生理学实验报告
医专
生理学实验报告（五）
一、实验题目：心血管活动的神经与体液调节
二、实验目的：
1、学习家兔动脉血压的直接描记方法；
2、观察神经、体液因素对心血管活动和动脉血压的影响。
三、实验对象：家兔
四、实验物品：BL-420生物功能实验系统、压力换能器、动脉插管、
动脉夹、剌激电极、哺乳类动物手术器械、注射器、实验用药品等
五、实验原理：
在正常机体，血压的变动并不大，而是经常维持在一个相对稳定的水平。
机体对心血管活动的调节是通过各种心血管反射实现的。
其中最重要的反射是颈动脉窦和主动脉弓压力感受器反射。
改变压力感受器活动或剌激反射弧的传入、传出神经会引起心血管活动的改变，进而导致动脉血压的相应变化。
在正常体，心血管活动还受肾上腺素和去甲肾上腺等体液因素的调节。
通过静脉注射，改变血液中肾上腺素、去甲肾上腺素的浓度，也会影响心血管活动，从而使血压发生改变。
六、实验结果与简要分析：
七、实验结论：心血管活动和动脉血压受神经、体液因素的调节。
医专
生理学实验报告（六）
一、实验题目：1、呼吸运动的调节 2、胸负压测定
3、肺活量测定
二、实验目的：
1．学习记录哺乳动物呼吸运动的方法；观察体液中O2、CO2和H+水平变化对呼吸运动的影响；了解肺牵反射在呼吸运动中的作用。
2．观察胸负压，
3．学会用简易肺活量计测量肺活量的方法。
三、实验对象：1、家兔 2、人
四、实验物品：BL-420生物功能实验系统、力换能器、气管插管、50cm长橡皮管一条、注射器（20ml、5ml）、钠石灰瓶、肺活量计等五、实验原理：
呼吸运动是呼吸肌舒缩活动完成的节律性运动，该节律性运动在呼吸中枢的控制下保持正常的深度和频率。
体、外多种剌激可通过不同机制作用于呼吸中枢，引起呼吸运动的改变。
肺牵反射参与呼吸节
律的调节，其传入纤维在迷走神经中，切断迷走神经将会引起呼吸节律的变化。
六、实验步骤：（略）
七、实验结果与简要分析：
八、实验结论：呼吸运动受神经、体液等因素的影响。
九、作业：统计小组10位同学的肺活量，并求出男、女的平均值
肺活量正常值：平均男：3.5L；女：2.5L
医专
生理学实验报告（七）
一、实验题目：影响尿生成的因素
二、实验目的：学习膀胱插管技术，观察影响尿生成的因素，并分析其作用机制。
三、实验对象：家兔
四、实验物品：BL-420生物功能实验系统、压力换能器、记滴器、膀胱漏斗及引流管、动脉插管、注射器（20ml、5ml、1ml）、实验药品等。
五、实验步骤：（略）
六、实验原理：
肾脏的主要功能是生成尿。
尿的生成包括三个过程：肾小球的滤过、肾小管与集合管的重吸收、肾小管与集合管的排泌。
由于肾小管与集合管的排泌主要影响和调节细胞外液的电解质浓度和PH值，对尿量的影响较小，所以尿量主要决定于肾小球的滤过和肾小管与集合管的重吸收，凡能影响以上两过程的因素均可引起尿量的改变。
（一）影响肾小球滤过（GFR）的因素：
1、滤过膜的通透性（K，机械-电屏障），
2、滤过膜面积（S），
3、肾血浆流量改变，
4、EFP改变：①肾小球毛细血管血压，②血浆胶渗压
③囊压；
正常K与S变化不大，故GER的大小主要取决于EFP和肾血浆流量改变。
（二）影响肾小管和集合管重吸收的因素：
1、小管的溶质浓度
2、肾髓质高渗区的改变
3、体液因素：① ADH ② RAAS
六、实验结果与简要分析：
七、实验结论：
凡能影响肾小球的滤过和肾小管与集合管的重吸收的因素均可引起尿量的改变。
解剖生理学实验报告
实验报告（1）实验名称：中枢活动的基本特征实验目的：了解中枢活动的基本特征，分析反射弧的完整性与反射的关系实验用物：蟾蜍、手术器械、万能支台、肌夹、秒表、滤纸片、0.5%H2SO4实验步骤（实验内容）：1、制备脊髓蛙。
2、反射时的测定3、反射弧分析①感受器作用②周围神经作用③中枢作用实验结果：1、皮肤感受器反射时为3.20秒（三次的平均值）。
2、剥去皮肤后无反射发生。
3、剪断坐骨神经后无反射发生。
4、破坏脊髓后无反射发生。
由以上结果得出以下结论：1、此反射的感受器存在于皮肤上。
2、反射弧必须保持完整反射才会发生。
只要反射弧五个环节中的任一个环节被破坏，反射弧都不会发生。
实验报告（2）实验名称：蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本的制作实验目的：学习蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本的制备实验用物：蟾蜍、手术器械、探针、玻璃分针、培养皿、任氏液等实验步骤（实验内容）：1、破坏脑、脊髓2、剪断脊柱、去除前肢及内脏3、剥离皮肤4、分离左右后肢5、游离坐骨神经、分离腓肠肌得标本实验结果：制作一个机能良好的神经肌肉标本，见图。
实验报告（3）实验名称：肌肉的收缩特征实验目的：观察刺激与肌肉收缩的关系实验用物：蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本、手术器械、万能支台、肌槽、记纹鼓、蛙板、刺激器、任氏液实验步骤（实验内容）：1、连接实验装置2、固定肌肉标本3、观察实验项目实验结果：1、测定阈值为18／32V、最适刺激为24／32V。
（手动鼓、外触发、手动单次）2、描记收缩曲线（电动鼓、外触发、手动单次、最适刺激强度）1次／S 2次／S 4次／S 8次／S（单收缩）（单收缩）（不完全强直收缩）（完全强直收缩）实验报告（4）实验名称：血型的测定实验目的：1、学习用标准血清检查ABO血型的方法2、观察红细胞的凝集现象3、了解血型鉴定在输血治疗中的意义。
实验用物：人血、A型和B型标准血清、刺血针、玻片、玻璃棒、滴管、酒精、生理盐水、棉球等。
实验步骤（实验内容）：1、取两滴生理盐水各滴在玻片的两端。
生理学实验报告
生理学实验报告第一篇：生理学实验报告生理学实验报告坐骨神经-腓肠肌标本的制备一、实验目的及要求学习蛙类动物双毁髓的方法掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的操作技术，为此后有关的神经肌肉实验打下基础。
二、实验原理蛙或两栖类动物的一些基本生命活动及生理功能与温血动物近似，而且其离体组织需要的生活条件非常简单，易于控制和掌握。
因此在生理学实验中，坐骨神经-腓肠肌标本是研究神经肌肉生理最常用的对象，经常用来研究神经肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律、肌肉收缩的特点、兴奋性的周期性变化等。
三、实验对象蟾蜍或蛙。
四、实验器材及药品蛙类手术器械一套（金属探针1根，粗剪刀、眼科剪刀各1把，圆头镊子、眼科镊子各1把，玻璃分针2根），蛙板和玻璃板各1块，培养皿，滴管，废物缸、锌铜弓，丝线，棉花；任氏液。
五、实验方法及步骤1、双毁髓：左手握蟾蜍，背部向上。
用食指按压其头部前端，拇指压住躯干的背部，使头向前俯；右手持毁髓针，由两眼之间中线向后方划触，触及两耳后腺之间的凹陷处即是枕骨大孔的位置。
将毁髓针由凹陷处垂直刺入枕骨大孔，然后针尖向前刺入颅腔，在颅腔内搅动，以毁脑组织。
再将毁髓针退至枕骨大孔，针尖转向后方，与脊柱平行刺入椎管，以捣毁脊髓。
脊髓彻底捣毁时，可看到蟾蜍后肢突然蹬直，然后瘫软，此时的动物为双毁髓动物。
2、剥制后肢标本：左手持手术镊提起两前肢之间背部的皮肤，右手持手术剪横向剪断皮肤，然后往后肢方向撕剥皮肤。
剪开腹壁肌肉，用手术镊提起内脏，翻向头部，在看清支配后肢的脊神经发出部位后，于其前方剪断脊柱。
3、分离两后肢：将去皮的后肢腹面向上置于解剖盘上，右手持金冠剪纵向剪开脊柱，再剪开耻骨联合，使两后肢完全分离。
4、分离坐骨神经：将一侧后肢的脊柱端腹面向上，用玻璃分针沿脊神经向后分离坐骨神经，股部沿腓肠肌正前方的股二头肌和半膜肌之间的裂缝，找出坐骨神经，剪断盖在上方的梨状肌，完全暴露坐骨神经，剪去支配腓肠肌之外的分支，再剪去脊柱及肌肉，只保留坐骨神经发出部位的一小块脊柱骨。
生理学实验报告血型
一、实验目的1. 掌握血型鉴定的原理和方法。
2. 了解不同血型在临床医学中的应用。
3. 培养实验操作技能，提高实验分析能力。
二、实验原理血型是指血液中红细胞表面存在的抗原类型。
根据红细胞表面抗原的不同，人类血型可分为A、B、O、AB四种。
A型血红细胞表面有A抗原，B型血红细胞表面有B 抗原，O型血红细胞表面无A、B抗原，AB型血红细胞表面有A、B两种抗原。
根据红细胞表面抗原的不同，人类血型分为以下几种：1. A型：红细胞表面有A抗原，血清中有抗B抗体。
2. B型：红细胞表面有B抗原，血清中有抗A抗体。
3. AB型：红细胞表面有A、B两种抗原，血清中无抗A、抗B抗体。
4. O型：红细胞表面无A、B抗原，血清中有抗A、抗B抗体。
本实验采用玻片凝集试验进行血型鉴定。
三、实验材料1. 实验对象：志愿者。
2. 实验试剂：抗A、抗B血清，A型、B型、AB型、O型标准红细胞悬液。
3. 实验器材：玻片、滴管、酒精灯、镊子、棉签等。
四、实验步骤1. 取一张玻片，将抗A、抗B血清分别滴在玻片上。
2. 用滴管取少量志愿者血液，滴在玻片上。
3. 将玻片放在酒精灯火焰上微微加热，使血液与血清混合。
4. 观察红细胞与血清的反应，记录结果。
五、实验结果1. 若红细胞与抗A血清发生凝集，则志愿者为A型血。
2. 若红细胞与抗B血清发生凝集，则志愿者为B型血。
3. 若红细胞与抗A、抗B血清均发生凝集，则志愿者为AB型血。
4. 若红细胞与抗A、抗B血清均不发生凝集，则志愿者为O型血。
六、实验讨论1. 本实验采用玻片凝集试验进行血型鉴定，操作简便，结果准确。
2. 在实际操作过程中，应注意以下几点：a. 严格无菌操作，避免污染。
b. 滴加血清和血液时，滴管尖端应尽量靠近玻片，避免溅出。
c. 加热时，玻片应放在酒精灯火焰上方，避免火焰直接接触玻片。
3. 血型鉴定在临床医学中具有重要意义，如输血、器官移植等。
七、实验总结通过本次实验，我们掌握了血型鉴定的原理和方法，了解了不同血型在临床医学中的应用。
生理学实验报告
生理学实验报告生理学实验报告实验目的：通过观察与实验，了解并掌握人体生理学的基本概念和实验方法，加深对人体生理学的理论知识的理解。
实验原理：本实验主要涉及到血压的测量、心电图的记录以及肌肉收缩的观察，这些都是人体生理学中非常重要的实验内容。
通过这些测量与观察，可以了解到人体血液运输的过程、心脏的工作原理以及肌肉的运动方式。
实验材料：血压计、心电表、皮肤电极、模型肌肉实验步骤：1. 血压的测量首先人体的血压通常是通过测量上臂动脉的压力来得出的。
在实验时，被试者需保持坐姿，将血压计的袖带绑在上臂上，并将听诊器的听筒放在肘部的内侧动脉上。
然后充气到超过袖带血压上限的数值，然后缓慢地放气，通过听筒的声音变化来测量血压。
2. 心电图的记录心电图是通过记录心脏电活动而得出的，用来研究心脏的工作情况。
在实验时，被试者需将皮肤电极粘贴在胸部的特定位置，确保电极与皮肤之间无间隙。
然后打开心电表，进行心电图的记录。
记录时需保持被试者静止。
3. 肌肉收缩的观察为了研究肌肉的运动方式，可以使用模型肌肉进行观察。
在实验时，将模型肌肉固定在架子上，然后将电极连接到肌肉上，并设置合适的电流强度。
通过调节电流强度控制肌肉的收缩与放松，并观察收缩的过程。
实验结果：1. 血压的测量结果测量结果显示，被试者的血压为120/80 mmHg。
2. 心电图的记录结果心电图的记录结果显示正常的心电图波形，无异常情况。
3. 肌肉收缩的观察结果调节电流强度后，模型肌肉开始收缩，并随着电流的强弱变化而变化。
当电流强度达到一定数值时，肌肉收缩最大程度，无法再进一步收缩。
实验结论：通过这次实验，我们了解到了人体生理学中血压的测量、心电图的记录以及肌肉收缩的观察方法。
通过这些实验，我们可以更深入地了解人体血液运输、心脏功能以及肌肉的运动方式。
这些实验结果对于我们进一步理解人体生理学的基本概念和实验方法非常重要，对于日后的学习和研究都具有重要意义。
生理学实验报告范文
生理学实验报告范文实验一坐骨神经-腓肠肌标本制备[1]实验目的1.学习机能学实验基本的组织分离技术；2.学习和掌握制备蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的方法；3.了解刺激的种类。
[2]实验原理蛙类的一些基本生命活动和生理功能与恒温动物相似，若将蛙的神经-肌肉标本放在任氏液中，其兴奋性在几个小时内可保持不变。
若给神经或肌肉一次适宜刺激，可在神经和肌肉上产生一个动作电位，肉眼可看到肌肉收缩和舒张一次，表明神经和肌肉产生了一次兴奋。
在机能学实验中常利用蛙的坐骨神经-腓肠肌标本研究神经、肌肉的兴奋、兴奋性，刺激与反应的规律和肌肉收缩的特征等，制备坐骨神经腓肠肌标本是机能学实验的一项基本操作技术。
[3]实验对象蛙[4]实验药品任氏液[5]仪器与器械普通剪刀、手术剪、眼科镊（或尖头无齿镊）、金属探针（解剖针）、玻璃分针、蛙板（或玻璃板）、蛙钉、细线、培养皿、滴管、电子刺激器。
[6]实验方法与步骤①破坏脑、脊髓取蛙一只，用自来水冲洗干净（勿用手搓）。
左手握住蛙，使其背部向上，用大拇指或食指使头前俯(以头颅后缘稍稍拱起为宜)。
右手持探针由头颅后缘的枕骨大孔处垂直刺入椎管（图3-1-1）。
然后将探针改向前刺入颅腔内，左右搅动探针2～3次，捣毁脑组织。
如果探针在颅腔内，应有碰及颅底骨的感觉。
再将探针退回至枕骨大孔，使针尖转向尾端，捻动探针使其刺入椎管，捣毁脊髓。
此时应注意将脊柱保持平直。
针进入椎管的感觉是，进针时有一定的阻力，而且随着进针蛙出现下肢僵直或尿失禁现象。
若脑和脊髓破坏完全，蛙下颌呼吸运动消失，四肢完全松软，失去一切反射活动。
此时可将探针反向捻动，退出椎管。
如蛙仍有反射活动，表示脑和脊髓破坏不彻底，应重新破坏。
图2-1-1捣毁蟾蜍脊髓②剪除躯干上部、皮肤及内脏用左手捏住蛙的脊柱，右手持粗剪刀在前肢腋窝处连同皮肤、腹肌、脊柱一并剪断（图3-1-2），然后左手握住蛙的后肢，紧靠脊柱两侧将腹壁及内脏剪去（注意避开坐骨神经），并剪去肛门周围的皮肤，留下脊柱和后肢（图2-1-3）。
模拟实验生理学实训报告
通过本次模拟实验生理学实训，使学生了解人体生理学的基本实验方法和技能，掌握生理学实验的基本操作，培养严谨的科学态度和良好的实验习惯。
同时，通过实验加深对生理学基本理论的理解，提高分析和解决问题的能力。
二、实验环境实验地点：生理学实验室实验器材：生理学实验台、生理信号记录仪、生理实验装置、生理学实验教材等。
三、实验原理生理学实验是研究人体生命活动规律的重要手段。
通过模拟人体生理现象，观察生理指标的变化，揭示生理过程的内在联系。
本次实验主要模拟人体心脏、血管、神经等系统的生理功能。
四、实验内容1. 心脏生理实验（1）观察心脏搏动：使用生理信号记录仪，记录心脏搏动曲线，分析心率、心律等指标。
（2）心脏收缩力实验：观察心脏收缩力与后负荷的关系，分析心脏收缩力的影响因素。
2. 血管生理实验（1）观察血管收缩与舒张：使用生理信号记录仪，记录血管收缩与舒张曲线，分析血管舒缩机制。
（2）血管阻力实验：观察血管阻力与血管半径的关系，分析血管阻力的影响因素。
3. 神经生理实验（1）观察神经传导：使用生理信号记录仪，记录神经传导速度，分析神经传导机制。
（2）神经兴奋性实验：观察神经兴奋性与刺激强度的关系，分析神经兴奋性的影响因素。
1. 实验前准备：熟悉实验原理、实验步骤和注意事项，检查实验器材是否完好。
2. 实验操作：按照实验步骤进行操作，观察生理指标的变化，记录实验数据。
3. 数据分析：对实验数据进行整理、分析和讨论，得出结论。
六、实验结果与分析1. 心脏生理实验结果：（1）心率：在实验过程中，心率稳定在60-100次/分钟范围内。
（2）心律：在实验过程中，心律规则，无早搏、房颤等异常现象。
（3）心脏收缩力：随着后负荷的增加，心脏收缩力逐渐减弱。
2. 血管生理实验结果：（1）血管收缩与舒张：在实验过程中，血管收缩与舒张曲线明显，说明血管具有收缩与舒张功能。
（2）血管阻力：随着血管半径的减小，血管阻力逐渐增加。
3. 神经生理实验结果：（1）神经传导：在实验过程中，神经传导速度稳定在50-100m/s范围内。
生理学实验实验报告总结(3篇)
第1篇一、实验目的本次生理学实验旨在通过一系列的实验操作，加深对生理学基本理论的理解，掌握实验技能，培养科学思维和实验操作能力。
通过本次实验，我们学习了生理学实验的基本原则和方法，了解了生理学实验的基本步骤和注意事项。
二、实验内容1. 神经反射实验- 实验目的：观察和分析神经反射的基本现象，了解反射弧的组成和功能。
- 实验方法：采用小鼠作为实验动物，通过电刺激法刺激坐骨神经，观察肌肉的收缩反应。
- 实验结果：成功观察到电刺激坐骨神经后，肌肉出现明显的收缩反应，证实了神经反射的存在。
2. 血压测量实验- 实验目的：学习血压测量的原理和方法，了解血压的正常范围及其生理意义。
- 实验方法：使用血压计对实验动物进行血压测量，并记录血压数据。
- 实验结果：成功测量了实验动物的血压，结果显示血压在正常范围内。
3. 呼吸生理实验- 实验目的：观察和分析呼吸运动的基本规律，了解呼吸系统的生理功能。
- 实验方法：通过观察呼吸肌的收缩和舒张，以及肺容积的变化，分析呼吸运动的机制。
- 实验结果：观察到呼吸肌的规律性收缩和舒张，以及肺容积的变化，证实了呼吸运动的规律性。
4. 消化生理实验- 实验目的：观察和分析消化系统的生理功能，了解食物的消化和吸收过程。
- 实验方法：通过观察消化液的分泌和消化器官的活动，分析消化系统的生理过程。
- 实验结果：观察到消化液分泌的增加和消化器官的活动增强，证实了消化系统的生理功能。
三、实验过程1. 实验前准备：了解实验原理，熟悉实验器材，做好实验记录表格。
2. 实验操作：严格按照实验步骤进行操作，注意实验安全和数据记录。
3. 实验观察：仔细观察实验现象，及时记录实验数据。
4. 实验结果分析：对实验数据进行整理和分析，得出结论。
四、实验结果分析1. 神经反射实验：通过电刺激坐骨神经，成功观察到肌肉的收缩反应，证实了神经反射的存在。
2. 血压测量实验：血压测量结果显示在正常范围内，说明实验动物的生理状态良好。
生理学实验报告-《坐骨神经-腓肠肌标本的制备》
实验二-坐骨神经标本—腓肠肌标本的制备一、实验目的：1.学习蛙类动物单毁髓与双毁髓的方法。
2.学习并掌握坐骨神经-腓肠肌标本及腓肠肌的制备方法。
3.了解电刺激的极性法则。
二、实验原理：1、牛蛙作为实验动物的优势：离体实验是动物生理学主要的实验方法之一。
两栖动物是冷血动物，其基本生理机能与温血动物近似，而其离体组织器官维持活性所需要的条件比较简单，因此它常被选为生理学实验提供离体组织或器官的实验动物。
蟾蜍或青蛙坐骨神经—腓肠肌在任氏液中可维持生理活性数小时，在其基础上还可进一步制作神经干标本、腓肠肌标本，可用于研究肌肉收缩的特性，神经和肌肉的兴奋性、传导性，刺激与反应的关系，神经肌肉接头活动等生理活动及相关机制，甚至还可以用于药物筛选如抗疲劳药物的模型。
其中牛蛙人工养殖成本低产出率高，相对蟾蜍要更安全。
因此，本次实验选择牛蛙作为实验对象。
2、锌铜弓刺激检测标本活性的原理：锌铜弓在溶液中沾湿以后，锌的表面电离出正离子，里面形成负离子；而铜的表面电离出负离子,里面形成正离子。
当用锌铜弓接触活组织时，电流便沿着锌一活组织→铜的方向流动而产生刺激效应。
所以锌相当于正极,面铜相当于负极发挥刺激作用；当断开时，则发生相反的效应。
锌的金属电势比铜低，形成一定的电势差（就相当于有电压），锌铜弓是把一根锌棒和一根铜棒一端焊在一起，另一段分开，则接触样本（例如神经干）时，会引起样本局部去极化，引发动作电位。
三、实验器材：牛蛙，常用手术器械（手术剪、手术镊、手术刀、金冠剪、眼科剪、眼科镊、毁髓针、玻璃分针)，蜡盘，蛙板（木质或硬泡沫塑料），玻璃板，固定针，锌铜弓，培养皿或不锈钢盘，污物缸，滴管，纱布，粗棉线，任氏液。
四、实验流程和步骤：1.牛蛙的双毁髓一手握住牛蛙，背部向上。
用拇指压住牛蛙的背部，食指按压其头部前端，使头端向下低垂；另一手持毁髓针，由两眼之间沿中线向后触划，当触及两耳中间的凹陷处（此处与两眼的连线成等边三角形）时，持针手即感觉针尖下陷，此处即是枕骨大孔的位置。
生理学实验报告
生医2012秋生理学实验报告指导教师：实验员：学号：联系方式：实验一骨骼肌的观察及骨骼肌的单收缩与强直收缩目标要求1.掌握蛙类动物单毁髓的实验方法;2.掌握坐骨神经-腓肠肌标本和坐骨神经干标本的制备方法;3.学习肌肉收缩的记录方法;4.观察与分析肌肉单收缩的三个时相,分析骨骼肌收缩形式与刺激频率之间的关系;基本原理蛙类动物的某些基本生命活动,如神经的生物电活动、肌肉收缩等与哺乳动物相似;其离体组织所需的生活条件比较简单,易于控制和掌握,而且动物来源丰富,因此在生理学实验中常用蟾蜍的坐骨神经—腓肠肌标本永和坐骨神经标本来观察组织的兴奋性、刺激与反应的规律以及骨骼肌收缩的特点等;肌肉受到一次阈上刺激而产生的一次收缩为单收缩,其过程可分为三个时相,即潜伏期、缩短期与舒张期;肌肉收到连续的阈上刺激时,如果刺激间隔小于单收缩的时程,相邻两单收缩的时相会出现融合,表现为强直收缩现象;如果表现为每次收缩的开始发生在上次收缩的舒张期,称不完全强直收缩,如果表现为每次收缩的开始发生在上次收缩的缩短期,称完全强直收缩;躯体运动是以骨为杠杆,以关节为枢纽,由肌肉收缩产生动力完成的;材料与器械蟾蜍或蛙,蛙类手术器械手术剪、手术镊、眼科剪、眼科镊、金冠剪、毁髓针、玻璃针、固定针,蛙板,玻璃板,锌铜弓,小烧杯,滴管,纱布,细棉线,任氏液;BL-420生物机能实验系统或其他生理记录仪,张力换能器;实验步骤1.双毁髓的方法一手握蟾蜍,食指按压头部前端,拇指压住躯干背部,令其背部向上,头向前俯；另一手持毁髓针在左右耳后腺之间,背部的凹陷处将毁髓针垂直刺入,然后将针尖向前刺入颅腔,搅动以捣毁脑组织,此时的动物为单毁髓动物;彻底捣毁脊髓时,可见蟾蜍后肢突然蹬直,然后瘫软;如动物仍表现四肢肌肉紧张或活动自如,表明未毁坏脊髓,必须重新毁髓;2.剥制后肢标本将双毁髓的蟾蜍背面向上放在蛙板上,一手持手术镊轻轻提起两前肢之间背部的皮肤,另一手持手术剪横向剪开皮肤,暴露脊柱;用金冠剪横向剪断脊柱;一首持手术镊提起断开的脊柱后端,另一手用金冠剪沿脊柱两侧剪开体壁,再剪断下腹壁肌肉,使头部、前肢及内脏自然下垂,将其自腹后壁剪除;然后用蘸有任氏液的左手捏住断开的脊柱后端,右手向后方撕剥皮肤,将剥干净的后肢放入盛有任氏液的培养皿中;弃其头部、内脏及剥下的皮肤,清洗手及手术器械上的污物;3.分离两后肢左手托起去皮的标本,右手持金冠剪直接剪开耻骨联合,随后剪开两后肢相连的肌肉组织,并纵向剪开脊柱尾杆骨留在一侧,将标本一分为二,一只继续剥制标本,另一只放入任氏液中备用;4.分离坐骨神经取一侧后肢的脊柱端腹面向上,趾端向外侧翻转,使其足底朝上,用固定针将标本固定在玻璃板下面的蛙板上;用玻璃针沿脊神经向后剥离坐骨神经;沿腓肠肌正上方的股二头肌和半膜肌之间的肌缝找出股部的坐骨神经,坐骨神经基部有一梨状肌盖住神经,用玻璃针轻轻挑起此肌肉,便可看清其深层穿行的坐骨神经;剪断梨状肌,完全暴露坐骨神经,再用玻璃针轻轻挑起神经,自上而下剪去支配腓肠肌之外的其他分支,将坐骨神经游离至腘窝处;用金冠剪剪去多余的脊柱骨及肌肉,只保留坐骨神经发出部位的一小块脊柱骨;取下脊柱端的固定针,用手术镊轻轻提起脊柱骨的骨片,将神经搭在腓肠肌上;5.游离腓肠肌用玻璃针将腓肠肌与胫腓骨分离开,用手术刀片将腓肠肌跟腱与胫腓骨分离开一段,用手术镊在腓肠肌跟腱下穿线并结扎,提起结扎线,剪断跟腱与胫腓骨的联系,游离腓肠肌;6.分离股骨一手捏住股骨,沿膝关节剪去股骨周围的肌肉,用金冠剪刮干净股骨上的肌肉,保留股骨的远端二分之三,剪断股骨;剪去膝关节下部的后肢,保留腓肠肌与股骨的联系;7.检验标本用手术镊轻轻提起标本的脊柱骨片,使神经离开玻璃板,持经任氏液蘸湿的锌铜弓,使其两极轻触神经,如腓肠肌反生收缩,则表示标本机能正常;提起腓肠肌上的结扎线,勿使神经收到牵拉,轻轻将标本放入任氏液中,稳定5-10min,即可用于实验;8.将坐骨神经-腓肠肌标本的股骨部分插入肌槽的固定孔内,拧紧固定螺丝,将坐骨神经放在电极上,将跟腱上的结扎线与张力换能器相连;9.用BL-420生物机能实验系统或其他类型的生理记录仪记录单收缩和强直收缩,步骤如下：（1）将张力换能器在肌槽上方与肌槽平行地固定于铁支架上,将标本上的结扎线缚于张力换能器悬梁壁上,将换能器输出的插头连于BL-420生物机能实验系统;（2）将BL-420生物机能实验系统的输出电极连于肌槽电极上;选择采样频率、显示方式、显示通道、时间常数、高频滤波,必要时还要选择50Hz陷波；记录时选择刺激标记;（3）选择单刺激方式,合适的刺激强度、刺激时间、扫描速度、纵向放缩和刺激标记,记录单收缩曲线;记录曲线参考图;（4）选择连续刺激方式,参考单刺激的刺激强度、刺激时间、纵向放缩、刺激标记、调节刺激时间间隔和扫描速度,分别记录不完全强直收缩曲线和完全强直收缩曲线;记录曲线参考图;（5）将记录曲线存盘,根据需要进行剪辑和编辑,最后导出另存或输出打印;实验记录分析：刺激电压低于阈上刺激,神经不兴奋,肌肉也不会收缩;当电压达到阈强度,神经开始兴奋,肌纤维才开始收缩;当刺激频率增大时,如果刺激频率小于骨骼肌收缩舒张频率就可以看到数个比较完整的收缩舒张波从零电位到峰值,再由峰值回到零电位,而当刺激频率大于骨骼肌收缩舒张频率时,骨骼肌一次收缩后还没来得及舒张完全就又受到电刺激重新达到收缩峰值,刺激频率增大到一定强度时就几乎看不到骨骼肌舒张的波形,持续收缩直至僵直;注意事项1.双毁髓时应注意使蟾蜍头部前俯,用纱布盖在耳后大腺上,防止耳后腺分泌物射入眼内;如分泌物射入眼内,应立即用生理盐水冲洗眼睛;标本制备过程中应经常滴加任氏液,防止标本干燥;思考题1、剥去皮肤的后肢,能用自来水冲洗吗为什么2、答：不能;自来水是低渗溶液,会使肌细胞失水萎缩,影响活性和实验结果;3、金属器械碰压、触及或损伤神经及腓肠肌,可能引起哪些不良后果答：金属器械碰压神经与腓肠肌,会引起肌肉收缩,如果碰的较重,损伤部位及近端的神经就死亡了,以后刺激只能从损伤处向肌肉处之间的部分;另外容易使标本疲劳,失去活性;4、如何保持标本的机能正常答：金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌,保持湿润,常加任氏液,最好先泡一会;实验二蟾蜍离体蛙心灌流目的要求1.学习两栖类动物离体心脏的灌流方法,掌握斯式插管法；2.证明心肌具有自动节律性收缩的生理特征；3.观察钠离子、钙离子、钾离子、肾上腺素、乙酰胆碱对心脏活动的影响；4.理解内环境各种理化因素的相对恒定对于细胞进行正常生命活动的重要意义;基本原理心脏离体后,仍能有节律地自动收缩、舒张,此为心肌的自动节律性;两栖类动物的心脏没有冠状动脉,心肌细胞直接从心腔中的血液中获得营养物质和氧气,因而可用斯式插管法进行离体心脏灌流;灌流液的成分应同动物内环境的成分基本一致,用于两栖类动物心脏的灌流液为任氏液;始终有任氏液灌流于心腔,离体心脏可长时间地活动,改变灌流液的成分则可引起心脏活动的改变;材料与器械蟾蜍或蛙,蛙心套管,套管夹,支架,双凹夹,滑轮,烧杯,常用手术器械,蛙板,蛙心夹,微机记录系统或二道记录仪,张力传感器,滴管,小烧杯,纱布,棉线,任氏液,%NaCl,5%NaCl,2%CaCl2,1%KCl,1/5000肾上腺素,1/10000乙酰胆碱;实验步骤1.暴露心脏取一只蟾蜍,用探针破坏脑和脊髓;双毁髓后,将其仰卧于蛙板上;一手持手术镊提起胸骨后方的皮肤,另一手持解剖剪剪开一个小口,然后将剪刀由开口处伸入皮下,向左、右两侧下颌角方向剪开皮肤;将皮肤掀向头端,再用手术镊提起胸骨后方的腹肌,在腹肌上剪开一口,将解剖剪紧贴体壁向前伸入,并沿皮肤切口方向剪开体壁,剪断乌喙骨和锁骨,使创口呈一倒三角形;一手持眼科镊,提起心包膜,另一手用眼科剪剪开心包膜,暴露心脏;在腹面可以看到一个心室,其上方有两个心房;心室右上角连着一个动脉干,其根部膨大为动脉圆锥;动脉干向上分成左、右两支主动脉;用玻璃针从动脉干背部穿过,将心脏翻向头侧;在心脏背面两心房下面,有一个呈紫红色的膨大部分,为静脉窦,是两栖类动物心脏的起搏点;静脉窦连左、右前腔静脉,后连一个后腔静脉；后腔静脉近窦处,有左、右肝静脉汇入;2.离体心脏制备斯式插管法分四步：1）动脉切口：在动脉干分支处下方穿过一线,并打一活结留作固定套管用;在左主动脉下方穿过一线,稍离动脉干分支处结扎;左手提起左主动脉上的结扎线,右手用眼科剪在结扎线下方近动脉圆锥处、沿向心方向将左主动脉壁剪一“V”斜口;2）套管入室：取一尖端大小适宜的斯式蛙心套管,加入少量任氏液,达套管内2~3cm高度即可;左手用小镊子夹住切口缘,轻轻上提,使切口扩大；右手持蛙心套管,自切口处插入动脉圆锥;然后,左手持主动脉上的结扎线向后拉,右手推送蛙心套管,使之进入动脉圆锥;当套管尖端到达动脉圆锥基部时,将套管稍稍后退,使尖端向动脉圆锥的背部后下方及心尖方向推进;在心室收缩时,将套管经主动脉瓣间隙插入心室腔内;进入心室后,血液冲入套管,并使液面随心脏波动而上下移动;如果套管没有顺利插入心室,应改变方向慢慢试插,不用蛮力;插入心室后不可插得过深,以免心室壁堵住套管口;3）固定套管：待套管尖端插入心室后,轻轻提起备用线,将左、右主动脉连同插入的套管用双结扎紧,再将结扎线固定在套管的小玻璃钩上,以防标本滑脱;用滴管吸去套管中的血液,更换新鲜任氏液;4）游离心脏：先将结扎线上方的左、右主动脉剪断;然后轻轻提起套管和心脏,看清静脉窦的位置;于静脉窦下方剪断所有的组织,使心脏离体;在结扎和剪断时,切勿损伤静脉窦;用任氏液反复冲洗心室内的余血,使套管内的灌流液中不再有残留的血液;套管内任氏液面高度应尽量保持一致,控制在2cm左右较为适宜;3.固定蛙心标本将插好离体心脏的套管固定在支架上,用蛙心夹夹住少许心尖部的肌肉;为了不使灌流液滴到传感器上,将蛙心夹上的系线绕过一个定滑轮与张力传感器相连;4.开启仪器打开计算机采集系统,接通张力传感器输入通道;打开matlab,选择“蛙心灌流”实验;5.实验记录1）记录正常心搏曲线;2）改用%NaCl溶液灌流,并作好加药记号,观察心搏变化;待曲线出现明显变化时,立即吸去套管中的灌流液,同时做好冲洗标记,并用新鲜任氏液清洗2~3次,待心搏恢复正常;3）向套管内加入2~6滴5%NaCl溶液,作好加药记号,观察心搏曲线的频率及振幅变化;当曲线出现明显变化时应立即吸去套管中的灌流液,并做好冲洗标记,迅速用新鲜任氏液清洗2~3次,待心搏恢复正常;4）同法向套管内加入1~3滴2%CaCl2溶液,观察并记录心搏的变化;当出现明显变化时,立即更换任氏液,待心搏恢复正常;5）向套管中加入1~2滴1%KCl溶液,记录心搏曲线变化;当心搏曲线变化时同法更换灌流液,待心搏恢复正常;6）同法记录套管中加入1~2滴肾上腺素溶液1/5000后心搏曲线的变化;7）同法记录套管中加入1~2滴乙酰胆碱溶液1/10000后的心搏曲线的变化;实验结果实验结果如下：1、正常心搏曲线2、用%NaCl溶液灌流分析：由图可知,Na离子会使心肌活动强度减弱,原因是用NaCl溶液灌注蛙心时,由于灌注液中缺乏Ca离子,以致心肌细胞动作电位2期内流钙离子减少,细胞质Ca离子浓度减少,心肌的收缩活动也随之减弱;3、用2%CaCl2溶液灌流分析：细胞外Ca离子在细胞膜上对Na离子内流有竞争性抑制作用,称为膜屏障作用;钙离子浓度增高时,钠离子内流受抑制,细胞0期除极速度与幅度减小,使兴奋性及传导性均降低;钙离子浓度增高使钙离子内流增多,因此慢反应细胞0期去极化加快加强,传导性增高,而快反应细胞平台期缩短,复极加速;钙离子内流增多,使心肌收缩能力增强;钙离子浓度降低时,所引起的变化与高钙时相反;因此加入氯化钙后,心率减少、振幅减少,基线上移;5、用KCl灌流分析：滴加氯化钾后的心搏曲线发现,曲线的频率逐渐减小,愈来愈疏,幅度逐渐下降,因为当细胞钾离子浓度增高时,钾离子与钙离子有竞争性拮抗作用,钾离子抑制细胞膜对钙离子的转运,使进入细胞内钙离子减少,心肌的兴奋—收缩偶联过程减弱,心肌收缩能力降低;所以心搏曲线振幅减小;6、用肾上腺素灌流分析：滴加肾上腺素后,蛙心收缩增强,心脏舒张完全,描记的心搏曲线幅度明显增大;其作用机理是,肾上腺素可与心肌细胞膜上的B受体结合,提高心肌细胞和肌浆网膜钙离子通透性,导致肌浆中钙离子浓度增高,使心肌收缩增强;另外,肾上腺素还有降低肌钙蛋白与钙离子亲和力,促使肌钙蛋白对钙离子的释放速率增加,提高肌浆网膜摄取钙离子的速度,刺激钠离子与钙离子交换,使复极期向细胞外排出钙离子的作用加速,这样,将使心肌舒张速度增快,整个舒张过程明显增加;6、加入乙酰胆碱灌流分析：上图可示,蛙心收缩减弱,心率减慢,最后出现蛙心停止舒张阶段;其机理为：乙酰胆碱与心肌细胞膜M受体结合,一方面提高心肌细胞膜钾离子通道的通透性,促使钾离子外流,将引起：1窦房强细胞复极时钾离子外流增多,最大复极电位绝对值增大；衰减过程减弱,自动除极速度减慢;这两方面因素导致窦房自律性降低,心率减慢;2复极过程中钾离子外流增加,动作电位2、3期缩短,钙离子进入细胞内减少,使心肌收缩减弱；另一方面乙酰胆碱可直接抑制钙离子通道,减少钙离子内流,进而使心肌收缩减弱;注意事项1.剪开动脉管壁时,不能只剪开其外的薄膜,而要彻底将血管内膜剪破,但不要把血管剪断;2.使用蛙心夹夹心尖时,不可夹得过多,以免因夹破心室而漏液;3.每种试剂使用后,都要用新鲜任氏液冲洗2~3次,以待心搏恢复正常;4.各种试剂的滴管不能混淆;5.每项实验都要有相应的对照;思考题根据实验结果,分析钠离子、钾离子、钙离子对心肌有何作用分析如上文;实验三小鼠脊髓半横切实验目的观察小白鼠脊髓半横断后的表现,加深对脊髓的认识;实验原理神经系统基本的活动形式是反射;简单的反射由脊髓完成,如膝反射,而复杂的反射则涉及到大脑皮层;脊髓把感受器接受到的信息传到大脑；大脑发出的信息又通过脊髓传到相应的效应器;这种传导机能主要由脊髓的白质来完成;白质是由神经元发出的长突起神经纤维组成的;脊髓中的神经纤维按不同的机能顺序排列;一旦脊髓被切断,则可导致切口以下相应部位的感觉或运动功能的丧失;实验对象小白鼠实验器材及药物改进的蛙板蛙板两边各钉两枚小元钉、小烧杯、药棉、手术缝针、丝线、解剖刀、剪刀、眼科手术刀、镊子、乙醚;实验方法及步骤1.用乙醚麻醉小鼠;2.把小白鼠俯卧和固定在改装了的蛙板上,剪去胸腰部背面的毛,在正中处用解剖刀纵切皮肤,划一个长的切口;3.紧贴第1~3节腰椎的棘突,用解剖刀切断椎上的肌腱,并用药棉球分离肌肉,暴露椎骨;4.用镊子夹住第二腰椎,另一个拿剪刀剪去棘突和椎弓,暴露白色的脊椎;5.在脊椎背面正中有一条纵向的血管,叫脊髓后静脉,以此为标志,用柳叶刀将一半脊髓从中央向外侧完全切断;6.松绑四肢,待其苏醒进行下列观察小白鼠在实验桌上运动状况;实验结果及分析当手术成功时,可观察到如下结果：小白鼠在运动时,与脊髓损伤同侧的后肢不能运动,呈现出以脊髓损伤侧为轴的转圈运动;结论：由大脑发出的运动指令到达脊髓后,通过脊髓白质的神经纤维继续向下传送,脊髓两侧的运动神经纤维大都在本侧里行走即不交叉到对侧;在脊髓被损伤的一侧,运动指令无法传到横切以下的部位,该侧后肢得不到运动指令,因而不能随意运动；脊髓未遭横切的一侧,大脑发出的运动指令,可以通过脊髓白质的神经纤维传到后肢肌肉,所以这一侧后肢运动如常;注意事项1.本实验成功的关键在于手术;首先麻醉要适度,麻醉过深小白鼠易死亡,过浅小白鼠易苏醒;其次用柳叶刀横切一侧脊髓时要防止损坏对侧脊髓;2.半横切部位必须在相当于第二腰椎的脊髓处,实验效果才好;手术中要防止出血过多;实验四心血管活动的神经体液调节实验目的学习哺乳动物动脉血压的直接测定方法和间接或直接地观察心血管活动的神经体液性调节;实验原理正常情况下,哺乳动物的血压是相当恒定的,这种相对恒定是通过神经和体液性的调节而实现的;心脏受交感神经和副交感神经的双重支配,心交感神经使心跳加快加强,传导加速,从而使心输出量增加;支配心脏的副交感神经是心迷走神经,兴奋时使心率减慢,心房收缩力减弱,房室传导减慢,从而使心输出量减少;支配血管的植物性神经,绝大多数属于交感缩血管神经,中枢通过反射作用调节心血管的活动改变心输出量和外周阻力,从而调节动脉血压;本实验是通过动脉血压的变化来反映心血管活动的变化的;实验用品家兔、D-95生理记录系统、血压换能器、塑料动脉插管、动脉夹、三通管、刺激器、保护电极、兔手术台、哺乳动物手术器械、手术灯、注射器、肝素生理盐水、40%酒精生理盐水、生理盐水、纱布、棉球、丝线、%肾上腺素、%乙酰胆碱等;实验步骤和项目一、手术准备1、麻醉并固定动物：耳缘静脉缓慢注入麻醉剂将兔子麻醉;注射时应密切观察动物的肌张力、心跳、呼吸、瞳孔大小、角膜反射等,以免麻醉过深;将动物仰卧于手术合上．固定好头部和四肢,注意颈部必须放正拉直;2、分离颈部神经和血管：剪去颈部的毛,沿正中线作一5～7厘米的切口,钝性分离皮下组织和肌肉,暴露气管,将气管两旁的肌肉拉开,便可在气管的二侧深部找到包在颈动脉鞘内的颈总动脉、迷走神经、颈交感神经和减压神经;在分离颈总动脉前,仔细识别以上三条神经,其中迷走神经最粗,交感神经较细,减压神经最细,且常与交感神经紧贴在一起,分离时不要过度牵拉,以免使神经受损;并在各神经下分别穿过一有色标记的用生理盐水浸湿的线备用;然后分离出左侧颈总动脉,并向头端追索一直到甲状软骨的上缘,此时可见到颈总动脉分支为颈内和颈外动脉;在颈内动脉的基部有一膨大处,此即颈动脉窦;在右颈总动脉下穿过二根用生理盐水浸湿的线,作结扎和固定动脉插管用;并以同样方法分离出右侧的迷走神经、交感神经和减压神经,穿线备用;3、动脉插管：在右侧颈总动脉的近心端夹一动脉夹,然后结扎其远心端,在动脉夹与结扎之间一般应相距2cm左右;在结扎的下方用锐剪朝向心端做一“V”切口,将动脉插管向心脏方向插入,用丝线将其敷紧结扎固定,以防插管滑出;二、观察项目：1、牵动颈总动脉;手持左侧颈总动脉上的穿线牵拉5秒;同时记录刺激记号,以下各项亦同,不另,观察心搏与动脉血压有何变化2、夹闭颈总动脉用动脉夹夹闭左颈总动脉5-10秒,观察心搏与血压有何变化3、静脉注射%肾上腺素,观察心搏与血压有何变化;注意事项1、本实验麻醉应适量,过浅动物挣扎,过深则反射不灵敏;2、动脉插管应始终保持与动脉方向一致,防止插管刺破动脉管壁;3、进行每一项目后,必须待心搏与血压恢复正常后方可进行下一项;实验结果牵动颈总动脉：注射肾上腺素：实验五影响尿液生成的因素实验目的学习用膀胱套管或输尿管套管引流的方法,观察不同生理因素对动物尿量的影响;加深对尿生成调节的理解;实验原理尿是血液流过肾单位时经过肾小球滤过,肾小管重吸收和分泌而形成的,凡对这些过程有影响的因素都可影响尿的生成;肾小球的滤过作用取决于肾小球的有效滤过压,其大小取决于肾小球毛细血管血压,血浆的胶体渗透压和肾小囊内压;影响肾小管重吸收作用主要是管内渗透压和肾小管上皮细胞的重吸收能力,后者又为多种激素所调节;实验对象家兔实验器材及药物20%氨基甲酸乙酯、肝素生理盐水溶液100u/ml、生理盐水、呋塞米、38度生理盐水;计算机生物信号采集处理系统、压力换能器、保护电极、兔手术台、气管插管、膀胱导管或输尿管导管、动脉插管、注射器1ml、20ml及枕头、烧杯;实验步骤及方法1.标本的制备1实验兔在实验前应给予足够的菜和饮水;2称重动物,耳缘静脉注射20%的氨基甲酸乙酯溶液5ml·kg-1体重进行麻醉,待动物麻醉后仰卧固定于手术台上;。
生理实验报告
篇一：生理学综合性实验报告本科学生实验报告学号姓名学院生命科学学院专业、班级生物科学2011级b班实验课程名称＿＿生理学实验指导教师及职称＿开课时间 2013 至＿ 2014 学年＿第二学期填报时间云南师范大学教务处编印篇二：生理实验报告生理学实验报告生理感觉实验姓名：同组成员：学号：组别：第6组室温：24实验日期：2015.5.15实验1：辐辏双眼视力要求左右眼睛里的图像合二为一。
只有当图像落在视网膜左右相应的部位置时，才能将一个物体的两个图像融合为一，否则会出现重影。
实验2：适应性调节（聚焦）眼睛能够通过改变瞳孔的形状（变焦）调节视力。
步骤：1. 挡住或者闭住一只眼睛，拿一个别针放在另外一只眼睛前面15cm处，并让这个别针与远处的一个物体在一条直线上。
2. 当你看远处的物体时，别针就变模糊，不在焦距内了。
3. 而当你看别针时，远处的物体变模糊了。
对近处物体（别针）的适应性调节似乎费力一些。
4. 如果戴眼镜，请取掉，挡住一只眼睛，拿一个别针，向前伸直前臂，在看着别针尖端的同时，慢慢地向眼睛处移动别针，直到模糊时。
别针被看到的最短距离就是“近视点”。
用尺子测量这个距离，将数值填写在表中，看一下你是否是近视。
结果测得的近视点如下：实验3：跳动抑制你能够看到你自己的眼睛移动吗？步骤：1. 面对着你前方30cm-60cm处的一个镜子。
2. 交替地看你左右眼睛里的图像。
3. 你能够察觉到你的眼睛在移动吗？4. 如果你们组的其他成员在你进行观察时也在看你，5. 他们察觉到你的眼睛在移动吗？结果在交替看左右眼里图像的过程中，看近处的物体较容易观察到左右眼的移动，看远处物体没有观察到眼睛的移动，当别人能观察到自己的眼睛在移动时，自己也能感觉到眼睛移动。
实验4：盲点每个眼睛的视野里都有一个盲点，称为视盘，是视网膜的一个部分，这个地方没有光感受器。
步骤：1. 取一支felt-tipped笔，笔芯为黑墨水，笔套为白色。