖凝胶柱层析纯化蛋白质课件

实验三葡聚糖凝胶柱 层析纯化蛋白质课件
目录
• 实验原理 • 实验材料与设备 • 实验步骤 • 结果分析与讨论 • 注意事项与安全
01
实验原理
葡聚糖凝胶柱层析的原理
葡聚糖凝胶是一种具有三维网络结构的凝胶,具有良好的机 械强度和化学稳定性。它可以通过改变凝胶孔径的大小来分 离不同大小的分子。
当混合物溶液通过葡聚糖凝胶柱时,分子量较小的物质可以 进入凝胶孔内,而分子量较大的物质则被排阻在外。随着流 动相的流动,分子量小的物质逐渐被冲出凝胶柱,而分子量 大的物质则被滞留在凝胶柱内或缓慢流出。
结果的讨论与优化
结果讨论
根据实验结果,讨论凝胶柱层析纯化蛋白质的效果,分析可能影响分离效果和蛋 白质纯度的因素,如凝胶柱的填装、洗脱液的组成和洗脱速度等。
结果优化
根据结果讨论,提出优化实验条件的建议,如改变凝胶柱的填装方式、调整洗脱 液的组成或改变洗脱速度等,以提高蛋白质的分离效果和纯度。
05
注意事项与安全
分离度的计算
分离度是相邻两个峰之间的距离与峰宽的比值,可以通过测量洗脱液中 蛋白质的浓度变化来计算。
03
回收率的计算
回收率是纯化后蛋白质的质量与纯化前蛋白质的质量的比值,可以通过
称重法或紫外吸收法来测量。
蛋白质纯度的检测
检测方法:蛋白质纯度的检测方法包 括电泳法、质谱法、免疫学检测法和 光谱分析法等。电泳法是最常用的方 法之一,可以通过观察电泳图谱来判 断蛋白质的纯度。
电泳图谱的分析:电泳图谱中,单一 的、清晰的条带表明蛋白质纯度较高 ;而模糊的、多条带则表明蛋白质中 含有杂质。
纯度标准:蛋白质纯度标准通常由国 际蛋白质协会制定,分为一级、二级 和三级纯度标准。一级纯度标准要求 蛋白质中仅含有一种单体蛋白质,不 含有其他杂质;二级纯度标准要求蛋 白质中主要含有一种单体蛋白质,其 他杂质含量不得超过5%;三级纯度标 准要求蛋白质中主要含有一种单体蛋 白质,其他杂质含量不得超过10%。
食品检验中蛋白质测定方法的优化

食品检验中蛋白质测定方法的优化蛋白质是食品中重要的营养成分之一,对于保障食品质量和安全至关重要。
蛋白质的准确测定是食品检验中不可忽视的一个环节。
随着科技的不断进步,蛋白质测定方法的优化也在不断进行,以提高测定的准确性和高效性。
本文将对目前常用的蛋白质测定方法进行介绍,并探讨其优化方向。
1. 琼脂糖凝胶电泳法琼脂糖凝胶电泳法是目前常用的一种分离和定性蛋白质的方法。
此方法利用琼脂糖凝胶通过阻滞空间分子运动来分离蛋白质,并通过染色或者Western Blotting等方法进行定性。
由于琼脂糖凝胶法对蛋白质的范围有一定限制,不能对低分子量的蛋白质进行准确测定。
优化方向可以考虑引入聚丙烯酰胺凝胶电泳等新材料,扩大分离范围。
2. 生物素-双抗体夹心酶联免疫吸附法生物素-双抗体夹心酶联免疫吸附法是一种常用的定量蛋白质测定方法。
该方法通过将待测样品中的蛋白质与特异性抗体结合,再与生物素标记的次级抗体结合,并用酶标仪测定酶的活性来定量蛋白质的含量。
该方法需要多次操作,工作量大且周期长。
可以考虑引入自动化设备和高通量分析技术,减少操作步骤和提高分析效率。
3. 荧光染色法荧光染色法是一种快速、敏感且定量测定蛋白质的方法。
此方法利用特异的荧光染料与蛋白质结合,形成荧光复合物,并通过荧光分析仪测定荧光强度来定量蛋白质的含量。
尽管荧光染色法具有许多优点,如高灵敏度和广泛的应用范围,但是也存在一些问题,如荧光染料的稳定性和选择性等。
优化方向可以考虑开发更稳定和选择性更好的荧光染料,以提高测定的准确性和可靠性。
4. 质谱分析法质谱分析法是一种高精确性和高灵敏度的蛋白质测定方法。
该方法通过质谱仪将样品中的蛋白质离子化,并根据其质量/电荷比来鉴定和定量蛋白质。
质谱分析法具有不受分子量限制、高通量分析和高分辨率等优点。
该方法在样品前处理和仪器操作方面较为复杂,也需要相对较高的成本。
优化方向可以考虑简化前处理过程和提高仪器的操作便捷性。
分离蛋白纯化技术的优化研究

分离蛋白纯化技术的优化研究随着生物工程技术的飞速发展,分离蛋白纯化技术成为了生物制药、食品、化妆品等行业的基础技术之一。
在纯化蛋白的过程中,分离步骤对于蛋白质的产率和质量都有着至关重要的影响。
因此,不断优化分离蛋白纯化技术已成为目前分离蛋白领域的热门研究领域之一。
一、分离蛋白纯化技术的优化1. 多种技术融合在蛋白质分离纯化的过程中,不同的蛋白质对于不同的分离技术会有不同的选择性。
因此,多种分离技术的融合可以对分离纯化效果进行优化。
比如说,常规的分离技术有离子交换、凝胶过滤和亲和层析等,而将亲和层析和逆流层析结合可以提高纯度和蛋白质产量。
2. 筛选最佳工艺条件对于分离蛋白纯化的各个步骤,最佳的操作条件对于维持分离效果至关重要。
比如说,在进行分离前需要使用适当的缓冲液,pH值、盐浓度等也需要在合理的范围内进行调整。
同时,在纯化过程中往往需要利用表面活性剂等物质来调节离子强度,进一步优化工艺条件。
3. 追求高效率的操作方法对于分离蛋白的操作过程,高效率的操作方法也是优化的重要方向。
目前,一些新兴的技术,比如利用纳米颗粒吸附蛋白等,已经成为了行业内的热点。
此外,也可以通过优化膜过滤、重复批次操作和自动化控制等方式提高操作的效率。
二、分离蛋白纯化技术的研究进展1. 常用的分离蛋白技术:离子交换、凝胶过滤、透析、亲和层析等。
2. 趋势:使用新技术和方法,如纳米颗粒技术、电渗析层析技术、真空中膜层析法等。
3. 着手解决的研究问题:a) 改善蛋白固定在凝胶表面的技术,保证质量和产量。
b) 减少分离的时间、酶切等产生的损失、去除污染物。
c) 设计更好的目标蛋白质的亲和剂,以及发掘更高效的分离介质。
d) 在操作层面上,减少纯化过程中对环境、健康的负面影响,提高生产效率和质量。
4. 具体案例:a) 纳米颗粒技术,田纳西大学Lionel Cheruzel团队设计了利用二氧化硅颗粒吸附亲和纯化目标蛋白的技术,用于纯化beacon蛋白质。
凝胶过滤层析法分离纯化蛋白质

实验六凝胶过滤层析法分离纯化蛋白质一、实验目的1. 了解凝胶层析的原理及其应用。
2. 掌握利用凝胶层析法分离纯化蛋白质的实验技能二、实验原理凝胶层析又称凝胶过滤,是一种按分子量大小分离物质的层析方法。
该方法是把样品加到充满着凝胶颗粒的层析柱中,然后用缓冲液洗脱。
大分子不能进入凝胶颗粒中的静止相中,只留在凝胶颗粒之间的流动相中,因此以较快的速度首先流出层析柱,而小分子则能自由出入凝胶颗粒中,并很快在流动相和静止相之间形成动态平衡,因此就要花费较长的时间流经柱床,从而使不同大小的分子得以分离。
凝胶过滤柱层析所用的基质是具有立体网状结构、筛孔直径一致,且呈珠状颗粒的物质。
这种物质可以完全或部分排阻某些大分子化合物于筛孔之外,而对某些小分子化合物则不能排阻,但可让其在筛孔中自由扩散、渗透。
任何一种被分离的化合物被凝胶筛孔排阻的程度可用分配系数Kav(被分离化合物在内水和外水体积中的比例关系)表示。
Kav值的大小与凝胶床的总体积(Vt)、外水体积(Vo)及分离物本身的洗脱体积(Ve)有关,即:Kav= (Ve-Vo)/(Vt-Vo)在限定的层析条件下,Vt和Vo都是恒定值,而Ve值却是随着分离物分子量的变化而变化的。
分离物分子量大,Kav值小;反之,则Kav值增大。
Ve(洗脱体积)为某一成分从加入样品算起,到组分的最大浓度(峰)出现时所流出的体积。
Ve随溶质的相对分子质量的大小和对凝胶的吸附等因素而不同。
一般相对分子质量较小的溶质,它的Ve值比相对分子量较大的溶质要大。
通常选用蓝色葡聚糖2000作为测定外水体积的物质。
该物质分子量大(为200万),呈蓝色,它在各种型号的葡聚糖凝胶中都被完全排阻,并可借助其本身颜色,采用肉眼或分光光度仪检测(210nm或260nm或620nm)洗脱体积(即Vo)。
但是,在测定激酶等蛋白质的分子量时,不宜用蓝色葡聚糖2000测定外水体积,因为它对激酶有吸附作用,所以有时用巨球蛋白代替。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
1 5 检 测 .
1 1 凝胶 的 制备 与装 柱 .
观察 血红 蛋 白和溴 酚蓝在 层 析柱床 的色带位 置
及移 动 速 度 , 4 m 测 定 每 一 管 的 吸 光 值 ( 2 . 5 0n 7 2G
取 G 5凝 胶 常 规 溶胀 与装 柱 , 高 2 m,内 7 柱 0c 径 1~1 5c 注 意 任何 时刻 柱 顶要 有 水 层 15~2 . m, .
均 用 生 理 盐 水 配 制 ; .5 溴 酚 蓝 溶 液 , 0 05 02 % 用 .0
m lL的 N O 配 制 ; 氨 酸 10 m / 0 , 取 o / aH 酪 0 g 2 mL 称
10m 0 g酪 氨酸 , 加入 少许 蒸馏水 ,5滴 1m lLH 1 1 o C /
mL充 分混 合 , 总体 积 02 , 入 柱 顶并 打 开 下 .0mL 加 口, 洗脱 液流 出 , 样 品 渗入 层 析 柱 后 , 蒸 馏 水 让 待 用
冲洗 柱壁 2~ 3次并 回复 柱顶 水层 。
样 品 2: 牛 血 清 蛋 白 0 1 L 酪 氨 酸 00 取 . 8m , .2 m , 体 积 02mL 同 上 加 样 ( 入 另 一 层 析 柱 L 总 . , 加
c 内径 1 . m, m, ~15c 分离两组样 品 : 血红 蛋 白与溴 酚蓝 ; 牛血 清蛋 白与酪氨 酸 , 点样 , 洗脱 并收 集。5 0n 4 m和 20 8
n m检测样品的吸光值 , 绘制洗脱 曲线 。结幕 在层析 柱上出现明显移动速 度不 同的色带 , 脱 曲线显 示每组样 品 洗 可呈现两个洗脱峰 。结论 本 实验 改变了以往的复杂处理操作程序 , 适用于本科 生和研究 生进行科研训 练 的实验
凝 胶层 析技 术不 仅被 广泛 应用 于 科研 与 教学 ,同时
13 加 样 .
常规操 作 , 只保 留液 面 2—3mm 时 开 始 加 样
( 加样前应把洗脱速度调节好) 。
样 品 1 取 牛 血 红 蛋 白 0 1 L,溴 酚 蓝 0 0 : .8m .2
也 是 医学 和生 物技术 类 院校普 遍 安排 的对本 科生 和
方法。
[ 关键词 ] 凝 胶层 析 ; 血红蛋 白与溴酚蓝 ; 牛血清蛋 白与酪氨酸 ; 洗脱 ; 分光光度法 [ 中图分类号 ] 一 1 R3 3 [ 文献标识码 ] A [ 文章编号 ]0 0—10 ( 00 0 0 2 0 10 9 5 2 1 ) 6— 6 7— 2
凝 胶层 析是 广泛 用 于分离 纯化 生物 大分 子 的技 术 方法 之一 , 指待 分离混 合 物 的组 分 , 是 由于 分子 量 大 小不 同 , 层 析 柱 中 的 移 动 速 度 不 同而 被 分 离 。 在
研 究 生 的生化 实验 H 。作 为实 验 , 目的是要 充分 其 了解 凝胶层 析 的工 作 原 理 、 法 及 观 察层 析 分 离 生 方 物大 分子 的实 验结 果 等 , 在 实 验 过 程 中常 常 由于 但 各种 原 因如仪器 缺 乏 、 剂 昂贵 、 理 样 品复 杂 、 试 处 检
,
不断搅 拌 , 定容 至 2 L后 ,0℃磁力 搅拌 1 n 0m 8 0mi
以管 号 为横坐 标 , 吸光值 为 纵坐标 , 制洗脱 曲 绘
线。 2. 结果 与 日期 ]09— 9 0 20 0 — 9 [ 作者简介 ] 金艳 ( 9 0一) 女 , 薛 1 8 , 山东 淄博 人 , 实验 师 。 通 讯
中 ) 。
14 洗脱 与 收集 .
测 手 段不 完善 等而使 实 验结果 不 理想 。 因此 , 本
实验 拟建 立一 种经 济 、 捷 、 用并 可直 接 观察层 析 快 适 效果 、 复性好 的凝 胶层 析实 验 。 重
1 材料 与方 法
自加样 起 即开 始 收 集洗 脱 液 , 度 1 2 速 8~ O滴/
型可 见分 光 光 度 计 , 海 精 密 科 学 仪 器 有 限公 司 ) 上
以第 1或 第 2管 , 1 第 9或第 2 0管 分 别作 为血 红 蛋
c 柱 平衡 约通 过 3~ m, 4个 柱体 积后 即可使 用 。
1 2 样 品的 制备 .
白和溴酚 蓝 的空 白管 。检测 牛血 清 白蛋 白和酪氨 酸
薛金 艳 李俏俏 王云 飞 王 爱 民 , , ,
(, 1 山东 万杰 医学院 生物化学教研 室 , 山东 淄博 25 1 ; . 尔滨 医科 大学 生物化学 523 2哈 与分子 生物学教研 室, 黑龙江 哈尔滨 10 8 ) 50 1
[ 摘要 ] 目的
建 立一 种简单 , 操作 方便 , 验结 果 可靠 且重 复性 好 的生化 实验 。方 法 用 G 5凝胶 , 高 2 实 7 柱 O
第4 4卷 第 6期 21 0 0年 1 2月
哈尔 滨 医科 大 学 学 报
J OURNAL OF HARBI MEDI AL UNI RSnY N C VE
V0 . _ No 6 14 4. .
Dc . 00 e. 2 1
62 7
凝 胶 层 析 分 离 蛋 白质 实 验 方 法 的优 化
的分 离效 果 ,8 m 测 定 每 管 的 吸 光 值 ( 5 一 型 20n 72N 紫 外 . 见 分 光 光 度 计 , 海 精 密 科 学 仪 器 有 限 公 可 上 司 ) 用蒸 馏水 调零 。 ,
1 6 绘 制 曲 线 .
牛 血清 蛋 白 1 g mL 牛 血红蛋 白 1 g mL 0m / , 0m/ ,
在加入血红蛋万方数据628哈尔滨医科大学学报第44卷白和溴酚蓝样品后几乎立即看到血红蛋白迅速下行在层析柱上出现两条色带上蓝下红而且其距离迅速拉大并很快收集到牛血红蛋白的洗脱峰管通常在第34管出现而当血红蛋白被洗出后溴酚蓝色带还在中部缓慢移动时实验再次只加018ml牛血红蛋白后可见其迅速穿过溴酚蓝色带层并快速下移
作 者
经 多次 重复 实验 , 定 了该 实 验 的方 法 、 程 、 确 流 操作 步骤 , 察 到可 靠 的实 验 结果 。在加 入 血 红 蛋 观