痰液前处理
痰培养留取方法及注意事项
痰培养留取方法及注意事项一、痰培养的意义和作用痰培养是一种常用的临床检验方法，用于检测痰中的病原微生物，对于确定痰液中的细菌、真菌或病毒感染的类型和药物敏感性提供重要参考。
通过痰培养，医生可以选择合适的抗生素治疗方案，提高治疗效果，减少不必要的药物使用。
二、痰液的采集方法1.采集时间：最佳采集时间是早晨起床后，因为此时痰液较为集中，有利于检测。
2.采集前准备：患者应先漱口，以减少口腔中的细菌污染。
然后，深呼吸几次，以帮助痰液从呼吸道深部咳出。
3.采集方法：用无菌容器接住咳出的痰液，避免与容器外表面接触。
尽量采集新鲜的痰液，以免细菌在外界环境中繁殖。
4.采集量：一般要求采集3-5ml的痰液，以确保有足够的样本进行培养和检测。
5.存储和运输：采集后，应尽快送到实验室进行处理。
如果无法立即送达实验室，可以将样本存放在4℃的冰箱中，但不要超过24小时。
三、痰液培养的注意事项1.无菌操作：采集和处理痰液时，需要进行无菌操作，避免外界细菌的污染，以确保培养结果的准确性。
2.及时处理：痰液采集后应尽快送到实验室进行处理，以免细菌在外界环境中繁殖，影响培养结果。
3.标本数量：一般建议采集至少两个不同时间点的痰液标本，以增加病原微生物的检出率。
4.避免空气污染：在痰液采集和处理过程中，要注意避免与空气接触，以防止细菌的空气传播。
5.注意个体差异：痰液的性质因个体差异而异，有些人可能无法咳出痰液，此时可以尝试进行气管吸引或支气管镜检查等方法获取样本。
6.避免污染：采集痰液时，要避免将唾液、口腔分泌物等其他物质混入样本中，以免影响培养结果。
7.严格执行实验室操作规程：痰液培养需要在实验室中进行，操作人员应严格遵守实验室操作规程，包括佩戴防护手套、口罩等，以防止交叉感染。
四、痰液培养的常见细菌痰液培养可以检测到多种病原微生物，常见的细菌有： - 革兰阳性菌：肺炎链球菌、金黄色葡萄球菌、肺炎克雷伯菌等。
- 革兰阴性菌：大肠杆菌、铜绿假单胞菌、肺炎克雷伯菌等。
痰标本的正确采集方法
痰标本的正确采集方法痰标本的正确采集方法对于临床诊断和治疗具有重要意义。
正确的采集方法可以保证标本的质量，提高检测的准确性，为临床医生提供可靠的依据。
下面将介绍痰标本的正确采集方法。
首先，患者在采集痰标本前应该进行口腔清洁。
口腔清洁是为了避免口腔中的细菌和其他污染物污染痰标本，影响检测结果。
患者可以用温盐水漱口，或者用牙刷和牙膏进行口腔清洁。
接着，患者需要做好呼吸道的清洁。
清洁呼吸道可以有效地避免口腔和咽喉部的分泌物污染痰标本。
患者可以通过深呼吸、咳嗽或者使用雾化器等方法清洁呼吸道。
然后，患者需要准备好采集痰标本的容器。
一般情况下，医院会提供专门的痰杯供患者采集痰标本。
患者在采集痰标本前应该先将痰杯清洗干净并晾干，然后准备好标本袋和标签。
在采集痰标本时，患者需要做好充分的准备。
患者可以选择在早晨醒来后进行采集，因为这个时候痰液比较容易咳出。
患者需要深呼吸几次，然后用力咳嗽，将痰液咳出到痰杯中。
在采集的过程中，患者需要注意避免将口水混入痰液中，以免影响检测结果。
采集完痰标本后，患者需要将痰杯盖子盖紧，并在标本袋上填写好个人信息和采集时间，然后将标本袋密封好。
在送检之前，患者需要将标本袋交给医护人员，医护人员会将标本送到实验室进行检测。
总之，痰标本的正确采集方法对于临床诊断和治疗具有重要意义。
患者在采集痰标本时需要做好口腔和呼吸道的清洁，准备好采集容器，做好充分的准备，避免口水的混入，并在采集后及时送检。
只有做到这些，才能保证痰标本的质量，提高检测的准确性，为临床医生提供可靠的依据。
痰标本的处理
痰标本的处理1.中和离心法（用于改良罗氏培养剂）根据分枝杆菌细胞壁具有抗酸、碱的性质，使用NaOH溶液作用于痰液，外加入N-acetyl-L-cystein（NALC）作为消化剂，促使痰标本液化，然后接种于含有抗生素的液体培养基，以抑制被检标本中非分枝杆菌属细菌的生长，从而成功分离出样品中的分枝杆菌。
1）实验试剂（1）NaOH-NALC前处理液①取4gNaOH，溶于80ml蒸馏水，待全部溶解后加蒸馏水定容至100ml。
②取2.9g枸橼酸钠加入100mL蒸馏水配置备用。
③将①及②混合后高压蒸气灭菌，保存于2℃-8℃。
NaOH-NALC前处理液：取0.25g NALC（Sigma; 美国），加50mL③，此溶液须24小时内用完。
（2）PBS磷酸盐缓冲液，PH 6.8（0.067 mol/L）称取8g NaCl，0.2gKCl，1.44gNa2HPO4和0.24gKH2PO4，溶于980mL蒸馏水中，用盐酸调节溶液PH值至6.8，加蒸馏水定容至1L，高温高压蒸气灭菌。
（3）70%酒精（4）5%来苏2）操作步骤（1）吸取约5mL（不超过10mL）痰液加入带有螺旋帽的50mL离心管中。
（2）加入与标本等量的NaOH-NALC前处理液（不超过10mL），盖紧盖子。
（3）漩涡振荡20s-1min。
如果痰液仍很粘稠，可多加入一些前处理液，并重复振荡。
（4）室温静置15-20min（请勿超过20min，以防杀死结核菌）。
（5）加入PBS（PH 6.8）至45ml，3000 g离心15min。
弃上清。
（6）加入1ml左右PBS（PH 6.8），以制备成1-1.5ml的悬浊液，处理后的标本可接种至MGIT培养管进行液体培养，同时接种L-J中性培养基进行固体培养。
2.简单法（用于酸性罗氏培养剂）消化液为4%NaOH：取4gNaOH，溶于80ml蒸馏水，待全部溶解后加蒸馏水定容至100ml。
处理方法：（1）取痰标本，视标本性状加入1~2倍体积的4%NaOH于痰瓶中，拧紧螺旋盖，涡旋振荡器上振荡1分钟，使痰液充分匀化，室温放置：自加入NaOH 消化液起，整个处理时间应在15~20分钟。
痰标本的前处理
痰标本的前处理方法消化—除菌（美国CDC建议方法）1.N-乙酰-L-半胱胺酸-氢氧化钠法（NALC-NaOH）(使用3D培养仪，推荐)N-乙酰-L-半胱胺酸是一种黏液溶解剂，可用来快速地将痰标本消化，并除去杂菌， NaOH在痰标本中的最终浓度为1% 。
在标本处理液中乙酰半胱胺酸会很快地失去活性，因此消化液应每日新鲜配制。
消化液中会含有吸附了重金属离子的柠檬酸钠，它可以使乙酰半胱胺酸失去活性。
*所需材料N-乙酰-L-半胱胺酸-氢氧化钠溶液（NALC-NaOH）离心管，50ml培养基：琼脂培养基，参阅书中7H-10或7H-11；蛋黄培养基，查阅 Lowentein-Jensen(LJ) 或美国Trudeau学会0.067M磷酸缓冲液，pH6.8 或无菌蒸馏水。
0.2%牛白蛋白盐水溶液试剂准备1）将NaOH和柠檬酸钠混合均匀（见表一）放带有螺旋盖子的烧瓶中储存备用，当加入乙酰半胱胺酸后，此标本处理液应于24小时内使用，因为乙酰半胱胺酸久置后会失去液化活性。
表一 NALC-NaOH消化处理液的配制消化液体积 4%NaOH * 柠檬酸钠 2H2O ** NALC(ml) (ml) (ml) (克)50 25 25 0.25100 50 50 0.5200 100 100 1500 250 250 2.501000 500 500 5.00* 4.0克NaOH加到100ml蒸馏水中** 2.9克柠檬酸钠 2H2O(或2.6克无水柠檬酸钠)加到100ml蒸馏水中2)0.067M磷酸缓冲液，pH6.8储存液：(a ) 磷酸氢二钠：将9.47克无水Na2HPO4溶解于1升蒸馏水中。
(b) 将9.07克KH2PO4溶解于1升蒸馏水中。
pH6.8缓冲液：将50ml (a) 液与50ml (b)液混合，调整pH至6.8。
加入(a)液或b液可分别增加或降低溶液的pH值。
3)0.2%牛白蛋白液(使用3D培养瓶培养无须此试剂)2%储存液：将0.85克NaCL溶解在100ml蒸馏水中，加入2克牛白蛋白片断V，用旋涡振荡混匀，或用磁性搅拌器轻轻搅拌混匀。
痰标本的正确采集方法
痰标本的正确采集方法
痰标本的正确采集方法对于临床诊断和治疗非常重要。
正确采集的痰标本可以提高检测的准确性，有助于医生对疾病的诊断和治疗。
下面我们将介绍痰标本的正确采集方法，希望对大家有所帮助。
首先，选择合适的时间进行痰标本的采集。
最佳的时间是早晨起床后，因为这个时候痰液比较容易咳出，且含有较多的细菌和病毒。
其次，患者在采集痰标本前应该先漱口，以减少口腔中的细菌对痰标本的干扰。
其次，正确的姿势也非常重要。
患者应该坐在椅子上，身体略微前倾，双腿分开。
然后深呼吸几次，用力咳出痰液，尽量将痰液咳入干净的容器中。
在采集痰标本的过程中，患者应该避免将口水混入痰液中，以免影响后续的检测结果。
第三，采集好的痰标本需要尽快送到医院的实验室进行检测。
痰标本在室温下存放的时间不宜过长，最好在采集后的2小时内送到实验室。
如果无法在2小时内送到实验室，可以将痰标本放入冰箱保存，但不要冷冻。
最后，医护人员在接收到痰标本后，需要及时进行标本的处理和检测。
在进行标本处理的过程中，医护人员需要佩戴口罩、手套等防护用具，以免被感染。
检测结果出来后，医生会根据痰标本的情况进行诊断和治疗。
总之，痰标本的正确采集方法对于临床诊断和治疗至关重要。
正确的采集方法可以提高检测的准确性，有助于医生对疾病的诊断和治疗。
希望大家能够重视痰标本的采集方法，做到规范操作，以保障检测结果的准确性，为临床诊断和治疗提供更可靠的依据。
痰标本的采集和处理
痰标本的采集和处理一、检查项目痰液的细菌培养、真菌培养、结核菌培养、真菌涂片、结核菌涂片。
二、标本采集【标本采集前的注意事项】应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。
【标本送检指征】1.咳嗽、咳痰：痰液可为脓性、血性、铁锈色或红棕色胶胨样痰。
2.咯2.血：肺结核病人常痰中带血。
3.呼吸困难4.发热5.胸痛：当炎症病变累及壁层胸膜时，会发生胸痛。
*肺部感染的患者有25～50％可能发生菌血症，应同时作血培养。
【标本采集容器】一次性无菌留痰盒。
【标本采集方法】1.自然咳痰法：咳痰前，先用清水或漱口液反复漱口（为减少口腔正常菌群污染标本），然后用力自气管中咳出第一口痰于无菌容器内。
对于痰量少或无痰的患者可采用雾化吸入45℃10％NaCL水溶液，使痰液易于排出。
对咳痰少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，使其咳嗽。
2.气管镜采集法：用支气管镜在肺内病灶附近用导管吸引或用支气管刷直接取得标本。
3.胃内采痰法：无自觉症状的肺结核病人尤其婴幼儿不会咳嗽，有时将痰误咽入胃中，可采集胃内容物做结核分支杆菌培养。
4.管穿刺法：主要用于厌氧菌培养小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，用棉拭子深入咽部，小儿受到刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上。
【标本采集注意事项】采集时间：（1）以晨痰为好。
多数病人清晨痰较多，易于采集。
且清晨痰含有的病理成分较多，会增加培养的阳性率。
（2）最好在应用抗菌药物之前采集标本。
2.送检采集后应立即送检，以防止某些细菌在外环境中死亡。
做结核分支杆菌和真菌培养的标本如不能及时送检，可放4℃保存，以免杂菌生长。
【标本的送检地点】检验科微生物室*标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
痰标本的采集和处理
痰标本的采集和处理采集痰标本，听起来似乎有点儿尴尬，但其实这是一项非常重要的工作。
尤其在呼吸系统的疾病诊断中，痰的检测能够提供很多有价值的信息。
想象一下，你走进医院，医生告诉你需要进行痰标本的采集。
心里可能会有点儿紧张，但其实没什么好担心的，接下来我就跟大家聊聊怎么做这件事。
首先，采集前的准备工作是非常重要的。
你得确保自己身体状态良好，最好是在早上醒来后的时候，这时候痰液比较容易咳出。
很多人可能会说：“我不是很会咳嗽啊。
”其实不用太紧张，轻轻地深呼吸几次，慢慢咳出痰来就好。
咳嗽的时候，最好把气吸得深一点，然后用力咳出，像是把积压已久的烦恼都吐出来一样。
再说说容器，通常医院会提供一个干净的、专用的小瓶子。
一定要记得把这个瓶子洗干净，尤其是要避免手指接触到瓶口。
用力咳出的痰要直接吐到瓶子里，千万别弄到外面。
这样才能确保采集的样本是干净的，不被其他东西污染。
接下来，处理标本同样重要。
刚采集完的痰，如果不是马上送去检测，最好放在阴凉的地方，千万别暴露在阳光下。
因为阳光会影响样本的质量，这可是事关重大呀！如果能在短时间内送去检测，那是最好的，毕竟“时间就是生命”，对吧？有时候，我们还会遇到一些特殊情况。
比如，有些患者可能因为疾病而产生的痰液比较粘稠，咳不出来。
这个时候，可以考虑多喝水，保持身体的水分。
适量的水分能帮助稀释痰液，更容易咳出。
也可以试试热蒸汽，像是在浴室里，热气腾腾的环境有时候能刺激呼吸道，帮助咳出痰。
当然，有些人会觉得这样做不太舒服。
但我想说，没关系的，这些不适感都是暂时的，为了自己的健康，还是要忍耐一下。
为了检测结果更准确，有些医生可能会建议患者在采集前一天避免吃太油腻或辛辣的食物，这样也有助于痰液的采集和分析。
说到痰标本的处理，不能不提的是标本的保存和运输。
采集完后，记得把瓶子密封好，放在专门的标本袋里，尽量避免颠簸。
要知道，标本在运送过程中可不能受损啊。
许多医院都有专业的运输团队，会尽量保障样本的安全。
痰标本的采集方法
痰标本的采集方法痰标本的采集可用于许多疾病的诊断和治疗。
下面将详细介绍痰标本的采集方法。
一、痰标本的准备1.患者需要空腹，不要在进食饱和度的情况下采集痰液，否则可能会影响痰样本的准确性。
2.患者应该喝足够的水，以便产生足够多的痰液。
3.采集前应运用口腔漱洗水漱喉，以便清除口腔内的细菌、残饭、痂屑等。
4.采集工具需要事先准备好，包括一只洁净的容器、一只漏斗、一张面纸、一只手套、一只面罩和一只护目镜，以防止在采集过程中被感染。
5.由于痰液需要温度适宜，因此在处理痰液之前，可以为患者提供一支舒适的毛巾或毛毯，以保证舒适度。
6.痰样品应在采集后能够立即送到实验室进行检查。
1.咳嗽痰样患者需要深呼吸，尽可能使肺部充盈，之后快速猛烈地咳嗽，将所咳出的痰液储存在准备好的容器中。
重要的是确保完整的样本被收集，以便进行准确的分析。
2.人工痰样提供痰液样品的传统方法是通过一种称为“气雾剂治疗”的方法，即将气雾剂喷入喉部并在痰液收集器中收集。
在这种情况下，工作人员需要确保采集到足够的痰液样本。
3.支气管肺泡灌洗支气管肺泡灌洗是通过插入管子到肺部并将生理盐水注入肺部，然后通过将其吸出来来收集痰液。
虽然此方法可以获取大量的痰液，但它可能会影响肺的健康。
4.气管吸引气管吸引是通过使用一根长长的吸管将痰液从下呼吸道吸出的方法。
这是一种比较直接的方法来收集痰液，但需要专业的技能才能完成。
三、标本后续处理1.对痰样本进行标记，以便将其与患者信息相关联。
2.为了减少细菌、病毒和真菌的生长，必须将标本保持在舒适的温度下，并避免明亮的光线照射。
3.将标本放入一种特殊溶液中，以保持样本的完整性。
然后将标本送往实验室进行检验。
总体来说，痰标本采集是进行许多疾病诊断和治疗的重要工具。
通过正确的采集和后续处理，可以获得有用和可靠的痰液样本。
痰标本采集法操作要点
痰标本采集法操作要点
痰标本采集是一项重要的临床检验操作，能够帮助医生诊断和
治疗呼吸道感染和其他呼吸系统疾病。
以下是痰标本采集法的操作
要点：
1. 痰标本采集时间，最好在早晨醒来后进行采集，因为这时痰
液比较容易咳出，而且痰液中的细菌和病毒含量较高。
2. 采集前准备，在采集前，要先清洁口腔，以减少口腔细菌的
干扰。
可以用温盐水漱口，然后深呼吸几次，以帮助咳出痰液。
3. 采集容器，使用无菌的干净容器来收集痰液，通常是一个干燥、干净的容器，最好是带有盖子的容器，以避免痰液被外界污染。
4. 采集方法，深呼吸几次以增加痰液的分泌，然后用力咳嗽将
痰液咳出并直接咳入收集容器中。
避免将口水混入痰液中，以免影
响后续的检验结果。
5. 采集后处理，将盖子盖紧，确保容器密封，避免痰液外溢或
被外界污染。
标注好患者姓名、采集时间等信息，以便后续的检验
和分析。
6. 送检保存，尽快将采集好的痰标本送到临床检验科或医院实验室进行检验，或按照医生的要求进行保存和运送。
以上是痰标本采集法的操作要点，正确的痰标本采集可以提高检验结果的准确性，有助于医生做出正确的诊断和治疗方案。
呼吸机的吸痰操作流程
呼吸机的吸痰操作流程呼吸机（Ventilator）作为一种重要的生命支持设备，在医疗机构中被广泛应用于重症监护病房（ICU）、手术室、康复科等各个领域。
它能够为无法自主呼吸或存在呼吸困难的患者提供机械通气。
然而，长时间使用呼吸机不可避免地会导致患者产生呼吸道分泌物，这就需要进行吸痰操作，以维持患者的通气功能。
本文将介绍呼吸机的吸痰操作流程，确保操作准确迅速，以提高治疗效果。
一、术前准备1. 洗手：操作人员应首先进行手部卫生，彻底洗手并戴上干净的手套，以减少交叉感染的风险。
2. 器械准备：确保所有吸痰操作所需的器械齐全，包括吸痰管、吸引器、器械盒等。
所有器械应事先进行消毒和清洁。
二、选取合适时机1. 评估患者状态：在进行吸痰操作之前，操作人员应对患者的呼吸状态进行评估，包括呼吸频率、呼吸音等，以确定是否需要进行吸痰。
2. 注意指征：通常，当患者存在明显咳嗽或有痰音时，且气道分泌物较多，或者咳痰困难时，需要进行吸痰操作。
但需要根据医生的判断和患者具体情况来确定吸痰的时机。
三、吸痰操作流程1. 患者准备：将患者的头轻轻向一侧转动，用一块柔软的垫子或毛巾支撑好患者的下巴，使其头部保持自然直立的位置。
2. 操作人员准备：取下呼吸机面罩，将吸痰管插入连接呼吸机的呼吸回路相关接头，确认吸痰管贴合紧密。
3. 吸痰操作：- (1) 吸痰管插入：缓慢插入吸痰管直至患者咽喉处，遇到喉部痉挛可稍作停顿，等待患者镇静。
注意避免插入过深，以免引起气道刺激和出血等问题。
- (2) 吸引分泌物：用一只手握住吸痰管的容器端，用另一只手控制吸引器开关，将吸引器插入吸痰管的容器端。
同时，缓慢、均匀地吸引分泌物并逐渐拔出吸痰管。
注意吸痰杆的吸引力度要适中，避免损伤呼吸道黏膜。
- (3) 清洁吸痰管：吸痰操作完成后，应将吸痰管用生理盐水或清水进行冲洗，以保持其通畅和清洁。
然后，再次插入吸痰管并进行必要的次数的吸痰操作，直至分泌物较少或呼吸道通畅。
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样本的质量评价非常重要!
建议的痰涂片是应该这样：
1、脓细胞数量、上皮细胞与胞外正常菌群 数量与污染程度、 2、脓细胞胞内吞噬细菌/真菌孢子的情况， 3、炎性包裹物内细菌和真菌的存在情况、 脓细胞和炎性包裹物内的细菌/真菌的染色 特征、形态特征和排列特征等。
痰均质化
涂片镜检
1.白细胞内吞噬细菌与感染相关度高。 2.粘液丝缠绕或包裹的细菌可能为目的菌。 3.未发现有吞噬现象可结合： ������ 1）样本类型，样本质量 ������ 2）细菌特殊结构形态 ������ 3）传统病原菌的毒力强弱 ������ 4）菌群改变或异位大量定植等 ������ ----------------------------来综合考虑受试目标菌。
洗涤方法
1、把10-15 ml 灭菌生理盐水加入痰标本中， 剧烈振荡5-10 s‘， 2、然后用无菌吸管好把上清吸掉，以同样 的方法反复2次， 3、最后将剩余的痰涂片。
洗涤时遇到的问题
1、洗涤后是挑取最脓的部分，很多时候由于痰液过于粘 稠不容易完全将其打散的，使用接种钩勾住最脓的部分， 用痰杯杯盖作切压动作，将脓性部分切下，再放入另一个 杯中再次洗涤；关键是要选出最脓的部分，放到显微镜下 应该全部是成团的脓细胞。 2、对于灰白色痰，一般没有多大意义，直接用接种环挑 取一环置显微镜下观察，不合格的请在清单上写明；有些 虽然没有上皮细胞但细胞主要是些大体积的细胞（巨噬细 胞和肥大细胞），干燥固定后用瑞氏染色，报个细胞比例 即可。 3、痰标本上的泡沫多为唾液，有些甚至还混了鼻涕。真 正的来自肺部的脓性团块没有泡沫存在的。 4、洗涤完成后，用1%胰酶消化。所有挑取动作均使用接 种钩。
痰液前处理
痰液的处理流程
目测筛选——洗涤——涂片镜检——液 化——接种——读碟（即观察菌落形 态）——菌落涂片——纯培养——初步分 群试验——系统鉴定——药敏——耐药分 析——综合报告——临床反馈。
洗涤
Hale Waihona Puke 鳞状上皮分布于呼吸道的上端：口腔、咽喉、鼻腔、气管 与喉接壤的地方，这些地方是携带正常菌群的。 所以一旦痰液被上呼吸道的分泌物严重污染时痰液中就会 混入大量的鳞状上皮和正常菌群（菌群就有G+四联状排 列的球菌，G+链状排列的球菌、G+粗而长的杆菌、G+ 棒状杆菌；G-双球菌、G-细小杆菌、G-弯曲的杆菌、....... 当然还有真菌孢子），但由于痰液从气管中出来后在咽喉 停留的时间极短，这些细菌只是简单的粘附在痰块的外表， 并不会进入到重重包裹的结节状或胶冻状脓痰包裹物中， 更不会进入脓细胞中，所以痰液的洗涤才能奏效，目的就 是最大程度的去除正常菌群。
痰均质化法以用胰酶均质化为多见。其方 法为向痰液内加等量的pH 7.6 的1%胰酶溶 液，放置37℃， 90 min 即能使痰被均质化， 而对细菌培养无甚影响。
谢谢！