家兔的颈部手术包括气管插管
家兔气管插管的主要目的,附注意事项
家兔气管插管的主要目的，附注意事项回答家兔气管插管的主要目的为帮助家兔呼吸、测试家兔气道的压力和通气量以及家兔呼吸曲线的描记。
注意事项：1、操作时要谨慎，不要对家兔甲状腺和气管两侧后的静脉造成伤害。
2、不要切开软骨环间的气管组织，在家兔出血时做好处理工作。
3、掐管前后都要及时清理气管内的内分泌物。
4、认真观察家兔的呼吸状况，定时将被夹闭的Y型管软管放开。
一、家兔气管插管的主要目的1、家兔气管插管的主要目的中包含辅助家兔进行呼吸、对家兔气道的压力和通气量进行测定以及记录家兔的呼吸曲线。
2、家兔气管插管的步骤（1）气管的暴露和分离在将家兔的皮肤切开之后，要对家兔的肌肉、气管、血管和神经进行钝性分离，钝性分离的工具是止血钳。
将皮下组织进行钝性分离后，颈部的肌肉就会暴露，将颈部正中部位的肌群分开就能见到气管。
气管后的软组织在甲状腺下面1cm-1.5cm的位置，分离时要用止血钳。
为了结扎固定气管插管，要在气管的下面穿结扎线，一共穿2条即可，注意结扎线要粗。
（2）气管插管气管插管时要将甲状腺下1cm-2cm左右位置的气管软骨进行环剪，环剪时的工具是手术剪，切口形状要为倒T型，要将气管口径剪开一半以上，剪好后将肺方向的气管内分泌物用棉签擦干净，擦净后即可插入气管插管，插入方向是肺方向。
插后为了防止插管脱离，要用粗线扎紧，并打结，打结位置在插管的侧管上。
二、家兔插管的注意事项1、操作时不要粗暴，不要伤害到家兔的甲状腺和气管两侧后的静脉。
2、软骨环间的气管组织血管较多，不要切。
家兔出现出血时要一边用湿纱布压，一边抬高兔台后部，出血时尽量不要做插管，等到血不出再做插管。
3、在插管前仔细观察气管内是否有内分泌物，有要及时清理。
插管后发现气管内有较多的内分泌物或血液，要将其在插管侧管处吸出，吸出时可使用细塑料管。
4、插管时要时刻注意家兔的呼吸，要定期放开被夹闭的Y型管软管，以防家兔出现人为的呼衰。
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
实验步骤
2 气管插管
1、切开倒“T”形切口：甲状软骨下第3~4软骨环处 2、插管及固定
头
4
5 心
注意事项
麻醉动物时,注射速度先快后慢, 边注射边观察动物麻醉指征。如麻醉过浅, 动物挣扎时可适量追加麻醉药, 切忌麻醉过深引起家兔死亡；
4麻醉成功标志：1、角膜反射消失
2、肌张力降低
5
3、呼吸减慢
4、疼痛反应消失
实验步骤
1 家兔捉拿、麻醉与固定
固定（台式）：
四肢用粗绳活结固定，拉直四肢，将绳打结
固定在兔台四周的固定木块上。 头用一根粗绳挑过兔门齿固定在兔台上。 4
5
实验步骤
2 气管插管
1、剪毛
2、做切口：沿颈中线从甲 状软骨下到胸骨上
实验内容
1 家兔捉拿、麻醉与固定 2 气管插管
实验步骤
1 家兔捉拿、麻醉与固定
捉拿： 右手抓兔颈部皮毛提起 左手托其臀部
使兔呈坐位，重量大部分 集中在左手
应避免的错误： 4 1、单提兔耳 25、捉拿四肢 3、提抓腰部、背部
பைடு நூலகம்
实验步骤
1 家兔捉拿、麻醉与固定
麻醉： 药量：1.5%戊巴比妥钠 2ml/kg 方法：注射耳缘静脉（由耳尖到耳根）
手术过程中操作应轻柔,尽量避免不必要的损伤和出血； 手术时, 切开颈部皮肤后, 尽量钝性分离, 以免损伤血管； 气管插管前，应注意止血，并将气管分泌物清理干净；
家兔基本手术操作实验报告
竭诚为您提供优质文档/双击可除家兔基本手术操作实验报告篇一：家兔解剖实验一、实验目的1.通过对家兔的外形观察、骨骼系统及内部解剖的观察，掌握哺乳类躯体轮廓、消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统和生殖系统的结构特点2.掌握哺乳纲动物的主要特征，理解其进步性特征3.熟练解剖动物的方法二、实验原理将家兔处死是利用静脉注射空气致死：向静脉注射空气后，进入血液形成空气栓，空气栓随血流回流至右心室，然后被送到肺动脉，造成肺栓塞，大面积的肺栓塞使人体不能进行气体交换，发生严重的缺氧和二氧化碳储留，导致猝死。
三、实验器材活家兔、解剖盘、酒精棉球、注射器、镊子、烧杯、手术刀、手术剪、骨钳、止血钳等四、实验步骤1、外形观察，处死家兔身体分为头、颈、躯干、尾和四肢五部分。
颈很短，躯干较长，背部有明显的腰弯曲。
前肢短小，有5指，后肢较长，具4趾。
尾短小，位于躯干末端，腹部腹面近尾根处有泄殖孔和肛门，肛门在后。
肛门两侧各有一个无毛区，提起此处皮肤，开口，打开皮肤。
取10ml注射器，抽入10ml空气，三个人按住兔子，用酒精棉球将其一侧耳外侧毛擦湿，注射空气，到静脉血管。
挣扎一会后死亡。
2、打开皮肤润湿腹部中间的毛，小心用剪刀从泄殖孔稍前方剖一横口，向上剪至颈部，用手术刀使皮肤和肌肉分离，将剥下的皮肤向左右尽可能拉开露出腹部。
3、开腹腔：原位观察膈、胰腺、肝脏、各系统观察，肾脏冠切从泄殖孔的切口处沿腹中线同样左右割开腹壁至胸骨剑突处，暴露腹腔。
先观察各器官的自然位置。
可观察到：胰腺：分散附着于（十二指肠）弯曲处的肠系膜上，为粉红色、分布零散而不规则的腺体。
胃：囊状，横卧于膈肌后面，入口称喷门，出口称幽门。
小肠：肠管长而细，分为十二指肠、空肠和回肠三段。
十二指肠呈“u”形，空肠和回肠界限不易区分。
大肠：分为盲肠、结肠和直肠三段。
盲肠为大肠的起始段，肠管最粗大，相当于一个发酵罐，其末端有蚓突，结肠表面有横褶，直肠细长。
膈肌：呈粉色，上面血多有放射状红色细丝肾脏：移开胃后，可在其下观察到两肾，分布于两侧，其前端内缘各有一小的淡黄色扁圆形为肾上腺，由肾门伸出的一条白色细管为输尿管，与肾血管、神经管相伴行，向后通入膀胱的背侧。
机能实验之家兔手术操作
机能实验之家兔手术操作1．皮肤切开：动物麻醉固定后，在切口沿线的中点两侧，分别用血管钳向两侧夹起皮肤，用手术剪在两血管钳之间的皮肤上剪一小口，将剪刀伸进切口，贴紧并挑起皮肤撑开剪刀以钝性分离皮下组织，然后小心剪开皮肤。
分离下面的组织避免使用剪刀，以免发生出血，尽可能作钝性分离。
2．家兔颈部手术：颈部手术主要包括气管插管、颈动脉插管、颈外静脉插管和分离颈部神经等。
（1）气管插管：先用水湿润局部毛发，再用粗剪刀剪去颈部手术部位兔毛，在麻*醉情况下沿颈部正中线切开皮肤5－7cm，分离皮下组织，于正中线分开肌肉，暴露气管，分离出气管，剔尽周围组织，于气管下穿线备用，在甲状软骨下约l cm处剪一倒“T”型切口，插入气管插管，并用线扎紧，再将余线绕气管插管的分又处再行结扎，以防滑脱。
（2）颈动脉插管：将上述切口边缘的皮肤及其下方的肌肉组织向外侧拉开，即可见在气管两侧纵行的左、右颈总动脉鞘，在鞘内，颈总动脉与颈静脉、颈迷走神经、降压神经伴行在一起。
可先将颈总动脉鞘分离出来，再从鞘内分离出颈总动脉，剔尽周围结缔组织，游离出长3～4cm的颈总动脉，尽可能向远心端游离，在动脉下穿2根线，用其中一根结扎远心端，用动脉夹夹住其近心端，结扎处与动豚夹夹闭间的颈总动脉长度约需3cm。
用眼科镊柄垫在颈总动脉下方，用眼科剪在远心端结扎线的近心侧0.3cm处的动脉壁上作一斜切口，切口约为管径的一半，然后将准备好的充满肝素溶液的动脉导管（事先在距导管口上方1.5cm处裹贴一白胶布）由切口向心脏方向插入动脉内。
用已穿好的线扎紧插入导管的血管，并将剩余线平行于导管拉直，与远心端结扎线打一死结，以拉住导管防止其滑脱。
使动脉插管与动脉保持在同一直线上，然后将动脉导管作适当固定。
（3）颈外静脉插管：颈部皮肤切开后，用左手拇指和食指捏住颈部左侧缘皮肤切口，其余三指从皮肤外向上顶起外翻，可清晰的看见位于颈部皮下，胸骨乳突肌外缘的颈外静脉。
沿血管走向，用玻璃分针钝性分离颈外静脉二侧的皮下筋膜，仔细分离3~5cm长，在血管的远心端穿丝线，在靠近锁骨端用动脉夹夹闭颈外静脉的近心端，待血管内血液充盈后用手术线结扎颈外静脉的远心端。
简述家兔支气管插管的实验过程
简述家兔支气管插管的实验过程家兔支气管插管是一种用于研究呼吸系统疾病和进行治疗的实验方法。
本文将对家兔支气管插管的实验过程进行简要描述。
进行家兔支气管插管实验需要准备实验材料和设备。
实验材料包括麻醉药物、家兔、氧气和气管插管。
实验设备包括麻醉器、呼吸机、监测仪器等。
在开始实验之前，首先需要将家兔置于麻醉器中，并使用适量的麻醉药物使其进入麻醉状态。
麻醉药物的种类和剂量应根据实验需要和家兔的体重来确定。
当家兔完全进入麻醉状态后，需要将其固定在实验台上，以确保操作的稳定性和安全性。
同时，需要将家兔的毛发剃除，以便于后续操作和观察。
接下来，需要使用手术刀在家兔的颈部做一个小切口，以暴露出气管。
然后，用手术镊子夹住气管，并用适量的生理盐水清洗气管口，以保持通畅。
在气管清洗完毕后，将插管器插入家兔的气管中。
插管器应该是干净的，并且尺寸适合家兔的气管。
插入插管的过程需要细心和耐心，以避免对家兔造成伤害。
当插管器插入气管后，需要通过连接插管器和呼吸机来维持家兔的呼吸。
呼吸机可以提供正常的呼吸气体和氧气，以确保家兔的呼吸功能正常。
在插管过程完成后，需要对家兔的呼吸进行监测和记录。
可以使用监测仪器来测量和记录家兔的呼吸频率、潮气量、呼气末二氧化碳浓度等指标，以评估家兔的呼吸功能。
实验结束后，需要将插管器从家兔的气管中取出，并对家兔进行恢复护理。
这包括清洁切口、止血、缝合伤口等步骤，以确保家兔的伤口愈合和健康恢复。
总结起来，家兔支气管插管的实验过程包括麻醉家兔、固定家兔、清洗气管、插入插管器、连接呼吸机、监测呼吸指标、取出插管器和恢复护理等步骤。
通过这个实验方法，可以研究家兔呼吸系统相关疾病，并为呼吸系统疾病的治疗提供参考。
动物实验的常用插管术
动物实验的常用插管术一、气管插管术气管插管的作用在于保证麻醉动物呼吸道通畅，清除气管内分泌物或异物，收集呼出气体进行实验分析等。
将动物麻醉后仰卧位固定在实验台上，充分暴露颈部，剪去颈前区被毛，于喉部下缘至胸骨上缘之间沿正中切开皮肤（切口长度家兔约5～6cm，狗约8～10 cm，大白鼠约2～3cm）。
用皮钳将皮肤向外侧牵拉，用止血钳钝性沿正中线纵向分离皮下组织，暴露颈前肌肉群。
气管位于颈部正中，胸骨舌骨肌与胸骨甲状肌背侧。
沿正中线顺肌肉走行方向用止血钳钝性分离肌肉，暴露气管。
从甲状软骨以下分离气管两侧及其与食管之间的结缔组织，游离气管约2～3cm，在其下方穿一丝线备用。
实验者左手轻提丝线，右手持手术刀于4、5气管软骨环之间切开一横切口，横切口约为气管圆周的1/3，再用手术剪向上纵向剪两个气管软骨环，纵切口约为0.5～0.7cm，从而形成“（倒“T”形）切口。
将气管插管由切口向肺端插入适当深度，以备好的丝线将插管与气管结扎在一起，然后将丝线绕于插管分叉处再作结扎固定，以防插管脱落。
二、颈总动脉插管术颈总动脉插管是将充满肝素或其他抗凝剂溶液的导管插入颈总动脉，多用于直接检测动脉血压的变化，采集动脉血样和放血，是机能实验最常用的技术。
动物的麻醉和固定、颈部剪毛、切开颈部皮肤并进行气管插管等操作与前面所述相同。
实验者以左手拇指和食指将一侧颈部皮肤及肌肉提起向外侧牵拉，其余三指从皮肤外面向上顶起，清晰暴露颈总动脉；右手持玻璃分针顺颈总动脉走行方向轻轻划开其周围的神经、结缔组织，游离所需动脉2～3 cm，在其下方穿两根丝线备用。
取直径适宜的动脉导管并将其连接三通管和压力换能器，检查其插口端是否光滑，确定无尖无钩，将导管和压力换能器一起充满肝素生理盐水，排尽压力换能器和导管内的空气，并将三通管置于“三不通”的位置。
用一根丝线结扎游离颈总动脉的远心端，用动脉夹夹闭其近心端，另一丝线置于结扎部位和动脉夹之间。
实验者以左手拇指、中指提起结扎线，食指自下方托起血管，右手持眼科剪在靠近远心端结扎处成45°角向心脏方向将颈总动脉剪一斜行剪口，剪口的大小约颈总动脉直径的1/3～1/2，将动脉导管顺血管切口向近心端插进约1～1.5cm，用丝线结扎动脉与动脉导管，并固定导管，以防导管滑脱。
家兔气管插管的操作方法
家兔气管插管的操作方法
家兔气管插管是一项技术性较强的操作，需要经过专业训练或医生指导才可以进行。
以下是家兔气管插管的一般步骤：
1. 首先将兔子固定在一个安全舒适的位置，可以用毛巾包裹住身体，只露出头部和颈部。
2. 使用一个口腔镜或一个手持口腔扩张器，打开兔子的口腔，以便能够看到兔子的喉咙。
3. 用一支注射器和一根硬质的塑料管（称为气管插管）来插入兔子的气管。
一般选用内径约为1.0-2.0毫米的气管插管。
4. 先确定气管的位置，一般在喉咙处有一个凹槽，气管就位于其中。
将注射器拔出，连上气管插管，用手固定口腔扩张器，尽力将气管插管插入兔子的气管中。
5. 一旦气管插管插入到了正确的位置，就可以将注射器插入气管插管的末端，注入适量的气体，以确定气管插管已经插入了兔子的肺部，并且兔子可以正常呼吸。
6. 操作完成后，需要及时将气管插管拔出，闭合兔子的口腔，用温水清理口腔内部，以避免感染的风险。
值得注意的是，家兔的气管比较脆弱，操作时需要非常小心，避免对兔子身体造成过多的创伤。
这项操作最好由兽医或经过专业训练的人员来进行。
家兔气管插管实验报告
家兔气管插管实验报告家兔气管插管实验报告引言：气管插管是一种常见的医疗技术，用于维持患者的呼吸道通畅。
在临床实践中，家兔常被用作实验动物，因其结构与人类相似，且易于管理。
本实验旨在探究家兔气管插管的操作方法和效果，以期为临床操作提供参考依据。
实验材料与方法：1. 材料：家兔、气管插管器、氧气供应装置、麻醉药物、消毒液等。
2. 方法：a. 准备工作：将实验器材进行消毒处理，保证操作环境的无菌。
b. 家兔麻醉：采用适量的麻醉药物对家兔进行麻醉，确保其处于无痛状态。
c. 插管操作：将家兔固定在手术台上，使用消毒液清洗家兔口腔和喉部区域。
然后，将气管插管器插入家兔口腔，经过喉部，直至气管。
确认插管位置后，连接氧气供应装置，确保气道通畅。
d. 监测与记录：实时监测家兔的呼吸频率、心率和血氧饱和度等指标，并记录相关数据。
实验结果与讨论：在本次实验中，我们成功地将气管插管器插入家兔的气管，并确保了气道通畅。
通过实时监测，我们发现家兔的呼吸频率和心率在插管后有所变化，这可能是由于插管过程中的刺激所致。
此外，我们还观察到家兔的血氧饱和度在插管后有所下降，这可能是由于插管引起的气道阻塞或通气不足所致。
针对这些结果，我们可以得出以下结论和讨论：1. 气管插管对家兔的生理指标有一定影响。
插管过程中的刺激可能导致呼吸频率和心率的变化，而气道阻塞或通气不足可能导致血氧饱和度下降。
2. 在临床实践中，医务人员应谨慎操作，以减少插管过程中对患者的刺激和不良影响。
3. 在插管后，应及时监测患者的生理指标，并采取相应的措施，以确保气道通畅和患者的安全。
实验的局限性和改进方向：本实验存在一些局限性，如样本数量较小、实验环境与临床环境的差异等。
为了提高实验的可靠性和适用性，我们可以采取以下改进方向：1. 增加样本数量，扩大实验规模，以提高实验结果的可靠性和代表性。
2. 在实验过程中，模拟更接近临床环境的操作条件，以更好地反映实际情况。
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药物对家兔血压的影响
步骤
1、麻醉：称重，耳缘静脉注射2%戊巴比妥钠1.5ml/kg，（注意尽量保留注射部位）眼睑反射消失，四肢无力。
注意事项：p98
2、固定家兔于手术台：打活结p85（实验结束请把绳子解下来，勿剪断）
3、剪毛，暴露手术视野：弯剪
4、手术：分离颈总动脉（先完全分离出气管，然后寻找颈动脉）
5、动脉插管p295，远心端一定结扎死结，扎牢固，防止动脉剪开时喷血，将换能器中充满肝素钠生理盐水（注意防凝）连接仪器装置（实验结束请将动脉夹保存好）
6、实验仪器校准，保存设置文件
7、记录一段正常血压曲线（记录收缩压/舒张压/心率）
8、兔耳缘静脉给药（用此法给药应保护耳缘静脉，防止之后无静脉注射部位）
8、按顺序给药，观察实验现象（注：给药后推注生理盐水1ml使药物全部进入体内；血压恢复稳定后再给下一个药物）
造成实验失败的原因主要有以下几个方面：（1）麻醉过深致兔子死亡或不能将兔子麻醉；（2）无从下手或弄得手术区域血肉模糊，使实验无法进行下去；（3）找不到颈总动（静）脉；（4）无法成功进行动脉插管（5）成功插入后脱出。
建议注意内容：
1家兔颈部手术实验步骤和相关注意事项
1.1手术总原则：思路清晰，有条不紊，小心翼翼。
1.2手术前准备：家兔的麻醉
麻醉方式：静脉注射。
注射位置：家兔耳缘静脉（耳朵背面较薄一侧），注射剂量：5ml/k g，多取5ml（不同体质的家兔对麻药的敏感性不同），麻醉程度：浅反射（角膜反射消失）；深反射消失（止血钳用力夹后脚趾尖无反应）。
1.3注意事项①注射器的安装和持针方式：针头斜面和注射器刻度面在一个方向上（持针方式见实验指导）。
②耳缘静脉的准备：进针前要使静脉充分充盈。
剪去或拔去静脉处兔毛以暴露之，用大拇指和食指捏住或用适宜的夹子夹住耳根部，另用手指轻轻敲打血管或用温热纱布擦拭。
进针：从血管远心端开始，将针头小心推进1/2长度，正常应无明显阻力且能感觉到针头在一狭小管道中行进，有时有回血。
④注射应缓慢。
如阻力明显要重新进针（可能刺穿血管）。
⑤不断检查家兔浅反射和深反射情况，防止其麻醉致死。
1.4家兔的固定：将麻醉好的兔仰卧位固定于兔解剖台上，使四肢与颈部充分伸展以便于手术。
请打活结p85（实验结束请把绳子解下来，勿剪断）
1.5剪毛用解剖剪剪去颈部甲状软骨下缘至胸骨上缘的兔毛，充分暴露手术区域。
2手术
2.1暴露气管
手术器械可选用手术刀或解剖剪。
方法：①用两把直止血钳在正中线对称的两侧提起皮肤，用剪刀剪开一小口，然后向前、向后依次切开皮肤7～10cm。
②皮下组织、肌肉层做钝性分离。
③用弯止血钳将气管与肌肉向深面作钝性分离。
2.2寻找白色、较粗的神经
用拇指和食指捏住皮肤和肌肉的边缘，其余三指从下向上顶起，在肌肉颜色的背景中，可看
到白色、较粗的一条神经为迷走神经（旁边有两条较细的神经，分别为交感神经和减压神经最粗、白色者为迷走神经；
较细，呈灰白色者为交感神经；
最细者为减压神经。
位于迷走神经和交感神经之间。
属于传入性神经。
其神经未梢分布在主动脉弓血管壁内。
）。
与之伴行的有一条颜色较深、更为粗大的管状结构为颈总动脉。
2.3游离颈总动脉
用弯止血钳或眼科镊游离颈总动脉。
用弯止血钳在颈总动脉近心端和远心端分别穿两条缚线，远心端结扎（器械打结），近心端留线备用。
准备插管：将换能器及插管中充满肝素钠生理盐水（注意防凝），学习三通的使用方法。
颈总动脉插管：用动脉夹在近心端缚线后夹闭颈总动脉。
用远心端缚线提起血管，左手食指垫于血管下方。
用眼科剪朝向心脏方向剪一小口（1/3～1/2血管直径为宜），迅速将动脉插管（润湿后，斜面向上）插入血管（进入一小段后，用拇指和食指捏住，不停旋转推进），用近心端缚线扎紧插管并在插管结节处再打一结固定。
插管困难时，可用器械辅助（弯止血钳、眼科镊），做好插管后，要先调对三通的开启方向，然后松开动脉夹(三通管的方向一定要正确), 松开动脉夹时，要先用力使夹张开，同时观察无漏血现象和其他意外情况，这才在尽力张开动脉夹的情况下，小心翼翼地将其退出血管。
连接仪器装置（实验结束请将动脉夹保存好），若因插管中有气泡而无信号，可向插管内推注少量的肝素钠生理盐水。
3. 实验及结果记录
3.1记录一段正常血压曲线（记录收缩压/舒张压/心率）
3.2兔耳缘静脉给药（用此法给药应保护耳缘静脉，防止之后无静脉注射部位）：按顺序给药，观察实验现象（注：给药后推注生理盐水1ml使药物全部进入体内；血压恢复稳定后再给下一个药物）。