检验标本采集规范

合集下载

检验标本的采集

检验标本的采集

检验标本的采集检验标本的采集⼀、标本的正确采集标本采集必须符合2个条件,即必须满⾜检测结果正确性的各项要求和检测结果必须能真实地反映检验对象当前病情,避免⼲扰因素的存在。

⼆、标本的贮存标本采集后尽快送⾄实验室,若不能及时送检,已采集的标本要按检验规定的贮存条件,如室温、冰浴、温浴或防腐贮存,将标本直⽴置于稳定、⼲燥、避光、密闭的环境中,避免振摇,以免标本遗洒或溶⾎影响检测结果。

三、标本的运送必须保证运送后标本所分析的结果与刚采集标本后分析的结果⼀致。

四、标本的签收临床⼯作⼈员从⼝才采集标本并将标本从临床运送到实验室及实验室⼈员接收临床标本,均应按标准化要求进⾏,做到认真核对,包括标本来源、标本属性、检查项⽬、标本采集和运送是否合乎要求等,标本送出⼈员和标本接收⼈员都要做认真的记录并签字存档。

五、标本的处理1、实验室接收标本后应及时正确地予以处理,否则会影响检测结果的准确性。

2、如果取⾎后未尽快转送或分离⾎清、⾎浆,⾎清与⾎块簪时间接触可发⽣变化。

3、实验室接收标本后处理应注意事项:(1)、时间:实验室接收标本后应尽快予以分类和离⼼。

①、促凝标本应尽早处理,可在采⾎5-15分钟后离⼼;②抗凝标本可采⾎后⽴即离⼼;③⾮抗凝(⽆促凝)标本采⾎30-60分钟后离⼼;④抗凝全⾎标本(全⾎细胞分析、ESR等)不需要离⼼。

(2)、温度:⼀般标本为室温(最好是22-25℃)放置;冷藏标本(对温度依赖性分析物)应保持在2-8℃直到温度控制离⼼。

(3)、采⾎管放置:应管⼝(盖管塞)向上,保持垂直⽴位放置。

(4)、采⾎管必须封⼝:管塞移去后会使⾎PH改变,影响检测结果,封⼝可以减少污染、蒸发、喷洒和溢出等。

六、分析前的可变因素1、⽣物因素:可引起所检测物质在体内的变化,此种变化与检测⽅法⽆关,分为可变的和固定的⽣物因素。

2、⼲扰因素:在收集和分析标本过程中,⼲扰因素常导致分析结果与被测物真实浓度不符。

七、标本采集的基本原则遵照医嘱采集各种标本均应按医嘱执⾏。

检验标本采集与处理管理制度

检验标本采集与处理管理制度

检验标本采集与处理管理制度一、背景介绍随着医学技术的快速发展,检验标本的采集与处理成为了医学检验中不可或缺的重要环节。

为了确保检验结果的准确性和可靠性,建立一套科学、规范的管理制度就显得尤为重要。

本文将针对检验标本采集与处理的管理制度进行论述,旨在提高医学检验的质量与效率。

二、采集标本的要求1. 采集时间:根据不同的检验项目,确定合适的采集时间。

例如,血液检验一般在晨起后采集最佳,而尿液检验则应采集首次排尿后的标本。

2. 采集器具:采集器具应具备一次性使用、无细菌和无毒性的特点,以避免交叉感染和误差产生。

3. 采集部位:根据检验项目的不同,选择合适的采集部位。

例如,血液检验常用的采集部位有指尖、前臂等。

三、采集标本的步骤1. 患者准备:告知患者标本采集的目的和重要性,确保患者理解并配合采集过程。

2. 采集前消毒:采用适当的消毒液进行标本采集部位的消毒,以防止细菌感染。

3. 采集过程:按照规定的步骤进行标本的采集。

例如,血液采集时可以选择适当的针头并从静脉或指尖抽取血液。

4. 采集后处理:采样完成后,及时将标本放置在干燥、阴凉的环境中,防止样本污染和变质。

四、标本处理与运输1. 采集后处理:对于不同的检验项目,标本的处理方法也有所不同。

例如,血液标本需要离心分离血浆或血清,尿液标本需要进行适当的酸碱调节。

2. 标本保存:标本保存的时间和条件应根据检验项目的要求进行设置。

一般来说,血液标本可以保存在低温冰箱中,而尿液标本则需要保存在阴凉处。

3. 标本运输:标本需要在规定的时间内送到检验科室,以确保检验的准确性。

运输过程中应注意避免温度过高或过低等不良影响标本质量的因素。

五、记录与管理1. 标本信息记录:对每个标本进行准确、全面的信息记录,包括患者姓名、性别、年龄、标本号码等。

2. 标本储存管理:建立定期检查标本储存条件的制度,保证标本的长期保存质量与安全性。

3. 质量控制与评价:建立质量控制制度,定期对采集与处理进行质量评价,并及时调整和改进工作流程。

标本采集要求及注意事项

标本采集要求及注意事项

标本采集要求及注意事项标本采集是医学检验工作的重要环节,正确的标本采集能够保证检验结果的准确性和可靠性。

下面是标本采集的要求及注意事项。

一、标本采集要求1.标本应在合适的时间采集:在采集标本之前,应了解相关检验项目的采样时间要求,避免采集不及时或过早的标本,影响结果的准确性。

2.避免标本污染:采集标本时,应注意避免标本的污染。

使用无菌手套和消毒用品进行操作,避免与其他物品接触,防止交叉感染。

3.采用合适的容器和保存方式:根据检验项目的要求,选择合适的容器进行采集,保证标本的完整性和稳定性。

同时,采集完标本后,应根据具体项目的要求,选择合适的保存方式和温度进行保存。

4.标本采集应充分:采集标本时,应采集足够的量,以保证后续检验的需要。

一般情况下,标本的量不宜少于检验项目要求的最低标本量。

5.采集标本时应注意适当顺序:在进行多项检验时,应按照一定的顺序进行标本采集,避免互相干扰和污染。

一般推荐先采集无菌标本,再采集非无菌标本。

二、标本采集的注意事项1.采集前应了解相关信息:在实施标本采集前,应充分了解相关信息,包括检验项目的要求、标本采集的注意事项和操作规范等,避免操作错误和不当。

2.标本采集前须洗手并佩戴手套:采集标本前应用肥皂和流动水充分清洗双手,并在采集时佩戴无菌手套,避免引入细菌和其他污染物。

3.采集位置应清洁:标本采集前应用消毒液清洁采集位置,保持干净和无菌状态,避免污染标本。

4.采集正确位置:在标本采集时,要准确找到采集部位,确保标本的准确性。

如血液标本的采集,应准确选择相应的静脉或毛细血管位置。

5.采集方法正确:根据具体标本的采集方法,进行正确采集。

对于血液标本,应按要求选择合适的针头和穿刺部位,避免疼痛和出血。

6.采集完标本后应妥善处理:采集完标本后,应及时妥善处理标本。

对于有特殊要求的标本,应按照要求进行处理和保存,确保标本的完整性和稳定性。

7.标本采集后应送检:采集完标本后应及时送检至检验科室,避免标本在途中受到污染或失效。

临床检验标本采集规范

临床检验标本采集规范

临床检验标本采集规范一血常规检验标本1 用EDTA-2K~ml抗凝EDTA抗凝管、紫色帽采血;2 注意事项:A 按抗凝管刻度准确采血至2ml;B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次,不可用强力震荡,以免造成溶血;C 采血后尽快送检为保证结果准确,必须在2h内完成检测;二红细胞沉降率血沉、ESR检验标本1 静脉采集枸橼酸钠109mmol/L,即L抗凝血枸橼酸钠抗凝管、黑色帽;2 注意事项:A 单独采1管血,按抗凝管刻度准确采血至2ml抗凝剂:全血=:;B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次,不可用强力震荡;C 采血后尽快送检为保证结果准确,必须在2h内完成检测;三凝血检测PT、APTT、Fbg、TT、D2-聚体标本1 静脉采集枸橼酸钠109mmol/L,即L;抗凝剂:全血=:抗凝血枸橼酸钠抗凝管、蓝色帽; 注意事项:A 单独采1管血,按抗凝管刻度准确采血至2ml;B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次,不可有凝块;C 采血后尽快送检为保证结果准确,必须在2h内完成检测;D 空腹采血餐后脂血会影响检验结果;四血型与交叉配合标本1用EDTA-2K~ml抗凝EDTA抗凝管、蓝色帽采血;2注意事项:A 按抗凝管刻度采血至2~3ml;最好单独采血,便于标本保存;B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次,不可用强力震荡,以免造成溶血; 五血流变检查标本1 用肝素钠抗凝管肝素钠、绿色帽2 注意事项:A 按抗凝管刻度采血至4~5ml;B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次,不可用强力震荡,以免造成溶血; 六尿液常规检查标本1 住院病人尽量留取晨尿安静状态下留取清晨第一次尿;2 门急诊病人可留取随机尿,但结果受多种因素影响;3 尿液采集于洁净尿杯中,不可使用其它未经洗涤的器皿如药瓶、试剂瓶等;标本留取后尽快送检为保证结果准确,必须在2h内完成检测;七尿液特殊检查标本1 尿液成分定量检查应根据检查目的选择并在检验科领取防腐剂;A 尿爱迪氏计数或3h计数:甲醛40%,5ml/L尿液;3h和12h尿沉渣计数的留尿时间分别为5:30-8:30和20:00-次日8:00;B 尿蛋白或尿糖定量:甲苯,5~20ml/L尿液;C 尿17-羟、17-酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等:浓盐酸,10ml/L尿液;2 尿稀释浓缩试验:试验日正常进餐,上午8点排尿弃去,没隔2h留尿一次,至晚上8点共六次标本;晚8点至次晨8点为夜尿,收集于一个容器中,分别标记时间后送检; 八粪便常规检查标本1一般应为新鲜的自然排出的粪便3~5g,必要时可肛试子取出,但需注明;2样品置于洁净容器中,最好用带盖塑料盒;3 粪便应选取含脓、血、粘液等异常成分进行检查;4做隐血试验时,应嘱病人检查前3天禁食肉类、含动物血的食物;九浆膜腔积液检查标本1标本一般由临床医师无菌穿刺采取;2送检标本量:常规检查、生化检查、细胞学检查各留取2ml;细菌学检查用无菌管采集标本,结核菌检查留取10ml;3标本采集后必须立即送检,否则可因标本凝固、细胞变性等导致标本无法检测或结果不准确;4用于细胞学检查时,可在标本中加适量EDTA抗凝,但还需留1管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性;十临床化学检验标本1一般生化检查肝功、肾功、血脂、血糖、免疫、电解质、心肌酶等留取不抗凝血红色帽、真空负压管,采血量视检查项目多少而定,一般为4~5ml;2糖化血红蛋白需用EDTA抗凝管,操作规程同血常规标本;3血钾检测标本须立即送检,2h内完成检测;4空腹采血;如为餐后标本,应在申请单上注明;十一临床免疫检验及化学发光检验标本1一般免疫学检验乙肝病毒、丙肝病毒、HIV、梅毒螺旋体、结核、自身免疫病等和化学发光检验各种激素、肿瘤标志物等留取不抗凝血红色帽、真空负压管,采血量视检查项目多少而定,一般为4~5ml;2严格按生物安全有关规定采血;3空腹采血;如为餐后标本,应在申请单上注明;十二微生物学检验标本1标本采集、运送、验收和处理注意事项①标本采集A 申请单标记必须清楚姓名、性别、年龄、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等,以便实验室合理选用培养基;B 尽量在抗生素应用前采集标本;C 标本采集应严格执行无菌操作;D 采集标本的容器必须经灭菌处理或使用一次性无菌专用容器;②标本运送A 标本采集后尽快送微生物室;B 标本采集后在室温下超过2h未送达实验室,视为不合格标本;③标本验收A 实验室只能接受和处理合格标本;B 实验室对不合格标本退回时,须注明原因,并及时与临床联系;2 微生物检验标本采集和处理①尿液标本采集和处理:通常留取晨起第一次尿液,及时送检,并保证2h内接种;不能及时送检时,标本应置冰箱保存,并于8h内送检;怀疑沙门氏菌感染时,应于发病2周左右采集标本;怀疑钩端螺旋体感染时,应于发病后2周左右采集标本;常用的标本采集方法如下:A 中段尿采集法:成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部,再用灭菌水冲洗尿道口,然后排尿弃去前段尿液,于带盖的无菌试管中留取中段尿液5~10ml;B 导尿法:用导尿管导取5~10ml尿液于无菌试管中;长期留置导尿管者应更换导尿管留尿;留置导尿时,用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口,用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检,不可采集尿液收集袋中的尿液送检;C 其它方法:膀胱穿刺或肾盂尿采集法须由临床医师采集;②粪便标本采集和处理A 采集时间:腹泻患者处于急性期,尽量在用药前采集粪便;怀疑伤寒患者在发病两周以后采集粪便;怀疑霍乱时应立即采集粪便送检;B 采集方法:一般患者,取新鲜粪便的黏液、脓血或絮状物等有意义成分2~3g或1~3ml,盛无菌容器内送检;难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿,可用直肠试子采集标本,再插入灭菌试管中送检;③痰及下呼吸道标本采集和处理A 自然咳痰法:晨痰为佳;先嗽口,清洁牙齿和口腔;再用力咳出呼吸道深部的痰;痰量不得少于1ml;咳痰困难者可先做雾化处理;B 小儿取痰法:用弯压舌板向后压舌,将试子深入咽部,小儿因压舌板刺激引起咳嗽,喷出的肺或气管分泌物粘在试子上送检;C 支气管镜、支气管穿刺、支气管肺泡灌洗等采集法:由临床医师实施;④血液及骨髓培养标本A 抗生素治疗前,严格无菌静脉采血8~10ml儿童1~4ml;骨髓1~2ml;B 无菌注入专用培养瓶中送检;C 如已用抗生素不能停用时,可在48h内分别于下次抗生素使用前,多次采集血液标本送检;D 疑为心内膜炎时,为提高阳性检出率,可酌情不同部位、不同时间多次采血送检;⑤脑脊液培养标本A 怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液,最好在抗生素使用前采集;B 无菌腰穿采集脑脊液1~2ml,立即送检;⑥穿刺液培养标本A 包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等;B 在抗生素使用前采集或在停用抗生素2~3天后采集;C 无菌穿刺采集,标本量不少于1ml;D 为防标本凝固,可在无菌盛器中加入适量灭菌肝素;⑦胃液及胆汁培养A 采集方法:抽取空腹胃液5ml,置无菌管内送检;胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁5ml,置无菌管内送检;B 标本采集后必须立即送检;⑧脓汁和病灶分泌物培养A 标本采集前,先对病灶周围消毒,然后用无菌方法采取脓汁或病灶分泌物或组织;B 标本采集后立即置无菌管内送检;⑨眼、耳、鼻、咽试子分泌物培养标本A 用无菌试子常规采集标本;B 标本采集过程中应注意避免被粘膜上的正常菌群污染;C 标本采集后连同试子一起置无菌管内送检;⑩泌尿生殖道培养标本A 尿道分泌物:清洗尿道后采取尿道溢出的脓性分泌物,或用无菌试子插入尿道2~4cm处轻轻转动后取出,置无菌试管中立即送检;B 阴道、宫颈分泌物:通过阴道扩张器,用灭菌试子采取阴道口或宫颈管1~2cm处分泌物,置无菌试管中送检;C 前列腺液:清洗尿道、冲洗膀胱后用前列腺按摩法采集前列腺液于无菌试管中,立即送检;D 精液:受检者应5天以上未派精,清洗尿道后用手淫或体外排精法,射精于无菌试管中立即送检;E 溃疡分泌物:灭菌生理盐水清洗患处,用无菌试子取其边缘或基底部的分泌物,置无菌试管中立即送检;⑾烧伤感染培养标本烧伤12h后用无菌棉试子采集标本;要注意从多个创面取样;烧伤严重感染时易发生败血症,创面取样的同时应采集血样送做血培养;⑿真菌感染培养标本A 浅部真菌感染标本采集:皮癣者常规消毒皮肤,从皮损边缘刮取鳞屑,置无菌平皿中送检;皮肤溃疡则采集皮损周围脓汁或组织;毛发则采集其根部折断处,至少5~6根送检;指趾甲:消毒指趾甲并去掉其表面部分,取可疑病变部分,用刀片修成小薄片5~6片,置无菌容器中送检;B 深部真菌感染标本采集:血液:无菌采血8~10ml,注入血培养瓶中,立即送检;如不能立刻送检时血培养瓶应放室温,但不可超过8h;脑脊液:采样量不少于3ml,分别注入两支无菌试管中送检一支做真菌培养和墨汁染色,一支做普通培养;呼吸道及泌尿生殖道标本:采集方法同普通培养;⒀厌氧菌感染培养标本A 标本采集:严格执行无菌操作,避免标本污染和与空气接触;用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽取脓液;抽出液体标本后,要尽快排除注射器内的空气;B 标本运送:标本采集后不得冰箱储存,必须尽快半小时内送检;标本运送可采用注射器已驱氧或含运送培养基的无氧小瓶或厌氧罐;。

检验标本采集图文

检验标本采集图文

检验标本采集图文一、前言检验标本采集是临床检验工作的重要环节,是确保检验结果准确可靠的关键步骤之一。

正确的采集标本可以提高检验结果的准确性、稳定性和可靠性,同时也能减少病人的痛苦和不适感。

本文旨在介绍常见标本的采集方法和注意事项,以及一些常见的错误和如何避免这些错误。

二、血液标本采集1.血液采集器材采血时需要的器材有:种类不同的针头、带有不同颜色的管子、绷带、消毒液、消毒棉球、手套、血压计、检验单等。

2.采血步骤1.严格执行手卫生规范,戴上手套;2.选择适当大小的血管,用酒精消毒,让病人用力握拳,并在上臂或前臂上套上绷带,以增加血管充盈度; 3.穿刺时要快速、准确、稳定; 4.插入后,让血液自然流入; 5.采完后拔出针头,给病人轻轻按压穿刺部位,消毒棉球盖住穿刺部位,避免渗血; 6.将血液标本倒入带有不同颜色的管子中,将管子打上标签,将检验单一同放入袋中。

3.常见错误•旋转管子时过慢或者过快,都会导致凝血时间延长。

•抽血时插针过深,或者是针头与针管脱离不紧,容易导致血漏、瘀块和血栓形成。

•刺破并血肿,后处理不当会导致肿块的发生。

三、尿液标本采集1.尿液采集器材采集尿标本需要的器材有:尿杯、盖子、尿液收集器、消毒液、消毒棉球、标签等。

2.采尿步骤1.与患者说明采集尿液的目的,告知如何进行采尿;2.让患者浴净或者用温水清洗外阴后,用干净的毛巾擦干,以避免杂质或者污染; 3.让患者用手将外阴分开,将净尿杯对准外阴,尽量避免碰触到外阴部; 4.当膀胱充盈时,用尿液收集器接住尿液,并盖好盖子; 5.用消毒棉球清洁下巴或大腿内侧等处; 6.在尿液杯或者尿液收集器上打上标签,并填证明上的各项内容。

3.常见错误•收集的尿标本量少,特别是第一泌尿,低于规定标准容量,可能导致检验结果偏低或者无法检查。

•收集到的尿标本混杂有细菌、皮肤污染、阴道分泌物等,可导致检验结果异常误差增大。

•使用尿桶或尿瓶来收集尿液时,需要及时将尿液装入尿杯中,避免长时间存放与空气接触。

标本采集要求及注意事项

标本采集要求及注意事项

标本采集要求及注意事项标本采集是医学检验的重要环节,准确有效的标本采集对于检验结果的准确性和可靠性具有重要的影响。

以下是标本采集的要求及注意事项:一、采集前准备:1.了解标本采集的目的和要求,根据检验项目的不同,采用相应的采集方法。

2.检查采集工具和采集容器的完整性和清洁情况,确保其适用于标本采集。

3.确保采集者具备相关的技能和知识,了解标本采集的操作流程和安全要求。

二、采集环境:1.采集环境要保持清洁、整洁,无臭味和异物干扰。

2.保持采集室的温度适宜,避免影响标本质量。

三、采集时间:1.采集时间要根据不同的检验项目进行调整,确保标本采集在最合适的时机进行。

2.遵循采集时间的要求,例如空腹标本、随机标本和定时标本等。

四、标本采集位置:1.根据相应的标本采集部位选择合适的标本采集位置,例如静脉采血时选择静脉输液部位或静脉反压较小的部位。

2.标本采集位置要清洁,避免有污物或异物对标本质量造成影响。

3.采集时要避免静脉打扰,例如尽量不要在注射或静脉采血处采集。

五、采集方法:1.根据不同的标本采集方式选择合适的采集方法,例如静脉采血、切口采血或穿刺采血等。

2.采血时要根据个体情况调整采血速度,避免快速采集造成细胞破坏。

3.保持采集设备的清洁和稳定,避免感染或造成误差。

六、标本容器:1.标本容器要符合所需标本的特殊要求,例如抗凝剂、添加剂和保存液等。

2.针对不同标本采集而采用不同的标本容器,根据要求选择合适的容器。

七、采样量:1.根据不同的检验项目确定采样量,确保标本采集的充分和准确。

2.保持标本采集量的一致性,避免过量或不足对结果造成影响。

八、采集顺序:1.根据标本的特殊要求和不同检验项目的优先级确定采集顺序,避免受到其他标本的污染或干扰。

九、采集过程:1.采集者要戴好手套,保持清洁,避免交叉感染。

2.采集时要注意避免空气污染和氧化,尽量减小标本的氧化损伤。

3.无菌采集时要注意消毒和封闭标本容器,避免细菌污染和标本液流失。

临床检验标本采集规范

临床检验标本采集规范

临床检验标本采集规范1. 引言临床检验是医生诊断和治疗疾病的重要工具之一,而标本的采集过程和质量直接影响到检验结果的准确性和可靠性。

为了确保标本采集的规范性,提高临床检验的质量和准确度,本文将介绍临床检验中常见标本的采集规范。

2. 血液标本的采集规范2.1 静脉血采集规范•患者应保持安静,并在采集前至少休息15分钟。

•采用专业护士或技术人员进行采集,必须消毒皮肤。

•选择适当的静脉穿刺部位,并确保穿刺点干燥。

•使用无菌注射器和采血针采血,遵循穿刺技术和穿刺角度要求。

•采血时要逐渐放开缚带,以防止血液淤积。

•采血管要避免细菌污染和血栓形成,不得抽血过多。

•血液采集完成后,立即停止采血,并正确处理采血设备。

2.2 动脉血采集规范•动脉血的采集通常由经验丰富的医生或专业技术人员进行。

•应仔细选择采集部位,并确保部位皮肤无明显感染或瘢痕。

•采用无菌采血针和注射器采集动脉血。

•术前与患者说明术前准备和可能的疼痛感。

•采集动脉血时要注意采血针的角度和深度,避免损伤周围组织。

3. 尿液标本的采集规范3.1 一般尿液采集规范•使用干净的尿杯进行尿液采集。

•慎重选择采集时间和采集方式。

•严禁将外界杂质或水分进入尿液标本。

•采集前要进行适当的局部清洁,女性要避免采集期间的经期。

3.2 尿液分析标本的采集规范•采集首末尿,即排尿前尿与排尿后尿。

•采集的尿样应在2小时内送达实验室进行检测。

•采集时尽量收集尿液中段部分,以避免采集过多的表皮细胞或残留尿液。

4. 粪便标本的采集规范4.1 粪便标本的采集方法•采用无菌容器收集粪便标本。

•采集前要确保患者肛门及周围清洁,避免尿液和外用药物污染。

•采集粪便时要避免掉落和外界污染。

•采集的粪便标本应尽快送达实验室进行检测。

5. 结论临床检验标本的采集规范对于确保检验结果的准确性和可靠性至关重要。

本文介绍了常见标本(血液、尿液、粪便)的采集规范,并提供了一些基本的操作指导。

作为临床医生或检验人员,必须严格按照标本采集规范来进行操作,以确保检验结果的可靠性和准确性。

检验科样本采集操作规范

检验科样本采集操作规范

检验科样本手记操作规范1. 背景与目的为了确保医院检验科样本手记的质量与安全,规范操作流程,提高检验结果的准确性和可靠性,特订立本规章制度,以规范检验科样本手记工作。

2. 适用范围本规章制度适用于医院检验科全部人员,包含医生、护士和试验室技术人员等相关工作人员。

3. 术语和定义•检验样本:指供检验用的人体物质,如血液、尿液、组织、细胞等。

•样本手记器具:指用于手记检验样本的器具,如注射器、采血管、手记盒等。

4. 手记前的准备4.1 严格遵守手卫生原则,勤洗手。

每次手记样本前,应用肥皂和流水洗手,或使用手部消毒液彻底清洁双手。

4.2 检查手记器具是否完好,符合使用标准。

如有发现破损、过期等情况,应立刻更换,并向上级报告。

4.3 依据患者信息确认样本手记所需的器具,如种类、数量等,并准备充分。

4.4 建立样本手记记录,记录患者姓名、病历号、采样时间、采样部位等信息。

4.5 检查采样部位是否合适,如有患者特殊情况,应征得患者或家属同意,并在采样记录中说明原因。

5. 采样操作步骤5.1 向患者及其家属做好必需的解释和沟通,以减少患者的紧张情绪。

5.2 选择合适的采样部位,如手记血液样本则应选择适当的静脉手记点,手记尿液样本则应选择适当的尿液收集容器。

5.3 手记前进行标本容器、采样器具、标签等确实认,保证清楚、准确的样本信息记录。

5.4 遵从无菌操作原则,使用一次性采样器具,确保采样操作的无菌性。

5.5 手记血液样本时,使用正确的手记方法,保证手记的血液量充分,并确保手记时不产生气泡。

5.6 手记尿液样本时,引导患者正确收集,避开污染,确保样本的完整性。

5.7 手记其他样本时,依据具体要求进行操作,如组织、细胞等。

5.8 手记完样本后,妥当处理采样器具和废弃物,保持采样现场的清洁与乾净。

5.9 样本手记完成后,再次核对样本信息的正确性,如采样时间、采样部位、患者信息等。

5.10 样本手记员签名确认并将样本送至相应的试验室,确保及时处理。

  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

检验标本采集规范一、常规标本采集规范(一)静脉血标本采集规范1.真空采血标本对应真空管2.理想的采集血标本的时间是早晨7∶00~8∶00。

3.采血部位和数量成人首选肘部血管:正中静脉、贵要静脉、头静脉等,婴幼儿可采用大隐静脉、颈外静脉、股静脉等。

4.采血顺序为血培养管→凝血项目管(蓝帽)→血沉管(黑帽)→促凝剂管(黄帽)→无添加剂管(红帽)→EDTA管(紫帽)5.在实际工作中,如患者静脉条件较差,有可能采血不足,血培养优先考虑需氧瓶,其他管应首先考虑凝血(蓝帽)和血沉(黑帽)检测管,因为这2种标本对血量要求最严格,且二者抗凝剂均为枸橼酸钠。

6.检验申请条码贴在采血管上时,请注意不要将采血管完全包裹,应留出空白,以便观察液面高和血液状态,若未打印条码,请将采血管上的数字条码撕下贴于检验申请单上, 并同时标写姓名、床号等关键信息。

7.同种颜色采血管采血时,请按上述要求采足血量和管数,不要只采一管。

8.血培养标本应在发热初期或发热高峰期采血。

一般要求选择在应用抗生素治疗前采血,对已用药而不能终止的患者,也应在下次用药之前采血。

9.禁止在静脉输液的同侧肢体采集血标本。

(二)末梢血采集规范1.查对检验申请单、受检者姓名及是否已按医嘱准备,向受检者解释操作目的,以取得合作。

2.常用选择无名指,先用酒精棉球消毒,然后用一次性采血针穿刺,让血液自然流出,用消毒棉球轻拭去第一滴后,将血液收集在试管内。

3.用干棉球压住穿刺部位,嘱采血对象按压2-3分钟。

(三)尿常规检查标本采集规范1.使用清洁干燥容器,住院病人以清晨第一次尿为主,门、急诊患者可随时留取新鲜尿液约20ml送检。

2.尿标本应避免经血、白带、粪便等混入。

3.标本留取后及时送检,不得超过1小时,以免细菌在尿中生长繁殖。

(四)24小时尿标本1、准备清洁干燥带盖的广口容器,容量为3000~5000mL。

2、病人于晨7时将尿全部排尽弃去,然后开始留尿,将24小时内历次所排尿液均留于容器中,包括次日晨7时所排最后一次尿。

3、测量尿液总量(ml)并记录,将全部尿液充分混均后,取出20—50m1,置于清洁干燥有盖容器中立即总检。

(五)粪便标本采集规范1.粪便常规检验留取5g左右(指头大小),粪便标本应留取新鲜粪便的病理成份,如粘液、血液(红色或黑色部份);若无病理成分,可各部位取材。

不得被其他异物污染,不能从尿布上取粪便标本,不得从尿壶或便盆中取标本。

2.潜血试验,应嘱患者收集标本前3天禁食动物性食物。

服用铁剂、铋剂、动物血液及绿叶蔬菜等可影响隐血测定应注意避免。

(六)脑脊液标本采集规范1.由医生采集,通常采用腰椎穿刺,必要时行小脑延髓池和脑室穿刺。

穿刺时皮肤消毒必须彻底。

2.脑脊液穿刺的时机与疾病有关,化脓性脑膜炎于发病后1-2d、病毒性脑膜炎于发病后3-5d、结核性脑膜炎于发病后1-3周,疱疹性脑膜炎于流行性感冒前驱症状期开始后5-7d穿刺采集标本。

3.穿刺成功后立即测定脑脊液压力,然后留取脑脊液标本于3个无菌试管中,每个试管1-2ml。

(申请分枝杆菌培养的标本不宜低于1.0ml)。

第一管做病原生物学检验,第二管做化学和免疫学检验,第三管做理学和细胞学检验。

4.标本采集后应立即送检,并于1h内检验完毕。

因标本放置过久,可造成细胞破坏、葡萄糖等物质分解、细菌溶解等,影响检验结果。

脑脊液标本应尽量避免凝固和混入血液。

5.注意事项:当颅内出血、感染或肿瘤,颅内压升高,穿刺有一定的危险性;必要时可给予适量的渗透性利尿剂(如20%甘露醇),降低颅内压后穿刺并减少取材量,以免诱发脑疝。

(七)浆膜腔积液标本采集规范1.浆膜腔积液包括胸水、腹水、心包液、关节液及鞘膜液等。

2.穿刺成功后,留取中段液体于无菌的容器内。

常规检查需要留取50ml,理学检查、细胞学检查和化学检查各留取2ml,厌氧菌培养留取1ml,结核杆菌检查留取5ml-10ml。

3.由于积液极易出现凝块、细胞变性、细菌破坏和自溶等,所以留取标本后应及时送检,不能及时送检的标本可加入适量乙醇以固定细胞成分。

理学检查和细胞学检查宜采用EDTA-Na2抗凝,化学检查宜采用肝素抗凝。

(八)精液标本采集规范1.采集标本前应禁欲3-5天,采前排净尿液。

2.将一次射出的全部精液直接排入洁净、干燥的容器内(不能使用乳胶避孕套)。

3.采集微生物培养标本须无菌操作。

4.送检时间不超过1小时。

二、微生物标本采集规范:(一)血培养采集规范皮肤消毒程序,严格执行三步法:1.用75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上2.用1%-2%碘酊作用30s或10%碘伏作用60s,从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达3cm以上,涂擦穿刺皮肤2遍,待干燥。

3.75%酒精脱碘:用75%酒精由内向外方向涂抹去碘酒液,待酒精挥发干燥后采血。

4.培养瓶消毒程序:打开血培养瓶塑料盖用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞并擦干表面残余酒精→消毒皮肤后用无菌注射器抽取血液从橡皮塞处注入血培养瓶内→用75%酒精重新消毒血培养瓶橡皮塞(棉球固定消毒)→立即送检。

5.采血量:成人为8~10ml每个部位,儿童1~2 ml每个部位,每人每次一套,病人双侧同时采血。

采集后立刻送往实验室。

6.血培养瓶在采血接种后在室温不超过2小时。

血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏或冷冻。

冬季血培养瓶在送检的过程中应采取一定的保暖措施。

(二)尿培养采集规范1.尿培养样本采集方法:中段尿标本的采集:取中段尿10ml左右于无菌容器内,立即送检。

女性:采样前应先用肥皂水清洗外阴部,再以无菌水冲洗,并用无菌纱布擦拭,然后排尿弃去前段尿,留取中段尿。

男性:翻转包皮,先用肥皂水清洗尿道口,再以清水冲洗,留取中段尿。

儿童、婴儿:多数情况下仅冲洗外阴是不够的,故采集标本比较困难,如尿内细菌明显增多,可高度怀疑尿路感染。

2.耻骨上膀胱穿刺:此法用于尿液的厌氧菌培养。

由专科医师行耻骨上膀胱穿刺采集尿液,标本采集后排去注射器内的空气,针头插于无菌橡皮塞上及时送检。

3.滞留导尿管集尿:用75%酒精消毒导管口,用针筒抽取5—10ml尿,置于无菌容器中送实验室,滞留导管会使膀胱带有细菌,尽可能不采用。

4.两侧肾盂尿标本的采集:为确定菌尿是否来自肾脏,可用导尿管采集肾盂尿,充分冲洗膀胱后,由专科医师进行肾盂尿的采集。

注意事项:(1)、采集后的标本应立即送检。

标本采集后应立即送检,否则可暂存于4℃冰箱,但不能超过6h。

(2)、采集时间:多数药物从尿道排泄,所以不管用哪种方法都应在用药前采集。

应采集早晨第一次的尿。

(3)、标本管不应含防腐剂和消毒剂。

(4)、多次收集或24小时尿不能用作培养。

(5)、室温都有利于病原菌和污染菌会生长繁殖,因此若30min内不能及时培养尿液则必须冷藏(4℃),但也不能超过6小时。

(三)痰培养操作规范:1.留取痰培养标本之前,用清水反复漱口,深部咳痰吐入无菌容器,标本量应≥1ml。

2.气管穿刺法:仅用于昏迷患者,由临床医师进行。

(适用于厌氧培养)3.纤维支气管镜抽吸:通常用于给患者行纤维支气管镜检查时抽取(适用于厌氧培养)4.小儿取痰法:用压舌板向后压舌,用棉拭子深入咽部。

小儿经压舌刺激咳痰时,喷出肺部和气管分泌物,黏液在棉拭子上。

5.胃内采痰法:无自觉症状的肺结核病人尤其婴幼儿不会咳嗽,有时将痰误咽入胃中,可采集胃内容物做结核分支杆菌培养。

(清晨空腹时)(四)大便培养1.采集时间:腹泻患者应在用抗生素前、急性期采集;沙门菌感染、肠热症应在2周内采;厌氧菌出现症状即采集。

2.采集方法:自然排便者可用小木棒挑取有脓血和黏液的部位的粪便2-3克,如液状粪便取絮状物盛于无菌的、密封的、不吸水的、容器内或直接盛于增菌液或保存液中;对不易获得粪便患者及幼儿,可用直肠拭子采集后置保存液或输送培养基中送检。

(五)脑脊液标本采集规范1.病人应先禁食,由医师以无菌手续在病人第3和第4腰椎间隙或稍低处穿刺取得,小儿则于第4和第5腰椎间隙穿刺,必须装入戴帽(盖)的无菌容器,立即送检。

2.标本采集后应置于无菌试管内尽快送检,绝不可冷藏!!!每种检验需要最小量:细菌培养≥lml,真菌≥2ml,抗酸杆菌≥2ml。

3.标本验收与拒收:标本未收集于无菌管或送检延误或冷藏保存,则拒收标本,通知临床要求重新采集标本。

(六)无菌体液标本采集操作规程1.由临床医生按相应规程无菌采取适量标本送检。

当留取标本时,为防止无菌体液凝固,应在无菌容器内先加入灭菌肝素0.5mg(可抗凝5ml标本),再注入各种穿刺液,轻轻混合。

2.标本采集后应置于无菌试管内尽快送检。

3.标本验收与拒收:未置于无菌容器内或未及时送检者应拒收。

(七)耳、鼻、喉标本采集操作规程1.正常人的中耳及鼻窦内是无菌的。

健康人的咽峡部有口腔的正常菌群。

做细菌培养有助于明确感染病原菌。

鼻咽部标本有助于诊断百日咳、白喉和衣原体感染,以及识别出脑膜炎奈瑟菌或金黄色葡萄球菌的携带者,但不能用于中耳炎、鼻窦炎的诊断。

2.采集指征:局部有炎症症状或怀疑有细菌感染,应进行细菌培养。

3.口咽部标本先用一个拭子揩去溃疡或创面表浅分泌物,第二个拭子采集溃疡边缘或底部,常规培养≤2h送检。

4.患有外耳炎者,需要深部拭子,因为浅表拭子可能遗漏链球菌引起的蜂窝织炎。

5.鼻标本用一根无菌棉拭子伸进一侧鼻孔约2.5cm,与鼻黏膜接触,轻轻旋转拭子,蘸取黏膜上分泌物,缓慢取出,直接送检。

6.耳、鼻、喉标本采集后应立即送检,防止干燥,禁止冷藏。

7.不建议用鼻咽拭子标本做常规细菌培养。

8. 耳、鼻、喉拭子标本一般不能做厌氧培养。

相关文档
最新文档